Yöntem makalesi

Otomatik Gıda Alımı İzleme Sistemi Kullanan Sıçanlarda Sakaroz Tercihi ve Yenilik Kaynaklı Hipofaji Testleri

10.5K görüntüleme

⸱

DOI:

10.3791/60953

⸱

8 Mayıs 2020

 ,  ,  ,  ,  ,  ,  , 
1Charité Center for Internal Medicine and Dermatology, Department for Psychosomatic Medicine, Charité-Universitätsmedizin, Corporate Member of Freie Universität Berlin, Humboldt-Universität zu Berlin and Berlin Institute of Health, 2Department of Internal Medicine, Helios Clinic, 3Department of Psychosomatic Medicine and Psychotherapy, University Hospital Tübingen, 4Department of Quantitative Health Sciences, University of Massachusetts Medical School

* These authors contributed equally

Bu makalede

Özet

Burada sunulan sıçanlarda depresyon benzeri ve anhedonik davranış çalışma için bir protokoldür. Bu iki köklü davranış yöntemleri birleştirir, sakaroz tercihi ve yenilik kaynaklı hipofaji testleri, otomatik bir gıda ve sıvı alımı izleme sistemi ile, dolaylı olarak vekil parametreleri kullanarak kemirgen davranışını araştırmak için.

Özet

Depresif hastalıkların görülme sıklığı ve görülme sıklığı dünya çapında artmakta olup, yaklaşık 322 milyon bireyi etkileyerek hayvan modellerinde davranışsal çalışmalara duyulan ihtiyacın altını çizmektedir. Bu protokolde, sıçanlarda depresyon benzeri ve anhedonik davranışları incelemek için, kurulan sakaroz tercihi ve yeniliği neden olan hipofaji testleri otomatik gıda ve sıvı alımı izleme sistemi ile birleştirilmiştir. Testten önce, sakaroz tercihi paradigmasında, erkek sıçanlar musluk suyuna ek olarak sakaroz solüsyonu tüketmek için en az 2 gün eğitilirler. Test sırasında sıçanlar tekrar su ve sakkaroz çözeltisine maruz kalırlar. Tüketim otomatik sistem tarafından her saniye kaydedilir. Toplam su alımı (sakaroz tercih oranı) sakaroz oranı anhedoni için bir vekil parametre. Yenilik kaynaklı hipofaji testinde, erkek sıçanlar lezzetli bir atıştırmaya maruz kaldıkları bir eğitim döneminden geçerler. Eğitim sırasında, kemirgenler istikrarlı bir temel atıştırmalık alımı göstermektedir. Test günü, hayvanlar ev kafeslerinden taze, boş bir kafese aktarılır ve bilinen lezzetli atıştırmaya erişimi olan bilinmeyen yeni bir ortamı temsil eder. Otomatik sistem toplam alımını ve altta yatan mikro yapısını kaydeder (örneğin, atıştırmaya yaklaşmaya gecikme), anhedonik ve endişeli davranışlarhakkında bilgi sağlar. Bu paradigmaların otomatik bir ölçüm sistemi yle birleşimi, ölçüm hatalarını azaltarak daha yüksek doğrulukla birlikte daha ayrıntılı bilgi sağlar. Ancak, testler vekil parametreleri kullanmak ve sadece dolaylı bir şekilde depresyon ve anhedoni tasvir.

Giriş

Ortalama olarak, dünya nüfusunun% 4.4 depresyon etkilenir. Bu hesap 322 milyon kişi dünya çapında, bir 18% artış on yılönce1 göre. Dünya Sağlık Örgütü tarafından yapılan tahminlere göre, depresyon 2020 yılında Engellilik Düzeltilmiş Yaşam Yılı sıralamasında ikinci olacak2. Duygusal bozuklukların artan yaygınlığını ele almak ve yeni girişimsel stratejiler oluşturmak için bu davranışı daha fazla incelemek gerekir. İnsanlarda önceden ve muayeneye ek olarak hayvan çalışmaları gereklidir.

