Yöntem makalesi

Posterior Dolaşım İnmesinin Klinik Öncesi Modelinde Lazer Benek Görüntüleme ve MRG Kullanılarak Enfarktüs Hacmi Kullanılarak Serebral Perfüzyonun Miktarının Belirlenmesi

DOI:

10.3791/61673

17 Kasım 2020

Bu makalede

Özet

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Serebral perfüzyonu gerçek zamanlı olarak izlemek için lazer benek görüntüleme geliştirmek için bir köpek LVO inme modeli kullanıldı.  Difüzyon ağırlıklı MRG, yüksek bir b-değeri kullanılarak enfarktüs hacmini görüntülemek için optimize edildi ve inme anında DSA ile ilişkili olan ADC ve MRA'yı mümkün kıldı.  Son olarak, ADC rekonstrüksiyonları histolojik bulgularla korelasyon gösterdi.

Özet

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Arka plan: Baziler arter tıkanıklığı (BAO), posterior dolaşım inmesinin %90 gibi yüksek bir mortalite taşıyan bir alt grubudur.  İskemik inmeyi teşhis etmek için mevcut klinik standartlar arasında bilgisayarlı tomografi (BT), BT anjiyografi ve perfüzyon ve manyetik rezonans görüntüleme (MRG) bulunmaktadır. Klinik hastalığı doğru bir şekilde yansıtacak büyük hayvan klinik öncesi modellerin yanı sıra inme yükünü değerlendirmek ve tedavileri değerlendirmek için yöntemler eksiktir.

Yöntemler: Posterior dolaşımda büyük damar tıkanıklığı (LVO) inmesinin bir köpek modelini tanımladık ve perfüzyon değişikliklerini gerçek zamanlı olarak izlemek için bir lazer benek görüntüleme (LSI) protokolü geliştirdik.  Daha sonra saptama hassasiyetini artırmak için yüksek b değerli DWI (b=1800s/mm2) MRG kullandık. Ayrıca manyetik rezonans anjiyografinin (MRA) arteriyel oklüzyonu değerlendirme ve DSA ile korelasyon yeteneğini de değerlendirdik. Son olarak, histoloji ile görünür difüzyon katsayısı (ADC) haritalamasından enfarktüs boyutunu doğruladık.

Sonuç -ları: Tromboemboli uygulaması DSA tarafından izlenen baziler arteri tıkalı olarak tespit etti (n=7).   LSI, DSA ile korelasyon gösterdi ve deney boyunca devam eden inme başlangıcından sonra perfüzyonda bir azalma gösterdi ve perfüzyonu gerçek zamanlı olarak izlememize izin verdi.  Köpekler için optimize edilmiş bir b değerine sahip DWI, strok hacmini gösterdi ve ADC ve manyetik rezonans anjiyografi (MRA) görüntüleri elde etmemize izin verdi. Deney sonunda yapılan MRA, oklüzyon sonrası yapılan DSA ile korelasyon gösterdi. Son olarak, MRG'deki inme yükü histoloji ile korelasyon gösterdi.

Sonuç: Çalışmalarımız, iskemik inme tanı ve tedavisinde önemli olan multimodal görüntülemeyi kullanan, posterior dolaşım inmesinin köpek tromboembolik LVO modelinin LSI kullanılarak gerçek zamanlı perfüzyon görüntülemesini göstermektedir.

Giriş

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Dünya genelinde inme prevalansı yaklaşık 25,7 milyondur ve bunların çoğunluğu iskemiktir1.  Posterior dolaşım inmesi, baziler arter tıkanıklığının en şiddetli olduğu tüm inmelerin %20'sini oluştururve mortalitesi %90'a yaklaşır 1,2.  1995 yılında, rekombinant doku plazminojen aktivatörü (rtPA), inme başlangıcından itibaren 3 saat içinde başvuran hastalarda iskemik inme için geliştirilen ilk akut tedaviydi3. Daha yakın zamanlarda, mekanik trombektominin, internal karotis arterin intrakraniyal kısmını veya ön ve orta serebral arterlerin ilk segmentini içeren büyük damar tıkanıklığı (LVO) ile başvuran hastalarda akut iskemik inme tedavisinde fayda sağladığı gösterilmiştir4.  Son klinik çalışmaların hiçbirinde posterior dolaşım inmesi yoktu ve baziler arter tıkanıklığı için mekanik trombektomi kullanılmasına rağmen sonuçları hala kötüydü 5,6.

