Bu içeriği görüntülemek için JoVE aboneliğiniz gereklidir. Giriş yapın veya ücretsiz denemenizi bugün başlatın.

Yöntem makalesi

Arteriyel Poş Tavşanda Mikrocerrahi Bifurkasyon Anevrizması Modeli

2.7K görüntülenme

⸱

DOI:

10.3791/61157

⸱

14 Mayıs 2020

 ,  ,  ,  ,  ,  ,  ,  ,  ,  , 
1Department of Neurosurgery, Kantonsspital Aarau, 2Cerebrovascular Research Group, Department for BioMedical Research, University of Bern, 3Division of Neuroradiology, Department of Radiology, Kantonsspital Aarau, 4Department of Neurosurgery, Neurocenter and Regenerative Neuroscience Cluster, Inselspital, Bern University Hospital, University of Bern, 5Department for Biomedical Research, Faculty of Medicine, University of Bern

Bu makalede

Özet

İntrakraniyal anevrizma tedavisi için endovasküler cihazların geliştirilmesi ve test edilmesi halen büyük önem taşımaktadır. Günümüzde kullanılan çoğu anevrizma modeli, arteriyel dejenere bir duvarın önemli özelliklerini veya gerçek bir bifurkasyonun hemodinamiğini kaçırmaktadır. Bu nedenle tavşanlarda yeni bir arteriyel poş bifurkasyon modeli tasarlamayı amaçladık.

Özet

İntrakraniyal anevrizmalarda endovasküler tedavi son yıllarda önem kazanmıştır, bu nedenle endovasküler cihazların test edilmesine olan ihtiyaç artmaktadır. Reolojik, hemodinamik ve anevrizma duvarı koşullarına saygı gösteren hayvan modelleri oldukça garantilidir. Bu nedenle, bu çalışmanın amacı, tavşanlarda modifiye edilmemiş ve modifiye edilmiş duvar koşullarına sahip otolog arteriyel poş bifurkasyon anevrizmaları oluşturmak için yeni bir standartlaştırılmış ve tekrarlanabilir cerrahi teknik tasarlamaktır.

Bifurkasyon anevrizmaları, her ikisi de mikrocerrahi olarak dikilen arteriyel poş için ebeveyn arterleri olarak hizmet veren sol ortak karotis arterinde sağın uçtan yana anastomozu ile oluşturuldu. Greftler proksimal sağ ortak karotis arterden kontrol (n=7, acil otolog reimplantasyon) veya modifiye (n=7, otolog reimplantasyondan önce 20 dakika boyunca 100 uluslararası ünite elastaz ile inkübe edilmiş) grup için alındı. Poş ve ebeveyn arter açıklığı, oluşturulduktan hemen sonra floresan anjiyografi ile kontrol altına alındı. Takipte (28 gün) tüm tavşanlara kontrastlı manyetik rezonans anjiyografi ve floresan anjiyografi ve ardından anevrizma hasadı, makroskopik ve histolojik değerlendirme yapıldı.

Toplam 16 dişi Yeni Zelanda Beyaz tavşanı ameliyat edildi. İki hayvan erken öldü. Takipte, tüm anevrizmaların% 85.72'si patent olarak kaldı. Her iki grup da zamanla anevrizma boyutunda bir artış olduğunu ortaya koydu; bu, kontrol grubunda (oluşturma sırasında 6.48 ± 1.81 mm 3'e karşı takipte 19.85 ± 6.40 mm 3, p = 0.037) modifiye grupta (oluşturma sırasında 8.03 ± 1.08 mm3'e karşılık 20.29 ± takipte 6.16 mm3, p = 0.054) daha belirgindi.

Bulgularımız, mikrocerrahi bir yaklaşımla farklı duvar koşullarına sahip bifurkasyon anevrizmalarının oluşturulmasına izin veren bu yeni tavşan modelinin yeterliliğini göstermektedir. Mükemmel uzun süreli açıklık ve zaman içinde anevrizma büyümesinin özelliği göz önüne alındığında, bu model yeni endovasküler tedavilerin klinik öncesi değerlendirilmesi için önemli bir araç olarak hizmet edebilir.

Giriş

İntrakraniyal anevrizma (İA) rüptürüne bağlı subaraknoid kanama, endovasküler veya mikrocerrahi oklüzyon teknikleriile etkili bir şekilde kontrol altına alınabilir 1,2,3,4. Sargı sonrası İA nüksünün ana sınırlamasının üstesinden gelmek için farklı endovasküler tedaviler, endovasküler cihazların test edilmesine yönelik artan bir ihtiyaç yaratarak son yıllarda önem kazanmıştır. Bu yeni tedavi yaklaşımlarını test etmek için, reolojik özelliklere, hemodinamiğe ve anevrizma duvarı koşullarına saygı duyan uygun hayvan modelleri 5,6,7 oranında garanti edilmektedir. Bu bağlamda klinik ve preklinik çalışmalar, özellikle mural hücrelerin kaybına odaklanarak, anevrizma duvar koşullarının anevrizma rüptürü ve oklüzyon sonrası nüks ile ilgili önemli rolünü ortaya koymuştur 7,8,9.

