Method Article

Destek Yüzdürme Bloğu Kullanılarak İletim Elektron Mikroskopisinde Numune Destek Filmlerinin Hazırlanması

DOI:

10.3791/62321

⸱

April 8th, 2021

 ,  , 
1Section of Structural & Synthetic Biology, Department of Infectious Diseases, Faculty of Medicine, Imperial College London, South Kensington Campus

In This Article

Summary

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Kriyo-elektron mikroskopisi (kriyo-EM) için numune hazırlama, bu yöntemin yapı belirleme iş akışında önemli bir darboğazdır. Burada, em çalışmaları için numuneleri stabilize etmek için destek filmlerinin hazırlanması için kullanımı kolay, üç boyutlu baskılı bir blok kullanmak için ayrıntılı yöntemler sunuyoruz.

Abstract

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Kriyo-elektron mikroskopisi (kriyo-EM) ile yapı tespiti son on yılda hızla artmıştır; ancak, numune hazırlama önemli bir darboğaz olmaya devam etmektedir. Makromoleküler örnekler ideal olarak ince bir vitreus buz tabakasında rastgele yönelimlerden görüntülenir. Bununla birlikte, birçok örnek buna refrakterdir ve hava-su ara arabiriminde protein denatürasyonu yaygın bir sorundur. Bu tür sorunların üstesinden gelmek için, numunelerin doldurulabileceği bir yüzey sağlamak için ızgaraya amorf karbon, grafen ve grafen oksit içeren destek filmleri uygulanabilir ve bu da parçacıkların hava-su arayüzünün zararlı etkilerini yaşama olasılığını azaltır. Bununla birlikte, bu hassas desteklerin ızgaralara uygulanması, kırılmayı, havadaki kirlenmeyi veya kapsamlı yıkama ve temizleme adımlarını önlemek için dikkatli bir kullanım gerektirir. Yakın tarihli bir rapor, destek filmlerinin doğrudan örneğe ıslatılmış aktarımını kolaylaştıran kullanımı kolay bir floatation bloğunun geliştirilmesini açıklar. Bloğun kullanımı, destek filminin fiziksel bütünlüğünü ve hidrofobik kirlenmenin tahakkuk edebileceği süreyi koruyarak gerekli manuel elleçleme adımlarının sayısını en aza indirir ve ince bir buz filminin hala üretilebilmesini sağlar. Bu makale, EM çalışmaları için karbon, grafen ve grafen oksit desteklerinin hazırlanması için adım adım protokoller sunmaktadır.

Introduction

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Son on yılda, başta dedektör teknolojisi olmak üzere, diğer teknik alanlardaki atılımlar, biyolojik olarak ilgili sistemlerin iletim elektron mikroskopisi (TEM)1,2 ile görüntülenebilmesi çözünürlükte art arda önemli artışlar sağladı. Kriyo-EM'nin tek parçacık analizi (SPA) yoluyla 50 μg kadar az proteinden yüksek çözünürlüklü yapıların çözülmesine izin vermesine rağmen, kriyo-EM örneği ve ızgara hazırlığı büyük darboğazlar olmaya devam etmektedir3,4,5. SPA örnekleri, vitreus buz tabakası içinde yaklaşık rastgele dağıtılan makromoleküllerden oluşur. Parçacıklar ve çözücü arasındaki kontrast farkını en üst düzeye çıkarmak için buzun mümkün olduğunca ince olması gerekir. Biyolojik makromoleküller daha kalın buzda daha kararlıdır (yani, yerel yapılarını kaybetme olasılığı daha düşüktür), çünkü daha iyi çözülürler. Ayrıca, parçacıkların genellikle parçacık boyutundan çok daha kalın buzda görüş alanına çok daha iyi dağıldığı tespit edilir6 ve sıklıkla karbon filmlerindeki deliklerde bulunamayabilir.

Ek olarak, daha kalın buz katmanları, yüksek yüzey-hacim oranı nedeniyle moleküllerin hava-su arayüzüne yakın olma olasılığını azaltır ve kriyo-EM çalışmaları için standart dalma dondurma yöntemlerinin kullanılmasının, parçacıkların ~ % 90'ının hava-su arayüzüne adsorpsiyonu ile sonuçlandığı tahmin edilmiştir7. Daha kalın buz, çözücü içindeki saçılma olaylarının artması ve sinyalin eşlik eden zayıflaması nedeniyle istenmeyen yüksek arka planla sonuçlanır6,7. Bu nedenle mümkün olduğunca ince bir vitreus buz tabakası elde etmek gerekir; ideal olarak, katman parçacıktan sadece biraz daha kalın olacaktır. Bir ızgaraya uygulanan her farklı örnek için üstesinden gelinmesi gereken araştırmacı için zorluk, numunelerindeki parçacıkların yapısal bütünlüğünü korurken yüksek kontrastlı görüntüleme için yeterince ince örnekler hazırlamaktır. Hava-su arayüzüne protein adsorpsiyona, genellikle zararlı olan birkaç etki eşlik eder.

