Yöntem makalesi

Farelerde İçSel Kardiyak Pacemaking Kusurlarını Belirlemek için Sinoatrial Düğüm Ateşleme Hızının Mikroelekrod Dizisi Kaydı

DOI:

10.3791/62735

⸱

5 Temmuz 2021

 ,  ,  , 
1Department of Biological Sciences, Southern Methodist University

Bu makalede

Özet

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Bu protokol, farelerdeki hız yapma kusurlarını tanımlamak için tüm sinoatriyal düğüm dokusunun mikroelekrod dizi kaydını kullanarak içsel kardiyak ateşleme hızını ölçmek için yeni bir metodoloji tanımlamayı amaçlamaktadır. Farmakolojik ajanlar, içsel tempo yapımı üzerindeki etkilerini incelemek için bu yöntemde de tanıtılabilir.

Özet

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Sağ kulakçıkta bulunan sinoatriyal düğüm (SAN), kalbin kalp pili hücrelerini içerir ve bu bölgenin işlev bozukluğu taşikardi veya bradikardiye neden olabilir. Kardiyak tempo oluşturma kusurlarının güvenilir bir şekilde tanımlanması, oran açıklarını maskeleyebilen otonom sinir sisteminin etkisini büyük ölçüde önleyerek iç kalp atışlarının ölçülmesini gerektirir. İntrinsic kardiyak kalp pili fonksiyonunu analiz etmek için geleneksel yöntemler, in vivo kalp atış hızlarını ölçmek için ilaç kaynaklı otonomik blokajı, içsel kalp atışlarını ölçmek için izole kalp kayıtlarını ve sponyatrial kalp pili hücrelerinin sinoatrial şeridini veya tek hücreli patch-clamp kayıtlarını spontan eylem potansiyel ateşleme hızlarını ölçmek için içerir. Ancak, bu daha geleneksel teknikler teknik olarak zor ve gerçekleştirilmesi zor olabilir. Burada, farelerden tüm montajlı sinoatriyal düğüm preparatlarının mikroelekrod dizisi (MEA) kayıtlarını gerçekleştirerek içsel kardiyak ateşleme hızını ölçmek için yeni bir metodoloji sunuyoruz. MEA'lar, in vitro hücre dışı alan potansiyellerini kaydetmek için ızgara benzeri bir desende düzenlenmiş birden fazla mikroelekroddan oluşur. Burada açıklanan yöntem, içsel kalp atış hızlarını kaydetmek için önceki yaklaşımlardan nispeten daha hızlı, daha basit ve daha kesin olmanın ve aynı zamanda kolay farmakolojik sorgulamaya izin vermenin birleşik avantajına sahiptir.

Giriş

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Kalp, beyinden kaynaklananlar gibi hem kardiyak hem de dışsal etkiler tarafından yönetilen karmaşık bir organdır. Sinoatrial düğüm (SAN), kalp pili hücrelerini (sinoatrial hücreler veya SA hücreleri olarak da adlandırılır) memeli kalp atışının başlatılmasından ve sürekliliğinden sorumlu olan kalp pili hücrelerini barındıran tanımlanmış bir bölgedir1,2. İç kalp atış hızı, kalp pili hücrelerinin diğer kardiyak veya nöro-humoral etkilerden etkilenmeden yönlendirdiği hızdır, ancak insanlarda ve elektrokardiyogramlar gibi canlı hayvanlarda geleneksel kalp atış hızı önlemleri kalp üzerindeki hem kalp pilini hem de sinirsel etkileri yansıtır. SA hücreleri üzerindeki en dikkat çekici sinirsel etki, vücudun fizyolojik gereksinimlerini karşılamak için ateşleme kalıplarını sürekli olarak modüle eden otonom sinir sisteminden3. Bu fikri destekleyen, hem sempatik hem de parasempatik projeksiyonlar SAN4yakınında bulunabilir. İntrinsic kardiyak sinir sistemi (ICNS), ganglionlu pleksilerin, özellikle sağ atriada, SAN5,6aktivitesini içselleştirdikleri ve düzenledikleri bir başka önemli sinirsel etkidir.

Kalp pilimleme açıklarını anlamak klinik olarak önemlidir, çünkü işlev bozukluğu birçok kardiyak bozukluğun altında yatan ve diğer komplikasyonların riskine katkıda bulunabilir. Hasta sinüs sendromu (SSS), uygun tempo yapımını engelleyen sinoatriyal düğümün işlev bozukluğu ile karakterize bir hastalık kategorisidir7,8. SSS sinüs bradikardi, sinüs duraklamaları, sinüs arrest, sinoatrial çıkış bloğu ve alternatif bradyarrythmias ve tachyarrhythmias9 ile sunulabilir ve artan embolik inme riski ve ani ölüm8,10gibi komplikasyonlara yol açabilir. Ani kardiyak ölüm riski artan ve ventriküler fibrilasyon ile işaretlenmiş bir kardiyak bozukluk olan Brugada sendromu olanlar, komorbid SAN disfonksiyonu varsa aritmojenik olaylar için daha fazla risk altındadır11,12. Sinoatriyal disfonksiyonun kalbin ötesinde fizyolojik sonuçları da olabilir. Örneğin, SSS'nin serebral hipoperfüzyon nedeniyle bir hastada nöbetleri tetiklediği gözlenmiştir13.