Şimdiye kadar, tavşanlardaki deneysel anevrizmalar çoğunlukla elastaz inkübe edilmiş ortak karotis arter (CCA) kütükler veya yapay bir CCA bifurkasyonuna dikilmiş venöz torbalar tarafından yaratılmıştır. 10,11,12,13,14,15,16 Bu nedenle, gerçek bir arteriyel kese çatallanma modeli hiçbir zaman tanımlanmamıştır.

Bu çalışmanın amacı, tavşan modelinde farklı duvar koşullarına sahip bifurkasyon anevrizmalarının mikrocerrahi olarak oluşturulması için güvenli, hızlı ve standartlaştırılmış bir teknik tasarlamaktır (Şekil 1). Bu, modifiye edilmemiş ve modifiye edilmiş arteriyel poşetlerin her iki CCA'nın yapay olarak oluşturulmuş bir bifurkasyonuna dikilmesiyle sağlandı.

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Protokol

Tüm veteriner bakımı kurumsal kılavuzlara uygun olarak gerçekleştirildi (tüm deneyler İsviçre Bern Kantonu Hayvan Bakımı Yerel Komitesi (BE 108/16) tarafından onaylandı) ve kurul sertifikalı bir veteriner anestezi uzmanının gözetiminde gerçekleştirildi. ARRIVE yönergeleri ve 3R ilkeleri 17,18'e sıkı sıkıya uyulmuştur.

NOT: Tüm hayvanları 22\u201224 Santigrat (°C) oda sıcaklığında barındırın ve 12 saatlik (s) bir aydınlık/karanlık döngüsünü koruyun. Her seferinde su, pelet ve ad libitum saman diyetine ücretsiz erişim sağlayın. İstatistiksel analizler parametrik olmayan Wilcoxon-Mann-Whitney-U testi kullanılarak yapıldı. 0.05'≤ bir olasılık değeri (p) anlamlı kabul edildi.

1. Ameliyat öncesi aşama

  1. Ameliyat için planlanan tüm tavşanların, 23 ± 3 ° C sıcaklıkta sessiz, aseptik bir ameliyathanenin hemen yanında ayrıntılı bir ameliyat öncesi klinik muayenesi yapın.
    1. Her hayvanın ağırlığını kaydedin, mukoza zarlarını, kılcal dolum süresini ve nabız kalitesini makroskopik olarak değerlendirin.
    2. Ayrıca stetoskop ve abdominal palpasyon ile kardiyak oskültasyon gerçekleştirin.
    3. Klinik bulgulara dayanarak, her tavşana bir Amerikan Anesteziyologlar Derneği (ASA) sınıflandırması atfedin19. Çalışmaya sadece ASA I puanı olan hayvanları dahil edin.
    4. Her iki dış kulağı da elektrikli tıraş makinesiyle tıraş edin ve hem auriküler arterlere hem de damarlara prilokain-lidokain kremi uygulayın.
  2. Tavşanı, bir şırınga yoluyla deri altından (SC) enjekte edilen 20 miligram (mg) / killogram (kg) ketamin, 100 mg / kg deksmedetomidin ve 0.3 mg / kg metadon kombinasyonu ile sakinleştirin.
  3. Her hayvanı en az 15 dakika boyunca rahatsız edilmeden bırakın.
  4. Bundan sonra, gevşek bir yüz maskesi ile 3 litre (l) / dakika (dak) ile ek oksijenasyon ve bir nabız oksimetresi ile sürekli izleme altında, sol auriküler merkezi artere 22 G kanül ve kontralateral kulağın auriküler damarına başka bir 22 G kanül yerleştirin.
  5. Cerrahi alanı (boyun) tıraş edin ve intradermal olarak %0.75 peri-insizyonel ropivakain enjekte edin. Daha sonra alnını tıraş edin ve pediatrik elektroensefalografik (EEG) sensörleri yerleştirmeye hazırlanın.
  6. Propofol 1-2 mg/kg ile intravenöz (IV) olarak genel anesteziyi indükleyin. Daha sonra derhal tüm tavşanların trakeasını kapnografik kontrol altında silikon bir tüp (3 milimetre (mm) iç çap) ile entübe edin. Daha sonra, tüm tavşanları ameliyathaneye taşıyın, sırt yassılığına yerleştirin ve tüpü bir pediatrik daire sistemine bağlayın.
  7. Oksijendeki izofluran yoluyla anestezi derinleşmesini ve sürdürülmesini sağlayın,% 1.3'lük maksimum son gelgit izofluran konsantrasyonunu hedefleyin.
  8. Trakeal ekstübasyona kadar klinik ve enstrümantal monitörizasyonu (nabız oksimetresi, doppler ve invaziv kan basıncı, 3 derivasyonlu elektrokardiyogram, EEG, rektal sıcaklık monitörizasyonu ve solunan ve solunan gazlar) sağlayın.
  9. Hidrasyonu korumak için, Ringer'ın laktatını venöz erişim yoluyla 5 ml / kg / s'lik sürekli bir infüzyon (CRI) hızında sağlayın. Her zaman 10 dakikalık bir aralıkta ayak parmağı kıstırmalarını kullanarak uygun anesteziyi onaylayın.
  10. Manubrium sterni'den her iki çene açısına kadar povidon iyot kullanarak cerrahi alanı dezenfekte edin. Şimdi, cerrahi alanın steril örtülmesini gerçekleştirin.
  11. Ameliyat sırasında, 50 mikrogram (μg) / kg / dak'lık bir CRI'da lidokain ve 3 \ u201210 μg / kg / s'de fentanil ile analjezi sağlayın. Spontan veya yardımlı ventilasyonun yanı sıra izin verilen hiperkapni uygulayın. Ameliyat sırasında en az bir kez arteriyel kan gazı analizi yapın.
  12. İlgili hipotansiyonu (ortalama arteriyel basınç < 60 mmHg) noradrenalin ile tedavi edin. Bir ısıtma yastığı veya ısıtmaya zorlanmış hava ısıtma sistemi kullanarak hipotermiyi (rektal sıcaklık ≤ 38 °C) önleyin.