İlk olarak, proteinlerin bu hidrofobik arayüze bağlanması genellikle hızla ilerleyen ve tipik olarak geri dönüşü olmayan proteinin denatürasyonuna neden olan 8,9. Maya yağ asidi sinthaz kullanılarak yapılan bir çalışma, adsorbe edilen parçacıkların% 90'ına kadarının denatüre olduğunu göstermiştir10. İkinci olarak, amorf karbon11'de veya destek olmadan toplanan 80S ribozom veri kümelerinin oryantasyon dağılımını karşılaştıran bir çalışmadan elde edilen kanıtlar12, hava suyu arayüzünün hacmin 3D yeniden yapılandırılmasından ödün veren ciddi tercihli yönelime neden olabileceğini göstermiştir13. Hava-su arayüzü ile partikül etkileşimini azaltma yöntemleri arasında donma tamponunun yüzey aktif maddeler (deterjanlar gibi) ile takviyesi, destek filmlerinin kullanımı, alt tabakaların benzeşim yakalaması veya iskelelenmesi ve hızlandırılmış dalma süreleri saydır. Yüzey aktif maddelerin kullanımı kendi sorunlarıyla ilişkilidir, çünkü bazı protein örnekleri varlıklarında ideal olmayan davranabilirken, benzeşim yakalama ve iskele substratları genellikle ısmarlama ızgara yüzeyleri ve yakalama stratejileri gerektirir. Son olarak, hızlı dalma cihazlarının geliştirilmesi hakkında çok fazla araştırma olmasına rağmen14,15,16, bunlar genellikle yaygın olarak bulunmayan bir aparat gerektirir.

Biyolojik kriyo-EM için standart TEM ızgarası zaten delikli amorf karbon folyo17'ye sahip olsa da, ek destek filmlerinin üretimi ve TEM şebekelerine aktarılması için bir dizi protokol mevcuttur. Bu filmlerin kullanımı numune stabilizasyonu için köklü bir yöntemdir18. Amorf karbon destekleri, önceki raporlarda kurulan yararlı araçlar olarak floatation desteklerinin faydası ile katmanların ızgaralara yüzdürülebileceği kristal mika levhalar19 üzerinde buharlaşma ve biriktirme ile oluşturulur20. Tipik olarak Hummers yöntemi21'in değiştirilmiş bir versiyonu kullanılarak hazırlanan grafen oksit pulları, azaltılmış arka plan sinyallerinin yanı sıra makromolekülleri hareketsizleştirme ve stabilize etme yeteneği için amorf karbona tercih edilen bir destek yapısı olarak kullanılmıştır22. Daha yakın zamanda, mekanik stabilitesi, yüksek iletkenliği, arka plan gürültüsüne son derece düşük katkısı23 nedeniyle grafen'in TEM destek filmi olarak kullanılmasına ve makroskopik olarak geniş monolayer grafen24 alanlarının üretilmesi ve TEM ızgaralarına aktarılması için tekrarlanabilir yöntemlerin ortaya çıkması nedeniyle yeniden canlanan bir ilgi olmuştur25 . Grafen, 11,12,17 destek filminden yoksun buzdan daha benzer veya daha kötü ışın kaynaklı hareketlerden geçen amorf karbonla karşılaştırıldığında, grafen kriyo-EM görüntülerinin ışın kaynaklı hareketinde önemli bir azalma gösterdi12.

Bununla birlikte, hidrofilize grafen, yağ asidi sintazını hava-su arasal denatürasyonundan korurken, bu çalışmanın yazarları, grafenin numune hazırlama sırasında, muhtemelen atmosferik hidrokarbon kontaminasyonunun bir kombinasyonu ve şebekeleri hidrophilize etmek için kullanılan reaktiften dolayı kirlendiğini belirtmektedir10. Gerçekten de, grafen'in üstün niteliklerinin çoğuna rağmen, yaygın kullanımı, sonuçta kimyasal olarak zor olan ve uzman ekipman gerektiren hidrofobikliğini azaltmak için gereken türetme tarafından hala engellenmiştir. Bu makalede, destek filmlerini oluşturuldukları yüzeylerden TEM ızgaralarına doğrudan aktarmak için üç boyutlu (3D) baskılı numune yüzdürme bloğu27 kullanılarak amorf karbon, grafen oksit ve grafen numune desteklerinin hazırlanmasına yönelik protokoller rapor edilmektedir (Şekil 1). Böyle bir cihazı kullanmanın önemli bir avantajı, filmlerin ıslatılması, desteklerin hidrofobik kirlenmesini en aza indirmesi ve dolayısıyla daha fazla tedaviye ihtiyaç duyması ve potansiyel olarak zarar verici manuel elleçleme adımlarının sayısını azaltmasıdır. Bu yaklaşımlar uygulanması ucuzdur ve bu nedenle örnek desteklerin gerekli olduğu kriyo-EM çalışmaları için yaygın olarak erişilebilir ve uygulanabilir.

Protocol

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

1. TEM şebekelerinin genel hazırlığı ön destek transferi

  1. Bir çift temiz, ince cımbız kullanarak, TEM ızgaralarını çift damıtılmış suya (ddH2O) veya ultra saf suya 10-15 sn, ardından 10-15 sn etil asetatla sırayla kaldırın ve batırın.
    NOT: Burada negatif etki, eğik uçlu cımbız kullanılmıştır.
  2. Izgara hala kavramada olan cımbızları~ 5 dakika boyunca havayla kurumak için bir tarafa yerleştirin.
  3. Hava veya yıkama basamaklarından tahakkuk eden kirleticilerin yüzeyini soymak için ızgaraları plazma ile temizleyin.
    NOT: Burada, 25 W radyofrekans gücü ile havada 10-15 sn plazma temizliği yapıldı.