İnme hastalarında değerlendirme tekniklerindeki gelişmeler, fonksiyonel iyileşme ve sağkalım şansını öngörmede etkilidir7. Posterior dolaşım inmesinin klinik öncesi modelleri daha önce tanımlanmıştı 8,9,10, ancak inme yükünü ve revaskülarizasyonu değerlendirmek yetersiz kalmaktadır.  Kemirgenler gibi daha küçük türler, genetik manipülasyon kolaylığı, ucuz hayvan alımı ve düşük harcırah barınma maliyetleri gibi çeşitli avantajlar sunar11,12. Bununla birlikte, küçük hayvan deneyleri bazen büyük hayvan ve insan damar sistemini, fizyolojik koşulları veya ilgili enflamatuar yanıtları tam olarak temsil etmemektedir7. Büyük hayvanlar insan felcini daha yakından taklit eder 2,7,13,14.  Ayrıca, trombotik ve inflamatuar belirteçlerin kan analizi için seri kan örneklemesi yapılabilir.

Bu çalışmada, inme başlangıcından itibaren dijital subtraksiyon anjiyografi (DSA) ile doğrulanan baziler arter tıkanıklığının köpek modelini tanımladık.  Perfüzyonu gerçek zamanlı olarak izlemek için lazer benek perfüzyon görüntülemeyi (LSI) kullanıyoruz.  Daha sonra, enfarktüs görüntülemeyi optimize etmek için lazer benek perfüzyon görüntüleme (LSI) edinimine dayanan yeni bir mikrovasküler iyileştirme algoritmasının yanı sıra yüksek b-değerli manyetik rezonans görüntüleme (MRI) tekniği kullanıyoruz15. Bu teknikler lokal ve global iskemiyi izlememize ve ölçmemize izin verir. Son olarak, bu görüntüleme bulgularını histoloji ile ilişkilendiriyoruz. Prognozu anlamak ve klinik öncesi modellerde posterior dolaşım inmesini inceleme ihtiyacı, tedavileri iyileştirmek için kritik öneme sahiptir.

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Protokol

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Tüm prosedürler, Ohio Eyalet Üniversitesi Kurumsal Hayvan Bakımı ve Kullanımı Komitesi (IACUC) tarafından onaylanan Hayvan Refahı Yasası ve Laboratuvar Hayvanlarının Bakımı ve Kullanımı Kılavuzu'na (NRC 2011) uygun olarak gerçekleştirildi.

1. Adım 1: Hayvan Hazırlama ve Cerrahi Protokol Daha önce tarif edildiği gibi baziler arter tıkanıklığı (BAO) inmesinin bir köpek modeli kullanıldı 9,10.

