Yöntem makalesi

In Vivo Miyokardiyal Onarım için İnsan iPS Hücrelerinden Elde Edilen Örgü Şekilli Mühendislik Kardiyak Dokuların Hazırlanması

DOI:

10.3791/61246

⸱

9 Haziran 2020

 ,  ,  ,  ,  , 
1Clinical Translational Research Program, RIKEN Center for Biosystems Dynamics Research, 2Department of Cardiovascular Surgery, Graduate School of Medicine, Kyoto University, 3Laboratory of Stem Cell and Neuro-Vascular Biology, Cell and Developmental Biology Center, National Institutes of Health, 4Kosair Charities Pediatric Heart Research Program, Cardiovascular Innovation Institute, University of Louisville, 5Department of Pediatrics, School of Medicine, University of Louisville, 6Department of Cardiovascular Surgery, Mitsubishi Kyoto Hospital, 7Cincinnati Children's Heart Institute

Bu makalede

Özet

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Bu protokol, kalp hastalıkları için hücre implantasyon tedavisinin araştırılmasına olanak sağlamak için insan kaynaklı pluripotent kök hücrelerden elde edilen kardiyovasküler hücreleri içeren mesh şeklinde tasarlanmış kardiyak dokular üreder.

Özet

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Mevcut protokol, klinik kullanım amacına yönelik olarak geliştirilen, insan kaynaklı pluripotent kök hücrelerden (hiPSC) elde edilen kardiyovasküler hücrelerden oluşan ölçeklenebilir, örgü şeklinde tasarlanmış kalp dokuları (ECTs) oluşturma yöntemlerini açıklamaktadır. HiPSC kaynaklı kardiyomiyositler, endotel hücreleri ve vasküler duvar hücreleri jel matrisi ile karıştırılır ve daha sonra dikdörtgen internal sendelenmiş direkler ile bir polidimetilsiloksane (PDMS) doku kalıbına dökülür. Kültür gününe göre 14 ECT, 0,5 mm çapında miyofiber demetleri ile 1,5 cm x 1,5 cm örgü yapıya dönüşür. Kardiyomiyositler her paketin uzun eksenine hizalanır ve kendiliğinden senkronize olarak yener. Bu yaklaşım, yapı olgunlaşması ve fonksiyonu korunarak daha büyük (3,0 cm x 3,0 cm) örgü EKT'ye kadar ölçeklendirilebilir. Bu nedenle, hiPSC kaynaklı kardiyak hücrelerden üretilen örgü şekilli ECT'ler kardiyak rejenerasyon paradigmaları için uygun olabilir.

Giriş

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Çok sayıda preklinik çalışmalar ve klinik çalışmalar başarısız kalpler için hücre tabanlı kardiyak rejeneratif tedavilerin etkinliğini doğruladı1,2,3. Çeşitli hücre tipleri arasında, insan kaynaklı pluripotent kök hücreler (hiPSCs) onların proliferatif yeteneği sayesinde hücre kaynakları umut verici, çeşitli kardiyovasküler soy oluşturmak için potansiyel4,5, ve allojenite. Buna ek olarak, doku mühendisliği teknolojileri mümkün hasarlı bir kalp üzerine milyonlarca hücre aktarmak için yaptık5,6,7,8.

Daha önce, hiPSC kaynaklı kardiyovasküler soylardan 3Boyutlu biyoyapay dokular için ticari olarak mevcut kültür sistemi kullanarak üç boyutlu (3D) lineer mühendislik kardiyak dokuların (ECTs) üretimi rapor5,7. EKT içinde kardiyomiyositler ile vasküler endotel hücreleri ve duvar hücrelerinin birlikte bulunmasının yapısal ve elektrofizyolojik doku olgunlaşmasını kolaylaştırdığını bulduk. Ayrıca, kardiyak fonksiyonu geliştirmek için bağışıklık toleranslı sıçan miyokard infarktüs modelinde implante hiPSC-ECTs terapötik potansiyelini doğruladı, miyokardiyum yeniden, ve anjiyogenez geliştirmek5. Ancak, bu yöntemle yapılan lineer ECT'ler 1 mm x 10 mm silindir olup, bu nedenle daha büyük hayvanlar veya klinik kullanımlı klinik öncesi çalışmalarda implantasyon için uygun değildir.