2. Cerrahi aşama – Adım I

  1. Ameliyata manubrium sterni'den çene açıları / gırtlak seviyesine kadar medyan bir cilt kesisi ile başlayın. Cildi ve yumuşak dokuyu neşter, cerrahi makas ve forseps ile keskin bir şekilde disseke edin. Subkutis ve yağ yastığını künt diseksiyonla medial olarak ayırın.
  2. Sternokleidomastoid kasının ön üst sırtına, mikro forseps ve cerrahi makas kullanılarak künt diseksiyon ile sol tarafta medial olarak girin.
  3. Makroskopik olarak, künt preparasyon uygulayın ve mikro forseps ve cerrahi makas kullanarak laringeal pareziyi önlemek için sol CCA'yı vagal sinirden distal olarak dikkatlice ayırın (Şekil 2). Sol CCA'nın çatallanmasının intraoperatif dönüm noktası olarak hizmet ettiğini unutmayın (Şekil 3 ve Şekil 4A). Aşağıdaki tüm adımlar için, cerrahi görselleştirmeyi iyileştirmek için yumuşak doku yayıcı kullanın.
  4. Sol distal CCA'nın vagal sinirden başarılı bir şekilde hazırlanması ve serbest bırakılmasından sonra, lokal olarak papaverin (40 mg / ml, % 0.9 izotonik sodyum klorür çözeltisi içinde seyreltilmiş 1: 1) uygulayın. Tüm gemi segmentlerini mikro çubuklarla sürekli olarak koruyun ve ardından harici olarak daha fazla papaverin uygulayın. Patavine batırılmış sol CCA'yı, ameliyat mikroskobunun ışığı altında damarı kurumaya karşı korumak için otolog kas dokusunun altına yerleştirin.
  5. Ameliyat prosedürü sırasında cerrahın konforunu en üst düzeye çıkarırken taraf değiştirin. Aynı cerrahi prosedürü sağ tarafta tekrarlayın. CCA'yı distal ve proksimal olarak önceden tanımlanmış işaretlere kadar disseke edin (çene açıları/larinks ve internal juguler ven seviyesinde karotis bifurkasyonu; Şekil 4A,B). Bir yayıcıyı yeniden takın ve daha önce açıklandığı gibi mikro çubuklar ve papaverin uygulayın.
  6. Sağ proksimal CCA'nın bağlanmasından önce, bir venöz kulak kateteri aracılığıyla sistemik olarak heparin (500 uluslararası birim (IU)/kg) enjekte edilir.
  7. Bundan sonra cerrahi mikroskop kullanın. İlk olarak, arteriyel damarda herhangi bir gerginliği önlemek için sağ proksimal CCA'yı makroskopik olarak görülebilen proksimal yer işaretinin hemen ucunda 4-0 emilemeyen bir sütür ile bağlayın.
    1. İkincisi, ölçüm için bir damar klipsi kullanarak tam olarak 4\u20125 mm'lik 6-0 emilemeyen bir ligatür uygulayın, ilk 4-0 ligatürden distal olarak kesildikten sonra, elde edilen arteriyel poşetin her hayvanda yaklaşık 3\u20124 mm'lik standartlaştırılmış uzunlukta olacağını göz önünde bulundurun (Şekil 5A,C).
  8. 6-0 ligatürü sıktıktan sonra, herhangi bir endotel hasarını önlemek ve trombogenezi önlemek için sulama için uzun bir damar segmenti oluşturmak için sağ CCA'yı geçici bir damar klipsi (normalde serebral anevrizma cerrahisinde kullanıldığı gibi) ile mümkün olduğunca distal olarak sıkıştırın (Şekil 5B).
  9. Şimdi 4-0 emilemeyen ligatüre distal olarak bir kesim yapın. Arteriyel poşu toplamak için (Şekil 5C), 6-0 emilemeyen ligatüre distal olarak ikinci bir kesim yapın.
  10. Arteriyel poşeti tüm yumuşak dokulardan titizlikle temizleyin ve uzunluğunu, genişliğini ve derinliğini (Şekil 5C) bir damar klipsi ile ölçün. Başka bir modifikasyona gerek yoksa, otolog arteriyel grefti heparinize bir çözelti içinde (% 0.9 izotonik sodyum klorür içinde 500 IU / 100 ml) daha fazla kullanıma kadar oda sıcaklığında tutun.

