Yöntem makalesi

Fare Hindlimb Lazer Doppler Perfüzyon Görüntüleme

DOI:

10.3791/62012

⸱

18 Nisan 2021

 , 
1Division of Vascular Surgery, University of Washington, 2VA Puget Sound Health Care System

Bu makalede

Özet

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Burada, fare arkalığındaki kan akışını ölçmek için Lazer Doppler perfüzyon görüntüleme tekniğini ve gerekli kontrolleri gösteren bir protokol sunuyoruz.

Özet

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Kan akışı iyileşmesi deneysel hindlimb iskemi veya iskemi-reperfüzyondan sonra kritik bir sonuç ölçüsüdür. Lazer Doppler perfüzyon görüntüleme (LDPI), kan akışı iyileşmesini değerlendirmek için yaygın, noninvaziv, tekrarlanabilir bir yöntemdir. Teknik, örneklenen dokudaki genel kan akışını, bir lazerin hareketli kırmızı kan hücrelerine çarpması sonucu ortaya çıkan frekanstaki Doppler kaymasından hesaplar. Ölçümler rastgele perfüzyon üniteleri ile ifade edilir, bu nedenle bacak üzerinde müdahale edilmeyen kontrallateral genellikle ölçümleri kontrol etmeye yardımcı olmak için kullanılır. Ölçüm derinliği 0,3-1 mm aralığındadır; hindlimb iskemi için bu, dermal perfüzyonin değerlendirildiği anlamına gelir. Dermal perfüzyon çeşitli faktörlere bağlıdır - en önemlisi cilt sıcaklığı ve anestezik ajan, güvenilir okumalarla sonuçlanacak şekilde dikkatlice kontrol edilmelidir. Ayrıca, saç ve cilt pigmentasyonu lazerin dermis'e ulaşma veya nüfuz etme yeteneğini değiştirebilir. Bu makalede, fare arkalığındaki LDPI tekniği göstermektedir.

Giriş

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Yetersiz yara iyileşmesi ile cilt ülserasyon, insan hastalarda amputasyonların önde gelen bir nedenidir1. Yeterli yara iyileşmesi, periferik arteriyel hastalığı olan hastalarda tehlikeye giren sağlam cildi korumak için gerekenden daha yüksek arteriyel perfüzyon gerektirir2,3,4. Diğer birkaç romatolojik durum ve diyabet de yaraları iyileştirmek için rahatsız ve yetersiz cilt mikroserkülasyonuna yol açabilir5,6. Birçok diyabetik hastada eşlik eden periferik arteriyel hastalık vardır ve bu da onları özellikle amputasyon riskiyle karşı karşıya bırakarak. Lazer Doppler perfüzyon görüntüleme (LDPI), klinik durumlarda cilt mikrosirkülasyonunu değerlendirmek için ve deneysel hindlimb iskemi, iskemi-reperfüzyon ve mikrocerrahi kapaklar7'densonra kan akışını ve kan akışı iyileşmesini değerlendirmek için araştırma durumlarında kullanılır.

LDPI sistemi, ilgi çekici bir bölge üzerinde hareket etmek için bir tarama aynası tarafından saptırılan düşük güçlü bir lazer ışını yansıtır. Bu, akış dektiyometrisiprobu 8ile doğrudan temas halinde olan küçük doku alanı için perfüzyon ölçümü sağlayan Lazer Doppler akış debimetrisinden farklıdır. Lazer ışını mikrovaskültürdeki hareketli kanla etkileşime girdiğinde, tarayıcı tarafından foto algılanan ve rastgele perfüzyon ünitelerine dönüştürülen bir Doppler frekans değişimine uğrar. LDPI ışık tabanlı bir teknik olduğundan, penetrasyon derinliği açısından 0,3-1 mm ile sınırlıdır, yani çoğunlukla dermal perfüzyon7. Dermal akış cilt sıcaklığı ve çeşitli anestezik ajanlardan etkilenebilecek sempatik sinir sistemi ile değiştirilebilir9. Optik lazerden yapılan ölçümler de ortam aydınlatma koşullarından, cilt pigmentasyonundan etkilenir ve aşırı kürk veya saç7ile engellenebilir.

