Yenidoğan Preterm Tavşanda Transkutanöz İntratrakeal İlaç Dağıtımının Basitleştirilmesi

Özet

Transkutanöz intratrakeal enjeksiyon, spontan solunum sırasında etkili intrapulmoner ilaç verilmesine izin verir. Tekli ve çoklu enjeksiyonlar, sağkalım üzerinde hiçbir etkisi olmadan iyi tolere edilir. Tekniğin uygulanması basittir ve maddelerin akciğer gelişimi üzerindeki etkisini ve yenidoğan tavşanlarda akciğer hasarının önlenmesini inceleyebilir.

Özet

İntratrakeal (IT) ilaç dağıtımı, farmasötik maddelerin akciğere doğrudan verilmesine izin vererek potansiyel pulmoner faydayı en üst düzeye çıkarır ve sistemik ilaç maruziyetini en aza indirir. Transkutanöz teknik basittir ve doğumdan kısa bir süre sonra prematüre doğan tavşanların akciğerine maddelerin IT ile verilmesine izin verir. Yenidoğan yavrular, boynu uzatılmış olarak sırtüstü pozisyona getirilmeden önce inhale Isofluran ile uyuşturulur. Larinks, 26 gauge (G) kateterin trakeaya transkutanöz yerleştirilmesinden önce tanımlanır ve stabilize edilir. Trakeanın kateterizasyonunu takiben, bir Hamilton şırıngaya bağlı 30 G'lık künt bir iğne IT kateterine sokulur ve spontan solunum sırasında trakeaya kesin bir hacim vermek için kullanılır. IT enjeksiyonu tamamlandıktan sonra iğne ve kateter geri çekilir ve yavrunun anesteziden kurtulmasına izin verilir. Transkutanöz IT enjeksiyonu, enjekte edilen maddenin büyük bir bölümünü akciğere iletir ve çoğunluğu müdahaleden 3 saat sonra akciğerde kalır. Enjeksiyonlar doğum gününden itibaren iyi tolere edilir ve sağkalımı etkilemeden art arda birkaç gün boyunca tekrarlanabilir. Bu teknik, farmasötik ajanların akciğer gelişimi üzerindeki etkisini araştırmak ve preterm tavşanlarda neonatal akciğer hasarının önlenmesinde kullanılabilir.

Giriş

Prematüre doğumu takiben kronik neonatal akciğer hastalığı (KNLD) bebeklerin önemli bir kısmında görülmeye devam etmektedir¹. İyileşmiş modern yenidoğan bakımı, sağkalımı önemli ölçüde artırmış ve erken doğumu takiben önemli komplikasyonların çoğunu azaltmıştır. Nörolojik, gastrointestinal ve oftalmolojik komplikasyonlar azalmış olsa da, solunum komplikasyonları son 2 yılda büyük ölçüde değişmeden kalmıştır ve 28. gebelik haftasından önce doğan her iki bebekten biri akciğer hastalığı geliştirmiştir.

Prematürite, inflamasyon, oksidatif hasar ve ventilatörle ilişkili yaralanmaların tümü CNLD'nin patofizyolojisinde ve erken doğumu takiben kötü solunum sonuçlarında rol oynar ^2,3,4. Modern yenidoğan bakımındaki önemli ilerlemelere rağmen, CNLD^5,6'nın gelişimini tedavi etmek veya önlemek için sınırlı etkili tedavi mevcuttur.