  1. Hızlı yetişkin beagle'lar (8-13 kg, 14-21 aylık) gece boyunca suya ücretsiz erişim.
  2. Anestezik öncesi, kas içi asepromazin uygulaması (0.2 mg / kg) enjekte edin
  3. Sefalik bir damar içine 20 gauge kateter yerleştirin.
  4. İntravenöz ketamin (10 mg / kg) ve midazolam (0.025 mg / kg) uygulaması ile anesteziyi indükleyin.
  5. Anestezik indüksiyonu takiben, köpekleri entübe edin ve sürekli inhale anestezi (% 2-3 izofluran) kullanarak mekanik olarak havalandırın.
  6. Lazer benek görüntüleme için 1cm2'lik bir kraniyotomi penceresi oluşturun.
  7. Erişim ve kan basıncı ölçümü için sağ femoral artere bir 7F arteriyel kılıf yerleştirin.
  8. Kan alımı için sağ femoral ven içine 16 gauge anjiyokateter yerleştirin.
  9. Daha önce tarif edildiği gibi tromboembolus (kan pıhtısı) hazırlayın16. Kısaca, 30 saniye boyunca yuvarlarken plastik bir serum kan alma tüpünde 5 mL köpek tam kanını 0.5 g baryum sülfat (Ba2S4) ile çekin ve karıştırın. Kateter uygulamasından önce karışımı oda sıcaklığında 60 dakika boyunca rahatsız edilmeden dinlendirin.
  10. Orta baziler artere erişmeden önce başlangıç dijital çıkarma anjiyografisini (DSA) kaydetmeye başlayın. Floroskopik kılavuzluğunda, retrograd transaortik bir yaklaşım kullanarak, daha önce bir vertebral arter yoluyla baziler arterin tabanına sağ femoral artere yerleştirilen 7F arteriyel kılıfa bir 4F kılavuz kateteri ilerletin. Baziler arteri tanımlamak için normal salin ile iki mililitre kontrast madde enjekte edin.
  11. Cerrahi bir neşter kullanarak, pıhtıyı 3 mL'lik bir şırıngaya yüklemek ve mikrokateterden baziler arterin ortasına enjekte etmek için hem fibrin açısından zengin hem de eritrosit açısından zengin katmanlar16 ile küçük parçalara ayırın. Pıhtının 10 dakika stabilize olmasına izin verin. İstediğiniz pıhtı konumunu doğrulamak için bir takip anjiyografisi yapın. Arteriyel oklüzyon DSA ile doğrulanabilir ve serebral perfüzyonu azaltıcı lazer benek görüntüleme (LSI) ile doğrulanabilir.

2. Adım 2: Lazer Benek Görüntüleme

  1. Lazer benek perfüzyon görüntüleme (LSI) kamerasını kraniyal pencereye odaklayın. Yüksek çözünürlüklü lazer benek görüntüleme (LSI) kamera sistemini daha önce açıklandığı gibi yapılandırın15.
  2. İstenilen zaman noktalarında anjiyografi performansı sırasında kesintilerle perfüzyonu kaydedin. Bu köpek modelinde 10 cm çalışma mesafesinde 785 nm dalga boyu ve 60 Hz örnekleme hızına sahip 80 mW lazerler kullanarak 1,5 cm x 1,5 cm görüş alanından veri elde edin.
  3. Gerçek zamanlı perfüzyon grafiklerinden, solunum hareketiyle ilgili artefaktları hariç tutmak için yalnızca daha düşük tepe noktalarını dahil etmek için ilgi süresini (TOI) seçin. PimSoft v1.4 yazılımı kullanılarak 10 sn örnekleme periyodu boyunca ortalama bağıl perfüzyon birimleri. Daha önce açıklandığı gibi lazer benek kontrast analizi (LASCA) yapın15.
  4. Bu köpek modelinde beyin mikrovaskülatürünün nicelleştirilmesini optimize etmek için, görüntüleri saniyede 15 kare hızında kaydedin ve 5 karelik 5 x 5 piksellik bir alan üzerinde uzay-zamansal ortalama ile yoğunluk ve varyans hesaplamaları yapın. Yoğunluk ve varyans verileri için genel kare hızı saniyede 3 kare idi. Köpek solunumundan kaynaklanan hareket nedeniyle perfüzyon okumalarındaki büyük ani değişikliklerin ortalaması üzerindeki etkileri azaltmak için her piksel için perfüzyonun medyan değerini seçin. Ham verileri ikili dosyalara dönüştürün ve verileri damar sisteminin anlamlı bir şekilde görüntülenmesine işleyin. Daha önce tarif edildiği gibi vaskülatür yerlerini belirlemek için kontrast verilerinin zaman içindeki varyansını kullanmak için programın yeniden tasarlanmış LASCA algoritmasını (rt-LASCA) kullanın15.