LDPI, iskemi sonrası perfüzyon iyileşmesini izlemek için en sık kullanılan araştırma tekniğidir, çünkü invaziv değildir, kontrast yönetimi gerektirmez ve birden fazla hayvanda veri toplanmasına izin vermek için hızlı tarama sürelerine sahiptir. Bu, terapötik arteriogenez veya anjiogenez amaçlayan tedavilerin küçük hayvan modellerinde etkili olup olmadığını belirlemeye yardımcı olmak için idealdir. LDPI ile ölçülen hindlimb iskemi sonrası kan akışıiyileşmesi,Microfil döküm veya mikro-CT10, 11gibi diğer yollarla değerlendirildiğinde kollateral arter gelişimi ile iyiilişkilidir. Bu protokolün amacı, LDPI kullanılarak hindlimb perfüzyonunun değerlendirilmesini göstermektir.

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Protokol

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Hayvan deneyleri, Washington Üniversitesi Kurumsal Hayvan Bakım ve Kullanım Komitesi tarafından onaylanan bir protokole göre gerçekleştirildi.

1. Tarayıcı hazırlığı

  1. Taranan nesneye olan mesafe yaklaşık 30 cm olacak şekilde tarayıcı yüksekliğini ayarlayın.
  2. Görüntüleyiciyi açın ve ilişkili yazılımı başlatın.
  3. Ölçüm programını açın. Yazılım tarayıcıyla doğru iletişim kuruyorsa, kızılötesi lazer açma uyarısı görünecektir.
  4. Makineyi üretici tarafından sağlanan standartlarla kalibre edin (videoda gösterilmez ve kullanılan belirli makine modeline bağlı olacaktır).
  5. Tarayıcı ayarlarını, odadaki arka plan malzemesi ve aydınlatma kurulumuna uygun olacak şekilde ayarlayın.
    1. Kazanç düzeylerini ayarlayın DC FLUX ve CONC, üreticinin talimatlarına göre (videoda gösterilmez).
    2. Lazer ışınını siyah arka plan malzemesine doğrultarak Arka Plan Eşiğini ayarlayın ve Otomatik BK Kümesi 'nebasın.