Çeşitli modeller depresif davranış bileşenleri çalışmak için kurulmuştur (yani, zorla yüzme testi, kuyruk süspansiyon testi, sakaroz tercih testi, ve yenilik kaynaklı hipofaji)3,4. Sakaroz tercih testi (SPT) ve yeniliklere bağlı hipofaji (NIH) hayvanlarda depresyon benzeri davranışları saptayabiliyor. Bu testler kendilerini kemirgenlerde depresyon durumuna neden olmaz ama davranış akut değişiklikler tasvir. Hem SPT ve NIH aşağıdaki ilgi kaybı olarak bilinen depresyon karakteristik bir özelliği değerlendirmek: ödüllendirici faaliyetleri, bir zamanlar bireysel tarafından zevk edildi faaliyetleri5, ve işleme karmaşık fenomenin bir yönü ve ödül yanıt6. Her iki test de lezzetli gıda şeklinde ödüllendirici bir uyarıcı yanıt çalışma. Tüketim in ölçüde anhedoni için bir vekil parametre olarak hizmetvermektedir 7,8,9.

Anhedoniyi araştıran testlerin değeri, maddenin ağırlığının kesin ölçümünden kaynaklanan tüketimin doğru belirlenmesine bağlıdır. Geleneksel olarak, bu ölçüm testten önce ve sonra bir kez el ile yapılır. Ancak, bu çeşitli nedenlerle hatalı ölçümler eğilimli. İlk olarak, kemirgenler gıda istiflemek eğilimindedir, onlar hemen tüketmeden gıda kaldırmak anlamına gelir sonra güvenli bir yerde gizlemek. Böylece, bu gıda kaybı toplam tüketimin hesaplanmasına dahil edilebilir. İkincisi, sıçanlar gıda ve su dökmek, ilgili tüketim olmadan kilo kaybı ile sonuçlanan. Üçüncü olarak, istenmeyen sıvı kaybı, şişelerin kafeslere yerleştirilerek ve çıkarılarak işlenmesine bağlı olarak meydana gelir.

Bu hata kaynaklarını azaltmak için bir yaklaşım olarak, anhedoni (SPT3,,4 ve NIH9)değerlendirilen iki ortak testleri otomatik gıda ve sıvı alımı izleme sistemi kullanarak gıda ve su alımının ölçümü ile birleştirdik. Bu prosedür, lezzetli maddelerin tüketiminin doğru araştırılmasını sağlar ve depresyon benzeri davranışların bir özelliği olarak sıçanlarda zevk deneyimi hakkında bilgi sağlar. Manuel ölçümle ilişkili yukarıda belirtilen hatalar, daha sonra daha ayrıntılı olarak gösterilen farklı yaklaşımlar kullanılarak azaltılır.

Mikroyapı hakkında bilgi vermek için, bu protokolde kullanılan otomatik alım izleme sistemi10 her saniye gıda (±0.01 g) ağırlığındadır. Böylece, istikrarlı bir ağırlık olarak belgelenmiştir "yeme değil", ve "yeme" olarak kararsız bir ağırlık. "Bout" bir olaydan önce ve sonra kararlı ağırlık değişimi olarak tanımlanır. Bir öğün bir veya daha fazla nöbetten oluşur ve sıçanlarda minimum boyutu 0.01 g olarak tanımlanmıştır. Bir öğün farelerde başka bir yemekten 15 dakika (standart değer) ile ayrılır. Böylece, gıda alımı nöbetleri 15 dakika içinde meydana gelen ve kilo değişimi olarak eşit veya 0,01 g daha büyük bir yemek olarak kabul edilir. Bu protokolde değerlendirilen yemek parametreleri arasında yemek süresi, öğünlerde geçirilen süre, müsabaka boyutu, nöbet süresi, nöbetlerde geçirilen süre, ilk müsabakaya geç kalma ve nöbet sayısı yer almaktadır.

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Protokol

Hayvan bakımı ve deneysel prosedürler belirli kurumsal etik yönergeleri izledi ve hayvan araştırma için devlet otoritesi tarafından onaylandı.