3. Adım 3: Manyetik Rezonans Görüntüleme (MRG) ve Manyetik Rezonans Anjiyografi

  1. İstenirse karşılaştırma için ameliyattan bir gün önce MRG yapın, ardından BAO'yu doğrulamak için tekrarlayın ve bir terapötik değerlendirilecekse fedakârlıktan önce tekrar tekrarlayın.
  2. Beyin görüntülerini elde etmek için gelişmiş paralel görüntüleme performansına sahip bir alıcı olarak 32 kanallı kafa bobini içeren bir Siemens Prisma 3 Tesla alan kuvveti ve 60 cm çapında delikli MRI tarayıcısında daha önce tarif edildiği gibi sürekli anestezi uygulanmış köpekleri sırtüstü pozisyonda baş önce yerleştirin17.
  3. Anatomik görüntüleme başlamadan önce her köpek beyninin pilot görüntülerini elde etmek için yerelleştirici taramaları yapın.  Sunulan verileri elde etmek için kullanılan sistem, optimum uzamsal ve zamansal çözünürlüklerde daha hızlı taramaya izin veren entegre bir görüntüleme sistemine sahiptir. 80 mT/m gradyanlar, yüksek kaliteli T2 ağırlıklı, difüzyon ağırlıklı görüntüler ve MR anjiyogramlar üretir. Difüzyon ağırlıklı görüntüleme (DAG) yeterince hassastır ve T2 ağırlıklı görüntüler gibi geleneksel yapısal MRG yöntemlerine göre daha anatomik alt yapı gösterebilir. Bu çalışmada BAO'dan 4 saat sonra MRG yapıldı.
  4. Uygun lokalizasyondan sonra, T2 ağırlıklı gradyan eko görüntüleme (Parametreler: FOV = 130 mm, Matris boyutu = 320 x 320, piksel boyutu = 0,3 x 0,3 mm, Dilim kalınlığı = 3 mm, TR = 4s, FA = 180 derece, BW = 255 Hz / piksel, NEX = 2, TE = 75ms, Çözünürlük = mm başına 2.4615 piksel) ve ardından beyin anatomisinin yapısını görselleştirmek için akış zayıflatılmış inversiyon kurtarma (FLAIR) görüntüleme.
  5. Vasküler anatomiyi ve kan dolaşımı ölçümünü görselleştirmek için manyetik rezonans anjiyografi (MRA) yapın. Enine görünümde uçuş süresi 3D (TOF) dizisi ile baş ve boynu kaplayan beynin MRA'sını alın (Parametreler: FOV = 129x129 mm, Matris boyutu = 768 x 768, piksel boyutu = 0.3 x 0.3 mm, dilim kalınlığı = 81.59 mm, TR = 25 ms, FA = 18 derece, BW = 185 Hz / piksel, NEX= 1, TE = 4.22ms, Çözünürlük = mm başına 5.91 piksel). Kan damarlarındaki sinyal yoğunluğunu en üst düzeye çıkarmak için 3D renk kodlu görselleştirme ile maksimum yoğunluk projeksiyonu (MIP) gerçekleştirin.  İşlem sonrası, kan damarlarını görselleştirmek ve baziler arterin tıkalı olduğunu doğrulamak için DICOM görüntüleri elde edildi.

4. Adım 4: Difüzyon ağırlıklı görüntüleme ve strok hacmi hesaplaması

  1. Akut iskemik inmeleri tespit etmek için difüzyon ağırlıklı görüntüleme dizisi gerçekleştirin (Parametreler: FOV = 149 mm x149 mm, Matris boyutu = 132 x0x0x 100, piksel boyutu = 0,30 mm x 0,30 mm, dilim kalınlığı = 4 mm, TR = 4,6 sn, FA = 90 derece, BW = 255 Hz/piksel, NEX= 1, TE = 86ms, Çözünürlük = mm başına 0,93 piksel). DICOM görüntülerini son işleme için aktarın.
  2. DWI görüntülerinden görünür difüzyon haritaları (ADC) oluşturun ve OsiriX MD v.5.0 yazılımını kullanarak enfarktüs hacimlerini hesaplayın.
  3. Dilim başına hem beyin yarım kürelerini hem de enfarktüs alanlarını izleyin ve enfarktüs hacimleri elde etmek için dilim kalınlığıyla çarpın.
  4. Her bir köpeğin vuruş hacminin yüzdesini hesaplamak için mutlak tam hacmi 100 birime dönüştürün.