3. Arteriyel poş bozulması

  1. Bir arteriyel torba bozunması gerekiyorsa, yumuşak dokuyu titizlikle temizleyin ve deney gününde 20 dakika boyunca oda sıcaklığında 5 ml Tris-tampon içinde çözünmüş 100 IU domuz elastazı ile önceden inkübe edin. Fırça tekniği kullanmayın. Bir çalkalayıcı kullanarak arteriyel poşu intra- ve ekstra-luminal olarak inkübe edin.
  2. Poşeti heparinize edilmiş% 0.9 izotonik sodyum klorür çözeltisine koymadan önce, kalan domuz elastazını yıkamak için% 0.9 izotonik sodyum klorür çözeltisinde anatomik forseps ile 3 dakika boyunca yavaşça üç kez kaydırın.
  3. Gerekirse, arteriyel poşetin lümenini silikondan yapılmış bir mikrotüp ile açık tutun; Islak mikro dolgular ile tüm cerrahi işlem boyunca sol ve sağ CCA'yı titizlikle koruyun.

4. Cerrahi aşama – Adım II

  1. CCA'nın daha fazla hazırlanması için, arteri daha yüzeysel olarak hareket ettirmek için doğrudan altına iki yuvarlak mikro çubuk yerleştirin. Şimdi, arterin daha iyi görselleştirilmesi için sol CCA'nın altına mor dolgulu bir mikro çubuk koyun.
  2. Sağ proksimal CCA'yı, 100 ml% 0.9 izotonik sodyum klorür içinde çözünmüş 500 IU heparin ile birleştirilmiş% 0.9'luk bir izotonik sodyum klorür çözeltisi ile yıkayın. Gerginlik içermeyen bir anastomoz oluşturmak için, sağ CCA'yı sol tarafa tünellemek için cerrahi makas kullanarak yağ yastığı / peritrakeal kas sisteminin altına yerleştirin. Arterin yumuşak dokusunu çıkarın.
    1. Şimdi mikro makas ve forseps kullanarak sağ CCA'nın proksimal tarafında 2 mm'lik bir balık ağzı kesisi yapın.
  3. Ameliyat masasındaki tarafı değiştirin. Sol distal CCA'yı başka bir geçici damar klipsi ile klipsleyin, ardından iki geçici damar klipsi ile proksimal sol CCA yapın. Islak mikro çubuklar kullanarak maruz kalan tüm damar segmentlerini cerrahi ışık altında kurumaya karşı koruyun.
  4. Sol CCA'nın distal üçte birini yumuşak dokudan tamamen serbest bırakın ve arteriyotomi yapın. Cerrahi mikro forseps kullanın ve hafifçe yumuşak dokuları tutun. Şimdi arteri yükseltin ve sol distal CCA'yı cerrahi bir mikro makasla yavaşça kesin. Damar segmentlerini heparin ile yıkayın (100 ml% 0.9 izotonik sodyum klorür çözeltisi içinde çözünmüş 500 IU).
  5. Arteriyotomi kavisli mikro forseps ve mikro makasla yapıldıktan sonra, sol CCA'nın distal üçte birinde bulunan arteriyotomi, karotis arterin sağ künt ve otolog greftin çapının yaklaşık 2 katını ölçerek distal olarak büyütün. Bu, arteriyel torbaya yeterli kan akışına izin verir.
  6. Arteriyel poşeti heparinize salin çözeltisinden çıkarın. Keseyi bifurkasyonun planlandığı cerrahi alana yerleştirin. Emilemeyen 9-0 dikiş ile kaudal olarak yerleştirilmiş sağ karotis küntünün arkasını dikmeye başlayın, ardından balık ağzı insizyonu seviyesinde kranial olarak yerleştirilmiş arka tarafta bir dikiş izleyin. Arka kısmı distalden proksimal dikişi tek dikişlerle bitirin.
  7. Dikiş yaparken, tüm elastaz preinkübasyonlu poşetleri sürekli sulama ile nemli tutun. Kesenin damar duvarını dikerken, lümeni ucuyla hafifçe açmak için kavisli cerrahi mikro forseps kullanın. Sol veya proksimal sağ CCA'nın parçalarını dikerken, düz cerrahi mikro forseps kullanın. Daha sonra, yatay arka tarafı dikişleyin.
  8. Daha sonra yatay ön tarafı, tabanına doğru hareket eden anevrizmanın kubbesinden başlayarak dikiş. Daha sonra, ön tarafta distal olarak kaudal olarak hareket eden tek dikişlerle başlayın.
    1. Tüm adımlar için 4.5\u20124.8 Anastomozu dikerken iyatrojenik darlığı önlemek için damarın arteriyotomiye yakın kısmını tutmaya dikkat edin. Ayrıca, tüm cerrahi prosedür boyunca tüm damar segmentlerini, heparinize sodyum klorür çözeltisi (100 ml% 0.9 izotonik sodyum klorür içinde çözünmüş 500 IU) ile doldurulmuş bir şırınga ile ekstraluminal olarak sürekli nemlendirin ve ıslak mikro çubuklarla koruyun.
    2. Anastomozu bitirmeden önce, tüm kompleksi heparinize edilmiş% 0.9 izotonik sodyum klorür çözeltisi intraluminal (100 ml% 0.9 izotonik sodyum klorür içinde çözülmüş 500 IU) ile sulayın. Elastaz modifiye arteriyel poşetlerin, güçlü kuruma ve tromboz eğilimleri nedeniyle mümkün olduğunca çabuk dikilmesi gerektiğine dikkat edin. Poşetteki kalıntı elastaz konsantrasyonunun çevresel damarları sindirme ile ilgili agresif davranışı nedeniyle, damar kompleksini hızlı bir şekilde yeniden perfüze etmek için ameliyata hızlı bir şekilde devam edin.
  9. Tüm geçici vasküler kelepçeleri kademeli olarak çıkarın.
    1. Distal kelepçeyi sol CCA'dan çıkarın. Küçük kanamaları kabul edin ve anastomoz üzerine mikro çubukları hafifçe bastırarak durdurun. Daha sonra, sağ CCA'nın kelepçesini çıkarın, trombüs oluşumunu önlemek için mikro çubukla ve forseps ile hafifçe bastırın.
    2. Gerekirse, yeterli pıhtılaşma sağlamak için geçici vasküler klipsleri değiştirin. Daha sonra, her iki damar klipsi de sol taraftan proksimal olarak rahatlatın. Herhangi bir adımda gerekirse, pıhtılaşmaya izin vermek veya yeniden dikiş yapmak için klipsleri değiştirin.
  10. Bu aşamada damar kompleksinin floresan anjiyografisini yapın (Şekil 6 ve Şekil 7).
    NOT: Floresan anjiyografi, 2 bandpass filtresi, video kameralı bir akıllı telefon ve bir bisiklet spot ışığı kullanılarak 1 ml floresein IV uygulanarak gerçekleştirilir. Bu prosedür daha önce başka bir yerde açıklanmıştır20,21,22.
  11. Son olarak, operatif situsu kapatın. Anastomozu korumak için yağ yastığını tek düğümlü 3-0 emilebilir bir sütürle yeniden uyarlayın ve nazikçe dikin. Subcutis ve cildi aynı şekilde kapatın.