2. Fare ön tarama hazırlığı

  1. Atık gazın uygun şekilde atılması ile izofluran indüksiyon odasını kurun.
    NOT: İndüksiyon odasını bir ısıtma yastığına yerleştirmek, anestezi indüksiyonu sırasında fare sıcaklık kaybını önlemeye yardımcı olacaktır.
  2. Tarama alanına nonreflektif bir yüzeyin altına yerleştirilen homeotermik battaniyeyi açın (bu durumda siyah bir neopren kumaş). Homeotermik battaniyeyi 37 °C vücut sıcaklığını koruyacak şekilde ayarlayın.
  3. Homeotermik battaniye ve yağlayıcı için sıcaklık probunu yerleştirmeye hazır olacak şekilde konumlandırın.
  4. Anestezi maskesini ve çöp atma sistemini tarama alanına yerleştirin.
  5. Fareyi bir izofluran buharlaştırıcı ile uyuşturun. Oksijen oranını 1 L/dk akışa ayarlayın ve anestezi indüksiyonu için izoflurane%4 olarak ayarlayın. Anestezi indüksiyon odasına akışı açın ve fare solunum hızı yavaşlar. Fare sağ refleksini kaybettiğinde yeterli anestezi elde edilir.
  6. Fareyi ekli atık gaz leş yiyici ile anestezik bir maskeye / burun konisine aktarın ve izofluranları% 1,5'e ayarlayın.
    NOT: Bu anestezi seviyesi genellikle tarama sırasında fareyi nispeten hareketsiz tutmak için yeterlidir, ancak cerrahi anestezi seviyeleri sağlamak için tasarlanmamıştır, bu nedenle anestezi derinliği kontrol edilir. İzofluran seviyesinin değiştirilmesi kalp atışı, solunum ve dermal perfüzyonda değişikliklere neden olur, bu nedenle herhangi bir zaman deneyi boyunca ve tüm deneysel denekler için tutarlı bir yüzde kullanılmalıdır. Ketamin ksilazinin IP enjeksiyonu gibi alternatif anestezi teknikleri de kullanılabilir, ancak farklı anestezikler dermal perfüzyonu farklı etkilediği için her zaman ders çalışması boyunca aynı anestezi tekniği kullanılmalıdır.
  7. (Tarama alanına bağlı olarak isteğe bağlıdır) Taranması planlanan ilgi alanı kürkle kaplıysa, saçı ilgi çekici bölgeden çıkarmak için küçük bir elektrikli düzeltici veya tüy döken krem kullanın.
    NOT: Depilatory krem tamamen çıkarılmalı ve fare derisi taramadan önce kurutulmalıdır.
  8. Fareyi homeotermik battaniyeyi kaplayan siyah nonreflektif yüzeye uygun tarama konumuna getirin ve her iki arka ucun da denge ve tarama boyunca ısı kaynağında kaldığını onaylayın (Şekil 1).
    NOT: Sıcaklıktaki bölgesel değişimi önlemek için her iki ayağın da homeotermik battaniye üzerinde tutulması önemlidir.
  9. Homeotermik battaniye ile ilişkili yağlanmış rektal sıcaklık probsunu yerleştirin.
  10. Fare sıcaklığını istenen tarama sıcaklığına (37 °C) dengelayın; yaklaşık 5-10 dakika.
  11. Üst menüden veya tarayıcı kurulum simgesinden erişilebilen Tarayıcı Kurulumu'nu seçin. X-Y koordinatlarını ilgi çekici bölgeye uyacak şekilde değiştirerek tarama alanını ayarlayın. Tarama hızı tarama çözünürlüğüne bağlı olacaktır. Daha yüksek çözünürlük, daha uzun tarama süreleri sağlar. Anatomik perfüzyona odaklanan daha yüksek çözünürlüğün aksine, küresel perfüzyona odaklanan tekrar tarama için 4 ms/ piksel tarama hızı yeterlidir.
    NOT: Araştırmacı gelişmekte olan kollateral dolaşımı doğrudan incelemeye çalışıyorsa (en iyi şekilde cilde daha yakın olduğu ventral uyluk ve baldırda en iyi şekilde görüntülenmiştir) daha yüksek çözünürlük ve tek tarama düşünülmelidir. Fare ayak takımının uç organına küresel perfüzyonu değerlendirirken daha düşük çözünürlükte/hızda (örneğin, 4 ms/piksel) tekrarlanan tarama yeterlidir. Videoda gösterilen yazılım, yeniden başlatıldığında tarama alanı, hız ve çözünürlük için daha önce kullanılan şablonu otomatik olarak yükler veya çeşitli denemeler için farklı ilgi alanları kullanılıyorsa depolanan bir dosyadan alınabilir.
  12. Yineleme taramaları yapıyorsanız, Yineleme ve Satır Taraması sekmesini seçin. Tarama sayısı (bu durumda 3 tarama) ve yineleme aralığı değiştirilebilir. Yineleme aralığı için en az süre, tarama alanı ve tarama çözünürlüğü ile belirlenen kutunun sağındaki gri alan içinde gösterilen tahmini tarama süresi olacaktır. Birkaç saniye eklemek, kullanıcının taramalar arasında gerekirse fareyi duraklatmasını ve yeniden konumlandırmasını sağlar.

3. Tarama

  1. Görüntü Taraması sekmesini seçin ve İşaretle düğmesini seçin. Lazer tarama alanının ana hatlarını belirlemek için hareket edecek. Taranacak hedef işaretli alan içinde olacak şekilde fare konumunu ayarlayın.
    NOT: Ayak takımı veya ayak takımı ve baldır taraması için, uzatılmış arkalıklarla eğilimli konumlandırma, supine konumlandırmaya göre daha tutarlı bir ilgi alanı sağlar. Uyluk atardamarı ve saphenöz arter ve kollateraller uyluk ve baldırın ventral yüzeyine çok yakındır, bu nedenle bu ilgi alanları kullanılarak supine konumlandırma tercih edilir.
  2. Taramayı Yinele simgesini seçerek tekrarlanan ölçümü başlatın ve taramayı başlatmak için Oynat Düğmesine basın.
  3. Açılır pencerede tarama mesafesini onaylayın ve taramaya başlamak için Tamam'ı tıklatın.
  4. Fare hareketini tarama sırasında fareyi izleyin; fare, arka ayakların artık taramanın ortasındaki tarama bölgesinde olmayacak kadar hareket ederse, taramayı yeniden başlatın. Fare engel teşkil eden konumdaki küçük varyasyonlar analiz yazılımında bulunabilir.
  5. Homeotermik battaniyenin kullanımıyla bile dalgalaşabileceğinden, tarama işlemi sırasında fare sıcaklığını izleyin. Fare sıcaklığında çok fazla değişiklik varsa, bu taramalar arasında önemli bir değişime neden olabilir. Genellikle, 36.8-37.2 ° C sıcaklık aralığı kabul edilebilir verilerle sonuçlanacaktır.
  6. Yakalanan taramayı, daha kolay veri çözümlemesi için fare tanımlayıcısı ve zaman noktası içeren bir dosya adıyla Farklı Kaydet penceresinin altına kaydedin. Konu ayrıntıları penceresinde istenirse fare ve zaman noktası ayrıntılarını girin.
  7. Izoflurane'yi kapatın ve rektal sıcaklık probunu çıkarın.
  8. Rektal sıcaklık probını% 70 etanol ile dezenfekte edin, böylece bir sonraki farede kullanıma hazırdır.
  9. Farenin anesteziden kafese dönmeden önce supine konumundan eğilimli konuma dönerek sağa doğru refleks gösterdiği noktaya kadar iyileşmesine izin verin.
    NOT: İyileşme çok hızlı olduğundan, iyileşme izofluran için bir ısıtma battaniyesi üzerinde veya ketamin / kslazin için ısıtılmış bir iyileşme kafesinde gerçekleştirilebilir.