Sinoatriyal tempo yapma açıklarını tanımlamak için, otonom sinir sisteminin veya humoral faktörlerin etkisi olmadan SAN'ın aktivitesi ölçülerek içsel kalp atış hızlarının belirlenmesi gerekir. Klinik olarak, bu farmakolojik otonomik blokaj14ile yaklaşık olarak kullanılabilir, ancak aynı teknik memeli modellerinde içsel kardiyak fonksiyon15,16' yı incelemek için de uygulanabilir. Bu yaklaşım, katkıda bulunan sinirsel etkilerin büyük bir kısmını bloke ederken ve in vivo kardiyak muayeneye izin verirken, kalp üzerindeki tüm dışsal etkileri tamamen ortadan kaldırmaz. Hayvan modellerinde içsel kardiyak fonksiyonu incelemek için kullanılan bir başka araştırma tekniği, tipik olarak elektrogramlar, volta veya epikardiyal multielekrod dizileri17 , 18 , 19,20kullanılarak ölçümler içeren Langendorff perfüzyonlu kalpler kullanılarak izole edilmiş kalp kayıtlarıdır. Bu teknik kalbi vücuttan çıkarmayı içerdiğinden kardiyak fonksiyona daha spesifik olsa da, ölçümler hala içsel kalp atış hızı ölçümlerini etkileyebilecek mekano-elektrikli otoregülatör mekanizmalardan etkilenebilir21. İzole kalp kayıtları da ICNS 5,6,22,23aracılığıyla otonom düzenlemeden etkilenebilir. Ayrıca, kalp fonksiyon ölçümleri için kritik olan kalbin fizyolojik olarak ilgili bir sıcaklığını korumak, izole kalp yaklaşımlarında zor olabilir20. SAN fonksiyonunu incelemek için daha doğrudan bir yöntem, SAN dokusunu özellikle izole etmek ve aktivitesini ölçmektir. Bu, SAN şeritleri (izole SAN dokusu) veya izole SAN kalp pili hücreleri24,25aracılığıyla gerçekleştirilebilir. SAN çok küçük ve yüksek tanımlı bir bölge olduğu için her ikisi de yüksek derecede teknik eğitim gerektirir ve doğru yapılmazsa ayrışma hücrenin genel sağlığına zarar verebileceğinden hücre izolasyonu daha da büyük bir zorluk oluşturur. Ayrıca, bu teknikler bireysel kayıt mikroelektrodlarını kullanarak dokudan veya hücrelerden başarılı bir şekilde kayıt yapmak için uzman elektrofizyolojik beceriler gerektirir.

Bu protokolde, içsel kalp atış hızı ölçümleri elde etmek için bir mikroelektod dizisi (MEA) kullanarak SAN in vitrosunu kaydetme tekniğini açıklıyoruz. Bu yaklaşım, yoğun elektrofizyolojik becerilerden yoksun araştırmacılar için son derece spesifik elektrofizyolojik kayıtları erişilebilir hale getirme avantajına sahiptir. MEA'lar daha önce birincil kardiyomiyosit kültürlerinde kardiyomiyosit fonksiyonunu incelemek için kullanılmıştır26,27,28,29,30,31,32, kalp tabakaları33,34,35,36,37,38,39ve doku bütün binekler40, 41,42,43,44,45,46,47. SAN dokusu41,42'dekialan potansiyellerini incelemek için daha önce de çalışma yapılmıştır. Burada, murine içSEL SAN atış hızlarını kaydetmek ve analiz etmek için MEA'yı kullanmak için bir metodoloji sunuyoruz. Ayrıca, voltaj kapılı bir K+ kanal engelleyici olan 4-aminopyridinin (4-AP) etkilerini gösteren bir örnek deney sağlayarak ilaçların SAN iç ateşleme oranları üzerindeki farmakolojik etkilerini test etmek için bu tekniğin nasıl kullanılabileceğini açıklıyoruz. Tanımlanmış anatomik yer işaretlerini kullanarak, diğer yöntemlerde gerekli olan geniş doku diseksiyonlarını veya hücre izolasyonlarını yapmak zorunda kalmadan SAN'ı doğru bir şekilde kaydedebiliriz. MEA maliyet-yasaklayıcı olsa da, kayıtlar çok çeşitli klinik ve fizyolojik araştırma uygulamalarında kullanılabilecek son derece spesifik ve güvenilir pacemaking önlemleri sağlar.

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Protokol

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Burada açıklanan tüm deneysel prosedürler, Güney Metodist Üniversitesi Kurumsal Hayvan Bakım ve Kullanım Komitesi (IACUC) tarafından onaylandığı şekilde Ulusal Sağlık Enstitüleri'nin (NIH) yönergelerine uygun olarak gerçekleştirilmiştir.