5. Ameliyat sonrası aşama

  1. Ameliyat sonunda izofluran ve sistemik analjezi uygulamasını bırakın ve yutma refleksi geri döner dönmez trakeal ekstübasyon sağlayın.
  2. 0.5 mg / kg meloksikam IV, 10 mg / kg aspirin (ASS) IV, 100 μg B vitamini12 SC ve 20 mg / kg klaoksil IV uygulayın.
  3. Tavşanlar kendiliğinden sternal yatış kazanıncaya kadar ek oksijenasyon ve aktif ısınma sağlayın.
  4. Kemirgenlerde ve tavşanlarda ağrının değerlendirilmesi ve yönetimi için kılavuzlara uygun olarak ilk üç gün boyunca günde dört kez postoperatif takip ve hayvan bakımı yapın23,24.
  5. Ameliyat sonrası analjezi, dış kulağa uygulanan bir fentanil yama (12 μg / s), günde bir kez üç gün boyunca meloksikam SC ve kurtarma tedavisi SC olarak metadon ile uygulayın. Tüm tavşanlarda üç gün boyunca 250 IU / kg düşük moleküler heparin (LMH) deri altından uygulayın.

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Sonuçlar

figure-results-1

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Tartışma

Çalışmamız, tavşanlarda farklı duvar koşullarına sahip gerçek bir bifurkasyon anevrizması modeli oluşturmanın fizibilitesini göstermektedir. Genel olarak, ortalama ağırlığı 3.7 ± 0.09 kg ve yaş ortalaması 112 ± 3 gün olan 14 dişi Yeni Zelanda Beyaz tavşanı çalışmaya dahil edildi. Tüm anevrizmaların% 85.72'si 28 günlük bir takip sırasında patent olarak kaldı. İki hayvan erken öldü (%12.5 mortalite).

Önceki çalışmalar, endovasküler anevrizma tedavisinin yönetimini analiz etmek için çeşitli ekstr...

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Açıklamalar

Bu çalışma, Araştırma Konseyi, Kantonsspital Aarau, Aarau, İsviçre ve İsviçre ulusal bilim vakfı SNF'nin (310030_182450) araştırma fonları tarafından desteklenmiştir. Yazarlar, sunulan çalışmanın tasarımından ve yürütülmesinden yalnızca kendileri sorumludur ve rakip çıkarlar beyan etmezler.

Teşekkürler

Yazarlar, Olgica Beslac ve Kay Nettelbeck'e perioperatif fazda mükemmel destek ve teknik yardımları için ve uzun vadeli hayvan sağlığının özel denetimi için DVM, PhD, Alessandra Bergadano'ya teşekkür eder.