CNLD'yi önlemek ve tedavi etmek için tedavi geliştirmek için yeni yaklaşımlar ve müdahaleler gerekmektedir. İntrapulmoner ilaç dağıtımı, ilaçları akciğere vermek için çekici bir müdahaledir ve yenidoğanlarda solunum yolu hastalığının seyrini değiştirebilir. İntrapulmoner ilaç tedavisi, aktif ajanların akciğere doğrudan verilmesi avantajına sahiptir, böylece ilacın hedef dışı organlarda birikimini en aza indirir ^7,8 ve potansiyel olarak sistemik yan etkileri sınırlar. 2 yılı aşkın bir süredir intrapulmoner yüzey aktif madde replasmanına rağmen, yenidoğan solunum sonuçlarını iyileştirmek için ek intrapulmoner ilaç doğrulanmamıştır. Son zamanlarda, mekanik ventilasyonlu bebeklerde erken doğumu takiben pulmoner sonuçları iyileştirmek için budesonid-sürfaktan kombinasyon tedavisi tanımlanmıştır ^9,10. Bununla birlikte, IT ilaç tedavisinin fonksiyonel ve yapısal etkileri hakkında çok şey bilinmemektedir, az sayıda yeni tedavi tanımlanmıştır ve yenidoğan döneminde intratrakeal ilaç dağıtımının değeri belirsizliğini korumaktadır. Potansiyel ilaçları tanımlamak ve CNLD için çok ihtiyaç duyulan tedavinin geliştirilmesine yardımcı olmak için hayvan modelleri gereklidir.

Yenidoğan akciğer hastalığını inceleyen hayvan çalışmaları en sık sıçanlar ve fareler gibi küçük hayvan modellerinde gerçekleştirilir 11,12,13. Tavşan, olgunlaşmamış insan akciğerinin yapısını ve işlevini daha yakından taklit etmek için erken doğumun ek avantajına sahiptir¹⁴. Preterm tavşanın bir sınırlaması, intrapulmoner müdahalelerin uygulanmasına izin vermek için hava yoluna erişimin zorluğudur. Erişkin tavşan ve kemirgen modelleri trans-oral endotrakeal entübasyona izin verirken, bu teknikler küçük boyutları ve üst solunum yolunun benzersiz anatomisi nedeniyle yenidoğan yavrularda zordur^15,16. Yenidoğan tavşan yavrularında ilaçların verilmesi için trakeaya erişime izin vermek için alternatif yaklaşımlar gereklidir.

Bu yazıda, trakeal entübasyon ve ilaç dağıtımına izin vermek için transkutanöz iğne trakeostomisinin kullanımı anlatılmıştır.

Protokol

IT enjeksiyonu içeren tüm deneyler için KU Leuven Hayvan Etik Komitesi'nden izin alınmış ve KU Leuven'in tüm hayvan refahı ve bakımı yönergelerine uyulmuştur.

1. Hazırlık

1. BT enjeksiyonunu tamamlamak için gerekli tüm malzemeleri toplayın (Tablo 1).
2. Araştırmacının İzofluran'a maruz kalmasını önlemek için anestezik odasının egzozunun açık olduğundan ve bir çöpçüye bağlı olduğundan emin olun.

2. Yavruların teslimatı

NOT: Tavşan yavruları (Yeni Zelanda beyaz-Flaman dev melezi), daha önce grubumuz¹⁷ tarafından tarif edildiği gibi akciğer gelişiminin sakküler fazı sırasında 28. gebelik gününde (31 günlük dönem) histerotomi ile doğurtuldu. Yavrular, erken doğumdan sonra akciğer gelişimini incelemek için normoksiye veya akut akciğer hasarını incelemek için hiperoksiye yerleştirilebilir.

1. 1 mL ketamin (100 mg / mL) ve 1 mL ksilazin (% 2) intramüsküler enjeksiyonu ile sedat barajı, 2 mL şırınga ve 26 G iğne ile kuadrisepslere verildi. Derinlemesine sakinleştirildikten sonra, barajı ameliyat masasına sırtüstü pozisyonda yerleştirin. Yeterli anestezi, derin yavaş solunum, azalmış çene tonusu ve kulak sıkışmasına yanıt verilmemesi ile doğrulanır.
2. Orta karın bölgesini elektrikli bir tıraş makinesi ile tıraş edin ve cerrahi alanı iyot bazlı solüsyonla sterilize edin.
3. Kulağın lateral damarında verilen 1 mL T61 intravenöz bolus ile barajı ötenazi yapın.
4. Hemen deriden, kas kılıfından ve karın kaslarından karın boşluğuna orta hat abdominal bir kesi yapın.
5. Bikornate uterusu ortaya çıkarmak için insizyonu uzatın.
6. Hemen bir makas kullanarak rahimde bir kesi yapın ve yavruların her birini histerotomi yoluyla doğurun. Yavruların hızlı bir şekilde teslim edilmesi, hayatta kalmasını sağlamak için çok önemlidir.
7. Teslimatta, her yavruyu bir kağıt havlu kullanarak kurulayın, bu yavruyu hem kurutur hem de uyarır.
8. Kurutulmuş yavruyu ısıtılmış (36 °C), nemlendirilmiş (%50 bağıl nem) kuluçka makinesine yerleştirin.
9. İyileşme ve rahim dışı ortama geçiş için 1 saat süre tanıyın. Hayatta kalan tüm yavrular önceden belirlenmiş tedavi gruplarına randomize edilir.