2. Reaktif çözeltilerinin genel hazırlanması

  1. Uranil asetat (UAc) çözümü (%2 w/v)
    1. 50 mL'lik bir tüpü folyoya sarın, 50 mL ultra saf su ile doldurun ve 1 g UAc tozu ekleyin.
      NOT: UAc ışığa duyarlıdır ve maruz kaldığında zamanla çökeltir. UAc radyoaktif ve toksik olduğundan, yüksek düzeyde temizlik sağlayın. Soluma veya yutulmasından kaynaklanan en ciddi tehlike ile, ince parçacıkların solunması olasılığını önlemek için ekstra özen verilmelidir. Uranyum tuzlarını kullanırken veya tartarken eldivenler her zaman giyilmelidir. Maskeler ve gözlükler şiddetle tavsiye edilir. Uranyum tuzları, devlet içindeki radyoaktif tehlikeler için belirlenen yasal gerekliliklere göre bertaraf edilmelidir.
    2. Tüm UAc'nin çözünmesine izin vermek için çözeltiyi 1 saat boyunca karıştırın. 4°C'de saklayın.
    3. Kullanmadan önce, kalan asetat kristallerini çıkarmak için 0,22 μm filtre kullanarak leke çözeltisinin 1 mL'lik kısmını küçük bir şişeye filtreleyin.
  2. Grafen oksit (GrOx) süspansiyonu
    1. Pipet 2.5 μL GrOx 1.5 mL tüpe (%1 son konsantrasyon). Pipet 2,5 μL% 10 (w/v) n-dodecyl β-D-maltoside (DDM) deterjanı GrOx içine karıştırın ve hafifçe karıştırın (0,1% (w/v) son konsantrasyon).
    2. GrOx-DDM karışımına 245 μL ultra saf su ekleyin ve hemen 5 dakika boyunca güçlü bir şekilde girdaplayın.
  3. Demir(III) klorür (FeCl3) çözeltisi (%10 w/v)
    1. Tartım teknesinde dikkatlice 5 g FeCl3 ağırlığındadır. 35 mL ddH2O ve manyetik karıştırma çubuğu içeren 100 mL ölçüm silindirine aktarın.
    2. Manyetik bir karıştırma plakasına yerleştirin ve FeCl3'ü çözün, ddH2O'yu 50 mL'lik son hacme ekleyin. FeCl3 çözeltisini 0,8 μm şırıngan filtreden geçirerek depolama için temiz bir şişeye filtreleyin.
      NOT: FeCl3 aşındırıcı ve tahriş edicidir; yemeden, içmeden veya sigara içmeden önce ve işten çıkarken elleri ve diğer açıkta kalan bölgeleri hafif su ve sabunla yıkayın. Buhar oluşumunu önlemek için proses alanında iyi havalandırma sağlayın. Sis, buhar, sprey soluma. Eldivenler her zaman tuzu kullanırken veya tartarken giyilmelidir. Maskeler ve gözlükler kullanımda olduğunda şiddetle tavsiye edilir.

3. Destek yüzdürme bloğunu kullanarak negatif lekeli numuneler hazırlamak için mika üzerindeki karbon destek filmleri için tampon değişimi

  1. TEM ızgaralarını yıkayın ve plazmayla temizleyin.
    NOT: Burada bölüm 1'de yukarıda belirtildiği gibi 300 örgü delikli karbonlu bakır ızgara kullanılmıştır.
  2. Pipet 10-12 μL numune, şamandıra bloğunun tampon değişimine (küçük kanallarla) ve bitişik tampon olmayan değişim kuyusuna negatif boyama için% 2 UAc çözeltisinin 10-12 μL'si (bkz. bölüm 2.1).
    NOT: Kuyu 10 μL hacme sahiptir; bununla birlikte, numune hacmini, uygun film yüzdürülmesine izin vermek için sıvının yüzeyinde dışbükey bir menisküs oluşacak şekilde ayarlayın. Düşük miktarda numune film kırılmasına neden olabilir.
  3. Üzerine önceden pozlanmış karbon film ile iki küçük mika parçasını dikkatlice kesin. Mika parçalarının kuyuya sığacak kadar geniş (3,4 mm genişlik) ve kuyu uzunluğundan (3,45 mm) daha uzun olduğundan emin olun, böylece parça karbon yüzerken kuyuya oturur ve parçayı cımbızla işlemek için yeterli alan vardır.
    NOT: Karbonu işlemek için düz negatif etkili uzun uçlu cımbız kullanın. Mika parçalarını keserken, karbon filmin bütünlüğünü korumak için tek hareketlerle kesin.
  4. Mikayı yaklaşık 45° açıyla kuyuya daldırın, ta ki mika kuyunun rampasına oturana ve sıvı numunenin yüzeyinde bir karbon tabakası gözlemlenene kadar.
  5. Numunedeki ilk inkübasyondan sonra (numune yapışmasına bağlı olarak tipik olarak 20 s ila 20 dk; bu süreyi deneysel ihtiyaçlara göre optimize edin), karbon filmi kurtarmak ve artık viskoz numune tutulmasını en aza indirmek için mika tabakasını çok yavaş çekin.
  6. Fazla sıvıyı çıkarmak için alt yüzeye (karbon olmayan taraf) filtre kağıdı ile dokunarak mikayı dikkatlice lekeleyin ve daha sonra numuneyi taşıyan karbonu, %2'lik UAc çözeltisini içeren karşı kuyuya (yani, adım 3.4'teki gibi daldırma) uygulanarak negatif lekeye değiştirin.
    NOT: Bu noktada leke çözeltisinin üstünde yüzen bir karbon tabakası gözlenmelidir.
  7. Yıkanmış ve plazmayla temizlenmiş bir EM ızgarasının delikli karbon kaplı tarafıyla yüzen karbon tabakasını geri kazan. Bir TEM'de görüntülemeye kadar ızgaraları havayla kurumaya bırakın. İdeal olarak, havadan bulaşmayı önlemek için kurutma işlemi sırasında ızgaraları örtün.