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Malzemeler

Bu makalede kullanılan malzemelerin listesi
AdŞirketKatalog numarasıYorumlar
3-0 emilebilir sütürEthicon Inc., ABDVCP428G
4-0 emilmeyen sütürB. Braun, AlmanyaG0762563
6-0 emilmeyen sütürB. Braun, AlmanyaC0766070
9-0 emilmeyen sütürB. Braun, AlmanyaG1111140
AdrenalineAmino AG1445419herhangi bir jenerik
AmiodaroneHelvepharm AG5078567herhangi bir jenerik
Anestezi makinesiDrä gerbaşka herhangi bir
AspirinSanofi-Aventis (Suisse) SA622693herhangi bir jenerik
AtropinLabatec Pharma SA6577083 herhangi bir jenerik
Bant Geçiren filtre maviThorlabsFD1Bbaşka herhangi bir
Bant Geçiren filtre yeşilThorlabsFGV9Bipolar
forsepsbir başka
Bisiklet spot ışığıbaşka herhangi bir
Biemer damar klipsi (2 x)B. Braun Medical AG, Aesculap, İsviçreFD560Rgeçici
Bispektral indeks (yenidoğan)başka herhangi bir
Kan basıncı manşonu (yenidoğan)başka herhangi bir
ClamoxylGlaxoSmithKline AG758808herhangi bir jenerik
DeksmedetomidinEver Pharma136740-1herhangi bir jenerik
Elektrokardiyogram elektrodu,diğer herhangi bir
ElastaseSigma Aldrich45125herhangi bir jenerik
EfedrinAmino AG1435734herhangi bir jenerik
EsmololOrPha Swiss GmbH3284044herhangi bir jenerik
Fentanil (intravenöz kullanım)Janssen-Cilag AG98683herhangi bir jenerik
Fentanil (transdermal)Mepha Pharma AG4008286herhangi bir jenerik
FluoresceineCuratis AG5030376herhangi bir jenerik
FragminPfizer PFE Switzerland GmbH1906725 herhangi bir jenerik
Glycoherhangi bir jenerik
Isıtma yastığı
İzotonik sodyum klorür çözeltisi (% 0.9)Fresenius KABI336769herhangi bir jenerik
KetaminPfizer342261herhangi bir jenerik
Laboratuvar çalkalayıcıStuartSRT6herhangi bir
LidokainStreuli Pharma AG747466herhangi bir jenerik
Longuettebaşka bir
MetacamBoehringer IngelheimP7626406herhangi bir jenerik
MetadonStreuli Pharma AG1084546herhangi bir jenerik
Mikrotüp,diğer herhangi bir
Mikro iğne tutucubaşka herhangi bir
MidazolamAccord Healthcare AG7752484herhangi bir jenerik
İğne tutucu
O2-Yüz maskesibaşka herhangi bir
Operasyon mikroskobuWild Heerbruggherhangi bir başka
PapaverineBichselherhangi bir jenerik
Prilokain-lidokain kremiEmlaherhangi bir jenerik
PropofolB. Braun Medical AG, İsviçreherhangi bir jenerik
Nabız oksimetresiherhangi bir jenerik
Rektal sıcaklık probu (yenidoğan)başka herhangi bir
RopivacaineAspen Pharma Schweiz GmbH1882249herhangi bir jenerik
NeşterSwann-Morton210herhangi bir
Küçük hayvan tıraş makinesibaşka herhangi bir
Akıllı Telefonherhangi bir başka
Yumuşak doku forsepsbaşka herhangi bir
Yumuşak doku yayıcı,diğer Paslanmaz
çelik sünger kaseler,diğer
Steril mikro çubuklardiğer Stetoskoplar
herhangi bir başka
Düz ve kavisli mikro forsepsherhangi bir başka
Düz ve kavisli mikro makas
Düz ve kavisli forsepsdiğer herhangi bir
Cerrahi
makasdiğer herhangi bir
Şırınga 1 ml, 2ml ve 5 mldiğer
Tris-BufferSigma Aldrich93302herhangi bir jenerik
Vasküler klips aplikatörüB. Braun, AlmanyaFT495T
Damar ve arteriyel kateter 22 Gherhangi bir jenerik
VitarubinStreuli Pharma AG6847559herhangi bir jenerik
Yaşargil titan standart klipsi (2 x)B. Braun Medical AG, Aesculap, İsviçreFT242Tgeçici
diğer herhangi , , başka , , başka , , , , , , ,