1. Otomatik izleme sisteminin çalışması

NOT: Otomatik izleme sistemini çalıştırırken, eylemden hemen önce yazılımda yer alan yorum kutusundaki her eylemi belgelemek çok önemlidir. Açıklama yorum kutusuna yazılmalıdır ve Kaydettuşuna basılarak, belirli bir zaman dilimi ile kaydedilir. Sistem sürekli olarak kaydedildiğinden, verileri analiz ederken zaman puanları önemlidir ve analiz için ilgi süresi belirtilmelidir.

  1. Otomatik izleme sisteminin kurulumu, kullanılması ve bakımı
    NOT: Bu protokolde 250-300 g (~10 haftalık) ağırlığında yetişkin erkek Sprague Dawley sıçanları kullanılmıştır. Bu alışma döneminde gruplar halinde sıçanlar ev için tavsiye edilir. Çevre koşulları aşağıdaki parametrelerle kontrol edilmelidir:.M 12 saat/12 saat karanlık/ışık döngüsü, %6:00'da ışıklar açık, nem %45-65, sıcaklık 21-23 °C, ve su ve standart kemirgen diyetine reklam libitum erişimi. Günlük kullanım, hayvanların araştırmacılara alışmasını sağlar.
    1. Fareleri ayırın, böylece her hayvanın ayrı bir kafesi vardır. Protokol sırasında her farenin ayrı kaldığından emin olun.
    2. 1-2 cm kalınlığında bir tabaka ile düzenli yatak ile konut kafesleri doldurun. Bu (azaltılmış) miktar, mikroterazilerin ve haznelerin dökülme ile kirlenme olasılığını azaltarak ölçüm hatalarını azaltır. Ölçüm hatalarını azaltmak için kağıt dokuları atlarken, plastik tüpler (örneğin, 8 cm çapında plastik bir drenaj borusu 20 cm uzunluğunda bir parça) ve zenginleştirme olarak odun kemirme ekleyin.
    3. Kafeslerin ön tarafındaki özel deliklere mikro terazili iki kapalı kafes yuvası takarak otomatik katı ve sıvı gıda alımı ölçümü için kafesleri hazırlayın. Kafes bağlar üzerinde iki boş hazneler yerleştirin, bir yemek için ve şişe için bir.
      NOT: Mikro teraziler kablolar aracılığıyla bilgisayara bağlı bir kayıt sistemine bağlanır ve ilgili yazılım bilgisayara yüklenir.
    4. Kayda başlamak için "Monitor" tuşuna basın ve "Başlat" tuşuna basın, ardından verileri kaydetmek için bir yer seçin.
    5. Otomatik alım izleme sisteminin kalibrasyon ("Calibratlet") işlevini kullanarak, hazneleri çıkararak ve terazi ile kafes yuvalarına iki farklı ölçülü ağırlık yerleştirerek her dengeyi ayarlayın. Bunu düzenli zaman aralıklarında yapın (haftalık önerilir).
    6. Bir hazneyi tamamen chow (~100 g) ile doldurun ve boyutu çok küçük olan chow parçalarını ve ufaları çıkarın. Suyu şişeye doldurun (~100 mL) ve diğer hazneye yerleştirin.
    7. Gıda ve suyun konumunu belgeleyin (örn. denge 1: gıda hayvanı 1, denge 2: su hayvanı 1).
    8. Kafese sıçan yerleştirin ve yemek ve reklam libitumiçmek böylece kafes bağlar tüm kapılarını açın.
      NOT: Doğru bir ölçüm için, dökülme bir fırça ile hafifçe temizlik ve gıda kabından küçük gıda kırıntıları kaldırarak günlük dengeleri ve hazneler korumak için gereklidir. Bu büyük ölçüde hatalı ölçüm azaltacaktır. Günlük bakım sırasında tüm kapıları kapatın.
  2. Denemelerden sonra verilere erişim
    1. Analiz edilmesi gereken bir dönemin başlangıç ve bitiş zaman noktalarını (örn. eğitim, test) için yorum kutusunda arama yapın.
    2. Veri Görüntüleyicisi'ni açmak için yazılımdaki "Verileri Görüntüle" üzerine tıklayın.
    3. Saat noktalarını aşağıdaki kutulara "Başlangıç zamanı" ve "Bitiş zamanı" ekleyin. Bilgileri kaydeden bakiyeyi gösteren sol üst köşedeki kareye basın.
    4. Mikroyapı verilerine erişmek için "PSC Toplamları" üzerine tıklayın. Verileri dışa aktarmak için"PSC Tablosunu Dışa Aktar"düğmesine basın.
      NOT: Otomatik izleme kullanarak hayvanların mikro yapısını karşılaştırmak için (örn. vurgusuz vs. stresli) sol üst köşedeki uygun kareye basılarak"Veri görüntüleyici" seçilebilir. PSC Toplamları yalnızca seçilen hayvanın mikro yapısını gösterir. Sistemle istatistiksel analiz yapılamaz. Verilerin bir elektronik tablo programı/analiz yazılımına ayıklanması gerekir.