4. Grafen oksit kaplı TEM ızgaraları hazırlamak için destek yüzdürme bloğunun uygulanması

  1. Yukarıda belirtildiği gibi 300 örgü delikli karbonlu bakır ızgara kullanarak TEM ızgaralarını yıkayın ve plazma temizleyin (bölüm 1).
  2. Pipet 10-12 μL GrOx süspansiyonu (bkz. bölüm 2.2) yüzdürme bloğu boyunca tampon olmayan 4 değişim kuyusuna. Borunun kalan 4 tampon değişim kuyusuna pipet 10-12 μL ddH2O veya ultra saf su.
    NOT: Bu su hacmi, bloğun yüksekliğinin üzerine yükselen hafif bir dışbükey menisküs oluşturmak için yeterli olmalıdır.
  3. Her kuyunun GrOx süspansiyonuna 1 dakika boyunca 4 ızgarayı hafifçe bırakın, delikli karbon kaplı tarafın çözeltiyle temas etmesini sağlayın. 1 dakika sonra, cımbızları tampon olmayan her değişimin cımbız oluğuna kaydırarak her ızgarayı dikkatlice kurtarın.
  4. Her ızgaranın bakır, karbon kaplı olmayan tarafına bitişik kuyudaki ddH2O'ya çok nazikçe ve kısa bir süre dokunun. Daha sonra, ızgarayı dikkatlice ve nazikçe tutun, su damlası tarafı, bir filtre kağıdı parçasına karşı.
    NOT: Sudaki şişkinlik, GrOx süspansiyonunu kılcal damar hareketiyle ızgaradan çekecektir. Şebekenin ddH2O'ya batırılmasını önlemek çok önemlidir, bu nedenle temas çok kısa olmalıdır. Izgara kaldırıldığında, bir su damlası ızgaranın alt tarafına tutmalıdır. GrOx pullarının yerleşmesini altüst edebileceğinden, ızgarayı filtre kağıdında hareket ettirmemeye dikkat edin.
  5. Cımbızdaki ızgaraları numune ile hazırlanın aya kadar havayla kurumaya bırakın. İdeal olarak, havadan bulaşmayı önlemek için kurutma işlemi sırasında ızgaraları örtün.

5. Monolayer-grafen filmlerde numunelerin hazırlanması için destek yüzdürme bloğunun uygulanması

  1. TEM ızgaralarını yukarıda belirtildiği gibi yıkayın (bölüm 1), ancak plazma temizlemeyi atlayarak.
    NOT: Burada 300 örgü delikli karbonlu altın ızgara kullanıldı, ancak diğer bakır olmayan ızgaralar veya bakır alaşım ızgaraları da uygulanabilir.
  2. Izgaraları grafenle yatırmak için, daha önce açıklandığı gibi bakır (Cu-grafen) substratlarda yetişen grafenden kriyo-EM ızgaralarına doğrudan aktarın25.
    1. Bir cam kaydırağa yerleştirilmiş bir Cu-grafen levhanın (10 mm × 10 mm) üzerine dört yıkanmış ızgara yerleştirin ve monolayer grafen ile ızgara arasında yakın temas sağlamak için her ızgarayı bir damla izopropanol (5-10 μL) ile örtün.
      NOT: Izgaraların delikli karbon kaplı tarafını grafen levha ile temas halinde yerleştirin.
    2. İzopropanol tamamen buharlaştığında (tipik olarak 2 saat), cu-grafen levhayı ızgaralarla cam bir Petri kabında% 10 (w/v) FeCl3 çözeltisine (bkz. bölüm 2.3) yüzdürün ve bir gecede oda sıcaklığında kazınmaya bırakın. Havadaki kirlenmeyi önlemek için kabı örtün.
      NOT: Gravür tamamlandıktan sonra, FeCl3 çözümünde sadece grafen monolayer yüzer kalacaktır-bu uygun aydınlatma ile gözle görülebilir olmalıdır.
    3. Grafen monolayer üzerinde yüzen ızgaraları balıklandırmak için TEM ızgara boyutundan daha büyük bir halka kullanın ve yıkamak için ddH2O içeren bir cam Petri kabına dikkatlice aktarın.
      NOT: Petri kabının duvarlarına çarpmamak için ızgaraları avlarken son derece dikkatli olun, bu da grafen film kırılmasına veya bükülmesine neden olabilir.
    4. Tüm artık FeCl3'ü çıkarmak için balıkçılık ızgaraları ve ddH2O içeren temiz bir Petri kabına aktararak suda iki kez daha yıkayın. Son olarak, ızgaraları numune hazırlığı ve dalma dondurana kadar numune tamponu içeren bir Petri kabına aktarın.
      NOT: Izgaraların grafen kaplı tarafı, havadaki kirleticilere maruz kalmalarını önlemek için her zaman ıslatılmalıdır.
  3. Numuneyi (10-12 μL) şamandıra bloğunun tamponsuz bir değişim kuyusuna pipetle. Numune blokta hazır olduğunda, bir çift temiz cımbız kullanarak tampon çözeltisinden grafen kaplı bir ızgara seçin ve numune içeren kuyunun yüzeyine yerleştirin.
  4. Uygun bir kuluçka süresinden sonra (örneğe bağlı olarak 1-5 dk; deneysel ihtiyaçlara göre optimize edin), ızgarayı bir çift temiz dondurucu cımbızla seçin ve şişkinlik ve vitrifikasyona devam edin.