1. Kayıt için multielekrod dizisinin (MEA) kaplanması

  1. 25 mM borat tamponu yapın.
    1. 0.953 g Na2B4O7·10 H2O'nu 80 mL damıtılmış suda çözün.
    2. pH'ı HCl ile 8,4'e ayarlayın ve ardından 100 mL'lik son hacme damıtılmış su ekleyin.
  2. %0,1 stok polietilenimin (PEI) çözeltisi yapın.
    1. %1 PEI çözeltisi yapmak için 4,9 mL damıtılmış suya %50 (w/v) PEI'nin 100 μL'sini ekleyin.
    2. 25 mM borat tamponunun 9 mL'sine %1 PEI çözeltisinin 1 mL'sini ekleyerek% 1 PEI çözeltisini borat tamponunda% 0.1'e seyreltin.
  3. Pipet ~1 mL% 0.1 PEI çözeltisinin mikroelektoz dizisi (MEA) kabına, böylece elektrotlar tamamen kaplanır (Şekil 1A ve 1B).
    NOT: MEA'nın mikroelekrodları tipik olarak platin siyah veya karbon nanotüpten oluşur ve poliimid (veya akrilik) ile yalıtılır; her iki malzeme de hidrofobiktir. MEA'yı PEI gibi katyonik bir polimerle kaplayarak, hidrofobik MEA yüzeyi daha hidrofilik hale getirilir ve doku örneklerinin MEA yüzeyiyle daha iyi temas etmesini sağlar (Şekil 1A1).
  4. Buharlaşmayı azaltmak için MEA kabını termoplastik filmle örtün ve MEA'yı oda sıcaklığında bir gece bırakın (Şekil 1C).
  5. PEI çözeltisini bir pipet kullanarak MEA kabından epire edin, elektrotlara zarar verebilen elektrot ızgarasına dokunmamaya dikkat edin ve ardından damıtılmış suyla ≥4 kez durulayın (Şekil 1D).
  6. PEI kaplı MEA'yı 1-2 mL ultra saf su altında saklayın ve gerektiğinde 4 °C'de termoplastik filmle kapatın. Alternatif olarak, kaplamalı MEA'yı ultra saf suyla dolu bir behere batırarak saklayın (Şekil 1E).
    NOT: PEI kaplama işleminin ilk kullanımından önce MEA için yalnızca bir kez gerçekleştirilmesi ve her kayıt oturumundan sonra MEA'nın ultra saf suya batırılmış olarak depolanması gerekir.

2. Doku diseksiyonu için eksiksiz Tyrode çözümünün hazırlanması

  1. Diseksiyon için 1.000 mL komple Tyrode çözümü yapın; ilk olarak, 800 mL ultra saf suya 8.1816 g NaCl ekleyin.
  2. Çözeltiye aşağıdaki miktarda kimyasal ekleyin: 0.4025 g KCl; 0.1633 g KH2PO4; 1.1915 g HEPES; 0.9999 g glikoz; 0.0952 g MgCl2; 0.2646 g CaCl2·2H2O.
  3. NaOH ile pH'ı 7,4'e ayarlayın ve ardından toplam hacim 1.000 mL olana kadar ultra saf su ekleyin.
    NOT: Komple Tyrode çözeltisinin son bileşimi aşağıdaki olacaktır (mM):140 NaCl, 5.4 KCl, 1.2 KH2PO4, 5 HEPES, 5.55 glikoz, 1 MgCl2, 1.8 CaCl2.

3. Oksijenli Tyrode'un çözümünü kayıt için hazırlama

  1. Tyrode'un çözümünden 500 mL yapın; 400 mL ultra saf suya 4.003 g NaCl ekleyin.
  2. Çözeltiye aşağıdaki miktarlarda kimyasal ekleyin: 0.651 g NaHCO3; 0.042 g NaH2PO4; 0.132 g CaCl2·2H2O; 0.149 g KCl; 0.0476 g MgCl2; 0.999 g glikoz.
  3. pH'ı HCl ile 7,4'e ayarlayın ve ardından toplam hacim 500 mL olana kadar ultra saf su ekleyin.
  4. Kayda başlamadan önce çözeltiyi oda sıcaklığında en az 30 dakika karbojen ile oksijene edin.
    NOT: Tyrode çözeltisinin son bileşimi aşağıdaki olacaktır (mM): 137 NaCl, 15.5 NaHCO3, 0.7 NaH2PO4, 1.8 CaCl2, 4 KCl, 1 MgCl2, 11.1 glikoz. Bu Tyrode'un çözümü, Komple Tyrode'un diseksiyon için kullanılan çözümünden biraz farklı bir bileşime sahiptir.

4. Farmakolojik modülasyon için 4-aminopyridin (4-AP) çözeltisinin hazırlanması

  1. 4-AP'nin 1 mM çalışma çözümünü yapın; Adım 3'ten 200 mL'ye 18,82 mg 4-AP ekleyin.
  2. Deneyden önce 4-AP çözeltisini en az 30 dakika oksijene uzatın.

5. Petri kabının diseksiyon için hazırlanması

  1. Silikon elastomer bileşenlerini, tabanın kürleme maddesine 10:1 oranında (ağırlığa göre) karıştırın.
  2. 60 mm çapında bir Petri kabına ~15 mL silikon elastomer karışımı dökün.
  3. Elastomer'in kullanmadan önce oda sıcaklığında 48 saat kürlemesine izin verin.
    NOT: Silikonlu Petri kabı gelecekteki diseksiyonlar için yeniden kullanılabilir.