5. Adım 5: Hematoksilen ve Eozin boyama beyin histolojisi

  1. Anestezi uygulanmış köpekte fedakarlık sırasında, beyni çıkarın ve keskin bir neşter ile 4 mm kalınlığında iki medial bölümü kesin, bir bölüm aşağıda TTC boyama için kullanılacaktır.
  2. Tüm bölüm boyunca sızmaya izin vermek için 4 mm'lik bölümü en az 7 gün boyunca% 10 formalin içinde sabitleyin.
  3. Protokol17'yi takip ederek sabit beyin bölümünü parafine gömün.
  4. Her parafin bloğunu kesin ve düzleştirin (aynı anda birden fazla blok saklanabilir ve işlenebilir).
  5. Her parafin bloğunu 4μm'de bölümlere ayırın ve kesilmiş dokuyu 2 "x 3" inçlik bir slayta yerleştirin.
  6. Her slaytı Hematoxylin 560'ta 8 dakika boyunca işleyin, musluk suyunda durulama ile üç kez 1 saniye boyunca% 1 asit alkol ile farklılaştırın.
  7. Her slaytı 1 saniye boyunca %1 amonyum hidroksit ile mavileyin ve 2 saniye musluk suyuyla durulayın.
  8. On iki kez 1 sn boyunca% 70 etanol içinde dehidrat, 1 dakika boyunca eozin içinde karşı boyanır.
  9. On iki kez 1 saniye boyunca% 95'te dehidrat ve ardından% 100 etanol.
  10. Ksileni temizleyin ve hava kabarcıklarını gidererek montaj ortamıyla birlikte 2 "x 3" inçlik bir lamel uygulayın.

6. Adım 6: %2 2,3,5-trifeniltetrazolyum klorür beyin boyama

  1. H&E bölümünün yanında hasat edilen ikinci 4 mm'lik bölümü, karanlıkta 37 °C'ye ısıtılmış pH 7.4 PBS'de 100 mL% 2,3,5-trifenil-2H-tetrazolyum klorür (TTC) içeren önceden hazırlanmış bir çözeltiye yerleştirin.
  2. Karanlıkta 37 ° C'de en az 20 dakika inkübe edin ve beyin bölümünü her 5 dakikada bir nazikçe çevirin.
  3. Kesit her iki tarafta kiraz kırmızısına döndüğünde, TTC çözeltisini çıkarın ve gece boyunca kontrastı optimize etmek için PBS, pH 7.4'te %4 paraformaldehit ile değiştirin.
  4. Beyindeki beyaz ve kırmızı lekelenme arasındaki kontrast en uygun olduğunda (1-3 gün), şeffaf plastik tabakaların arasına yerleştirin, fazla sıvıyı kurutun ve yüksek çözünürlükte tarayın.
  5. Daha önce tarif edildiği gibi her bölümde enfarktüs yüzdesi elde etmek için iskemik bölgeleri ve tüm beyin slaytını izleyin17.

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Sonuçlar

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Lazer Benek Perfüzyon Kayıt ve Görüntüleme: Perfüzyon kaydı, hayvan MRG'ye taşınana kadar sürekli olarak ve tekrar kurban edilirken yapıldı (Şekil 1A

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Tartışma

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Posterior dolaşım inmesinin en sık nedenleri emboli, büyük arter ateroskleroz ve küçük arter hastalığıdır5. Baziler arteriyel oklüzyon (BAO), posterior dolaşım inmelerinin önemli morbidite ve mortalite taşıyan bir alt grubunu temsil eder13. Bu bağlamda, akut posterior inmenin köpek modeli kullanıldı ve tıkalı bölgenin perfüzyonunu gerçek zamanlı olarak izlemek için bir LSI protokolü geliştirildi. Lazer benek perfüzyon görüntülemesi, tanımla...