Results

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Amorf karbon destekleri ile hazırlanan TEM ızgaraları tipik olarak tüm şebeke yüzeyinde kaplanır. Karbon filminin kırılması bazı durumlarda bazı fırfırlarla birlikte meydana gelse de (Şekil 2A), çok sayıda ızgara karesi bozulmamış ve bu nedenle olumsuz boyama amaçları için yaygın olarak uygulanabilir. Desteğin bütünlüğünü etkileyen en önemli faktör, karbon buharlaşması sırasında belirlenen karbon kalınlığıdır. Benzer şekilde, bu GrOx protokolü ile tüm ızgarada düzenli olarak iyi kapsama alanı elde edilir (Şekil 2B). GrOx süspansiyonunun 1 dakika boyunca tek bir uygulaması, pul kenarları nedeniyle görülmesi kolay olan birden fazla katmana sahip birkaç alan sağlamak için yeterlidir. GrOx ızgaraları hammaddelerden hızlı bir şekilde hazırlanabilir ve numunenin son derece koruyucudur. Bununla birlikte, pul kenarları, eksik kapsama alanı ve fırfırlar, GrOx pullarının doğası nedeniyle diğer tekniklere göre GrOx ızgaralarında daha sık görülebilir.

Amorf karbon gibi grafen destek filminin bütünlüğü biriktirme işlemine bağlı olsa da, iyi kaplanmış alanlar tek katmanlı grafenin karakteristik kırınım desenini görüntüler. Daha da önemlisi, grafen destek filmleri ıslatılarak, numuneler bir kuluçka süresinden sonra yüzdürme bloğundan ve tek parçacık analizine uygun bir şekilde toplanan verilerden kurtarılabilir. Bu yöntem, ıslatma için grafenin başka bir tedavisini gerektirmez, böylece grafen hidrofilik yapmak için pahalı ekipman gereksinimini ortadan kaldırır ve numune hazırlama ve ızgara dondurmadan kısa bir süre önce destek filmleri hazırlamak en iyisidir (Şekil 2C).

figure-results-1
Şekil 1: Destek filmi hazırlığı sırasında örnek yüzdürme bloğu tasarımı ve uygulaması. (A) Şekil, derinlik ve eğim ölçümleri de dahil olmak üzere yüzdürme bloğunun üst, kuyu ve yan görünümlerinin şeması. Cımbız uçlarının dinlenmesi için oluk ve iğne takma kanalları belirtilir. (B) Amorf karbon tabakaları, rampa kullanılarak, yani negatif lekeli TEM ızgaralarının hazırlanması sırasında, yüzdürme bloğunun kuyularında bulunan tampon yüzeyine kolayca yüzdürülebilir. (C) Kuyuların genişliği bir TEM ızgarasına uyum sağlamak için uygundur, cımbız olukları ise hazırlık adımları sırasında ızgaraları gereksiz yere serbest bırakma ve alma ihtiyacını azaltır, ancak ızgaralar serbest bırakılırsa bükülme riski olmadan ızgaraları kurtarmak için tanımlanmış bir yol sunar. B'deki görüntüler 27'den değiştirilir. Kısaltma: TEM = iletim elektron mikroskopisi. Bu rakamın daha büyük bir sürümünü görüntülemek için lütfen buraya tıklayın.

figure-results-2
Şekil 2: Floatation bloğu kullanılarak hazırlanan örnek destek filmlerinin tipik örnekleri. Yüzdürme bloğu kullanılarak hazırlanan (A) amorf karbon, (B) grafen oksit ve (C) grafen destek filmleri için ızgara karesi (sol) ve görüntü (sağ) görünümleri gösterilir. Amorf karbon desteği negatif boyama için 70S ribozomların hazırlanmasında kullanılırken, kriyo-EM için 70S ribozomların hazırlanmasında grafen oksit ve grafen destekleri kullanılmıştır. A ve C'deki görüntüler 27'den değiştirilir. Izgara karesi için ölçek çubuğu = 10 μm; B ve C ızgara kareleri için ölçek çubukları = 5 μm; A-C görüntü görünümleri için ölçek çubukları = 50 nm. Kısaltma: kriyo-EM = kriyo-elektron mikroskopisi. Bu rakamın daha büyük bir sürümünü görüntülemek için lütfen buraya tıklayın.