6. Sinoatriyal düğümün (SAN) diseksiyon

  1. SAN diseksiyonu için heparinize Komple Tyrode'un çözümünü hazırlayın.
    1. 40 mL'lik Tam Tyrode çözeltisine 400 μL heparin (1.000 USP/mL) ekleyin ve 37 °C'lik su banyosunda ısıtın.
  2. Fareye intraperitoneally olarak 200-300 μL heparin (1000 USP / mL) enjekte edin ve hayvanın 10 dakika oturmasına izin verin.
  3. Heparinize fareyi aşırı dozda izotilaz ile ötenazi.
    1. Fareyi delikli plastik bir tüpün içindeki bir filtre kağıdına 200-300 μL sıvı izofluran ekleyerek üretilen izofluran buharlarını içeren küçük bir cam odaya yerleştirin.
      NOT: İzofluran cilt tahrişi neden olabilir ve cilt yoluyla da emilebilir, sıvı doğrudan fareye temas olmamalıdır. Bu nedenle, izofluran ıslatılmış mendil, uygulama için delikli bir tüpe yerleştirilir.
    2. Hareketin ve nefes alma çabasının durdurulması ve bir parmak sıkışma refleksinin olmaması ile ölümü doğrulayın. Ölüm genellikle odaya yerleştirildiden sonra yaklaşık 1-2 dakika sürer.
      NOT: Ölüme genellikle idrara çıkma eşlik edilir.
  4. Fareyi pençeleri uzatılmış bir diseksiyon tahtasına bir geri zeka konumuna getirin ve pençeleri 1 inç uzunluğunda, 23 kalibrelik şırınga iğneleri kullanarak tahtaya sabitlayın. Daha sonra cerrahi makas kullanarak ve köklerdeki kürkü keserek göğüs kafesinin tabanının çevresindeki kürkü çıkarın.
    NOT: Diseksiyon panosu için polistiren soğutucu kapaklar kullanılabilir.
  5. Cildi bir hemostatla tutarken, göğüs kafesinin tabanının hemen altındaki deride sol costal kemerden sağ costal kemere kadar enine bir kesi yapmak için cerrahi makas kullanın (Şekil 3A).
  6. Peritonun cerrahi makasla açılmasını kesin ve karaciğeri diyaframdan dikkatlice ayırın, aşırı kanamaya neden olacak karaciğeri çentiklememeye dikkat edin (Şekil 3B). Torasik boşluğu ortaya çıkarmak için toraks boyunca diyaframı inkübe edin (Şekil 3C-D).
  7. Cerrahi makas kullanarak, kalbi açığa çıkarmak için göğüs kafesinin yanal duvarlarını costal kemerlerin kenarlarından köprücük kemiğine kadar kesin, kalbe zarar vermemek için dikkatli olun (Şekil 3D). Daha sonra göğüs kafesini omuza sabitlemek için 23 kalibrelik bir şırınga iğnesi kullanın, yerinde ve cerrahi alanın dışında tutun.
  8. Sıcak (37 °C) heparinize Komple Tyrode çözeltisini nemli tutmak için kalbe damlatmak için bir transfer pipeti kullanın.
    NOT: Kalbin kurumasına izin vermeyin.
  9. Akciğerleri ekstra ince Graefe apartmaları ile tutarak ve ameliyat makası ile nefes borusunun koparak çıkarın (Şekil 3E).
  10. Ekstra ince Graefe önlükleri ile kalbin tepesini tutun ve cerrahi makasla aort ve venae kavaeyi keserek çıkarın. Kalbi kürlenmiş silikon elastomer (Şekil 4A) içeren bir Petri kabına aktarın ve kalbi 2-3 mL sıcak (37 °C) heparinize Komple Tyrode çözeltisi ile yıkamak için bir transfer pipet kullanın.
    NOT: SAN'ı içeren sağ aryanın hassas arka duvarına ve bağlı sağ atriyal damarlara zarar vermemeye dikkat edin. Kalbi Komple Tyrode'un çözeltisi ile yıkamak kalbin kurumasına engel olur, ancak diseksiyon sırasında görünürlüğü bozacağı için kalbi çözeltiye tamamen batırmaz.
  11. Kalbi deneycinin sağında sağ atriyumla ve deneycinin sol kulakçıkla yönlendirin.
    NOT: İskemiye bağlı yaralanmaları önlemek için SAN dokusunun diseksiyonu hızlı bir şekilde yapılmalıdır.
  12. Kalbin tepesini bir diseksiyon pimi ile yemeğe takın. Daha sonra, dumont #2 laminektomi tokaları ile alt vena kava tutarken, sağ atriyumdaki konumlarını bulmak için alt ve üstün vena kavasından 22 G'lik bir şırınga iğnesi yerleştirin, bu da SAN'ın yaklaşık konumunu tanımlar (alt ve üstün vena kava arasındaki doku yamasında bulunur (Şekil 4B).
  13. Küçük diseksiyon pimleri kullanarak, sol ve sağ atriyal ekleri yemeğe sabitlayın.
    1. Sol atriyal apandisiti Dumont #2 laminektomi tokaları ile tutarken, yerinde tutmak için sol atriyal ekten bir diseksiyon pimi koyun.
    2. Dumont #55 tokaları ile doğru atriyal uzantıyı tutarken, yerinde tutmak için sağ atriyal ekten bir diseksiyon pimi koyun.
      NOT: İstenirse sol ve sağ atriyal ekleri tutmak için aynı tip tostikinler kullanılabilir.
  14. Venae cavae'yi kapsayan şırınga iğnesini çıkarın.
  15. Kalpten kan açığa çıkarmak için Castroviejo makasını kullanarak ventriküller boyunca enine bir kesi yaparak kalbin tepesini (yani alt yarısını) çıkarın (Şekil 4C). Daha sonra, bir transfer pipet ile sıcak (37 °C) heparinize Komple Tyrode çözeltisi ekleyerek kalbi yıkayın.
  16. Castroviejo makasını kullanarak atriyoventriküler septum boyunca kesiği atria'dan daha yakın tutun. Atria ventriküllerden ayrılana kadar atriyoventriküler septum boyunca kesmeye devam edin.
  17. Sol atriyumu çıkarmak için interatrial septum boyunca kesin.
  18. Düz bir şekilde döşenmesi için sağ atriyumun çevresine diseksiyon pimleri yerleştirin (Şekil 4D). Castroviejo makasını kullanarak atriyumdan kalan yağları, damarları veya dokuyu çıkarın.
  19. San'ı sağ atriyumda bulun, bu yönde yaklaşık olarak üstün vena kava (üstte), alt vena kava (altta) ve cristae terminali (solda) ile sınırlanmıştır (Şekil 4D).
    NOT: Crista terminalis, sağ atriyal ek ile SAN arasında koyu kas sırtı olarak görünür. Genellikle SAN arteri SAN boyunca geziniyor görülebilir (Şekil 4D).