Sıçan iskelet miyoblastları ve kardiyomiyositler9, insan ESC türetilmiş kardiyomiyositler10 ve fare iPSCs11kullanarak gözenekli mühendislik doku oluşumu oluşturmak için doku kalıplarının başarılı kullanımı dayanarak, biz polidimethylsiloxane kullanarak ölçeklenebilir hiPSC kaynaklı büyük implante doku oluşturmak için bir protokol geliştirdi (PDMS) kalıpları. En etkili kalıp özelliklerini belirlemek için çeşitli kalıp geometrilerini değerlendirdik. Birden fazla demet ve kavşakiçeren kafes şeklindeki ECT'ler, gözenek veya kavşaklardan yoksun düz veya doğrusal biçimlere kıyasla hücre canlılığı, doku fonksiyonu ve ölçeklenebilirlik açısından mükemmel özellikler sergiledi. Biz bir sıçan miyokard infarktüsü modelinde örgü şeklinde EKT implante ve implante silindirik ECTs benzer terapötik etkileri doğruladı12. Burada hiPSC türetilmiş örgü şeklinde bir AKT oluşturmak için protokolü açıklıyoruz.

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Protokol

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

1. HiPSC'lerin bakımı ve kardiyovasküler farklılaşma

  1. Genişletmek ve ince kat bodrum membran matris hiPSCs korumak (büyüme faktörü azaltılmış, 1:60 seyreltme) insan temel fibroblast büyüme faktörü ile fare embriyonik fibroblastlar (MEF-CM) çıkarılan koşullu ortamda 4.
    NOT: HiPSCs (4 faktörlü (Oct3/4, Sox2, Klf4 ve c-Myc) hattı: 201B6) kullandık. Her hücre hattı için uygun konsantrasyonda hbFGF ekleyin. Laminin-511 parçası da bodrum membran matris yerine kültür çanak kaplama için kullanılabilir. HiPSC'lerin besleyicisiz kültürü için tasarlanmış ticari olarak kullanılabilen ortam, MEF-CM'nin yerine kullanılabilir.
  2. Hücre birleşmesi %90\u2012100%'e ulaştığında hücreleri ayırmak ve ayırmak için Versene (0,48 mM ethylenediaminetetraastic asit (EDTA) çözeltisi kullanın.
    NOT: Hücre ayrıştırması için ticari olarak kullanılabilen diğer ürünler de kullanılabilir.
  3. MEF-CM'de 10.000 hücre/mm2 yoğunluktaki plaka hücreleri hbFGF ve kültür ile iki ila üç gün süreyle.
  4. Kültür tamamen kaynaştığında, hücreleri bir gün boyunca matrisle (MEF-CM ile 1:60 seyreltme) kaplayın.
  5. MEF-CM'yi RPMI 1640 + B27 ortamı ile değiştirin. Bir gün için ortama 100 ng/mL Activin A ve 100 ng/mL Wnt3A ekleyin.
    NOT: Bu fark gün 0. Kanonik Wnt sinyalini düzenlemek için Wnt3A yerine GSK3β inhibitörleri de kullanılabilir.
  6. Farklılaşmanın birinci gününde, ortamı yeni RPMI 1640 + B27 olarak 10 ng/mL BMP4 ve hbFGF 10 ng/mL ile değiştirin. İki (MC protokolü) veya dört (CM+EC protokolü) için kültür hücreleri orta değişiklik olmadan5.
    NOT: CM+EC protokolü aynı anda kardiyomiyosit (CM) ve vasküler endotel hücreleri (ECs) indüklemek için optimize edilmiştir. MC protokolü tercihen vasküler duvar hücreleri (MCs) indüklemek için optimize edilmiştir.
  7. CM ve EC'lerin indüksiyonu için CM+EC protokolü (Şekil 1A).
    1. 5. gün farklılaşmanın ortasını RPMI 1640 + B27 ile değiştirin veVeGF165'in50 ng/mL'si ile tamamlayınız.
    2. 13\u201215 güne kadar her 48 saatte bir kültür ortamını değiştirin.
  8. Vasküler duvar hücrelerinin indüksiyonu için MC protokolü (Şekil 1B)
    1. Farklılaşmanın 3.
    2. 13\u201215 güne kadar her 48 saatte bir kültür ortamını değiştirin.