Discussion

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Bu makalede, kriyo-EM numune hazırlama için hem amorf karbon hem de grafen filmlerin örnek bir floatation blok27 kullanılarak işlenmesi için protokoller sunulmaktadır. Destek bloğu için bir STL dosyası, herkese açık Thingiverse deposundan [www.thingiverse.com/thing:3440684] serbestçe kullanılabilir ve uygun bir reçineden uygun stereolitografi yazıcısıyla 3D olarak basılabilir. BIR TEM ızgarasını kaplayan karbon filmlerin kullanımı genellikle numunenin üzerine karbon yüzdürülmeyi içerir28. Negatif leke ızgaraları hazırlamaya yönelik bu yaklaşım, destek elleçleme sırasında hava maruziyetini en aza indirir, böylece kontaminasyonu ve protein denatürasyonunu azaltır. Küçük kuyularda yüzen karbon kullanılarak ızgaraların hazırlanması, daha büyük bir yüzey alanında, yani bir su banyosunda veya Petri kabında yüzmek için avantajlıdır, bu durumda karbonun mekanik olarak kesilmesi çok daha kolay gerçekleşir.

Yayın anında mevcut sağlık ve güvenlik düzenlemeleri nedeniyle UAc satın almak zor olabilir. Yaygın olarak kullanılan, radyoaktif olmayan, negatif boyama reaktifleri mevcuttur ve hazırlıkları için protokoller daha önce tanımlanmıştır29. Bu destek yüzdürme bloğu ile alternatif lekeler kullanılmamış olsa da, inkübasyon süresinin zaten doğal olarak numuneye bağımlı olan örnekle (adım 3.5) optimizasyonu dışında bu protokollerde herhangi bir farklılık olması muhtemel değildir. Bu GrOx destek hazırlama protokolündeki temel adım, su ve GrOx çözümünün ızgara kenarı etrafında temas etmesini önlemek için notla vurgulanan 4.4 adımıdır. Su ve GrOx çözeltilerinin uygunsuz bir şekilde karıştırılması, Kılcal etki ile GrOx pullarının tek yönlü olarak yerleşmesini önler. Karbon folyonun her iki tarafında GrOx pullarına sahip olmak kalın katmanlarla sonuçlanır, böylece GrOx'u neredeyse tek katmanlı bir destek olarak kullanmanın avantajlarını olumsuzlar ve ayrıca pullar arasında su hapsederek ek buz katmanlarıyla kullanım alanlarının kirlenmesine neden olur. Grafen oksit destek hazırlığı, esnek poliolefin film üzerinde çözelti damlacıkları kullanılarak elde etmek nispeten kolaydır. Bununla birlikte, bu şekilde gerçekleştirildiğinde, hataları yanlış kullanarak ızgaranın bakır tarafını yanlışlıkla kirletmek daha kolaydır; floatation bloğunun kullanımı bu olasılığın olasılığını azaltır.

Son olarak, bu makale, hidrofilik hale getirmek için her türlü grafen ön işlemden kaçınan grafen kaplı ızgaralar hazırlamak için bir protokol sunar, böylece maliyetini azaltır ve erişilebilirliğini artırır. Numune hazırlama boyunca ıslanmış bir filmin bakımı ve numunenin donmadan hemen önce blokta yerinde uygulanması, homojen bir numune dağılımı ile kriyo-EM için uygun buz katmanlarının üretilmesine izin vermek için yeterlidir. Genel olarak, burada sunulan protokoller hava-su arayüzü ile numune temasını en aza indirir, bu nedenle numune denatürasyonunu azaltır ve kontaminasyonu destekler. Bu yaklaşımlarda kullanılan üç destek filmi için, sağlam, iyi korunmuş tek parçacıkların görüntülenmesiyle birlikte ızgaralar boyunca homojen numune dağılımları elde edilebilir.

Disclosures

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Yazarlar bu eserle ilgili herhangi bir çıkar çatışmasının farkında değildir.

Acknowledgements

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Yazarlar, bu tekniklerin testine yardımcı olan Imperial College London Yapısal ve Sentetik Biyoloji Bölümü'nün tüm üyelerine, Imperial College Advanced Hackspace'teki Harry Barnett'e ve Yapısal Biyoloji Merkezi'nden Paul Simpson'a teşekkür ediyor. CHSA, Wellcome Trust ve Royal Society (206212/Z/17/Z) tarafından ortaklaşa finanse edilen sir Henry Dale Bursu tarafından desteklenmektedir.