2. Sakkaroz tercih testinin uygulanması

  1. Eğitim döneminin yürütülmesi
    NOT: Testten önce, hayvanlar kapılardan silolarda sıvılar için iki şişe nin bulunmasına alışkın olmalıdır, kafeslerin üstlerinden yiyecek sağlanmalıdır (kurulum Şekil 1'degösterilmiştir). Bu eğitim süresi en az 2 gün sürmelidir. Hayvanların tutulduğu odadaki kafeslerde yapılır.
    1. Bütün kapıları kapatın. Su şişesini ve gıda kabını mikro dengelerden çıkarın.
    2. Önceden tartılmış yiyecekleri (~50 g) kafesin üstüne yerleştirin ve günlük gıda tüketimini değerlendirmek için düzenli bir denge kullanarak ağırlığını günlük olarak belgeleyin. Gerekirse yeniden doldurun.
    3. Bir şişeyi temiz suyla temizleyin ve yaklaşık 100 mL su yla doldurun. Hazneye geri koy.
    4. İkinci temiz şişeyi 100 mL taze yapılmış %1 sakaroz çözeltisi ile doldurun. Hazneye koy.
      NOT: Şişeleri dikkatlice işaretleyin ve konumlarını belgeleyin (örn. denge 1: su hayvanı 1, denge 2: sakkaroz çözeltisi hayvan 1).
    5. Tüm kapıları aç. İzleme sisteminde eğitimin başlangıcını belgele. Kapıları 24 saat açık bırakın ve her iki şişeye de reklam libitum erişimi elde edin. Saat 24'ten sonra kapıları kapatın ve eğitimin sonunu belgele. 24 saat aralığından elde edilen veriler , "başlangıç zamanı" ve "bitiş saati" ekleyerek otomatik izleme sistemi kullanılarak değerlendirilebilir. 1 saatlik bir test aralığı değerlendirildiğinde yordamlar aynıdır.
    6. Temiz ve her 24 saat şişe leri yeniden doldurun. Taze % 1 sakaroz çözeltisi günlük hazırlayın. Alışkanlık etkilerini önlemek için su ve sakaroz çözeltisi şişesinin konumunu günlük olarak değiştirin.
      NOT: Tercih oranları ~1'e ulaşana kadar tüm hayvanlarda en az 48 saat eğitim edin. Sakaroz tercih oranı eğitimden hemen sonra "Veri görüntüleyici" kullanılarak değerlendirilir. Sakaroz alımının genel alıma oranı olarak hesaplanır (su artı sakaroz alımı).
    7. Testten 24 saat önce, sakaroz solüsyonu ile şişeyi çıkarın, böylece sıçan sadece standart chow ve suya erişebilsin.
    8. Musluk suyu ile dolu bir taze şişe ve her ikisi de ~100 mL ile %1 sakaroz çözeltisi ile doldurulmuş bir şişe hazırlayın.
    9. Testeden önce tüm kapıları kapatın.
    10. Musluk suyu ile dolu şişeyi hazneden çıkarın ve biri musluk suyu yla dolu diğeri %1'lik sakaroz çözeltisi ile dolu iki taze şişeyi hazneye yerleştirin.
    11. Tüm kapıları açın, testin başlangıcını izleme sisteminde belgele. Kapıları 60 dakika açık bırakın. 60 dk sonra kapıları kapatın ve testin sonunu belgele.
    12. Verileri değerlendirin (örn. sakaroz/toplam sıvı alım oranı).
      NOT: Test, arada eğitim aralıkları (en az 2 gün) ile birkaç kez tekrarlanabilir.