7. MEA sistemini kayıt için hazırlama

  1. Tyrode'un çözeltisini (adım 3'ten itibaren) giriş çözelti şişesine (Şekil 5C) ekleyin ve karbojen gazı akışını açarak oksijen verin (Şekil 5A).
    NOT: Kayıt için kullanılan Tyrode'un çözümü, komple Tyrode'un diseksiyon için kullanılan çözeltisinden kompozisyon olarak biraz farklıdır.
  2. Gazı nemlendirmek için kullanılan konik şişedeki kabarcıkları gözlemleyerek karbojen akışını doğrulayın (Şekil 5B) ve giriş çözelti şişesi (Şekil 5C) .
  3. Peristaltik pompa giriş borularını (Şekil 5D) Tirot'un kayıt çözeltisine (Şekil 5C ) yerleştirin. Ardından, peristaltik pompa çıkış borularını toplama şişesine yerleştirin (Şekil 5I).
  4. Peristaltik pompayı 25 rpm'ye ayarlayın, bu da 2 mL/ dk akış hızı verir ve pompayı çalıştırın. Tampon sızıntısı veya taşması için sistemi kontrol edin.
  5. Sıcaklık kontrol cihazını farelerin fizyolojik sıcaklığı olan 37 °C'ye ayarlayın (Şekil 5E).

8. Kalp dokusunu MEA ızgarasına yerleştirme

  1. Parçalanmış SAN dokusunu bir boya fırçası yardımıyla (Şekil 6A) diseksiyon Petri kabından MEA ızgarasına aktarın (Şekil 1A1).
    1. Ters bir mikroskop altında bakarken, dokuyu yumuşak bir boya fırçası ile hafifçe konumlandırın, böylece SAN bölgesi elektrot ızgarasını kaplar.
    2. Elektrot ızgarası üzerinde düz bir şekilde uzandığından emin olmak için dokuyu gerektiği gibi yeniden konumlandırın ve elektrotlarla iyi temas edin.
      NOT: Elektrot ızgarasına zarar vermemek için dokuyu hareket ettirmek için yumuşak bir boya fırçası gereklidir.
  2. Doku doğru yerleştirildikten sonra, ağı dokunun üzerine yerleştirmek için kemik tokaları (veya herhangi bir kavisli toka) kullanın (Şekil 6A) . Daha sonra her şeyi yerinde tutmak için arp çapasını (Şekil 6A) mesh üzerine yerleştirmek için kemik tokalarını kullanın (Şekil 6B).
  3. Tek tek elektrotların aktivitesinin kayıt sırasında anatomik konumlarıyla ilişkilendirilebilmesi için mea üzerindeki dokunun konumunun bir resmini çekin. Bu, bir akıllı telefonu ters mikroskop hedefine kadar tutarak veya ekli bir mikroskop kamerası kullanılarak yapılabilir.
    NOT: Fotoğrafı çektikten sonra MEA'nın yönü değiştirilmezse, sol üst elektrot kayıt sırasında ilk kanal (Ch1) olarak görünecektir.
  4. MEA kabını konektör plakasına (Şekil 5F ve 6C)yerleştirin ve harp dilimi ankrajını bozmadan perfüzyon kapağını(Şekil 6C)MEA kabına dikkatlice yerleştirin. Perfüzyon kapağı bir laboratuvar bandı parçası kullanılarak daha da sabitlenebilir (Şekil 6C).
    NOT: Ayarlanabilir çözelti giriş ve çıkış borularına sahip olmanın yanı sıra, kapak ayrıca gaz teslimatı için bir bağlantı noktasına sahiptir (Şekil 6C). Ek olarak, referans elektrot halkası kapaktan geçer (Şekil 6C).
  5. Dokunun elleçlemeden iyileşmesine ve kayıttan önce 15-20 dakika odaya alışmasına izin verin.

9. Kayıt için veri toplama protokolünü ayarlama

NOT: Aşağıdaki adımda, spontan beat kaydı için yazılım protokolünün açılması ve kayıt koşullarının tanımlanması açıklanmaktadır. Bu adımların özellikleri, kullanılan belirli yazılıma bağlı olarak değişebilir, ancak genel anahat aynı kalmalıdır.

  1. Amplifikatörü açın (Şekil 5G) ve bilgisayardaki yazılımdaki kayıt için bir iş akışı ayarlayın (Şekil 5H).
    1. Yazılımı açın ve İş Akışı'nı tıklatın.
    2. Yeni Klasör Aç 'ıseçin.
    3. Şablonlardan klasörünü açın.
    4. 64MD1-1920X1080 'i seçin (masaüstünüzün çözünürlüğüne bağlı olarak).
    5. QT klasörünü açın.
    6. Spontan kayıt klasörünü açın.
    7. Beat_recording.moflo şablon seçin ve açın (Şekil 7A).
  2. İstenilen kayıt koşullarına göre izleme sayısını, izleme süresini, izleme aralığını, giriş voltajını, örnekleme hızınıvb.
    NOT: Beat frekansı ve ara veri toplama için genellikle 2,9 mV giriş aralığı voltajı, 1-Hz yüksek geçiş filtresi, 1000 Hz düşük geçiş filtresi ve 20 kHz örnekleme hızı kullanın.
  3. Deneyin ilaç uygulama öncesi ve sonrası gibi farklı aşamalarını veya koşullarını işaretlemek için, istediğiniz gösterimleri eklemek için Ek Açıklamalar sekmesine tıklayın (Şekil 7C).
  4. Toplanacak verilerin dosya hedefini belirtmek için Depolamayı Etkinleştir kutusunu seçin ve Dosya adı değiştirici kutusuna istediğiniz dosya adını girin.