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Açıklamalar

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Yazarların ifşa edecek hiçbir şeyi yok

Teşekkürler

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Bu çalışma kısmen Mayfield Eğitim ve Araştırma Vakfı hibe #GRT00049047 ve SMN'ye #TECG20180269 Ohio Hizmetler Bakanlığı Ajansı Hızlandırıcı Ödülü'nden desteklenmiştir.

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Malzemeler

Bu makalede kullanılan malzemelerin listesi
AdŞirketKatalog numarasıYorumlar
% 2,3,5-trifeniltetrazolyum klorür (PBS'de TTC, pH 7.4)Sigma AldrichT8877
EDTA K3 vakutainersBecton DickinsonBD455036
EosinSurgipath3801602
Formalin, nötr tamponlu,% 10Richard-Allan Scientific5701
Hematoksilen 560Surgipath3801570
HUG-U-VAC konumlandırma sistemi  DRE Veteriner1320
LabChart YazılımADI Cihazları A.Ş.
Lazer Benek Görüntüleme kamerasıPerimed Inc., Jarfalla, İsveçPeriCam PSI HR Sistemi
Lityum heparin vacutainer, %4,5Becton DickinsonBD 368056
MatlabThe MathWorks, Inc., Natick, MA
OsiriX MD v.5.0 yazılımıPixmeo Inc, Cenevre
PBS Alfa Aesar'da Paraformaldehit %4
PimSoft v1.4 yazılımıPerimed Inc.LSI ekipmanına
Prisma Fit 3 tesla (3T) mıknatısSiemen's Diagnostics
Enjeksiyon için sodyum heparin (kan gazı şırıngasını kaplamak için)NovaPlus402525D
AAJ61899APeşlik eden yazılım

Kaynaklar

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
  1. Donkor, E. S. Stroke in the 21(st) Century: A Snapshot of the Burden, Epidemiology, and Quality of Life. Stroke Research and Treatment. 2018, 3238165(2018).
  2. Kaiser, E. E., West, F. D. Large animal ischemic stroke models: replicating human stroke pathophysiology. Neural Regeneration Research. 15 (8), 1377-1387 (2020).
  3. National Institute of Neurological Disorders and Stroke rt-PA Stroke Study Group. Tissue plasminogen activator for acute ischemic stroke. New England Journal of Medicine. 333 (24), 1581-1587 (1995).
  4. Mokin, M., Rojas, H., Levy, E. I. Randomized trials of endovascular therapy for stroke--impact on stroke care. Nature Reviews Neurology. 12 (2), 86-94 (2016).
  5. Sparaco, M., Ciolli, L., Zini, A. Posterior circulation ischaemic stroke-a review part I: anatomy, aetiology and clinical presentations. Neurological Sciences. , (2019).
  6. Lekic, T., Ani, C. Posterior circulation stroke: animal models and mechanism of disease. Journal of Biomedicine and Biotechnology. 2012, 587590(2012).
  7. Vilahur, G., Padro, T., Badimon, L. Atherosclerosis and thrombosis: insights from large animal models. Journal of Biomedicine and Biotechnology. 2011, 907575(2011).
  8. Atchaneeyasakul, K., et al. Large animal canine endovascular ischemic stroke models: A review. Brain Research Bulletin. 127, 134-140 (2016).
  9. Qureshi, A. I., et al. Randomized comparison of intra-arterial and intravenous thrombolysis in a canine model of acute basilar artery thrombosis. Neuroradiology. 46 (12), 988-995 (2004).
  10. Boulos, A. S., et al. Tamoxifen as an effective neuroprotectant in an endovascular canine model of stroke. Journal of Neurosurgery. 114 (4), 1117-1126 (2011).
  11. Doyle, K. P., Buckwalter, M. S. A mouse model of permanent focal ischemia: distal middle cerebral artery occlusion. Methods in Molecular Biology. 1135, 103-110 (2014).
  12. Wen, Z., et al. The effect of anterior communicating artery flow on neurovascular injury and neurobehavioral outcomes in mice with recurrent stroke. Brain Research. , (2019).
  13. Demel, S. L., Broderick, J. P. Basilar Occlusion Syndromes: An Update. Neurohospitalist. 5 (3), 142-150 (2015).
  14. Cai, B., Wang, N. Large Animal Stroke Models vs. Rodent Stroke Models, Pros and Cons, and Combination. Acta Neurochirurgica Supplement. 121, 77-81 (2016).
  15. Gnyawali, S. C., et al. Retooling Laser Speckle Contrast Analysis Algorithm to Enhance Non-Invasive High Resolution Laser Speckle Functional Imaging of Cutaneous Microcirculation. Scientific Reports. 7, 41048(2017).
  16. Kan, I., et al. A novel method of thrombus preparation for use in a swine model for evaluation of thrombectomy devices. American Journal of Neuroradiology. 31 (9), 1741-1743 (2010).
  17. Huttinger, A. L., et al. Ferric Chloride-induced Canine Carotid Artery Thrombosis: A Large Animal Model of Vascular Injury. Journal of Visualized Experiments. (139), (2018).
  18. Siemonsen, S., et al. Elevated T2-values in MRI of stroke patients shortly after symptom onset do not predict irreversible tissue infarction. Brain. 135, Pt 6 1981-1989 (2012).
  19. Leiva-Salinas, C., Wintermark, M. Imaging of acute ischemic stroke. Neuroimaging Clinics of North America. 20 (4), 455-468 (2010).
  20. Ishikawa, C., Ito, D., Tanaka, N., Kitagawa, M. Use of three-dimensional time-of-flight magnetic resonance angiography at 1.5 Tesla to evaluate the intracranial arteries of 39 dogs with idiopathic epilepsy. American Journal of Veterinary Research. 80 (5), 480-489 (2019).
  21. Mohr, J. P., et al. Magnetic resonance versus computed tomographic imaging in acute stroke. Stroke. 26 (5), 807-812 (1995).
  22. Rosso, C., et al. Diffusion-weighted MRI in acute stroke within the first 6 hours: 1.5 or 3.0 Tesla. Neurology. 74 (24), 1946-1953 (2010).
  23. Cheng, Q., et al. High b value DWI in evaluation of the hyperacute cerebral ischemia at 3T: A comparative study in an embolic canine stroke model. Experimental and Therapeutic. 12 (2), 951-956 (2016).
  24. Xu, X. Q., et al. Use of FLAIR imaging to identify onset time of cerebral ischemia in a canine model. American Journal of Neuroradiology. 35 (2), 311-316 (2014).
  25. Rodriguez, D., Rylander, H., Vigen, K. K., Adams, W. M. Influence of field strength on intracranial vessel conspicuity in canine magnetic resonance angiography. Veterinary Radiology & Ultrasound. 50 (5), 477-482 (2009).
  26. Bosmans, H., Wilms, G., Dymarkowski, S., Marchal, G. Basic principles of MRA. European Journal of Radiology. 38 (1), 2-9 (2001).

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Yeniden basım ve izinler

Bu JoVE makalesinin metnini veya şekillerini yeniden kullanmak için izin iste

İzin iste

Etiketler

Cerebral PerfusionLaser Speckle ImagingInfarct VolumeMagnetic Resonance ImagingPosterior Circulation StrokeBasilar Artery OcclusionLarge Vessel OcclusionDiffusion Weighted ImagingMagnetic Resonance AngiographyCanine Stroke Model
Video yakında

İlgili makaleler