4. LDPI verilerinin yakalanması (Şekil 3)

  1. Görüntüleme gözden geçirme yazılım programını açın.
  2. Dosya menüsüne gidin, dosyayı açın ve kaydedilen dosyayı bulun.
  3. Araç çubuğundan yatırım getirisi simgesini seçin.
  4. Çokgen Ekle düğmesini seçin.
  5. Fareyi kullanarak denetim arka ayakları için ilgi çekici bölgeyi (ROI) izleme. Gri arka plan hesaplanan ortalamalara dahil edilmeyeceğinden çokgen izlemenin tam olması gerekmez.
  6. Cerrahi hindlimb için 4.3-4.5 adımlarını tekrarlayın.
  7. Görüntü ROIs İstatistik Sonuçları (PU) penceresini açmak için İstatistikler simgesini seçin.
  8. Polygon 1 (control hindlimb) ve Polygon 2 (cerrahi hindlimb) sonuçlarını kopyala/yapıştır yoluyla veri toplama çalışma sayfasına dışa aktar.

5. Analiz

  1. Her tarama için verileri Cerrahi/Kontrol oranı olarak yakalayın.
  2. Bu zaman noktasında belirli bir farenin veri noktası için üç tarama için de ortalama cerrahi/kontrol kullanın. Hindlimb iskemisine yanıtta biyolojik değişkenlik nedeniyle, genel olarak ~ % 10 standart hata ile tekrarlanabilir sonuçlar elde etmek için zaman noktası başına 8-10 fare gereklidir.
    NOT: Farenin anesteziden iyileşmesine izin vermeden önce, verilerin çok değişken olup olmadığını kontrol etmek için tekrarlanan taramaların hızlı bir analizini yapmak faydalı olacaktır (örneğin, taramalar 1-3 arasında farklı 100-150'den fazla perfüzyon ünitesi). Tekrarlanan taramalar arasındaki yüksek değişim, farenin tarama sırasında tamamen dengelenmediğini göstermektedir (Şekil 2) ve görüntüler daha sonraki bir tarihe kadar analiz edilmezse ortaya çıkabilecek bir veri noktasını kaybetmeden tekrarlanan bir tarama yapılabilir. Görüntülenen akı değerlerinin dinamik aralığını en iyi duruma getirmek için renk paletini değiştirmek, tarama varyasyonlarını daha iyi görüntülemek için gerekli olabilir (Şekil 2).

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Sonuçlar

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Başarılı LDPI, üç tarama arasında en fazla 100-150 perfüzyon ünitesi varyasyonu (fare ayak takımı için normal ortalama perfüzyonun yaklaşık% 10'una karşılık gelir) ile tutarlı tekrarlanan önlem taramalarına neden olmalıdır (Şekil 2). Şekil 2'degösterildiği gibi, tekrarlanan taramalar farenin uygun şekilde dengelendiğini belirlemeye yardımcı olur, böylece iskemik/kontrol oranı, sıcaklık değişiminin neden olduğu dermal perfüzyondaki varyasyonun aksine alttaki kan ...

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Tartışma

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

LDPI ile güvenilir sonuçlar elde etmek için tutarlı teknik kritik öneme sahiptir. Tüm zaman dilimi boyunca aynı anestezi, sıcaklık ayarları, fare konumu ve ilgi alanı kullanılmalıdır. Farklı anestezik ajanlar daha yüksek veya daha düşük perfüzyon değerlerine neden olur9. Isofluran anestezisi, hızlı başlaması ve ortaya çıkmasının yanı sıra genel güvenliği nedeniyle uygundur. Bu vazodilatör ajan ile anestezi derinliği olarak tutarlı bir izofluran yüzdesi deri perfüzyonunu değiştirebilir. İlgi çekici...