3. Yenilik kaynaklı hipofaji testinin uygulanması

  1. Eğitim döneminin yürütülmesi
    NOT: Test öncesinde günlük 30 dk eğitim süresi 5 gün önerilir (kurulum Şekil 2'degösterilmiştir). Amaç deney öncesi lezzetli atıştırmalık alımı istikrarlı bir taban çizgisi elde etmektir. Hayvanların tutulduğu odadaki kafeslerde yapılır.
    1. Tüm kapıları kapatın ve standart chow ile huni çıkarın.
    2. Taze bir hazneyi lezzetli atıştırmalık (~50 g) ile doldurun. Parçalanmayı önlemek için krakerleri hazneye dikkatlice yerleştirin. Hazneyi mikro terazinin üzerine kafes yuvasına yerleştirin.
    3. Fare atıştırma ve su reklam libitum erişimi böylece 30 dakika için kapıları açın. İzleme sisteminde eğitimin başlangıcını belgele.
      NOT: Sıçan eğitim süresi boyunca standart chow erişimi olmamalıdır.
    4. 30 dakika sonra kapıları kapatın ve izleme sisteminde eğitimin sona erini belgelayın. Aperatifi standart yemekle değiştirin.
    5. 1) kararlı temel lezzetli atıştırma alımı elde edilene kadar (örn. 1.5-2.0 g/30 dk) ve 2) alım istatistiksel olarak eğitim günleri arasında farklılık göstermez.
  2. Yenilik kaynaklı hipofaji testinin ifası
    1. Otomatik gıda alımı izleme sistemine bağlı yatak veya zenginleştirme olmadan boş, taze temizlenmiş bir kafes hazırlayın. Kafes bağlar üzerinde lezzetli bir aperatif ile musluk suyu ve huni bir şişe ile bir huni yerleştirin.
      NOT: Roman kafesi farelerin tutulduğu ve eğitimin yapıldığı aynı odaya yerleştirilmelidir. Kapıları kapalı tut.
    2. Ev kafesi ve roman kafesyer sıçan çıkarın.
    3. 30 dakika boyunca tüm kapıları açın. İzleme sistemindeki testin başlangıcını belgele.
      NOT: Atıştırmaya erişimin 30 dakikası boyunca, atıştırmalık alımının büyüklüğü ve altta yatan mikroyapı parametreleri (örn. ilk öğüne gecikme) otomatik gıda alımı izleme sistemi kullanılarak kaydedilir.
    4. 30 dakika sonra kapıları kapatın ve test in sonunu belgele. Fareyi ev kafesine geri yerleştirin.
      NOT: Test, arada eğitim aralıkları (en az 5 gün) ile birkaç kez tekrarlanabilir.

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Sonuçlar

Veri dağıtımını test etmek için Kolmogorov-Smirnov testi kullanıldı. Veriler normal olarak dağıtıldığında T-testleri kullanıldı ve değilse Mann-Whitney-U testi kullanıldı. Tek yönlü ANOVA ve ardından Tukey post-hoc testi normalde dağıtılan birden fazla grup karşılaştırması için kullanılmıştır. Tek yönlü ANOVA ve ardından Dunn'ın çoklu karşılaştırma testi normal olmayan dağılım durumlarında kullanıldı. P < 0.05'te gruplar arasındaki farklar anlamlı kabul edildi.

SPT bu çalışmada nai...