3. Anestezi

1. İndüksiyon odasını İzofluran ile doldurun (% 2.5, 2.5 minimum alveolar konsantrasyon (MAC), 2 L / dak)
2. Yeterli anestezi seviyesi elde edilene kadar yavruları indüksiyon odasına yerleştirin (spontan hareketin azalması, ağrılı uyaranlara karşı ayak refleksinin azalması, solunum hızının azalması).
   NOT: Tavşan yavrusunun gözleri 28. gebelik gününde (bu deneyde olduğu gibi) açık değildir ve bu nedenle korneanın kuruluğunu önlemek için topikal göz merhemine gerek yoktur. IT enjeksiyonları yaşamın ilerleyen dönemlerinde yapılırsa, açık gözlere konu merhemi uygulanmalıdır.

4. İntratrakeal enjeksiyon için konumlandırma

1. Yavruyu montaj aşamasına yerleştirin, boynu uzatılmış olarak sırtüstü yatırın ve sürekli anestezi sağlamak için burun sekonuna sokun.
2. Pençeleri montaj aşamasına bantlamak için esnemeyen yapışkan bant kullanarak yavrunun pençelerini kısıtlayın.
3. Torasik girişten daha üst trakeada koyu deri altı orta hat yapısı olarak görünen trakeal ve laringeal kıkırdak halkalarını tanımlayın.
4. Cildi trakea üzerinde alkol solüsyonu ile sterilize edin (% 80 etanol solüsyonu)
5. Operatörün baskın olmayan eliyle gırtlağı Allis forseps ile kavrayın ve sabitleyin.

5. İntratrakeal enjeksiyonun yapılması ( Şekil 1)

1. Trakeayı Allis forseps ile stabilize ederken 26 G intravenöz kanül (en iyi baskın el ile yapılır) ile trakeayı kanül etmeye hazırlanın.
   NOT: İşlemin sterilliğini sağlamak için, her yavru için yeni bir steril kanül kullanın.
2. Tiroid kıkırdağı seviyesindeki cilde 45° açıyla kanül ile cilde nüfuz edin.
3. Trakea kanül olana kadar kanülü ve stileyi yavaşça ilerletin, iğne trakeaya girerken ve hava yolu lümenine girerken ince bir "verme" hissedilir.
4. Stile ile kanül trakeanın lümenine girdikten sonra, stileyi ilerletmeyi bırakın ve stileyi sabit tutarken plastik kanülü stile üzerinden soluk borusuna ilerletin. Plastik kanülü >10 mm ilerletmeyin veya sol veya sağ ana bronşları seçici olarak entübe etmeyin.
5. Plastik kanül kılıfını trakeada bırakarak stileyi kanülden çekin.
6. Bir Hamilton şırıngası ve 30 G künt iğne kullanarak kanüle az miktarda normal salin (% 0.9 NaCl, 5 μL) enjekte ederek kanülün BT konumunu doğrulayın. Salin kanüle enjekte edildikten sonra, Hamilton şırıngasını ve iğnesini çıkarın. Plastik kanül içindeki hava-sıvı seviyesini gözlemleyin; Spontan solunum ile kanül içindeki hava-su seviyesinin hareketi, kanülün hava yolu içindeki yerleşimini doğrular.
7. 30 G künt uçlu iğneyi kullanarak gerekli miktarda maddeyi Hamilton şırıngasına çekin.
8. 30 G künt uçlu iğneyi (Hamilton şırıngasına takılı) plastik kanüle (trakeada) sokun ve maddeyi 5-10 saniye boyunca yavaşça trakeaya enjekte edin.
9. Hamilton şırınga iğnesini plastik kanülden ve plastik kanülü soluk borusundan çıkarın.