10. Kaydı gerçekleştirmek ve veri toplamak

  1. Kaydı başlatmak için edinme yazılımının en üst menü çubuğundaki Kaydet ve Yürüt düğmesini tıklatın. İzlemeler arasında 2 dakika aralıklarla 1 dakika süreyle 10 izleme için veri alın.
  2. Bu ilk izlerden, kayıt kanallarının çoğunun ≥ 0,5 mV sinyal genlikleri ve aynı ani aralıklarla sergilediğini doğrulayarak kaydedilen dalga formlarının sağlıklı ve yüksek kaliteli bir doku hazırlığı ile tutarlı olduğunu doğrulayın (Şekil 8).
    NOT: Anatomik konumlarına karşılık gelen bireysel mikroelekrodların aktivitesinin ve dalga formlarının ilk değerlendirmesi, dokuyu MEA'ya konumlandırdıktan sonra elde edilen resme atıfta bulunularak yapılabilir.
  3. İlaçların doku üzerindeki etkilerini ölçmek için, en üstteki menü çubuğundaki duraklat düğmesine tıklayarak ilk temel verileri aldıktan sonra kaydı duraklatın.
    NOT: Deneyin ilaç yanıt aşaması, Ek Açıklamalar sekmesine tıklayarak ve yukarıda açıklandığı gibi istenen gösterim eklenerek kayıtta not edilebilir (Şekil 7C).
  4. Pompayı duraklatın ve pompa giriş borularını normal kayıt çözümünden Tyrode'un istenen ilacı içeren çözeltisine geçirin.
    NOT: Örnek deneyde, Tyrode'un çözeltisi 1 mM 4-aminopyridin (4-AP) ile kullanılmıştır.
  5. Pompayı yeniden başlatın ve tekrar veri toplamaya başlamak için kaydı duraklatın.
  6. İlaçla aşılanan Tyrode'un çözeltisi dokuya ulaştıktan sonra, temel kayıtlar için daha önce olduğu gibi 10 iz kaydedin.
    NOT: İlaç kayıt odasına infüze olurken izlerin stabilize etmesi biraz zaman alacaktır. İlacın etki mekanizması kayıt stabilitesini de etkileyebilir. Geri dönüşümlü etki mekanizmalarına sahip ilaçlar için, aktivitenin sağlıklı dokunun bir göstergesi olan taban çizgisi seviyelerine geri yüklenmesini onaylamak için bir yıkama süresi de kaydedilmelidir.
  7. Kayıtları sonuçlandırmak için Durdur'a tıklayın.
  8. İlk kayıt kurulum prosedüründen sonra dokunun kayması durumunda mea üzerindeki dokunun mikroskop altında konumlandırılmasının son bir resmini çekin.

11. Kayıt sonrası kurulumun temizlenmesi

  1. MEA'yı temizleyin.
    1. Kaydı bitirdikten sonra, 1 mL mikropipette kullanarak kayıt solüsyonunu MEA kabından hafifçe çıkarın.
      NOT: Onlara zarar verebilecek MEA elektrotlarına temas etmemeye dikkat edin.
    2. Mesh ve arp ankrajını kemik kümesleri (veya kavisli kümesleri) ile çıkarın. Daha sonra, mea yüzeyinden dokuyu yerinden çıkarmak için bir boya fırçası kullanın, her zaman tek tek mikroelekrodlara dokunmamaya dikkat edin.
    3. Bir yıkama şişesi kullanarak, MEA kabını yaklaşık 3 ila 4 kez ultra saf suyla hafifçe durulayın.
    4. Temizlenmiş MEA'yı ultra saf suya batırılmış olarak 4 °C'de saklayın.
  2. Peristaltik pompadaki maksimum hız ayarını kullanarak ultra saf suyu en az 5 dakika çalıştırarak sistem borularını durulayın.
    NOT: Mantar büyümesini önlemek için temizlik sonrası borunun içinde su veya tampon çözeltisi bırakılmamalıdır.