2. Farklılaşma gününde hücre hasadı ve soy analizi 13\u201215

  1. Hücreleri Ca2+ ve Mg2+ serbest fosfat tamponlu salin (PBS) ile yıkayın.
  2. Hücre kültür çanak tabla kapsayacak şekilde hücre bölünmesi çözeltisi (proteazlar, kolajneler ve NASEs içeren) ekleyin. Plakayı 37 °C'de 5 dk kuluçkaya yatırın.
  3. Kuluçka dan sonra bir pipet kullanarak kültür ortamı ile hücreleri toplamak ve ayrıştırın.
  4. Akış sitometrisi ile soy analizi için 1 x 106 hücre ayırın. Ölü hücreleri ortadan kaldırmak için, sabitlenebilir canlılık boya ile hücreleri leke.
  5. PBS'de hücreleri %5 FBS ile membran yüzey belirteçleriyle lekeleyin. Floresan aktif hücre sıralama (FACS) boyama tamponu antikor aşağıdaki seyreltme kullanın: anti-PDGFRβ (1:100), anti-VE kadherin (1:100), anti-TRA-1-60 (1:20).
  6. Hücre içi proteinler için PBS'de %4 paraformaldehit (PFA) ile hücreleri yeniden askıya alın ve düzeltin.
  7. PBS'de Troponin T (cTnT) antikardiyak izoformlu hücreleri %5 FBS ve %0,75 Saponin ile lekeleyin, ardından cTnT antikorlarını 488 fare IgG1 (seyreltme 1:50) ile etiketleyin.
  8. PBS'deki lekeli hücreleri %5 FBS ile yeniden askıya alın ve hücre süzgeci ile FACS tüplerine koyun.
  9. Tanımlanmış soy dağılımları ile hücre süspansiyonları oluşumunu kolaylaştırmak için akış sitometrisi ile her bir farklılaşma protokolünden lekeli hücrelerin hücre bileşimini analiz edin.
    NOT: Bu işlemi gerçekleştirirken, ECT'ler için kalan hücre süspansiyonu 4 °C'lik bir buzdolabında muhafaza edilir.

3. PDMS doku kalıbının imalatı

  1. Prepolimer ve çapraz bağlama çözeltisini 10:1 oranında karıştırarak 0,5 mm kalınlığında ve 30 mm x 30 mm'nin üzerinde polidimethylsiloxane (PDMS) atın ve ardından 80 °C'de 3 saat boyunca tedavi edin.
  2. PDMS levhayı kesin ve 7 mm uzunluğunda, 0,5 mm genişliğinde ve 2,5 mm yüksekliğinde dikdörtgen direklere sahip 21 mm x 20,5 mm dikdörtgen tepsiyi şaşırtıcı bir konumda imal etmek için silikon yapıştırıcı ile bağlayın. İki çizgi direk arasındaki yatay direk aralığı 2,5 mm 'dir (Şekil 2B).
  3. Tepsiyi 120 °C'de 20 dk.'da otoklavlayın.
  4. 1 saat pbs% 1 poloxamer 407 ile tepsi katlayın. Poloxamer 407'yi durula ve kullanmadan önce kalıbı PBS ile yeterince durula.