6. Prosedürden kurtarma

1. Yavruyu montaj aşamasından kurtarın ve yavrunun dokunsal stimülasyonu ile solunumu uyarın.
2. Yavruyu, ısıtılmış (36 °C), nemlendirilmiş (%50 bağıl nem) kuluçka makinesinde anestezi uygulanmamış yavru kafesinden ayrı bir kafese geri koyun; Anesteziden yeterince iyileşene ve sternal yaslanmayı koruyabilene kadar 30 ° baş yukarı pozisyonda yerleştirin. Anesteziden kurtulana kadar yavruları gözetimsiz bırakmayın.

Sonuçlar

Tek ve tekrarlanan günlük transkutanöz IT enjeksiyonları tekniğinin temsili sonuçları yayınlanmıştır ve sağkalımın IT enjeksiyonundan (tekli veya çoklu enjeksiyonlar) etkilenmediğini ve plasebo (salin) ile IT enjeksiyonunun kontrollere kıyasla akciğer fonksiyonunu veya akciğer yapısını değiştirmediğini göstermiştir¹⁸.

Ek olarak, elektroaktif bir izleyici (2-deoksi-2-[18F]floro-D-glukoz (FDG)) ve pozitron emisyon tomografisi/bilgisayarlı tomografi (PET-CT) kullanarak nor...

Tartışma

BT enjeksiyonunu başarılı bir şekilde gerçekleştirmek için birkaç kritik adım izlenmelidir. Doğru yapıldığında, transkutanöz IT enjeksiyon yöntemi, preterm tavşanda etkili ve güvenilir intrapulmoner ilaç verilmesine izin verir. Yeni doğan yavrular kolayca hipotermik hale geldiğinden sıcaklık kontrolü önemlidir ve bu da hayatta kalmayı olumsuz yönde etkileyebilir. Yavruları indüksiyon odasına yerleştirmeden önce, normotermik koşulları korumak için sıcaklık kontrolü sağlanmalıdır. İndüksiy...

Malzemeler

Bu makalede kullanılan malzemelerin listesi

Ad	Şirket	Katalog numarası	Yorumlar
Anestezi
Anestezi			1
Oksijen beslemeli			1
İzofluran (Iso-Vet; 1000 mg/g)	Dechra Veterinerlik Ürünleri NV, Belçika		2 litre/dakikada %2
Egzoz ve süpürücülü pleksiglas indüksiyon odası	Evde inşa edilmiş		1
< güçlü > Enjeksiyon için konumlandırma< / güçlü >
Montaj aşaması	Evde inşa edilmiş (esnek konumlandırmaya		1
Anestezik devreye			1
Çöpçü sistemi			1
Uzuvları tutmak için bant	Herhangi		1 rulo
intratrakeal enjeksiyon
Allis doku forseps			1
19 mm uzunluğunda 26 gauge kateter	BD Biosciences	391349	1
Hamilton şırınga (10 & mikro; l 20 mm künt 30 gauge iğne ile	Hamilton Company	7638-01	1
Protokole göre			edilen farmasötik madde
Salin (% 0.9 NaCl)			5 ve mikro; Hayvan başına l
Hayvan barınağı
Nem ve sıcaklık kontrollü kuluçka	Okolab Srl. Özel yapım kafes kuluçka makinesi. Alternatif olarak, şirket içi kafes inkübatörleri kullanılabilir

sırasında soğumayı önlemek için mat ısıtma izofluran buharlaştırıcı izin vermek için strafordan yapılmıştır bağlı burun konisi tercih makinesi