Kaynaklar

  1. Wanderer, S., Mrosek, J., Gessler, F., Seifert, V., Konczalla, J. Vasomodulatory effects of the angiotensin II type 1 receptor antagonist losartan on experimentally induced cerebral vasospasm after subarachnoid haemorrhage. Acta Neurochirurgica (Wien). 160 (2), 277-284 (2018).
  2. Vatter, H., et al. Effect of delayed cerebral vasospasm on cerebrovascular endothelin A receptor expression and function. Journal of Neurosurgery. 107 (1), 121-127 (2007).
  3. Andereggen, L., et al. The role of microclot formation in an acute subarachnoid hemorrhage model in the rabbit. Biomed Research International. , 161702(2014).
  4. Eriksen, N., et al. Early focal brain injury after subarachnoid hemorrhage correlates with spreading depolarizations. Neurology. 92 (4), 326-341 (2019).
  5. Thompson, J. W., et al. In vivo cerebral aneurysm models. Neurosurgical Focus. 47 (1), 20(2019).
  6. Bouzeghrane, F., Naggara, O., Kallmes, D. F., Berenstein, A., Raymond, J. International Consortium of Neuroendovascular C. In vivo experimental intracranial aneurysm models: a systematic review. American Journal of Neuroradiology. 31 (3), 418-423 (2010).
  7. Marbacher, S., et al. Loss of mural cells leads to wall degeneration, aneurysm growth, and eventual rupture in a rat aneurysm model. Stroke. 45 (1), 248-254 (2014).
  8. Marbacher, S., et al. Intraluminal cell transplantation prevents growth and rupture in a model of rupture-prone saccular aneurysms. Stroke. 45 (12), 3684-3690 (2014).
  9. Marbacher, S., Niemela, M., Hernesniemi, J., Frosen, J. Recurrence of endovascularly and microsurgically treated intracranial aneurysms-review of the putative role of aneurysm wall biology. Neurosurgical Review. 42 (1), 49-58 (2019).
  10. Marbacher, S., et al. Complex bilobular, bisaccular, and broad-neck microsurgical aneurysm formation in the rabbit bifurcation model for the study of upcoming endovascular techniques. American Journal of Neuroradiology. 32 (4), 772-777 (2011).
  11. Marbacher, S., et al. Long-term patency of complex bilobular, bisaccular, and broad-neck aneurysms in the rabbit microsurgical venous pouch bifurcation model. Neurological Research. 34 (6), 538-546 (2012).
  12. Sherif, C., Marbacher, S., Erhardt, S., Fandino, J. Improved microsurgical creation of venous pouch arterial bifurcation aneurysms in rabbits. American Journal of Neuroradiology. 32 (1), 165-169 (2011).
  13. Sherif, C., et al. Microsurgical venous pouch arterial-bifurcation aneurysms in the rabbit model: technical aspects. Journal of Visualized Experiments. 51, 2718(2011).
  14. Brinjikji, W., Ding, Y. H., Kallmes, D. F., Kadirvel, R. From bench to bedside: utility of the rabbit elastase aneurysm model in preclinical studies of intracranial aneurysm treatment. Journal of Neurointerventional Surgery. 8 (5), 521-525 (2016).
  15. Miskolczi, L., Guterman, L. R., Flaherty, J. D., Hopkins, L. N. Saccular aneurysm induction by elastase digestion of the arterial wall: a new animal model. Neurosurgery. 43 (3), 595-600 (1998).
  16. Lewis, D. A., et al. Morbidity and mortality associated with creation of elastase-induced saccular aneurysms in a rabbit model. American Journal of Neuroradiology. 30 (1), 91-94 (2009).
  17. Kilkenny, C., Browne, W., Cuthill, I. C., Emerson, M., Altman, D. G. Group NCRRGW. Animal research: reporting in vivo experiments: the ARRIVE guidelines. Journal of Cerebral Blood Flow and Metabolism. 31 (4), 991-993 (2011).
  18. Tornqvist, E., Annas, A., Granath, B., Jalkesten, E., Cotgreave, I., Oberg, M. Strategic focus on 3R principles reveals major reductions in the use of animals in pharmaceutical toxicity testing. PLoS One. 9 (7), (2019).
  19. Irlbeck, T., Zwissler, B., Bauer, A. ASA classification: Transition in the course of time and depiction in the literature]. Der Anaesthesist. 66 (1), 5-10 (2017).
  20. Grüter, B. E., et al. Fluorescence Video Angiography for Evaluation of Dynamic Perfusion Status in an Aneurysm Preclinical Experimental Setting. Oper Neurosurg (Hagerstown). 17 (4), 432-438 (2019).
  21. Grüter, B. E., et al. Testing bioresorbable stent feasibility in a rat aneurysm model. Journal of Neurointerventional Surgery. 11 (10), 1050-1054 (2019).
  22. Strange, F., et al. Fluorescence Angiography for Evaluation of Aneurysm Perfusion and Parent Artery Patency in Rat and Rabbit Aneurysm Models. Journal of Visualized Experiments. (149), e59782(2019).
  23. Weaver, L. A., Blaze, C. A., Linder, D. E., Andrutis, K. A., Karas, A. Z. A model for clinical evaluation of perioperative analgesia in rabbits (Oryctolagus cuniculus). Journal of the American Association of Laboratory Animal Science. 49 (6), 845-851 (2010).