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Tartışma

Sakaroz tercihi ve yeniliği neden olan hipofaji testleri sıçanlarda anhedoniyi değerlendirmek için kullanılan iki tekniktir. Otomatik gıda alımı izleme sistemi ile bunların kombinasyonu bozulmamış sıçanlarda daha ayrıntılı analiz sağlar ve hatalı ölçüm azaltır.

Hataların görülme sıklığı farklı yaklaşımlarla azalır. İlk olarak, dökülme nedeniyle meydana gelen hatayı gidermek için, gıda haznesi ve kapı arasındaki boşluk, kemirme sırasında oluşan kırıntıların entegre tepsiye düşmesini sağlar. Kaf...

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Açıklamalar

A.S. a & r Berlin, Boehringer-Ingelheim, Takeda ve Schwabe için danışmandır. Çıkar çatışması yok.

Teşekkürler

Bu çalışma Alman Araştırma Vakfı (STE 1765/3-2) ve Charité Üniversitesi Finansmanı (UFF 89/441-176, A.S.) tarafından desteklenmiştir.

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Malzemeler

Bu makalede kullanılan malzemelerin listesi
AdŞirketKatalog numarasıYorumlar
Montaj LH Kafes Montajı - RAT-FOOD - Paslanmaz kafes montajı, hazne, engelleyici, kaplin içerirResearch Diets, Inc., Jules Lane, New Brunswick, NJ, ABDBCMPRF01
Montaj LH Kafes Montajı fişe takılı değil - RAT - GIDA paslanmaz çelik kafes montajı, hazne, engelleyici, fişe takılı olmayan adaptör, kaplin ResearchDiets, Inc., Jules Lane, New Brunswick, NJ, ABDiçerir BCMUPRF01
2 açıklıklı kafes - RAT - kostüm modifiye kafes - kafes üstü ve standart su şişesi içerirResearch Diets, Inc., Jules Lane, New Brunswick, NJ, ABDBCR02tek gövde
Veri toplama Dizüstü Bilgisayar Pencereleri - BioDAQ Yazılımı ile yapılandırılmıştırResearch Diets, Inc., Jules Lane, New Brunswick, NJ, ABDBLT003
zenginleştirme (plastik tüpler, odun kemirme)hayvan tesisi
HoneyMaid Graham Kraker KırıntılarıNabisco, Doğu Hannover, NJ, ABDASIN:NIH testi için lezzetli B01COWTA98 atıştırmalık
düşük titreşimli polimer rafResearch Diets, Inc., Jules Lane, New Brunswick, NJ, ABDBRACKR
erkek Sprague Dawley sıçanlarıEnvigoSipariş Kodu: 002
Model #2210 32x Bağlantı Noktalı BioDAQ Merkezi Kontrol Cihazı - kabloları ve kalibrasyon kitiniiçerirResearch Diets, Inc., Jules Lane, New Brunswick, NJ, ABDBCC32_03
Çevresel sensör Denetleyicisi - kablo içerirResearch Diets, Inc., Jules Lane, New Brunswick, NJ, ABDBPSC01
SigmaStat 3.1Systat Yazılımı, San Jose, CA, ABDistatistiksel analiz
Paslanmaz çelik engelleyiciResearch Diets, Inc., Jules Lane, New Brunswick, NJ, ABDBBLKR
% 10 kcal% yağ içeren standart kemirgen diyetiResearch Diets, Inc., Jules Lane, New Brunswick, NJ, ABDD12450B
SPT içinsükroz tozuRoth4621.1
tarafından dağıtılmaktadır