4. EKT inşaatı

  1. Hücre soy analizinden sonra CM+EC ve MC protokollerinden hücreleri birleştirerek, toplam hücre sayısı nın toplam hücre sayısı olan 5'i oluşturan mC'lerin toplam konsantrasyonunun %10 ila %20'si kadardır.
  2. EKT kültür ortamında karışık altı milyon hücreyi askıya alın (alfa minimum esansiyel orta %10 FBS, 50 μM 2-merkaptoetanol ve 100 U/mL Penisilin-Streptomisin ile desteklenmiştir).
  3. Matris çözeltisinin hazırlanması
    1. 133 μL asit çözünen sıçan kuyruk kollajen tip I çözeltisi (2 mg/mL, pH 3) ile 17 μL 10x minimum esansiyel ortam (MEM) ile karıştırın. Daha sonra çözeltiyi 17 μL alkali tampon (0,2 M NaHCO3,0,2 M HEPES ve 0,1 M NaOH) ile karıştırın.
      NOT: Kollajen buzda (4 °C) tutulmalıdır. Arabellek rengini kontrol edin ve tüm çözümler karıştırıldığında ortam pembemsi olmazsa, ortama ek alkali tampon ekleyin. Karıştırma adımları karışımı kollajen I + 10x MEM olmalı ve sonra alkali tampon ekleyin. Bu sırayı DEĞIŞTIRMEYIN. Karışımda kabarcıklar üretmeyin.
    2. Nötralize kollajen çözeltisine 67 μL'lik bazal membran matrisi ekleyin.
      NOT: Karışık çözelti buzda (4 °C) tutulmalıdır.
  4. 5 dakika boyunca 1.100 rpm (240 x g)altı milyon hücre içeren hazırlanan hücre süspansiyonsantrifuge ve yüksek glikoz DMEM 167 μL ile hücreleri resuspend + 20% FBS + 1% penisilin-streptomisin (100x).
  5. Hücre süspansiyonu ve matris çözeltisini karıştırın. Bir yapı için hücre/matris karışımının toplam hacmi 400 μL'dir.
    NOT: Bu adımda hücre/matris karışımı viskoz olmayan ve pembemsi bir renk olmalıdır. Jel oda sıcaklığında katılaşmak gibi buz üzerinde tutun. Kollajen tip I'in son konsantrasyonu 0.67 mg/mL'dir.
  6. Altı kuyulu kültür plaka12yerleştirilir poloxamer 407 kaplı PDMS doku kalıbı üzerinde eşit olarak hücre / matris karışımı dökün.
    NOT: Dökülen jeldeki dolgu hatalarını önlemek için kabarcıkların oluşmasını önlemek için karışımı dikkatlice dökün.
  7. Hücre/matris karışımını 60 dakika boyunca standart bir CO2 kuluçka makinesinde (37C, %5 CO2)kuluçkaya yatırın.
  8. Doku oluşturulduktan sonra doku kalıbını 4 mL EKT kültür ortamı ile ıslatın.
    NOT: Hücre/matris 60 dakikada çapraz bağlantı olmasına rağmen yapı hala çok kırılgandır. Zarar vermemek için hafifçe orta ekleyin.
  9. Kültür 14 gün boyunca doku orta değişim ile her gün.
  10. EKT implantasyonundan önce, sterilize ince pratisyen ler kullanarak EKT'yi yükleme direklerinden hafifçe çıkarın.
    NOT: Kalıptan çıkarıldıktan sonraki son EKT boyutları orijinal kalıptan daha azdır. 2,1 cm x 2,05 cm'lik bir kalıp, yaklaşık 1,5 cm x 1,5 cm'lik bir akt üretir. Daha büyük bir 3.9 cm x 4.05 cm kalıp yaklaşık 3 cm x 3 cm ekt oluşturur. Boşaltılmış EKT sıcak kültür ortamda içsel spontan dayak gösterir. Başlangıçta bir kafes yapısına sahiptir, ancak boş bir EKT zaman içinde küçülür ve yoğunlaşır. Dokuyu ince prömiyerlerle yumuşak bir şekilde tutmak ve epikardiyuma EKT eklemek için 7-0 ipek sütür kullanmak mümkündür.