  24. ACLAM Task Force Members. Public statement: guidelines for the assessment and management of pain in rodents and rabbits. Journal of the American Association of Laboratory Animal Science. 46 (2), 97-108 (2007).
  25. Forrest, M. D., O'Reilly, G. V. Production of experimental aneurysms at a surgically created arterial bifurcation. American Journal of Neuroradiology. 10 (2), 400-402 (1989).
  26. Kwan, E. S., Heilman, C. B., Roth, P. A. Endovascular packing of carotid bifurcation aneurysm with polyester fiber-coated platinum coils in a rabbit model. American Journal of Neuroradiology. 14 (2), 323-333 (1993).
  27. Spetzger, U., Reul, J., Weis, J., Bertalanffy, H., Thron, A., Gilsbach, J. M. Microsurgically produced bifurcation aneurysms in a rabbit model for endovascular coil embolization. Journal of Neurosurgery. 85 (3), 488-495 (1996).
  28. Bavinzski, G., et al. Experimental bifurcation aneurysm: a model for in vivo evaluation of endovascular techniques. Minimal Invasive Neurosurgery. 41 (3), 129-132 (1998).
  29. Marbacher, S., Marjamaa, J., Abdelhameed, E., Hernesniemi, J., Niemela, M., Frosen, J. The Helsinki rat microsurgical sidewall aneurysm model. Journal of Viusalized Experiments. (92), e51071(2014).
  30. Alfano, J. M., et al. Intracranial aneurysms occur more frequently at bifurcation sites that typically experience higher hemodynamic stresses. Neurosurgery. 73 (3), 497-505 (2013).
  31. Sakamoto, S., et al. Characteristics of aneurysms of the internal carotid artery bifurcation. Acta Neurochirurgica (Wien). 148 (2), 139-143 (2006).
  32. Dai, D., et al. Histopathologic and immunohistochemical comparison of human, rabbit, and swine aneurysms embolized with platinum coils. American Journal of Neuroradiology. 26 (10), 2560-2568 (2005).
  33. Shin, Y. S., Niimi, Y., Yoshino, Y., Song, J. K., Silane, M. Berenstein A. Creation of four experimental aneurysms with different hemodynamics in one dog. American Journal of Neuroradiology. 26 (7), 1764-1767 (2005).
  34. Abruzzo, T., Shengelaia, G. G., Dawson, R. C., Owens, D. S., Cawley, C. M., Gravanis, M. B. Histologic and morphologic comparison of experimental aneurysms with human intracranial aneurysms. American Journal of Neuroradiology. 19 (7), 1309-1314 (1998).
  35. Spetzger, U., Reul, J., Weis, J., Bertalanffy, H., Gilsbach, J. M. Endovascular coil embolization of microsurgically produced experimental bifurcation aneurysms in rabbits. Surgical Neurology. 49 (5), 491-494 (1998).
  36. Reul, J., Weis, J., Spetzger, U., Konert, T., Fricke, C., Thron, A. Long-term angiographic and histopathologic findings in experimental aneurysms of the carotid bifurcation embolized with platinum and tungsten coils. American Journal of Neuroradiology. 18 (1), 35-42 (1997).
  37. Marbacher, S., Strange, F., Frosen, J., Fandino, J. Preclinical extracranial aneurysm models for the study and treatment of brain aneurysms: A systematic review. Journal of Cerebral Blood Flow and Metabolism. , (2020).
  38. Strange, F., Gruter, B. E., Fandino, J., Marbacher, S. Preclinical Intracranial Aneurysm Models: A Systematic Review. Brain Sciences. 10 (3), 134(2020).
  39. Marbacher, S., Wanderer, S., Strange, F., Gruter, B. E., Fandino, J. Saccular Aneurysm Models Featuring Growth and Rupture: A Systematic Review. Brain Sciences. 10 (2), 101(2020).
  40. Coluccia, D., et al. A microsurgical bifurcation rabbit model to investigate the effect of high-intensity focused ultrasound on aneurysms: a technical note. Journal of Therapeutic Ultrasound. 2, 21(2014).
  41. Hoh, B. L., Rabinov, J. D., Pryor, J. C., Ogilvy, C. S. A modified technique for using elastase to create saccular aneurysms in animals that histologically and hemodynamically resemble aneurysms in human. Acta Neurochirurgica (Wien). 146 (7), 705-711 (2004).
  42. Morosanu, C. O., Nicolae, L., Moldovan, R., Farcasanu, A. S., Filip, G. A., Florian, I. S. Neurosurgical Cadaveric and In Vivo Large Animal Training Models for Cranial and Spinal Approaches and Techniques - Systematic Review of Current Literature. Neurologia i neurochirurgia polska. 53 (1), 8-17 (2019).

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Yeniden basım ve izinler

Etiketler

Arteryel Kese AnevrizmasMikrocerrahi TeknikOrtak Karotid ArterU tan Yan AnastomozFloresan AnjiyografiManyetik Rezonans AnjiyografiElastaz nk basyonuAnevrizma Boyutu l mHistolojik De erlendirme
Arteriyel Poş Tavşanda Mikrocerrahi Bifurkasyon Anevrizması Modeli
Bize Ulaşın
Kütüphaneye Öner

Gizlilik

Kullanım Koşulları

Politikalar

Telif Hakkı © 2026 MyJoVE Corporation. Tüm hakları saklıdır.