Bu içeriği görüntülemek için JoVE aboneliğiniz gereklidir. Giriş yapın veya ücretsiz denemenizi bugün başlatın.

Yöntem makalesi

Hücre Yayma Sırasında Hücre Kenarı Dinamiklerinin Nicel Analizi

5.4K görüntülenme

⸱

DOI:

10.3791/62369

⸱

22 Mayıs 2021

 ,  , 

* These authors contributed equally

Bu makalede

Özet

Bu protokolde canlı hücre mikroskopisi esas alınarak yapılan test yayılan bir hücrenin deneysel prosedürlerini sunuyoruz. Floresan etiketli hücrelerin tarafsız segmentasyonu ve hücre yayılması sırasında lamellipodia dinamiklerinin nicel analizi için açık kaynaklı bir hesaplama aracı sunuyoruz.

Özet

Hücre yayma, medyada asılı bir hücrenin bir substrata bağlandığı ve yuvarlanmış bir şekilden ince ve yayılmış bir şekle düzleştirmesi dinamik bir işlemdir. Hücre-substrat ekini takiben, hücre gövdesinden yayılan ince bir lamellipodia tabakası oluşturur. Lamellipodia'da, globüler aktin (G-actin) monomerleri plazma zarına doğru iten yoğun bir filamentli aktin (F-actin) meshwork'e polimerize olur ve böylece hücrenin yayılması için gereken mekanik kuvvetleri sağlar. Özellikle, lamellipodia'daki aksin polimerizasyonunu kontrol eden moleküler oyuncular, hücre göçü ve endositoz gibi diğer birçok hücresel süreç için gereklidir.

Yayılan hücreler tüm hücre çevresini kapsayan ve sürekli olarak dışa doğru genişleyen sürekli lamellipodia oluşturduğundan, hücre yayma tahlilleri lamellipodial çıkıntıların kinetiğini değerlendirmek için etkili bir araç haline gelmiştir. Hücrenin yayılan tahlillerinin birkaç teknik uygulaması geliştirilmiş olsa da, iş akışının hem adım adım protokol hem de veri analizi için hesaplama araçlarını içerecek ayrıntılı bir açıklaması şu anda eksiktir. Burada, hücre yayılma tahlilinin deneysel prosedürlerini açıklıyoruz ve yayılma sırasında hücre kenar dinamiklerinin nicel ve tarafsız analizi için açık kaynaklı bir araç sunuyoruz. Farmakolojik manipülasyonlar ve/veya gen susturma teknikleri ile birleştirildiğinde, bu protokol lamellipodial çıkıntıları düzenleyen moleküler oyuncuların geniş ölçekli bir ekranına tabidir.

Giriş

Lamellipodial çıkıntılar, göç eden bir hücrenin önünde oluşan belirgin sitoskeletal yapılardır. Lamellipodia'da, Arp2/3 kompleksi ve forminlerin yardımıyla aktinin polimerizasyonu, plazma zarına1,2'ye karşı iten hızlı büyüyen dallı bir aksin meshwork oluşturur. Aktüen meshwork tarafından oluşturulan itme kuvveti, hücreyi fiziksel olarakileriye doğru iterek 1,3,4,5. Arp2/3 kompleksinin tükenmesi veya lamellipodial çıkıntılar için gerekli sinyal yollarının bozulması genellikle hücre gö....

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Protokol

1. Hücre Tohumlama

NOT: Açıklanan hücre yayma protokolü, PH-Akt-GFP (PIP3 /PI(3,4)P2için floresan belirteç) ifade eden fare embriyonik fibroblastları (MEF'ler) kullanılarak gerçekleştirildi. Bu hücre hattı, CRISPR aracılı gen düzenleme ile PH-Akt-GFP (Addgene #21218) için bir ifade yapısı genomik olarak entegre edilmesiyle oluşturulmuştır. Bununla birlikte, geçici olarak ifade edilen veya genoma entegre edilen diğer floresan belirteçler de bu testte kullanılabilir. En iyi görüntü segmentasyonu için sitoplazmada eşit olarak dağıtılan floresan belirteçler kullanmanızı öneririz, örneğin sitosoleik GFP.

  1. ....

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Sonuçlar

Yukarıdaki protokol, yayılan hücrelerin canlı hücre görüntülemesi için deneysel prosedürleri ve hücre yayma dinamiklerinin nicel analizi için bir hesaplama aracını açıklar. Hesaplama aracı, hücre lideri kenarındaki akrin polimerizasyon makinelerini düzenleyen moleküler oynatıcıları tanımlamak için düşük veya yüksek aktarım hızı biçiminde kullanılabilir.