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Açıklamalar

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Dr. Tang'ın açıklayacak bir çıkar çatışması yok.

Teşekkürler

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Bu çalışma VA Puget Ses Sağlık Merkezi'ndeki tesis ve kaynakların kullanımı ile gerçekleştirilmiştir. Çalışma yazarın eseridir ve Gazi İşleri Bakanlığı'nın veya Abd hükümetinin konumunu veya politikasını yansıtmak zorunda değildir. Dr Tang şu anda VA (Merit 5 I01 BX004975-02) aracılığıyla finanse ediliyor.

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Malzemeler

Bu makalede kullanılan malzemelerin listesi
AdŞirketKatalog numarasıYorumlar
Siyah yansıtıcı olmayan malzemeKumaş mağazası, siyah neopren şirket tarafından önerilen
F / hava tenekesiA.M. Bickford Inc80120
Sert metal problu homeotermik battaniyeHarvard AparatıAyrıca esnek prob ile birlikte gelir, ancak bu daha az dayanıklıdır
İzofluran Anestezi makinesiDrägerBirden fazla üretici
İzofluran indüksiyon odasıVetEquip9414442 L hazneli
Moor lazer Doppler perfüzyon görüntüleyiciMoor InstrumentsMoorLDI2-IRDaha yüksek çözünürlüklü görüntüleyici (MoorLDI2-HIR)
Fare Anestezi burun konisiBirden fazla üretici
NairNair
Oksijen tankıBirden fazla üretici
SurgilubeÇoklu distribütörler