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Sonuçlar

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Şekil 1A,B CM+EC ve MC protokolüşemalarını gösterir. CM+EC protokolünden cm ve EC'ler ve MC protokolünden MC'ler indüklendikten sonra, hücreler toplam hücrelerin -20'sini temsil edecek şekilde son MC konsantrasyonlarını ayarlayarak karıştırılır. 2 cm genişliğindeki doku kalıbı, 0,5 mm kalınlığındaki PDMS levhadan(Şekil 2A,B)tasarım çizimine göre imal edilmiştir. Cm + EC + MC hücrelerinin altı milyon kollajen I ile birleştirilir ...

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Tartışma

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Doğrusal bir format, hiPSC türetilmiş EKT5araştırmamızın tamamlanmasından sonra, eBT'ler içinde vasküler hücrelerin in vitro genişlemesini kolaylaştırmak ve ait etkenler ile alıcı miyokardyum arasında in vivo vasküler kaplini kolaylaştırmak için hiPSC kaynaklı CM'ler, EK'lar ve MC'leri karıştırmak için protokolü uyarladık.

Daha büyük, implante edilebilir örgü ECT geometrilerinin oluşumunu kolaylaştırmak için, 3B kalıpları şaşırtıcı konumlarda dizilmiş yükleme direkleriy...

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Açıklamalar

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Yazarların açıklayacak herhangi bir mali ya da bilimsel çatışmaları yoktur.

Teşekkürler

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Bu çalışma, Louisville Üniversitesi'ndeki Kosair Charities Pediatrik Kalp Araştırma Programı ve RIKEN Biyosistem Dinamiği Araştırma Merkezi'ndeki Organoid Projesi tarafından finansal olarak desteklenmiştir. Yayınlanan protokollerimizde kullanılan HiPSC'ler Kyoto Üniversitesi, Kyoto, Japonya iPS Hücre Araştırma ve Uygulama Merkezi tarafından sağlanmıştır.

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Malzemeler

Bu makalede kullanılan malzemelerin listesi
AdŞirketKatalog numarasıYorumlar
Malzemeler< / güçlü >
Hücre Kültürü Tabakları 100x20 mm stilFalcon / Thomas scientific9380C51
Hücre Kültürü İçin Çok Kuyulu Plakalar 6well 50 / CSFalcon / Thomas scientific6902A01
Sylgard 184 Silikon Elastomer KitiDow Corning761036
Reaktifler< / güçlü >
AccumaxYenilikçi Hücre Teknolojileri-105
BMP4, rekombinant (10 & mikro; g)Ar-Ge DRSD-314-BP-010
Kollajen, sıçan kuyruğundan Tip I çözeltiSigmaC3867
Büyüme faktörü azaltılmış MatrigelCorning356231
İnsan VEGF (165) IS, birinci sınıfMiltenyi130-109-385
Pluronic F-127, 0.2 ve mikro; m filtreli (Suda% 10 Çözelti)Moleküler ProblarP-6866
Rekombinant insan bFGFWAKO060-04543
Rekombinant İnsan / Fare / Sıçan ActivinA (50 ve mikro; g)Ar-Ge D338-AC-050
rh Wnt-3a (10&mikro; g)Ar-Ge D5036-WN
Versene çözeltisiGibco15040066
Kültür ortamı ve takviyeleri
10x MEMInvitrogen11430
2 Merkaptro EtanolSIGMAM6250
B27 takviyesi eksi insülinGibco
DMEM, yüksek glikozGibco11965084
Fetal Sığır Serumu (500ml)Herhangi bir
Fetal Sığır Serumu (500ml)Herhangi bir
L-GlutaminGibco25030081
NaHCO3Herhangi bir
PBS 1xGibco10010-031
Penisilin-Streptomisin (5000 U/mL)Gibco15070-063
RPMI1640 ortaGibco21870092
alfa; MEMInvitrogen11900024
Flowsitometri< / güçlü>
anti-TRA-1-60, FITC, Klon: TRA-1-60, BD BiosciencesBD / Fisher560380
anti-Troponin T, Kardiyak İzoform Ab-1, Klon: 13-11, Thermo Scientific Lab VisionFisherMS-295-P0
BD FACS Temiz ÇözeltiBD340345
BD FACSFlow Kılıf SıvısıBD342003
BD FACSRinse SolüsyonuBD340346
EDTAHücre
Falcon Tüpü (500'lük Kasa)Corning352235
Fetal Sığır Serumu (500ml)Herhangi biri
CANLI/ÖLÜ Sabitlenebilir Aqua Ölü Hücre Leke Kiti, 405 nm uyarma içinMoleküler ProblarL34957
PDGFRb; anti-CD140b, R-PE, Klon: 28D4, BD Biyolojik BilimlerBD / Fisher558821
SaponinSigma-Aldrich47306-50G-F
VEcad-FITC; anti-CD144, FITC, Klon: 55-7H1, BD Biyolojik BilimlerBD / Fisher560411
Zenon Alexa Fluor 488 Fare IgG1 EtiketlemeKiti Moleküler ProblarZ25002
A1895601 Süzgeç Kapaklı Herhangi Bir