Materials

List of materials used in this article
NameCompanyCatalog NumberComments
Temel Plazma Temizleyici (230 V)Harrick PlasmaPDC-32G-2
Dumont cımbız N5A INOX.Dumont İsviçre yapımı0302-N5A-PO
Dumont cımbız NGG INOX.Dumont Swissmade0102-NGG-PO
EhtylacetateSigma-Aldrich270989-250ML
Balıkçılık Döngüleri 10 & mu; LVWR612-9353
Grafen Oksit 2 mg / mLSigma-Aldrich763705-25ML
Demir (III) klorürSigma-Aldrich31232-250MG
Mika Levhalar 75 mm x 25 mm x 0.15 mmAgar ScientificAGG250-1Genellikle mika'yı hedef karbon film kalınlığı 2 nm olan
Grafenüzerinde Tek Katmanlı Grafen/A10 mm x 10 mm, paket 4
n-dodesil ve beta;-D-maltosit (DDM)GLYCON Biochemicals GmbHD97002-C
Quantifoil R1.2/1.3 300 gözenekli bakır ızgaralarEnzo Yaşam BilimleriJBS-X-101-Cu300
Kuantif R2/1 300 gözenekli bakır ızgaralarEnzo Yaşam BilimleriJBS-X-102-Cu300
Kuantifoil R2/1 300 gözenekli altın ızgaralarElektron Mikroskobu BilimleriQ350AR1
MakasAgar ScientificAGT577
Uranil AsetatTAAB Laboratuvar EkipmanlarıU001
Vitrobot Mark IVFEIN/A
Whatman filtre kağıdı 55 mmGE Healthcare Life Sciences1441-055
Whatman filtre kağıdı 70 mmGE Healthcare Yaşam Bilimleri1441-070
Cu ile kaplarız N