12. SAN beat frekansını ölçmek için MEA kayıtlarının analiz edilmesi

  1. Kaydedilen kayıtlı veri dosyasını analiz yazılımının "Beat_frequency_analysis" şablonunda açın (Şekil 9) .
  2. Oynat düğmesine tıklayın ve veri kümesini görselleştirmek ve uygun analiz parametreleri atamak için tüm kaydın çalışmasına izin verin.
    1. İzleme başına ortalama veya zaman başına ortalama olarak görüntülense de, verilerin istenen görüntüleme biçimi için binning penceresini seçin (Şekil 10A).
    2. Analize dahil edilecek kanalları seçin ve otomatik dalga biçimi tepe tanımlaması için istenen genlik maxima veya genlik minima eşik değerlerini ayarlayın (Şekil 10B).
      NOT: Bu adımda analiz için tek bir kanal, kanalların bir kombinasyonu veya 64 kanalın tümü seçilebilir (Şekil 9). Seçilen eşik değerleri dalga biçiminin maksima ve minima değerlerine çok yakınsa, bazı dalga formu zirveleri analiz yazılımı tarafından tanımlanamayabilir.
    3. Analize dahil edilecek ani artış öncesi ve sonrası süre miktarını ayarlayın.
      NOT: 50 ms ön çivi ve 100 ms ani artış sonrası ayarlar genellikle iyi çalışır (Şekil 10B).
  3. Analiz koşullarını ayarladıktan sonra, veri kümesini yeniden çalıştırın ve analiz parametrelerinin ani ayıklama için uygun olduğunu onaylamak için Oynat düğmesine tekrar tıklayın.
  4. Analiz için, hem deneyin temel döneminde hem de uyuşturucuya maruz kalma döneminde kanalların çoğunda her iz için kararlı dayak oranı gösteren en kararlı üç ardışık izi tanımlayın (Şekil 10A).
  5. Analiz için başlangıç ve bitiş izlemelerini belirtin ve analiz edilecek her izlemenin süresini girin (Şekil 9).
  6. Analize başlamadan önce, hem Dakika başına vuruş kaydet hem de Aralama aralığını kaydet ( Şekil10B) için etkinleştir kutularını seçin.
  7. Dosya adı değiştirici kutusuna istediğiniz dosya adını girin (Şekil 10B). Beat frekansı ve aralama aralığı için analiz edilen veriler ASCII (metin) biçiminde kaydedilir.
    NOT: Farklı koşulları (taban çizgisi ve ilaç yanıtı gibi) analiz etmek için her koşul için ayrı ayrı çalıştırılmalıdır.
  8. Analizi başlatmak için üst sekme çubuğundaki Yürüt ve Kaydet düğmesini tıklatın.
  9. Diğer uygulamaların verilerini vermek için Dakika başına vuruş kaydet ve Ara aralık kaydet (Şekil 10B)kutularını seçin. Dosya adı değiştirici kutusuna istediğiniz dosya adını girin (Şekil 10B) ve çözümlenen verileri seçili klasördeki ASCII metin biçiminde kaydetmek için Kaydet'i tıklatın.

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Sonuçlar

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Dokunun 15 dakika boyunca çanağa alışmasına izin verdikten sonra, 10 bir dakikalık izler kaydedilir. Şu anki protokolümüz bir saatten fazla bir süredir aktivite kaydediyor, ancak burada gösterilmeyen yayınlanmamış verilerde ≥4 saat boyunca kararlı atış düzenleri kaydettik. Deneysel bir hazırlık veri toplama için iyiyse, her kayıt kanalı belirli bir kanal için tekdüze şekilde tutarlı ve eşit aralıklı yinelenen dalga formları (yani sivri) sergilemelidir (Şekil 11D). Bu dalga şekilleri, içsel k...

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Tartışma

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Doku kırılgan olduğundan ve başarılı bir kayıt için sağlıklı doku gerektiğinden, SAN diseksiyon sürecini uygulamak ve mastering yapmak zorunludur. SAN diseksiyonu sırasında, dokunun uygun bölgesini elde etmek için doğru yönlendirme esastır. Bununla birlikte, diseksiyon işlemi sırasında kalbin orijinal yönelimi kolayca kaybolabilir, bu da bu çabayı zorlaştırır. Bu nedenle, doğru sol-sağ yönlendirmesini sağlamak için, atria görsel olarak denetlenmelidir. Tipik olarak, sağ atriyum daha şeffaf olma eğilimindedir, sol atriyum...

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Açıklamalar

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Yazarların açıklayacak bir şeyi yok.

Teşekkürler

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Bu çalışma Ulusal Sağlık Enstitüleri, R01NS100954 ve R01NS099188 hibe numaraları tarafından finanse edildi.

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Malzemeler

Bu makalede kullanılan malzemelerin listesi
AdŞirketKatalog numarasıYorumlar
4-AminopiridinSigmaA78403-25G
22 gauge şırınga iğnesiFisher Scientific14-826-5ADiseksiyon için kullanılır
23 gauge şırınga iğnesiFisher Scientific14-826-6CDiseksiyon için kullanılır
60mm Petri KaplarıGenesee Scientific32-105G
500mL Pyrex ŞişeFisher Scientific06-414-1CÇözeltileri depolamak için kullanılır
1000 mL Pyrex ŞişeFisher Scientific06-414-1DÇözeltileri depolamak için kullanılır
Kemik ForsepsGüzel Bilim Araçları16060-11
Kalsiyum klorür dihidrat (CaCl2· 2H < alt > 2 < / alt >)Sigma-AldrichC5080-500G
Karbojen (% 95 O< alt >2 < / alt >,% 5 CO< alt > 2 < / alt >)
Castroviejo Makas, 4 "Güzel Bilim Araçları15024-10
D - (+) - GlikozSigma-AldrichG7021-1KG
Veri Toplama BilgisayarıCPU: Intel Xeon veya Intel Core i7, Bellek: 8GB, HDD: 1TB, Grafik Kartı: NVIDIA veya Yerleşik, Ekran: 1920x1080
Diseksiyon MikroskobuJenco
Diseksiyon PimleriGüzel Bilim Araçları26002-20
Dumont #2 Laminektomi ForsepsGüzel Bilim Araçları11223-20
Dumont #55 ForsepsGüzel Bilimler Araçları11295-51
  Ekstra İnce Graefe ForsepsGüzel Bilim Araçları11152-10
Cam HazneliGrainger49WF30Fare ötenazi için kullanılır
Arp AnkrajKiti Warner Instruments  SHD-22CL / 15 WI 64-0247
HClFisher ChemicalsSA48-4pH dengeleme için kullanılır
HemostatGüzel Bilim Araçları13013-14
HeparinAurobindo Pharma Limited IDA, PashamylaramNDC 63739-953-25
HEPESSigma-AldrichH3375-250G
Ters MikroskopMoticAE2000
İzofluranPatterson Veteriner07-893-1389
Laboratuvar BandıFisher Scientific15-950
Diseksiyon Mikroskobu için IşıkDolan-JennerMI150DG 660000391014
Magnezyum klorür (MgCl2)Sigma-Aldrich208337-100G
MED64 Kafa AmplifikatörüMED64MED-A64HE1S
MED64 Ana AmplifikatörMED64MED-A64MD1A
MED64 Perfüzyon KapağıMED64MED-KCAP01
MED64 Perfüzyon Boru Tutucu KitiMED64MED-KPK02
MED64 ThermoConnectorMED64MED-CP04
Mesh  Warner Instruments640246
Mikroelektrot dizisi (MEA)Alpha Med ScientificMED-R515A
Mobius YazılımıWitWerx Inc.MED64
NaOHFisher ChemicalsS320-500pH dengeleme için kullanılır
Normal SalinUltigieneNDC 50989-885-17
Boya FırçasıFisher ScientificNC1751733
ParafilmGenesee ScientificPM-996
Peristaltik PompaGilsonF155009
Peristaltik Pompa BorusuFisher Scientific14-171-2981/8 '' İç Çap
PolietileniminSigmaP3143
Potasyum klorür (KCl)Sigma-AldrichP9333-500G
Potasyum fosfat monobazik (KH2< / sub>PO < sub>4< / sub>)Sigma-AldrichP5655-500G
Sodyum BikarbonatSigmaS6297
Sodyum klorür (NaCl)Fisher ScientificS671-3
Sylgruard Elastomer KitiDow Corning184 SIL ELAST KITI 0.5KG
Sodyum Fosfat MonobazikSigmaS6566
Sodyum tetraboratSigmaS9640
Cerrahi MakasGüzel Bilim Araçları14074-09
Transfer Pipetleri (3 mL dereceli)Samco Scientific225
için özel yazılım