Kaynaklar

  1. World Health Organization. Depression. , Available from: https://www.who.int/health-topics/depression (2018).
  2. Reddy, M. S. Depression: the disorder and the burden. Indian Journal of Psychological Medicine. 32 (1), 1-2 (2010).
  3. Cryan, J. F., Mombereau, C. In search of a depressed mouse: utility of models for studying depression-related behavior in genetically modified mice. Molecular Psychiatry. 9 (4), 326-357 (2004).
  4. Overstreet, D. H. Modeling depression in animal models. Methods in Molecular Biology. 829, 125-144 (2012).
  5. Moreau, J. -L. Simulating the anhedonia symptom of depression in animals. Dialogues in Clinical Neuroscience. 4 (4), 351-360 (2002).
  6. Scheggi, S., De Montis, M. G., Gambarana, C. Making Sense of Rodent Models of Anhedonia. The International Journal of Neuropsychopharmacology. 21 (11), 1049-1065 (2018).
  7. Liu, M. Y., et al. Sucrose preference test for measurement of stress-induced anhedonia in mice. Nature Protocol. 13 (7), 1686-1698 (2018).
  8. Serchov, T., van Calker, D., Biber, K. Sucrose Preference Test to Measure Anhedonic Behaviour in Mice. Bio-Protocol. 6 (19), 1958(2016).
  9. Dulawa, S. C., Hen, R. Recent advances in animal models of chronic antidepressant effects: the novelty-induced hypophagia test. Neuroscience and Biobehavioral Reviews. 29 (4-5), 771-783 (2005).
  10. Teuffel, P., et al. Treatment with the ghrelin-O-acyltransferase (GOAT) inhibitor GO-CoA-Tat reduces food intake by reducing meal frequency in rats. Journal of Physiology and Pharmacology. 66 (4), 493-503 (2015).
  11. Binder, E. B., Nemeroff, C. B. The CRF system, stress, depression and anxiety-insights from human genetic studies. Molecular Psychiatry. 15 (6), 574-588 (2010).
  12. Marques, M. D., Waterhouse, J. M. Masking and the evolution of circadian rhythmicity. Chronobiology International. 11 (3), 146-155 (1994).
  13. Valentinuzzi, V. S., et al. Locomotor response to an open field during C57BL/6J active and inactive phases: differences dependent on conditions of illumination. Physiology and Behavior. 69 (3), 269-275 (2000).
  14. Madiha, S., Haider, S. Curcumin restores rotenone induced depressive-like symptoms in animal model of neurotoxicity: assessment by social interaction test and sucrose preference test. Metabolic Brain Disorder. 34 (1), 297-308 (2019).
  15. Strouthes, A. Thirst and saccharin preference in rats. Physiology and Behavior. 6 (4), 287-292 (1971).
  16. Inui-Yamamoto, C., et al. Taste preference changes throughout different life stages in male rats. PloS One. 12 (7), 0181650(2017).
  17. Commons, K. G., Cholanians, A. B., Babb, J. A., Ehlinger, D. G. The Rodent Forced Swim Test Measures Stress-Coping Strategy, Not Depression-like Behavior. ACS Chemical Neuroscience. 8 (5), 955-960 (2017).
  18. Slattery, D. A., Cryan, J. F. Using the rat forced swim test to assess antidepressant-like activity in rodents. Nature Protocols. 7 (6), 1009-1014 (2012).
  19. Cryan, J. F., Mombereau, C., Vassout, A. The tail suspension test as a model for assessing antidepressant activity: review of pharmacological and genetic studies in mice. Neuroscience and Biobehavioral Review. 29 (4-5), 571-625 (2005).
  20. Can, A., et al. The tail suspension test. Journal of Visualized Experiments. (59), e3769(2012).
  21. Chadman, K. K., Yang, M., Crawley, J. N. Criteria for validating mouse models of psychiatric diseases. American Journal of Medical Genetics B Neuropsychiatric Genetics. 150 (1), 1-11 (2009).
  22. Powell, T. R., Fernandes, C., Schalkwyk, L. C. Depression-Related Behavioral Tests. Current Protocols in Mouse Biology. 2 (2), 119-127 (2012).

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Yeniden basım ve izinler

Bu JoVE makalesinin metnini veya şekillerini yeniden kullanmak için izin iste

İzin iste

Etiketler

S kroz Tercih TestiS kroz Tercih OranAnhedoni De erlendirmesiLezzetli At t rmal k Al mAl m Mikroyap AnaliziKemirgen Depresyon ModelleriDavran sal Test Protokol

İlgili makaleler