Kaynaklar

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
  1. Varma, P., Stineman, M. G., Dillingham, T. R. Epidemiology of limb loss. Physical Medicine and Rehabilitation Clinics of North America. 25 (1), 1-8 (2014).
  2. Farber, A. Chronic Limb-Threatening Ischemia. New England Journal of Medicine. 379 (2), 171-180 (2018).
  3. Abularrage, C. J., et al. Evaluation of the microcirculation in vascular disease. Journal of Vascular Surgery. 42 (3), 574-581 (2005).
  4. Houben, A., Martens, R. J. H., Stehouwer, C. D. A. Assessing Microvascular Function in Humans from a Chronic Disease Perspective. Journal of the American Society of Nephrology. 28 (12), 3461-3472 (2017).
  5. Mahe, G., Humeau-Heurtier, A., Durand, S., Leftheriotis, G., Abraham, P. Assessment of skin microvascular function and dysfunction with laser speckle contrast imaging. Circulation: Cardiovascular Imaging. 5 (1), 155-163 (2012).
  6. Murray, A. K., Herrick, A. L., King, T. A. Laser Doppler imaging: a developing technique for application in the rheumatic diseases. Rheumatology (Oxford). 43 (10), 1210-1218 (2004).
  7. Greco, A., et al. Repeatability, reproducibility and standardisation of a laser Doppler imaging technique for the evaluation of normal mouse hindlimb perfusion. Sensors (Basel). 13 (1), 500-515 (2012).
  8. Sonmez, T. T., et al. A novel laser-Doppler flowmetry assisted murine model of acute hindlimb ischemia-reperfusion for free flap research. PLoS One. 8 (6), 66498(2013).
  9. Gargiulo, S., et al. Effects of some anesthetic agents on skin microcirculation evaluated by laser Doppler perfusion imaging in mice. BMC Veterinary Research. 9, 255(2013).
  10. Ankri-Eliahoo, G., Weitz, K., Cox, T. C., Tang, G. L. p27(kip1) Knockout enhances collateralization in response to hindlimb ischemia. Journal of Vascular Surgery. 63 (5), 1351-1359 (2016).
  11. McEnaney, R. M., Shukla, A., Madigan, M. C., Sachdev, U., Tzeng, E. P2Y2 nucleotide receptor mediates arteriogenesis in a murine model of hind limb ischemia. Journal of Vascular Surgery. 63 (1), 216-225 (2016).
  12. Padgett, M. E., McCord, T. J., McClung, J. M., Kontos, C. D. Methods for Acute and Subacute Murine Hindlimb Ischemia. Journal of Visualized Experiments. (112), e54166(2016).
  13. Niiyama, H., Huang, N. F., Rollins, M. D., Cooke, J. P. Murine model of hindlimb ischemia. Journal of Visualized Experiments. (23), e1035(2009).
  14. Chalothorn, D., Faber, J. E. Strain-dependent variation in collateral circulatory function in mouse hindlimb. Physiological Genomics. 42 (3), 469-479 (2010).
  15. Helisch, A., et al. Impact of mouse strain differences in innate hindlimb collateral vasculature. Arteriosclerosis, Thrombosis, and Vascular Biology. 26 (3), 520-526 (2006).
  16. Faber, J. E., et al. Aging causes collateral rarefaction and increased severity of ischemic injury in multiple tissues. Arteriosclerosis, Thrombosis, and Vascular Biology. 31 (8), 1748-1756 (2011).
  17. Forrester, K. R., Stewart, C., Tulip, J., Leonard, C., Bray, R. C. Comparison of laser speckle and laser Doppler perfusion imaging: measurement in human skin and rabbit articular tissue. Medical & Biological Engineering & Computing. 40 (6), 687-697 (2002).
  18. Briers, J. D. Laser Doppler, speckle and related techniques for blood perfusion mapping and imaging. Physiological Measurement. 22 (4), 35-66 (2001).
  19. Heeman, W., Steenbergen, W., van Dam, G., Boerma, E. C. Clinical applications of laser speckle contrast imaging: a review. Journal of Biomedical Optics. 24 (8), 1-11 (2019).
  20. Nguyen, T., Davidson, B. P. Contrast Enhanced Ultrasound Perfusion Imaging in Skeletal Muscle. Journal of Cardiovascular Imaging. 27 (3), 163-177 (2019).
  21. Zaccagnini, G., et al. Magnetic Resonance Imaging Allows the Evaluation of Tissue Damage and Regeneration in a Mouse Model of Critical Limb Ischemia. PLoS One. 10 (11), 0142111(2015).
  22. Penuelas, I., et al. PET as a measurement of hindlimb perfusion in a mouse model of peripheral artery occlusive disease. Journal of Nuclear Medicine. 48 (13), 1216-1223 (2007).
  23. Jia, Y., Qin, J., Zhi, Z., Wang, R. K. Ultrahigh sensitive optical microangiography reveals depth-resolved microcirculation and its longitudinal response to prolonged ischemic event within skeletal muscles in mice. Journal of Biomedical Optics. 16 (8), 086004(2011).
  24. Turaihi, A. H., et al. Combined Intravital Microscopy and Contrast-enhanced Ultrasonography of the Mouse Hindlimb to Study Insulin-induced Vasodilation and Muscle Perfusion. Journal of Visualized Experiments. (121), e54912(2017).
  25. Liu, C., et al. Enhanced autophagy alleviates injury during hindlimb ischemia/reperfusion in mice. Experimental and Therapeutic Medicine. 18 (3), 1669-1676 (2019).
  26. Liu, D. L., Svanberg, K., Wang, I., Andersson-Engels, S., Svanberg, S. Laser Doppler perfusion imaging: new technique for determination of perfusion and reperfusion of splanchnic organs and tumor tissue. Lasers in Surgery and Medicine. 20 (4), 473-479 (1997).
  27. Jing, Y., Bai, F., Chen, H., Dong, H. Using Laser Doppler Imaging and Monitoring to Analyze Spinal Cord Microcirculation in Rat. Journal of Visualized Experiments. (135), e56243(2018).
  28. Zhang, D., Li, S., Wang, S., Ma, H. An evaluation of the effect of a gastric ischemia-reperfusion model with laser Doppler blood perfusion imaging. Lasers in Medical Science. 21 (4), 224-228 (2006).
  29. Fitzal, F., et al. Circulatory changes after prolonged ischemia in the epigastric flap. Journal of Reconstructive Microsurgery. 17 (7), 535-543 (2001).

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Yeniden basım ve izinler

Bu JoVE makalesinin metnini veya şekillerini yeniden kullanmak için izin iste

İzin iste

Etiketler

Arka Ekstremite skemisiKan Ak n n Geri Kazan mFare Arka Ekstremite G r nt lemeCilt Mikrosirk lasyonuPerf zyon l mskemi Reperf zyonAnestezik KontrolArteriyel Perf zyonKollateral Arter Geli imi

İlgili makaleler