References

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
  1. Advances in the field of single-particle cryo-electron microscopy over the last decade. Nature Protocols. 12 (2), 209-212 (2017).">Frank, J. Advances in the field of single-particle cryo-electron microscopy over the last decade. Nature Protocols. 12 (2), 209-212 (2017).
  2. Challenges and Opportunities in Cryo-EM Single-Particle Analysis. Journal of Biological Chemistry. 294 (13), 5181-5197 (2019).">Lyumkis, D. Challenges and Opportunities in Cryo-EM Single-Particle Analysis. Journal of Biological Chemistry. 294 (13), 5181-5197 (2019).
  3. Cryogenic Electron Microscopy and Single-Particle Analysis. Annual Review of Biochemistry. 84 (1), 499-517 (2015).">Elmlund, D., Elmlund, H. Cryogenic Electron Microscopy and Single-Particle Analysis. Annual Review of Biochemistry. 84 (1), 499-517 (2015).
  4. An introduction to sample preparation and imaging by cryo-electron microscopy for structural biology. Methods. 100, 3-15 (2016).">Thompson, R. F., Walker, M., Siebert, C. A., Muench, S. P., Ranson, N. A. An introduction to sample preparation and imaging by cryo-electron microscopy for structural biology. Methods. 100, 3-15 (2016).
  5. Miniaturizing EM Sample Preparation: Opportunities, Challenges, and "Visual Proteomics". Proteomics. 18 (5-6), 1700176(2018).">Arnold, S. A., et al. Miniaturizing EM Sample Preparation: Opportunities, Challenges, and "Visual Proteomics". Proteomics. 18 (5-6), 1700176(2018).
  6. Single-particle cryo-EM data acquisition by using direct electron detection camera. Microscopy. 65 (1), Oxford, England. 35-41 (2016).">Wu, S., Armache, J. P., Cheng, Y. Single-particle cryo-EM data acquisition by using direct electron detection camera. Microscopy. 65 (1), Oxford, England. 35-41 (2016).
  7. Routine single particle CryoEM sample and grid characterization by tomography. eLife. 7, 34257(2018).">Noble, A. J., et al. Routine single particle CryoEM sample and grid characterization by tomography. eLife. 7, 34257(2018).
  8. Determination of the inelastic mean free path in ice by examination of tilted vesicles and automated most probable loss imaging. Ultramicroscopy. 63 (3-4), 169-179 (1996).">Grimm, R., Typke, D., Bärmann, M., Baumeister, W. Determination of the inelastic mean free path in ice by examination of tilted vesicles and automated most probable loss imaging. Ultramicroscopy. 63 (3-4), 169-179 (1996).
  9. Proteins, interfaces, and cryo-EM grids. Current Opinion in Colloid and Interface Science. 34, 1-8 (2018).">Glaeser, R. M. Proteins, interfaces, and cryo-EM grids. Current Opinion in Colloid and Interface Science. 34, 1-8 (2018).
  10. Protein denaturation at the water-air interface and how to prevent it. eLife. 8, 400432(2019).">D'Imprima, E., Floris, D., Joppe, M., Sánchez, R., Grininger, M., Kühlbrandt, W. Protein denaturation at the water-air interface and how to prevent it. eLife. 8, 400432(2019).
  11. Ribosome structures to near-atomic resolution from thirty thousand cryo-EM particles. eLife. 2013 (2), 00461(2013).">Bai, X. C., Fernandez, I. S., McMullan, G., Scheres, S. H. W. Ribosome structures to near-atomic resolution from thirty thousand cryo-EM particles. eLife. 2013 (2), 00461(2013).
  12. Controlling protein adsorption on graphene for cryo-EM using low-energy hydrogen plasmas. Nature Methods. 11 (6), 649-652 (2014).">Russo, C. J., Passmore, L. A. Controlling protein adsorption on graphene for cryo-EM using low-energy hydrogen plasmas. Nature Methods. 11 (6), 649-652 (2014).
  13. Measuring the effects of particle orientation to improve the efficiency of electron cryomicroscopy. Nature Communications. 8 (1), 8-12 (2017).">Naydenova, K., Russo, C. J. Measuring the effects of particle orientation to improve the efficiency of electron cryomicroscopy. Nature Communications. 8 (1), 8-12 (2017).
  14. Spotiton: A prototype for an integrated inkjet dispense and vitrification system for cryo-TEM. Journal of Structural Biology. 179 (1), 68-75 (2012).">Jain, T., Sheehan, P., Crum, J., Carragher, B., Potter, C. S. Spotiton: A prototype for an integrated inkjet dispense and vitrification system for cryo-TEM. Journal of Structural Biology. 179 (1), 68-75 (2012).
  15. A new method for vitrifying samples for cryoEM. Journal of Structural Biology. 195 (2), 190-198 (2016).">Razinkov, I., et al. A new method for vitrifying samples for cryoEM. Journal of Structural Biology. 195 (2), 190-198 (2016).
  16. A Fast and Effective Microfluidic Spraying-Plunging Method for High-Resolution Single-Particle Cryo-EM. Structure. 25 (4), 663-670 (2017).">Feng, X., et al. A Fast and Effective Microfluidic Spraying-Plunging Method for High-Resolution Single-Particle Cryo-EM. Structure. 25 (4), 663-670 (2017).
  17. Perforated support foils with pre-defined hole size, shape and arrangement. Ultramicroscopy. 74 (1-2), 75-81 (1998).">Ermantraut, E., Wohlfart, K., Tichelaar, W. Perforated support foils with pre-defined hole size, shape and arrangement. Ultramicroscopy. 74 (1-2), 75-81 (1998).
  18. Cryo-electron microscopy of viruses. Nature. 308 (5954), 32-36 (1984).">Adrian, M., Dubochet, J., Lepault, J., McDowall, A. W. Cryo-electron microscopy of viruses. Nature. 308 (5954), 32-36 (1984).
  19. The structural study of membrane proteins by electron crystallography. Advances in Biophysics. 35, 25-80 (1998).">Fujiyoshi, Y. The structural study of membrane proteins by electron crystallography. Advances in Biophysics. 35, 25-80 (1998).
  20. Preparation of flat carbon support films. Ultramicroscopy. 94 (34), 183(2003).">Koning, R. I., Oostergetel, G. T., Brisson, A. Preparation of flat carbon support films. Ultramicroscopy. 94 (34), 183(2003).
  21. Preparation of Graphitic Oxide. Journal of the American Chemical Society. 80 (6), 1339(1958).">Hummers, W. S., Offeman, R. E. Preparation of Graphitic Oxide. Journal of the American Chemical Society. 80 (6), 1339(1958).
  22. Graphene oxide: A substrate for optimizing preparations of frozen-hydrated samples. Journal of Structural Biology. 170 (1), 152-156 (2010).">Pantelic, R. S., Meyer, J. C., Kaiser, U., Baumeister, W., Plitzko, J. M. Graphene oxide: A substrate for optimizing preparations of frozen-hydrated samples. Journal of Structural Biology. 170 (1), 152-156 (2010).
  23. Graphene: Substrate preparation and introduction. Journal of Structural Biology. 174 (1), 234-238 (2011).">Pantelic, R. S., et al. Graphene: Substrate preparation and introduction. Journal of Structural Biology. 174 (1), 234-238 (2011).
  24. Large-area synthesis of high-quality and uniform graphene films on copper foils. Science. 324 (5932), 1312-1314 (2009).">Li, X., et al. Large-area synthesis of high-quality and uniform graphene films on copper foils. Science. 324 (5932), 1312-1314 (2009).
  25. A direct transfer of layer-area graphene. Applied Physics Letters. 96 (11), 2008-2011 (2010).">Regan, W., et al. A direct transfer of layer-area graphene. Applied Physics Letters. 96 (11), 2008-2011 (2010).
  26. Beam-induced motion of vitrified specimen on holey carbon film. Journal of Structural Biology. 177 (3), 630-637 (2012).">Brilot, A. F., et al. Beam-induced motion of vitrified specimen on holey carbon film. Journal of Structural Biology. 177 (3), 630-637 (2012).
  27. Direct transfer of electron microscopy samples to wetted carbon and graphene films via a support floatation block. Journal of Structural Biology. 213 (1), 107677(2021).">de Martín Garrido, N., et al. Direct transfer of electron microscopy samples to wetted carbon and graphene films via a support floatation block. Journal of Structural Biology. 213 (1), 107677(2021).
  28. Regulation of Glutamine Synthetase. XII. Electron Microscopy of the Enzyme from Escherichia coli. Biochemistry. 7 (6), 2143-2152 (1968).">Valentine, R. C., Shapiro, B. M., Stadtman, E. R. Regulation of Glutamine Synthetase. XII. Electron Microscopy of the Enzyme from Escherichia coli. Biochemistry. 7 (6), 2143-2152 (1968).
  29. Variations on negative stain electron microscopy methods: Tools for tackling challenging systems. Journal of Visualized Experiments. (132), e57199(2018).">Scarff, C. A., Fuller, M. J. G., Thompson, R. F., Iadaza, M. G. Variations on negative stain electron microscopy methods: Tools for tackling challenging systems. Journal of Visualized Experiments. (132), e57199(2018).

Reprints and Permissions

Request permission to reuse the text or figures of this JoVE article

Request Permission

Tags

Cryo Electron MicroscopySupport Floatation BlockTransmission Electron MicroscopySample Support FilmsGraphene Oxide GridsAmorphous Carbon FilmPlasma CleaningNegative StainingGrid PreparationProtein Denaturation

Related Articles