Kaynaklar

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
  1. Marionneau, C., et al. Specific pattern of ionic channel gene expression associated with pacemaker activity in the mouse heart. Journal of Physiology. 562 (1), 223-234 (2005).
  2. Josea, A. D., Collison, D. The normal range and determinants of the intrinsic heart rate in man. Cardiovascular Research. (4), 160-167 (1970).
  3. Peters, C. H., Sharpe, E. J., Proenza, C. Annual Review of Physiology Cardiac Pacemaker Activity and Aging. Annual Review of Physiology. 82, 21-43 (2019).
  4. Keith, A., Flack, M. The form and nature of the muscular connections between the primary divisions of the vertebrate heart. Journal of Anatomy and Physiology. 41 (3), 172-189 (1907).
  5. Wake, E., Brack, K. Characterization of the intrinsic cardiac nervous system. Autonomic Neuroscience. 199, (2016).
  6. Fedele, L., Brand, T. The intrinsic cardiac nervous system and its role in cardiac pacemaking and conduction. Journal of Cardiovascular Development and Disease. 7 (4), 1-33 (2020).
  7. Mangrum, J. M., DiMarco, J. P. The evaluation and management of bradycardia. New England Journal of Medicine. 342 (10), 703-709 (2000).
  8. Adan, V., Crown, L. A. Diagnosis and treatment of Sick Sinus Syndrome. American Family Physician. 67 (8), 1725-1732 (2003).
  9. Semelka, M., Gera, J., Usman, S. Sick Sinus Syndrome: A Review. American Family Physician. 87 (10), 691-696 (2013).
  10. Zaragoza, M. V., et al. Exome sequencing identifies a novel LMNA splice-site mutation and multigenic heterozygosity of potential modifiers in a family with Sick Sinus Syndrome, dilated cardiomyopathy, and sudden cardiac death. PLoS ONE. 11 (5), 0155421(2016).
  11. Brugada, J., Campuzano, O., Arbelo, E., Sarquella-Brugada, G., Brugada, R. Present status of Brugada Syndrome: JACC State-of-the-Art Review. Journal of the American College of Cardiology. 72 (9), 1046-1059 (2018).
  12. Rollin, A., et al. Prevalence, characteristics, and prognosis role of type 1 ST elevation in the peripheral ECG leads in patients with Brugada syndrome. Heart Rhythm. 10 (7), 1012-1018 (2013).
  13. Patel, N., Majeed, F., Sule, A. A. Seizure triggered by Sick Sinus Syndrome. BMJ case reports. 4, 2017222011(2017).
  14. Knecht, S., et al. Impact of pharmacological autonomic blockade on complex fractionated atrial electrograms. Journal of Cardiovascular Electrophysiology. 21 (7), 766-772 (2010).
  15. Saba, S., London, B., Ganz, L. Autonomic blockade unmasks maturational differences in rate-dependent atrioventricular nodal conduction and facilitation in the mouse. Journal of Cardiovascular Electrophysiology. 14 (2), 191-195 (2003).
  16. Shusterman, V., et al. Strain-specific patterns of autonomic nervous system activity and heart failure susceptibility in mice. American Journal of Physiology - Heart and Circulatory Physiology. 282 (6), 51-56 (2002).
  17. Tse, G., Tse, V., Yeo, J. M., Sun, B. Atrial anti-arrhythmic effects of heptanol in Langendorff-perfused mouse hearts. PLoS ONE. 11 (2), 0148858(2016).
  18. Tse, G., et al. Quantification of beat-to-beat variability of action potential durations in Langendorff-perfused mouse hearts. Frontiers in Physiology. 9 (1578), 01578(2018).
  19. Avula, U. M. R., et al. Heterogeneity of the action potential duration is required for sustained atrial fibrillation. JCI Insight. 5 (11), 128765(2019).
  20. Jungen, C., et al. