Yöntem makalesi

Oosit Vitrifikasyonu ile Doğurganlığın Korunması: Klinik ve Laboratuvar Perspektifleri

DOI:

10.3791/61963

⸱

16 Eylül 2021

 ,  ,  ,  ,  ,  ,  , 
1Clinica Valle Giulia, GeneraLife IVF

Bu makalede

Özet

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Oosit kriyoprezervasyonu, postpubertal kadınlarda doğurganlığın korunması için altın standart olarak çeşitli uluslararası bilim toplumları tarafından kabul edilmektedir. Uygun klinik ve laboratuvar stratejileri, doğurganlık koruma tedavilerinin maksimum etkinliğini, verimliliğini ve güvenliğini sağlar.

Özet

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Kadın doğurganlığının korunması, hastaların gelecekteki yaşam kalitesiyle ilgilenen çok işlevli bir sağlık sisteminde çok önemlidir. Oosit kriyoprezervasyonu, birçok uluslararası bilim topluluğu tarafından postpubertal kadınlarda doğurganlığın korunması için altın standart olarak kabul edilir, hem tıbbi hem de tıbbi olmayan endikasyonlar için. Başlıca tıbbi endikasyonlar onkolojik hastalıklar, ağır endometriozis gibi jinekolojik hastalıklar, yumurtalık rezervini tehlikeye atarak sistemik hastalıklar ve erken menopoz içeren genetik durumlardır. Bu makalede, objektif ve kanıta dayalı danışmanlık önerileri sıralanarak doğurganlık koruma tedavisinin tüm klinik ve laboratuvar çalışmaları açıklanmaktadır. Ayrıca, prosedürün etkinliğine odaklanır ve yumurtalık rezervinden tam olarak yararlanmak ve mümkün olan en kısa sürede alınan oosit sayısını en üst düzeye çıkarmak için en uygun stratejileri açıklar. Yumurtalık rezervinin değerlendirilmesi, ideal bir stimülasyon protokolünün tanımı, ayrıca oosit alma, denudasyon ve vitrifikasyon prosedürleri, etkinliklerini, verimliliklerini ve güvenliklerini en üst düzeye çıkarmak için yaklaşımlarla birlikte ayrıntılı olarak verilmiştir.

Giriş

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

İnsan oositleri için verimli bir kriyoprezervasyon programının geliştirilmesi ve uygulanması üreme tıbbında önemli bir atılım olmuştur. Son kanıtlara göre, vitrifikasyon, hasta popülasyonundan bağımsız olarak (infertil hastalar veya oosit bağış programı) 1 ,2,3' e kıyasla yavaş donmaya kıyasla istatistiksel olarakdaha yüksek sağkalım oranları ile sonuçladığı için, metafaz II (MII) oositlerini kriyoprezite etmek için en etkili stratejidir. Oosit vitrifikasyonunun dikkat çekici başarıları, Amerikan Üreme Tıbbı Derneği (ASRM) ve Yardımcı Üreme Teknolojisi Derneği (SART) Uygulama Komitelerinin bu tekniği postpubertal kadınlarda hem tıbbi hem de tıbbi olmayan endikasyonlar için elektif doğurganlığın korunmasında en etkili olacak şekilde telaffuz etmesine yol açmıştır4,5,6. Doğurganlığın korunması için tıbbi endikasyonlar şunlardır: (i) radyoterapi, sitotoksik kemoterapi ve endokrin tedavi gibi7 tedavi gerektiren kanser ve otoimmün hastalıklar (yumurtalık rezervi üzerindeki zararlı etkisi anne yaşı ve tedavinin türü ve dozu ile ilişkilidir); (ii) tekrarlanan veya radikal cerrahi gerektiren yumurtalık hastalıkları (endometriozis gibi)8; ve (iii) genetik durumlar (örneğin, X-kırılgan) veya erken yumurtalık yetmezliği. Ek olarak, doğurganlığın korunması, tıbbi olmayan nedenlerle (sosyal donma olarak da bilinir) ebeveyn hedefini gerçekleştiremeyen tüm kadınlar için değerli bir seçenek haline gelmiştir.

Doğurganlığın korunması için endikasyondan bağımsız olarak ve doğurganlığın korunmasına ilişkin başlıca uluslararası yönergelere göre, oositlerini vitrifiye etmek isteyen tüm hastalar, gerçekçi başarı şansları, maliyetleri, riskleri ve prosedürün sınırlamaları hakkında bilgi sahibi olmak için uygun danışmanlık almalıdır9, 10,11,12,13. En önemlisi, bir MII oosit kohortunun vitrifiye edilmesi hamileliği sağlamaz, ancak gerekirse gelecekteki in vitro fertilizasyon (IVF) tedavisi için daha yüksek bir başarı şansı sunduğu açık olmalıdır14. Bu bağlamda, kadının oosit vitrifikasyonu sırasındaki yaşı kesinlikle en önemli sınırlayıcı faktördür15 ileri anne yaşı (AMA; >35 yıl) kadın kısırlığının ana nedenidir16. Yumurtalık rezervinde ilerleyici bir azalmanın yanı sıra, AMA metabolizma, epigenetik düzenleme, hücre döngüsü kontrol noktaları ve meiotik ayrım gibi kusurlu fizyolojik yollar nedeniyle oosit yeterliliği bozukluğu ile ilişkilidir17. Bu nedenle, vitrifiye etmek için makul sayıda yumurta esas olarak anne yaşına bağlıdır. 36 yaşından küçük kadınlarda başarı şansını en üst düzeye çıkarmak için en az 8-10 MII oosit18 gereklidir. Genel olarak, vitrifiye oosit sayısı ne kadar yüksekse, başarı olasılığı da o kadar yüksektir. Bu nedenle, yumurtalık rezervinin anti-Müllerian hormon (AMH) seviyeleri veya antral folikül sayısı (AFC) gibi yumurtalık rezervi belirteçlerine göre uyarılması, yumurtalık rezervinin mümkün olan en kısa sürede tam olarak istismar etmesi için çok önemlidir.

Tüm prosedürün güvenliği, hastaları doğurganlık korumasına kaydederken diğer önemli konudur. Klinisyenler, riskleri en aza indirmek ve (i)yumurtalık hiperstimülasyon sendromunun (OHSS) gonadotropin salgılayan hormon (GnRH) antagonist protokolü ve ardından bir GnRH agonisttetikleyicisi 19 ve (ii) uzaktan kumanda gibi güvenli yaklaşımları kullanarak önlemek için en iyi stratejileri kullanmalıdır, ancak olası, periton kanaması riskleri, pelvik yapılarda yaralanma (üreter, bağırsak, apandisit, sinirler) veya oosit alımı sırasında pelvik enfeksiyon. Son olarak, (iii) stimülasyon için geleneksel rejimler suprafizyolojik serum estradiol ile ilişkilidir ve bu nedenle meme kanseri gibi östrojene duyarlı hastalıklarda önerilmez. Aromataz inhibitörlerini (letrozol veya tamoksifen gibi) içeren protokoller bu durumlarda daha uygundur20,21. Laboratuvar ortamında, oosit vitrifikasyonu için en yaygın protokol hala Kuwayama ve meslektaşları tarafından ilk açıklananprotokoldür 2,23 , kriyoprotekantların(CPAs)kademeli olarak eklenmesini içeren adım adım bir prosedürden oluşur. İlk fazda (denge/dehidratasyon) oositler %7,5 v/v etilen glikol ve %7,5 v/v dimetil sülfit (DMSO) içeren bir CPA çözeltisinde maruz kalırken, ikinci aşamada, oositler% 15 v / v etilen glikol ve% 15 v / v DMSO, artı 0.5 mol / L sakkaroz ile bir vitrifikasyon çözeltisine taşınır. Vitrifikasyon ortamında kısa bir inkübasyondan sonra, oositler özel olarak tasarlanmış, açık kriyodevices içine yerlenebilir ve son olarak kullanıma kadar saklanmak üzere -196 ° C'de sıvı nitrojene daldırılabilir.

Burada, bir doğurganlık koruma tedavisinin tüm klinik ve laboratuvar çalışmaları (i) objektif ve kanıta dayalı danışmanlık için önerilerin özetlenmesi, (ii) prosedürün maliyet etkinliğine odaklanılması ve (iii) yumurtalık rezervinden tam olarak yararlanmak ve mümkün olan en kısa sürede alınan oosit sayısını en üst düzeye çıkarmak için en uygun stratejileri tanımlamakla tanımlanmıştır. Yumurtalık rezervinin değerlendirilmesi, ideal bir stimülasyon protokolünün tanımı, ayrıca oosit alma, denudasyon ve vitrifikasyon prosedürleri, etkinliklerini, verimliliklerini ve güvenliklerini en üst düzeye çıkarmak için yaklaşımlarla birlikte ayrıntılı olarak açıklanacaktır. Literatürde bu protokolün diğer protokolleri veya uyarlamaları mevcut olduğu için, bu makalenin temsili sonuçları ve tartışma bölümleri sadece bu prosedür için geçerlidir.

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Protokol

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

1. İş ve klinik danışmanlık

NOT: Onkolojik nedenlerle doğurganlığın korunmasını gerektiren hastalarda, konsültasyon planlama için bekleme listesi olmadığından ve randevunun mümkün olan en kısa sürede sağlandığından emin olun.

  1. Tıbbi geçmişi ve önceki belgeleri inceleyin ve hastanın genel sağlık durumunu değerlendirin.
  2. Tüm bilgileri (kanser hastalarında yumurtalık stimülasyonuna tabi tutulmak için onkolog onayı dahil) ilişkisel bir veritabanına kaydedin.
  3. Hastaya prosedürün fizibilitesi hakkında özel danışmanlık sağlayın. Prosedürün adımlarını (yumurtalık stimülasyonu, oosit alımı, oosit vitrifikasyonu) açıklayın ve gerçekçi başarı şansı (esas olarak anne yaşına ve oosit alımı sırasında beklenen MII oosit sayısına bağlı) ve prosedürün maliyeti ve sınırlamaları hakkında onu bilgilendirin.
  4. Yumurtalık rezervi (yani AFC) hakkında bilgi edinmek ve yumurtalıkların yumurta toplama için erişilebilirliğini değerlendirmek için transvajinal ultrason işlemi gerçekleştirin.
  5. Kan grubu ve Rhesus faktörünü, pıhtılaşma taramasını (kan sayımı, protrombin, tromboplastin, fibrinojen, Protein C, Protein S, anti-trombin III, homosistein) ve bulaşıcı hastalıkları (Hepatit B, Hepatit C, HIV, Zührevi Hastalık Araştırma Laboratuvarı/Treponema pallidum Hemagglutination Assay) değerlendirmek için kan testleri isteyin.
    NOT: Hastaların acil olmayan tıbbi nedenlerle doğurganlık koruma programına erişmesi durumunda, daha kapsamlı bir değerlendirme bazal folikül uyarıcı hormon (FSH), luteinize edici hormon (LH), estradiol, AMH, meme muayenesi, Papanicolaou testi, pıhtılaşmanın genetik taraması (Leiden ve protrombin faktör V) ve TORCH taramasını (toksoplazmoz, kızamıkçık, sitomegalovirüs) içerebilir.
  6. Kardiyolojik değerlendirme (elektrokardiyogram) isteyin.
  7. Psikolojik danışmanlık tavsiye edin.

2. Doğurganlığın korunması için kontrollü yumurtalık stimülasyon protokolleri

NOT: Kanser tedavisine başlamadan önce mevcut süre sınırlı olduğunda, doğurganlığın korunmasına aday onkolojik hastalarda yumurtalık stimülasyonu için rastgele başlangıç protokolü (yani adet döngüsü sırasında herhangi bir zamanda yumurtalık stimülasyonuna başlama) önerilir. Acil olmayan tıbbi nedenlerle veya sosyal nedenlerle doğurganlık koruma programında, erken foliküler fazda başlayan konvansiyonel stimülasyon tercih edilir ve adet döngüsüne göre yumurtalık stimülasyonuna başlanır. Kontrollü yumurtalık stimülasyonu (COS) yaklaşımları son Avrupa İnsan Üreme ve Embriyoloji Derneği (ESHRE) yönergelerine göre yapılmalıdır24.

  1. COS'yi hastanın özelliklerine ve yumurtalık rezervi belirteçlerine göre, özellikle anne yaşı, FSH, AMH ve AFC'ye göre uyarlar.
  2. Cos'a adet döngüsünün 5. gününde 150-300 IU/gün sabit dozda rekombinant veya üriner FSH kullanarak başlayın (antagonist protokol).
    NOT: LH eksikliği veya zayıf-yetersiz yanıt ile belirli bir hasta popülasyonunda, yumurtalık yanıtına, LH seviyelerine ve jinekologun kararına göre ek LH 75/150 IU/gün uygulanabilir.
  3. Östrojene duyarlı hastalıkları olan hastalarda, stimülasyonun 1. gününden oosit alımından sonraki 7. güne kadar aromataz inhibitörleri (letrozol) ile ilişkili gonadotropinleri içerir.
  4. 4 gün boyunca sabit bir doz gonadotropin sürün.
  5. Foliküler büyümeyi 5. günde ve daha sonra her 2-3 günde bir izleyin; sonunda, gonadotropin dozajını ayarlayın.
  6. En az 3 folikül 17-18 mm çapa ulaştığında, son oosit olgunlaşması için tetiği 0,5 mL dozda tek bir GnRH agonist altı bolusu ile uygulayın.

3. Oosit alımı

  1. Oosit alımına hazırlanıyor
    1. Gerekli malzemeler için, Malzeme Masası'nabakın ve laboratuvar ayakkabısı ve kıyafetini, cerrahi yüz maskesini, saç örtüsünü, cerrahi eldivenleri, kalıcı toksik olmayan bir işaretleyiciyi, cımbızları, steril küçük gazlı bezleri, tek kullanımlık veya yeniden kullanılabilir spekulum, vajinal cerrahi ekipmanı ve yüzey dezenfektanını hazır tutun. Resüstisyasyon ekipmanının, ters çevrilmesi için anestezik ilaçların, anafilaktik şokun tedavisi için hazırlanmış bir kitin ve ameliyathanede oksijenin kullanılabilirliğini sağlayın.
    2. Yardımcı üreme teknolojilerinde Ultrasonda ESHRE Çalışma Grubu'nun önerilerine göre oosit alma prosedürünü gerçekleştirin (ART)25.
      1. Sedasyon veya genel anestezi ve profilaksi için antibiyotikler sunun.
        NOT: Bu protokolde propofol (dozajı hastanın ağırlığına göre ayarlanmıştır) ve 50-100 μg fentanil, 1000 mg parasetamol ve oksijen ile destekli maske havalandırması yönetilerek derin sedasyon sağlanmıştır.
      2. Vakum pompası, 17 G tek lümen iğneye bağlı bir toplama tüpü ve bir oosit toplama tüpünden oluşan bir aspirasyon ünitesi kullanarak oosit alımını gerçekleştirin. Toplama sırasında, kümülüs hücrelerini sıyırma veya zona pellucida'yı kırma gibi oositlerin zarar görme riskini önlemek için ~ 120 mmHg'lik bir basıncı aşmayın.
      3. Kültür ortamlarında 37 °C'den emin olmak için çalışma yüzeyi sıcaklığını kalibre edin. Tüm prosedür sırasında, gelişimsel yeterliliklerini etkileyebilecek geçici sıcaklığa bile oosit maruziyetini en aza indirin.
      4. Oosit alımının sonunda, taburcu olmadan önce hastayı 3-4 saat gözlemleyin.
  2. Operasyon tiyatrosu
    1. Ameliyathaneye girmeden önce hastayı tanımlayın ve yumurtlama tetikleyicisinin zamanını onaylayın.
    2. Hasta ameliyat masasına jinekolojik pozisyonda yatsa.
    3. Bakteriyel kontaminasyonu en aza indirmek için oosit alımından önce vajinayı/serviksi temizleyin.
    4. Yumurtalıkların konumunu ve çeşitli organlar ve kan damarları ile anatomik ilişkileri değerlendirmek için bir ön transvajinal ultrason gerçekleştirin.
    5. Ultrason rehberliğinde, vajina duvarı ile yumurtalık arasında bulunan organlara veya kan damarlarına yaralanmamaya dikkat ederek vajinal duvardan ve yumurtalık folikülüne tek lümenli bir iğne yerleştirin.
    6. Aspirasyona en yakın folikülün içinden başlayın ve en distal olanlara ilerleyin.
    7. 11-12 mm'den büyük bir çaptaki tüm folikülleri delin, tüm foliküler sıvıyı aspire etmek için iğnenin "bükülme hareketlerini" gerçekleştirin, daha sonra ameliyathanenin blok ısıtıcısında önceden ısıtılmış steril bir tüpe (yuvarlak alt 14 mL) salınır.
    8. Aldıktan hemen sonra, tüpü hastanın kimliğinin ayrıntılarıyla kapatın ve etiketleyin.
    9. Hemşirenin tüpü laboratuvara getirdiğinden emin olun, burada kümülüs-oosit komplekslerinin (COC) varlığı için hemen taranır.
    10. Embriyologlara, alınan toplam COC sayısı hakkında klinisyeni bilgilendirmelerini söyleyin.
    11. İlk yumurtalık için işlem tamamlandıktan sonra, iğneyi temiz ortamla yıkayın ve aynı prosedürü kullanarak ikinci yumurtalığa devam edin.
    12. Oosit alımından sonra, parametriumun yumurtalıklarından veya kan damarlarından ve Douglas'ın kesesinde serbest sıvıdan kaynaklanan kanamaları değerlendirin.
      NOT: Gamet ve embriyo izlenebilirliğinin klinik düzeydeki etkinliğini otomatikleştirmek ve iyileştirmek için merkezde elektronik tanık sistemi (EWS) uygulanmıştır26. Bununla birlikte, bu protokol, protokolün herhangi bir IVF laboratuvarında tekrarlanabilirliğini sağlamak için EWS'den bahsetmemektedir. Yine de, prosedürün tüm adımlarının gamet ve embriyo izlenebilirliğini sağlamak için ikinci bir operatör (yani bir tanık) gerektirdiğini düşünün.

4. Tüp bebek laboratuvarı

  1. Oosit alma işleminden bir gün önce
    1. Oosit toplama tüpleri hazırlayın (Malzeme Tablosunabakın).
      1. Embriyo kültürü için her oosit toplama tüpüne (yuvarlak alt, 5 mL) 1 mL IVF ortamı dağıtın (MalzemeTablosuna bakın) ve 0,2 mL mineral yağ (Malzeme Tablosunabakın) ile örtün.
        NOT: Tüp sayısı, alınması beklenen folikül sayısına göre tanımlanacaktır. Her tüp en fazla 4 COC içerebilir.
    2. Tüpleri kapakla kapatın (ilk çıtçıt). Tüpleri orta ve hazırlık tarihinin ayrıntılarıyla etiketle. Tüpleri kontrollü bir atmosferde 37 °C'de bir gecede kuluçkaya yatırın (%6 CO2,%5 02).
  2. Oosit alma gününde
    1. Plastik malzemeleri 37 °C'de (steril kültür yemekleri ve Pasteur pipetler) önceden ısıtın.
    2. Hastalardan kimliklerini (tam adı ve doğum tarihi) ve yumurtlama tetikleyici zamanını onaylamalarını isteyin. Laboratuvar sayfasında tanımlama (ID) prosedürünün tamamlandığını ve yumurtlama tetikleyicisinin zamanının doğrulandığını belirtin.
    3. Oosit toplama tüplerini inkübatörden alın (prosedür başlamadan hemen önce) ve sıkı kapanmayı sağlamak için kapağı aşağı itin. Oosit toplama tüplerini hastanın bilgileriyle etiketle. Oosit toplama tüplerini 37 °C'de blok ısıtıcıya yerleştirin.
    4. Önceden ısıtılan steril kültür yemeklerindeki foliküler sıvıyı inceleyin ve COC'leri tanımlayın. Bir veya daha fazla COC tanımlandıktan sonra, foliküler sıvıyı ve kan kirlenmesini gidermek için iki damla ortamda iki kez durulayın.
    5. COC'leri oosit toplama tüplerine aktarın ve tüpteki COC sayısına açıklama ekleme. Orta tüplerin kapaklarını gevşetin ve derhal% 6 CO 2 , % 5O2atmosferinde 37 ° C'de kuluçkaya yatırın.
    6. Alınan oosit sayısına göre 7 ile 9 arasında olan adımları yineleyin. Laboratuvar sayfasını güncelleyin.
      NOT: Bir tanığın tüm tüp ısıtma bloklarının (ameliyathanedekiler dahil) boş olup olmadığını kontrol ettiğinden ve prosedürün laboratuvar sayfasındaki kapanışını imzaladığından emin olun.
    7. İşlem tamamlandıktan sonra çalışma aşamasını silin.

5. Oosit denudasyonu

  1. Prewarm 4-(2-hidroksyetil)-1-piperazineethaneslfonic asit (HEPES)-tamponlanmış orta ve hyaluronidaz (Malzeme Tablosunabakın) başlamadan önce en az 1 saat 37 °C'de.
  2. Embriyo kültürü için 0,3 mL mineral yağ ile kaplanmış 0,6 mL/önceden ısıtılmış HEPES tamponlu ortam (%5 insan serum albümini [HSA] ile desteklenmiş) ile 4 kuyulu bir IVF plakası hazırlayın (Malzeme Masasınabakın) ve en az 30 dakika boyunca 37 °C'de ısıtın.
  3. Oosit denudasyon plakasını hastanın kimliğinin ayrıntılarıyla etiketleyin.
  4. İşleme başlamadan hemen önce, yaklaşık 20 IU / mL'lik son bir konsantrasyon elde etmek için ilk kuyuya hyaluronidaz ekleyin.
  5. Kümülüs hücrelerini dağıtmak için enzimi içeren ilk kuyuya sınırlı sayıda COC (6'ya kadar) yerleştirin.
  6. Kümülüs ve korona hücrelerinin enzymatic olarak çıkarılmasını geliştirmek için, oositleri 30 s'ye kadar yaklaşık 250 μm iç çaplı bir Pasteur pipet aracılığıyla tekrar tekrar pipetleterek kümülüs hücrelerinin sıyırmasını gerçekleştirin. İlk hücre ayrışması gözlendikten sonra, oositleri sadece HEPES tamponlu ortam içeren ikinci kuyuya aktarın ve minimum miktarda enzim taşımaya dikkat edin.
  7. İç çapları azalan (170-145 μm) pipetleri kullanarak korona hücrelerini çıkarmak için daha fazla denudasyon gerçekleştirin. Sadece kesinlikle gerekliyse daha düşük çaplar (135μm) kullanın.
  8. Enzimi yıkamak için denuded oositleri dikkatlice yıkayın.
  9. Denudasyondan sonra, oositleri ters bir mikroskop altında inceleyerek bütünlüklerini ve olgunlaşma aşamalarını değerlendirin. MII oositlerini olgunlaşmamış olanlardan ayırın (germinal veziklin ve metafaz-I).
  10. Hemen kriyoprezervasyon yapmak için MII oositlerini vitrifikasyon bölgesine taşıyın. Laboratuvar sayfasını güncelleyin.

6. Oosit vitrifikasyonu

NOT: Tercihen 38 saat içinde ve denudasyondan hemen sonra oosit vitrifikasyonu gerçekleştirin. Burada açıklanan vitrifikasyon prosedürü, manipülasyon sırasında oositlere zarar vermemek için oda sıcaklığında (RT) ve iç çapı 170 μm olan bir striptizci pipet kullanılarak yapılmalıdır.

  1. İşlemden yaklaşık 30 dakika önce, denge çözeltisini (ES) ve vitrifikasyon çözeltisini (VS) RT'ye (25-27 °C) getirin.
  2. Kriyodevices hastanın adı ve kimliği, tedavi kimliği, donma tarihi, oosit sayısı ve kriyobarkod ile uygun şekilde etiketlenin.
  3. Tek kullanımlık bir soğutma rafını taze sıvı nitrojenle doldurun ve sterilizasyon işlemini başlatın.
  4. Vitrifikasyon plakasını (Malzeme Tablosunabakın) hastanın adı ve kimliği ile etiketleyin.
  5. Kullanmadan önce içeriğini karıştırmak için her şişeyi dikkatlice iki kez ters çevirin ve 6 mm Petri kabının kapağını bir damla 30 μL HEPES tamponlu ortam (%5 HSA ile) ve bir bitişik damla 30 μL ES ile hazırlayın.
    NOT: Orta buharlaşmayı sınırlamak için damlaları kullanımdan hemen önce yerleştirin.
  6. 170 μm çapında bir striptizci pipeti kullanarak, oositleri (9'a kadar) mümkün olan en küçük ortam hacmiyle ilk damlaya yerleştirin. Striptizci pipetini kullanarak, EBM konsantrasyonunda kademeli bir artış elde etmek için n.1 ve n.2 damlası arasında bir orta köprü oluşturun (Şekil 1A).
  7. Oositleri ilk düşüşte 3 dakika kuluçkaya bırakın. 30 μL ES 'lik (n.3) üçüncü bir damla ekleyin. 3 dakika sonra, oositleri ES'nin ikinci damlasına aktarın ve n.3 ve n.2 damlaları arasında orta bir köprü oluşturun (Şekil 1B). 3 dakika boyunca n.3 damlasında oositleri kuluçkaya bırakın.
  8. Kuluçka sırasında, kullanılacak her kriyodevice için bir 30 μL ES damlası ekleyin (9 oosit kriyoprezervasyon yapılacaksa, ES'nin her damlasına 3 oositli 3 damla ES yerleştirin). Oositleri saf ES çözeltisine taşıyın ve 6-9 dakika (büzüldükten sonra ilk boyutlarını kurtarana kadar) bırakın (Şekil 1C).
  9. 1 mL VS ile merkezi bir kuyu kabı (60 x 15 mm) hazırlayın. İlk 6 dakikanın sonunda, kriyoprezokreserv edilecek oositleri VS çözeltisine aktarın ve mümkün olduğunca az ortam serbest bırakın. Oositleri VS'de 1 dakika bekletin ve ES fazlalığını gidermek için alttan kabın üstüne taşıyarak dikkatlice yıkayın.
  10. Kuluçka dakikasının bitiminden yaklaşık 10 s önce, kriyodevice'i mikroskop altına yerleştirin ve odağı siyah işarete (yani kriyodevice'in ucuna) ayarlayın. Oositleri kriyodevice üzerine minimum VS miktarı ile siyah işaretin yanına yerleştirin (Şekil 2A).
  11. Striptizci pipetini oositlerden uzaklaştırın ve VS ortamının fazlalığını çıkarın (Şekil 2B) böylece oositler ince bir orta tabaka ile kaplı kalır (Şekil 2C).
  12. Kriyodevice'i sıvı nitrojene hızla daldırarak, hava kabarcıklarını yüzeyinden çıkarmak için hızla sallayın. Kriyodevice'in koruyucu kapağını cımbızla tutun ve sıvı nitrojenle doldurun; daha sonra propilen şeritlerini sıvı nitrojende tutarken kriyodevice'i içine yerleştirin.
  13. Kriyodevice'i daha önce hastanın bilgileriyle etiketlenmiş bir visiotube'da saklayın. Laboratuvar sayfasını güncelleyin.

7. Oosit ısınması

  1. İşlemden yaklaşık 30 dakika önce, çözme çözeltisini (TS), seyreltme çözeltisini (DS) ve yıkama çözeltisini (WS) RT'ye (25-27 °C) ısıtın. İçeriğini karıştırmak için her şişeyi dikkatlice iki kez ters çevirin. Merkezi bir kuyu Petri kabına 1 mL TS yerleştirin ve prosedüre başlamadan önce en az 1 saat boyunca 37 °C'de ısıtın.
  2. Tüm plastik malzemeleri hastanın adı, kimliği ve çözüm türü ile etiketlenin. Bir tanıktan hastanın kriyodevice hakkındaki bilgilerini doğrulamasını isteyin.
  3. Isınacak her kriyodevice için, birinci kuyuda 200 μL DS ve ikinci ve üçüncülerde eşit miktarda WS (sırasıyla WS1 ve WS2 olarak adlandırılır) 6 kuyu plakası hazırlayın. Buharlaşmayı önlemek için kuyuların dışındaki alana fosfat tamponlu salin (PBS) veya steril su ekleyin.
  4. TS kabını inkübatörden çıkar ve mikroskop altına yerleştir. Mikroskobun odağını Petri kabının ortasına ayarlayın.
  5. Propilen şeritlerini sıvı nitrojende tutarken kriyodevice'in koruyucu kapağını dikkatlice bükün ve çıkarın. Kriyodevice sıvı nitrojenden TS'ye mümkün olduğunca çabuk aktarın ve sapma riskini önlayın ve geri sayımı başlatın (1 dk).
  6. Kriyodevice'in ucuna (yani kara lekeye) odaklanarak oositleri lokalize edin. Bir striptizci pipeti kullanarak, oositleri kriyodevice'den serbest bırakın.
    NOT: Oositleri kriyodevice'den aspire etmemeye çalışın; TS'ye geçene kadar üzerlerinde biraz medya bırakın.
  7. 170 μm çapında bir striptizci pipeti kullanarak, oositleri az miktarda TS ile DS'ye aktarın (bir degrade oluşturmak için) ve 3 dakika boyunca DS'de bırakın. Oositleri aynı şekilde WS1'e taşıyın ve 5 dakika bekletin. Son olarak, oositleri 1 dakika boyunca WS2'ye aktarın.
  8. Oositleri uygun bir önkoşulu IVF kültür ortamına aktarın ve intrasitoplazmik sperm enjeksiyonuna (ICSI) devam etmeden önce 1 saat kuluçkaya yatırın. Laboratuvar sayfasını güncelleyin.

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Sonuçlar

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Merkezdeki doğurganlık koruma programına genel bakış

12 yıllık bir süre boyunca (2008-2020), 285 kadın, toplanan olgun yumurtaların tüm kohortunun vitrifikasyonu gerektiren en az bir oosit alımı geçirdi. Bu kadınların çoğu (n=250) tek bir geri alma işleminden, 35'inden ise birden fazla geri alma işlemi yapıldı. Yumurta vitrifikasyonu için oosit alımının nedenleri 4 kategoride özetlenmiştir: tıbbi (kanser hariç), kanser, tıbbi olmayan ve diğerleri. Yumurta vitrifikasyonu için t...

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Tartışma

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Klinik hususlar

Yumurtalık dokusu kriyoprezervasyonu ve in vitro olgunlaşma gibi gelişmekte olan stratejiler araştırılmış olsa da, COS sonrası oosit vitrifikasyonu doğurganlığın korunması için altın standart tekniktir. Bu senaryoda, çoğu kanser hastası kanser tedavilerine başlamadan önce sadece bir yumurtalık döngüsünden yararlanabileceğinden, alınan ve kriyoprezerserve edilen oosit sayısı mümkün olan en kısa sürede en üst düzeye çıkarılmalıdır. Bu nedenle, uygun bir yumurtal...

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Açıklamalar

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Yazarların açıklayacak bir şeyi yok.

Malzemeler

Bu makalede kullanılan malzemelerin listesi
AdŞirketKatalog numarasıYorumlar
Collection
Equipment
Hot plateIVF TECH Lab
İşaretleyicileriSigma Aldrich
Laminer Akış BaşlığıIVF TECHGrade A hava akışı
StereomikroskopLeicaLeica M80
Termometre
Test tüpü Isıtıcı
Üçlü gaz inkübatörüPanasonicMCO-5M-PE02/CO2
Vakum Pompası AşçıK-MAR-5200
Sarf malzemeleri
CSCM (Continuos tek kültür tamamlandı) ortaFujifilm Irvine Scientific90165HSA Mineral Yağ ile desteklenmiş IVF kültür ortamı
Fujifilm Irvine Scientific9305
Yumurta Aspirasyon İğnesi (Tek lümen)CookK-OSN-1730-B-60
Primaria TabağıCorning353803Corning Primaria Tabağı 100x20 mm stil standart hücre kültürü kabı
Yuvarlak tabanlı tüplerFalcon352001Falcon 14ml Yuvarlak Alt Polistiren Geçmeli kapaklı test tüpü
Yuvarlak tabanlı tüplerFalcon352003Oosit toplama tüpleri/ Falcon 5ml 12x75 Yuvarlak Alt Polipropilen Geçmeli kapaklı test tüpü
Kauçuk AmpulSigma AldrichZ111589-12EA
Steril cam Pastör pipetleriHunter ScientificPPB150-100PLPipet Pastör Kotonat, 150mm, MEA e CE
Denudation
Equipment
CO2 inkübatörüEppendorfGalaxy 14S
Flexipet ayarlanabilir tutamak setiCookG18674Striptizci  tutucu
Gilson PipetmanGilson66003p20
k-Sistem İnkübatörCoopersurgicalG210Invicell
Lab İşaretleyicileriSigma Aldrich
Laminer Akış BaşlığıIVF TECHGrade A hava akışı
StereomikroskopLeicaLeica M80
Sarf malzemeleri
Biopur epTIPS RafEppendorf30075331Mikropipetler epTIPS Biopur 2-200 & mikro; l
İnsan Serumu AlbüminthermoFisher Scietific9988
HyaluronidazFujifilm Irvine Scientific90101HEPES tamponlu HTF IVF kültür kabında (60 x 15mm) 80 IU / mL hyaluronidaz enzimi
Corning353802 Primaria Şahin Tabağı 60X15mm TC Primaria standart hücre kültürü kabı
IVF çanağı Kayar kapaklı 4 oyuklu plakaThermoFisher Scietific176740Çoklu yemekler 4 kuyu (Nunc)
IVF Bir kuyu çanakFalcon353653Falcon 60 x 15 mm TC tedavi edilmiş merkez kuyu IVF
Embriyo kültürü için Mineral YağFujifilm Irvine Scientific9305
Modifiye HTF OrtamıFujifilm Irvine Scientific90126HEPES Tamponlu orta
Kauçuk AmpulSigma AldrichZ111589-12EA1 mL için pastör pipetleri
Steril cam Pasteur pipetleriHunter ScientificPPB150-100PLPipet Pastör Kotonat, 150 mm, MEA ve CE
sıyırma pipeti ve nbsp; uçlar (140 & mikro; m)CookK-FPIP-1140-10BS-6PIPET FLEXIPETS PER DENUDING
sıyırma pipet uçları (130 & mikro; m )CookK-FPIP-1130-10BS-7PIPETTE FLEXIPETS PER DENUDING
sıyırma pipet uçları (170 & mikro; m)K-FPIP-1170-10BS-5PIPET FLEXIPETS'İ DENUDING BAŞINA PIŞIRIN
güçlü>Vitrifikasyon
Ekipman<>< / u>
Elektronik Zamanlayıcı
Flexipet ayarlanabilir tutamak setiCookG18674Striptizci ve nbsp tutucu
Gilson PipetmanGilsonF123601p200
Laboratuvar İşaretleyicileriSigma Aldrich
Laminer Akış BaşlığıIVF TECH
Rafı için A Sınıfı Hava Akışı Paslanmaz KonteynerKitazatoVitrifikasyon için sıvı nitrojen kabı
Stereomikroskop LeicaLeica M80
Sarf Malzemeleri
Biopur epTIPS RafEppendorf30075331Mikropipetler epTIPS Biopur 2-200 & L
İnsan Serumu AlbüminiFujifilm Irvine Scientific9988
IVF kültür kabı (60 x 15 mm)Corning353802Corning Primaria Şahin Tabağı 60 x 15 mm TC Primaria standart hücre kültürü kabı
Tüp bebek kabı 6 kuyuluOosafeOOPW-SW02OOSAFE  SAMAN TUTUCULU KUYULU ÇANAK
Modifiye HTF Orta FujifilmIrvine Scientific90126HEPES Tamponlu orta
sıyırma pipet uçları (170 & mikro; m)PişirmeK-FPIP-1170-10BS-5PIPET FLEXIPETS BAŞINA DENUDING
Vitrifikasyon Dondurma kitiFujifilm Irvine Scientific90133-so2 Flakon ES (Dengeleme Solüsyonu, 2 x 1 mL) ve 2 Flakon VS (Vitrifikasyon Solüsyonu, 2 x 1 mL)
VitrifitCoopersurgical Origio42782001AVitriFit  Box
Warming
Equipment
Elektronik Zamanlayıcı
Flexipet ayarlanabilir tutamak setiCookG18674Striptizci  tutucu
Gilson PipetmanGilsonF123601p200
k-Sistem İnkübatörCoopersurgicalG210Invicell
Lab İşaretleyicileriSigma Aldrich
Laminer Akış BaşlığıIVF TECHGrade A hava akışı
Soğutma Rafı için Paslanmaz KonteynerKitazatoVitrifikasyon için sıvı nitrojen kabı
StereomikroskopLeica LeicaM80
Sarf Malzemeleri
Biopur epTIPS RafEppendorf30075331Mikropipetler epTIPS Biopur 2-200 & L
CSCM (Continuos tek kültür tamamlandı) ortamıFujifilm Irvine Scientific90165HSA ile desteklenmiş IVF kültür ortamı
IVF kültür kabı (60 x 15 mm)Corning353802Corning Primaria Şahin Tabağı 60X15mm TC Primaria standart hücre kültürü kabı
Tüp bebek kabı Kayar kapaklı 4 oyuklu plakaThermoFisher Scietific176740Çoklu Yemekler 4 kuyulu (Nunc)
Tüp bebek tabağı 6 kuyuluOosafeOOPW-SW02OOSAFE®   SAMAN TUTUCULU KUYU ÇANAK
Embriyo kültürü için Mineral YağFujifilm Irvine Scientific9305
SAtripping pipet uçları (300&mikro; m)K-FPIP-1300-10BS-5PIPET FLEXIPETS'I DENUDING BAŞINApişirin
Vitrifikasyon Çözdürme kitiFujifilm Irvine Scientific90137-so4 Flakon TS (Çözdürme Solüsyonu, 4 x 2 mL) + 1 Flakon DS (Seyreltme Solüsyonu, 1 x 2 mL) +1 Flakon WS (Yıkama Solüsyonu, 1 x 2 mL)
Embriyo kültürü için < Soğutma

Kaynaklar

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
  1. Cobo, A., Diaz, C. Clinical application of oocyte vitrification: a systematic review and meta-analysis of randomized controlled trials. Fertility and Sterility. 96 (2), 277-285 (2011).
  2. Rienzi, L., et al. Oocyte, embryo and blastocyst cryopreservation in ART: systematic review and meta-analysis comparing slow-freezing versus vitrification to produce evidence for the development of global guidance. Human Reproduction Update. 23 (2), 139-155 (2017).
  3. Nagy, Z. P., Anderson, R. E., Feinberg, E. C., Hayward, B., Mahony, M. C. The Human Oocyte Preservation Experience (HOPE) Registry: evaluation of cryopreservation techniques and oocyte source on outcomes. Reproductive Biology and Endocrinology. 15 (1), (2017).
  4. Practice Committees of American Society for Reproductive, M., & Society for Assisted Reproductive, T. Mature oocyte cryopreservation: a guideline. Fertility and Sterility. 99 (1), 37-43 (2013).
  5. Lee, S. J., et al. American Society of Clinical Oncology recommendations on fertility preservation in cancer patients. Journal of Clinical Oncology. 24 (18), 2917-2931 (2006).
  6. Nakayama, K., Ueno, N. T. American Society of Clinical Oncology recommendations on fertility preservation should be implemented regardless of disease status or previous treatments. Journal of Clinical Oncology. 24 (33), 5334-5335 (2006).
  7. Martinez, F. Update on fertility preservation from the Barcelona International Society for Fertility Preservation-ESHRE-ASRM 2015 expert meeting: indications, results and future perspectives. Human Reproduction. 32 (9), 1802-1811 (2017).
  8. Lantsberg, D., Fernando, S., Cohen, Y., Rombauts, L. The role of fertility preservation in women with endometriosis: a systematic review. Journal of Minimally Invasive Gynecology. 27 (2), 362-372 (2020).
  9. Anderson, R. A., et al. Cancer treatment and gonadal function: experimental and established strategies for fertility preservation in children and young adults. Lancet Diabetes & Endocrinology. 3 (7), 556-567 (2015).
  10. Lambertini, M., et al. Cancer and fertility preservation: international recommendations from an expert meeting. BMC Medicine. 14, 1(2016).
  11. Kim, S. J., Kim, S. K., Lee, J. R., Suh, C. S., Kim, S. H. Oocyte cryopreservation for fertility preservation in women with ovarian endometriosis. Reproductive Biomedicine Online. 40 (6), 827-834 (2020).
  12. Loren, A. W., et al. Fertility preservation for patients with cancer: American Society of Clinical Oncology clinical practice guideline update. Journal of Clinical Oncology. 31 (19), 2500-2510 (2013).
  13. Peccatori, F. A., et al. Cancer, pregnancy and fertility: ESMO Clinical Practice Guidelines for diagnosis, treatment and follow-up. Annals of Oncology. 24, Suppl 6 160-170 (2013).
  14. Dondorp, W. J., De Wert, G. M. Fertility preservation for healthy women: ethical aspects. Human Reproduction. 24 (8), 1779-1785 (2009).
  15. Cil, A. P., Bang, H., Oktay, K. Age-specific probability of live birth with oocyte cryopreservation: an individual patient data meta-analysis. Fertilility and Steriityl. 100 (2), 492-499 (2013).
  16. Ubaldi, F. M., et al. Advanced maternal age in IVF: still a challenge? The present and the future of its treatment. Frontiers in Endocrinology. 10, 94(2019).
  17. Cimadomo, D., et al. Impact of maternal age on oocyte and embryo competence. Frontiers in Endocrinology. 9, 327(2018).
  18. Cobo, A., et al. Oocyte vitrification as an efficient option for elective fertility preservation. Fertility and Sterility. 105 (3), 755-764 (2016).
  19. Devroey, P., Polyzos, N. P., Blockeel, C. An OHSS-Free Clinic by segmentation of IVF treatment. Human Reproduction. 26 (10), 2593-2597 (2011).
  20. Sonigo, C., et al. Impact of letrozole supplementation during ovarian stimulation for fertility preservation in breast cancer patients. European Journal of Obstetrics & Gynecology and Reproductive Biology X. 4, 100049(2019).
  21. Marklund, A., et al. Efficacy and safety of controlled ovarian stimulation using GnRH antagonist protocols for emergency fertility preservation in young women with breast cancer-a prospective nationwide Swedish multicenter study. Human Reproduction. 35 (4), 929-938 (2020).
  22. Kuwayama, M. Highly efficient vitrification for cryopreservation of human oocytes and embryos: the Cryotop method. Theriogenology. 67 (1), 73-80 (2007).
  23. Kuwayama, M., Vajta, G., Kato, O., Leibo, S. P. Highly efficient vitrification method for cryopreservation of human oocytes. Reproductive Biomedicine Online. 11 (3), 300-308 (2005).
  24. Bosch, E., et al. ESHRE guideline: ovarian stimulation for IVF/ICSI(dagger). Human Reproduction Open. 2020 (2), (2020).
  25. ESHRE Working Group on Ultrasound in ART. Recommendations for good practice in ultrasound: oocyte pick up(dagger). Human Reproduction Open. 2019 (4), 025(2019).
  26. Rienzi, L., et al. Failure mode and effects analysis of witnessing protocols for ensuring traceability during IVF. Reproductive Biomedicine Online. 31 (4), 516-522 (2015).
  27. Mazzilli, R., et al. Effect of the male factor on the clinical outcome of intracytoplasmic sperm injection combined with preimplantation aneuploidy testing: observational longitudinal cohort study of 1,219 consecutive cycles. Fertility and Sterility. 108 (6), 961-972 (2017).
  28. Polyzos, N. P., et al. Cumulative live birth rates according to the number of oocytes retrieved after the first ovarian stimulation for in vitro fertilization/intracytoplasmic sperm injection: a multicenter multinational analysis including approximately 15,000 women. Fertility and Steriityl. 110 (4), 661-670 (2018).
  29. Alteri, A., Pisaturo, V., Nogueira, D., D'Angelo, A. Elective egg freezing without medical indications. Acta Obstetricia et Gynecologica Scandinavica. 98 (5), 647-652 (2019).
  30. Mesen, T. B., Mersereau, J. E., Kane, J. B., Steiner, A. Z. Optimal timing for elective egg freezing. Fertility and Steriityl. 103 (6), 1551-1556 (2015).
  31. Doyle, J. O., et al. Successful elective and medically indicated oocyte vitrification and warming for autologous in vitro fertilization, with predicted birth probabilities for fertility preservation according to number of cryopreserved oocytes and age at retrieval. Fertility and Sterility. 105 (2), 459-466 (2016).
  32. Rienzi, L., et al. Significance of metaphase II human oocyte morphology on ICSI outcome. Fertility and Sterility. 90 (5), 1692-1700 (2008).
  33. Ubaldi, F. M., et al. Reduction of multiple pregnancies in the advanced maternal age population after implementation of an elective single embryo transfer policy coupled with enhanced embryo selection: pre- and post-intervention study. Human Reproduction. 30 (9), 2097-2106 (2015).
  34. Cakmak, H., Katz, A., Cedars, M. I., Rosen, M. P. Effective method for emergency fertility preservation: random-start controlled ovarian stimulation. Fertility and Sterility. 100 (6), 1673-1680 (2013).
  35. Moravek, M. B., et al. Long-term outcomes in cancer patients who did or did not pursue fertility preservation. Fertility and Sterility. 109 (2), 349-355 (2018).
  36. Vaiarelli, A., Venturella, R., Vizziello, D., Bulletti, F., Ubaldi, F. M. Dual ovarian stimulation and random start in assisted reproductive technologies: from ovarian biology to clinical application. Current Opinion in Obstetrics and Gynecology. 29 (3), 153-159 (2017).
  37. Vaiarelli, A., Cimadomo, D., Ubaldi, N., Rienzi, L., Ubaldi, F. M. What is new in the management of poor ovarian response in IVF. Current Opinion in Obstetrics and Gynecology. 30 (3), 155-162 (2018).
  38. Venturella, R., et al. State of the art and emerging drug therapies for female infertility. Gynecological Endocrinology. 35 (10), 835-841 (2019).
  39. Venturella, R., et al. A modern approach to the management of candidates for assisted reproductive technology procedures. Minerva Ginecologica. 70 (1), 69-83 (2018).
  40. Ferreiro, E., de Uralde, B. L., Abreu, R., Garcia-Velasco, J. A., Munoz, E. Aromatase inhibitors for ovarian stimulation in patients with breast cancer. Current Drug Targets. 21 (9), 910-921 (2020).
  41. Oktay, K., et al. Letrozole reduces estrogen and gonadotropin exposure in women with breast cancer undergoing ovarian stimulation before chemotherapy. Journal of Clinical Endocrinology and Metabolism. 91 (10), 3885-3890 (2006).
  42. Meirow, D., et al. Tamoxifen co-administration during controlled ovarian hyperstimulation for in vitro fertilization in breast cancer patients increases the safety of fertility-preservation treatment strategies. Fertility and Steriity. 102 (2), 488-495 (2014).
  43. Friedler, S., Koc, O., Gidoni, Y., Raziel, A., Ron-El, R. Ovarian response to stimulation for fertility preservation in women with malignant disease: a systematic review and meta-analysis. Fertility and Steriity. 97 (1), 125-133 (2012).
  44. Tsampras, N., Gould, D., Fitzgerald, C. T. Double ovarian stimulation (DuoStim) protocol for fertility preservation in female oncology patients. Human Fertility. 20 (4), 248-253 (2017).
  45. Vaiarelli, A., et al. Double stimulation in the same ovarian cycle (DuoStim) to maximize the number of oocytes retrieved from poor prognosis patients: a multicenter experience and SWOT analysis. Frontiers in Endocrinology. 9, 317(2018).
  46. Cimadomo, D., et al. Luteal phase anovulatory follicles result in the production of competent oocytes: intra-patient paired case-control study comparing follicular versus luteal phase stimulations in the same ovarian cycle. Human Reproduction. 33 (8), 1442-1448 (2018).
  47. Rienzi, L., Ubaldi, F. M. Oocyte versus embryo cryopreservation for fertility preservation in cancer patients: guaranteeing a women's autonomy. Journal of Assisted Reproduction and Genetics. 32 (8), 1195-1196 (2015).
  48. Oktay, K., Harvey, B. E., Loren, A. W. Fertility preservation in patients with cancer: ASCO clinical practice guideline update summary. JCO Oncology Practice. 14 (6), 381-385 (2018).
  49. Iussig, B., et al. A brief history of oocyte cryopreservation: Arguments and facts. Acta Obstetricia et Gynecologica Scandinavica. 98 (5), 550-558 (2019).
  50. Best, B. P. Cryoprotectant toxicity: facts, issues, and questions. Rejuvenation Research. 18 (5), 422-436 (2015).
  51. Fuller, B., Paynter, S. Fundamentals of cryobiology in reproductive medicine. Reproductive Biomedicine Online. 9 (6), 680-691 (2004).
  52. Konc, J., Kanyo, K., Kriston, R., Somoskoi, B., Cseh, S. Cryopreservation of embryos and oocytes in human assisted reproduction. BioMed Research International. 2014, 307268(2014).
  53. Erstad, B. L. Osmolality and osmolarity: narrowing the terminology gap. Pharmacotherapy. 23 (9), 1085-1086 (2003).
  54. Sunde, A., et al. Time to take human embryo culture seriously. Human Reproduction. 31 (10), 2174-2182 (2016).
  55. Swain, J. E., Cabrera, L., Xu, X., Smith, G. D. Microdrop preparation factors influence culture-media osmolality, which can impair mouse embryo preimplantation development. Reproductive Biomedicine Online. 24 (2), 142-147 (2012).
  56. Wale, P. L., Gardner, D. K. The effects of chemical and physical factors on mammalian embryo culture and their importance for the practice of assisted human reproduction. Human Reproduction Update. 22 (1), 2-22 (2016).
  57. Seki, S., Mazur, P. The dominance of warming rate over cooling rate in the survival of mouse oocytes subjected to a vitrification procedure. Cryobiology. 59 (1), 75-82 (2009).
  58. Karlsson, J. O. A theoretical model of intracellular devitrification. Cryobiology. 42 (3), 154-169 (2001).
  59. Jin, B., et al. Equilibrium vitrification of mouse embryos. Biololgy of Reproduction. 82 (2), 444-450 (2010).
  60. Mazur, P. Equilibrium, quasi-equilibrium, and nonequilibrium freezing of mammalian embryos. Cell Biophysics. 17 (1), 53-92 (1990).
  61. Parmegiani, L., et al. "Universal Warming" protocol for vitrified oocytes to streamline cell exchange for transnational donation programs: a multi-center study. Journal of Assisted Reproduction and Genetics. 37 (6), 1379-1385 (2020).
  62. Vajta, G., Rienzi, L., Ubaldi, F. M. Open versus closed systems for vitrification of human oocytes and embryos. Reproductive Biomedicine Online. 30 (4), 325-333 (2015).
  63. Cai, H., et al. Open versus closed vitrification system of human oocytes and embryos: a systematic review and meta-analysis of embryologic and clinical outcomes. Reproductive Biology & Endocrinology. 16 (1), 123(2018).
  64. Parmegiani, L., et al. Sterilization of liquid nitrogen with ultraviolet irradiation for safe vitrification of human oocytes or embryos. Fertility and Sterility. 94 (4), 1525-1528 (2010).
  65. Parmegiani, L., et al. Efficiency of aseptic open vitrification and hermetical cryostorage of human oocytes. Reproductive Biomedicine Online. 23 (4), 505-512 (2011).
  66. Cobo, A., et al. Storage of human oocytes in the vapor phase of nitrogen. Fertility and Sterility. 94 (5), 1903-1907 (2010).
  67. Eum, J. H., et al. Long-term liquid nitrogen vapor storage of mouse embryos cryopreserved using vitrification or slow cooling. Fertility and Sterility. 91 (5), 1928-1932 (2009).
  68. Fabozzi, G., et al. Which key performance indicators are most effective in evaluating and managing an in vitro fertilization laboratory. Fertility and Sterility. 114 (1), 9-15 (2020).
  69. Dessolle, L., et al. Learning curve of vitrification assessed by cumulative summation test for learning curve (LC-CUSUM). Fertility and Sterility. 92 (3), 943-945 (2009).
  70. Alpha Scientists In Reproductive Medicine. The Alpha consensus meeting on cryopreservation key performance indicators and benchmarks: proceedings of an expert meeting. Reproductive Biomedicine Online. 25 (2), 146-167 (2012).
  71. Edgar, D. H., Gook, D. A. A critical appraisal of cryopreservation (slow cooling versus vitrification) of human oocytes and embryos. Human Reproduction Update. 18 (5), 536-554 (2012).
  72. Edgar, D. H., Archer, J., Bourne, H. The application and impact of cryopreservation of early cleavage stage embryos in assisted reproduction. Human Fertility. 8 (4), 225-230 (2005).

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Yeniden basım ve izinler

Bu JoVE makalesinin metnini veya şekillerini yeniden kullanmak için izin iste

İzin iste

Etiketler

Oosit Is tmaKriyoprotektan MaruziyetiOvaryen Rezerv De erlendirmesiStim lasyon ProtokolOosit ToplamaDen dasyon lemiVitrifikasyon Sol syonuzme Sol syonu

İlgili makaleler