Kaynaklar

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
  1. Sanganalmath, S. K., Bolli, R. Cell therapy for heart failure: A comprehensive overview of experimental and clinical studies, current challenges, and future directions. Circulation Research. 113, 810-834 (2013).
  2. Fisher, S. A., Doree, C., Mathur, A., Martin-Rendon, E. Meta-Analysis of Cell Therapy Trials for Patients With Heart Failure. Circulation Research. 116, 1361-1377 (2015).
  3. Menasché, P., et al. Human embryonic stem cell-derived cardiac progenitors for severe heart failure treatment: first clinical case report: Figure 1. European Heart Journal. 36, 2011-2017 (2015).
  4. Masumoto, H., et al. Human iPS cell-engineered cardiac tissue sheets with cardiomyocytes and vascular cells for cardiac regeneration. Scientific Reports. 4, 6716(2014).
  5. Masumoto, H., et al. The myocardial regenerative potential of three-dimensional engineered cardiac tissues composed of multiple human iPS cell-derived cardiovascular cell lineages. Scientific Reports. 6, 29933(2016).
  6. Zimmermann, W. H., et al. Engineered heart tissue grafts improve systolic and diastolic function in infarcted rat hearts. Nature Medicine. 12, 452-458 (2006).
  7. Fujimoto, K. L., et al. Engineered fetal cardiac graft preserves its cardiomyocyte proliferation within postinfarcted myocardium and sustains cardiac function. Tissue engineering. Part A. 17, 585-596 (2011).
  8. Lancaster, J. J., et al. Surgical treatment for heart failure: cell-based therapy with engineered tissue. Vessel Plus. 2019, (2019).
  9. Bian, W., Liau, B., Badie, N., Bursac, N. Mesoscopic hydrogel molding to control the 3D geometry of bioartificial muscle tissues. Nature protocols. 4, 1522-1534 (2009).
  10. Zhang, D., et al. Tissue-engineered cardiac patch for advanced functional maturation of human ESC-derived cardiomyocytes. Biomaterials. 34, 5813-5820 (2013).
  11. Christoforou, N., et al. Induced pluripotent stem cell-derived cardiac progenitors differentiate to cardiomyocytes and form biosynthetic tissues. PloS one. 8, 65963(2013).
  12. Nakane, T., et al. Impact of Cell Composition and Geometry on Human Induced Pluripotent Stem Cells-Derived Engineered Cardiac Tissue. Scientific Reports. 7, 45641(2017).
  13. Kowalski, W. J., et al. Quantification of Cardiomyocyte Alignment from Three-Dimensional (3D) Confocal Microscopy of Engineered Tissue. Microscopy and Microanalysis. 1, (2017).

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Yeniden basım ve izinler

Bu JoVE makalesinin metnini veya şekillerini yeniden kullanmak için izin iste

İzin iste

Etiketler

A eklinde Yap larPDMS Doku Kal bKardiyomiyosit HizalanmasStromal Vask ler FraksiyonKollajen MatriksPoloksamer 407 KaplamaMiyofiber DemetleriKardiyak Rejenerasyon

İlgili makaleler