Deneysel yordamların şematik gösterimi Şekil 1'de tasvir edilir. Test yayılan hücre, eGFP25

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Tartışma

Açıklanan hücre yayma tahlili, çoğu hücre yayma protokolünde eksik olan morfolojik değişikliklerin(örneğin, hücre büyüklüğü ve şekli) ve hücre kenar hareketlerinin(örneğin, çıkıntı hızı ve geri çekme sıklığı) sürekli izlenmesini sağlar19,24. Yaygın olarak kullanılan son nokta hücre yayma tahlilleri hücre yayılma hızının belirlenmesine izin verirken, bu tahliller hücre kenar hareketlerinin zamansal dinamiklerini çözememektedir. Zamansal bilgi eks.......

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Açıklamalar

Yazarların açıklayacak bir şeyi yok.

Teşekkürler

Bu çalışma, Connaught Fund New Investigator Award to S.P., Canada Foundation for Innovation, NSERC Discovery Grant Program (RGPIN-2015-05114 ve RGPIN-2020-05881), Manchester Üniversitesi ve Toronto Üniversitesi Ortak Araştırma Fonu ve Toronto Üniversitesi XSeed Programı tarafından desteklenmiştir.

....

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Malzemeler

Bu makalede kullanılan malzemelerin listesi
AdŞirketKatalog numarasıYorumlar
% 0.05 Tripsin (% 0.05), 0.53 mM EDTAWisent Bioproducts325-042-CL
10.0 cm Petri Kabı, Polistiren, TC İşlemli, HavalandırmalıStarstedt83.3902
15 mL Yüksek Berraklıkta PP Santrifüj Tüpü, Konik Tabanlı, Kubbe Contalı Vidalı Kapaklı, SterilFalcon352097
22 mm x 22 mm Lamel Çekirdek Teknolojileri için 1 Kuyulu Chamlide CMSCM-S22-1
35 mm TC ile işlenmiş Kolay Kavramalı Stil Hücre Kültürü KabıFalcon353001
50 mL Santrifüj Tüpü, Şeffaf, Tapa ContaYuvası602002
6.0 cm Hücre Kültürü Kapları, Artan Hücre Bağlanması için İşlem Görmüş, Steril VWR10861-658
Arp2/3 Kompleks İnhibitör I, CK-666Millipore Sigma182515
Kamera, Prime 95B-25MMFotometri
Dimetil Sülfoksit, Steril BioShopDMS666
DMEM, 1x, 4.5 g/L Glikoz, L-Glutamin, Sodyum Pirüvat ve Fenol Kırmızısıile Wisent Bioproducts319-005 CL
DMEM/F-12, HEPES, Fenol Yok KırmızıGibco11039021
D-PBS, 1XWisent Biyoürünler311-425 CL
Fetal Sığır SerumuWisent Bioproducts080-110
Fiji SoftwareImageJ
HEPES (1 M)Gibco15630080
İnsan Plazma Fibronektin Saflaştırılmış Protein 1 mgMillipore SigmaFC010
Daldırma YağıCargille16241
L-Glutamin Çözeltisi (200 mM)Wisent Bioproducts609-065-EL
MEM Esansiyel Olmayan Amino Asit Çözeltisi (100X)Gibco11140050
Mikro Kapaklı Camlar, Kare, No. 11/2 22 x 22 mmVWRCA48366-227-1
Mikroskop Gövdesi, Eclipse Ti2-ENikon
Objektif, CFI Plan Apo Lambda 60X YağNikonMRD01605
Penisilin-StreptomisinSigmaP4333
İplik Diski, Tepe Işığı V2CrestOptics
SpyderAnaconda
Sahne üstü inkübatörTokai Hit
İstatistik Yazılımı, PrizmaGraphPad
Cımbız, Stil 2Elektron Mikroskobu Bilimleri78326-42

Kaynaklar

  1. Mullins, R. D., Heuser, J. A., Pollard, T. D. The interaction of Arp2/3 complex with actin: Nucleation, high affinity pointed end capping, and formation of branching networks of filaments. Proceedings of the National Academy of Sciences. 95 (11), 6181-6186 (1998).
  2. Yang, C., Czech, L., Gerboth, S., Kojima, S., Scita, G., Svitkina, T.

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Yeniden basım ve izinler

Daha fazla makale keşfet

Lamellipodial UzantılarAktin PolimerizasyonuHücre Yayılım AnaliziKonfokal MikroskopiOtomatize Görüntü AnaliziFare Embriyonik FibroblastlarıArp2/3 İnhibisyonu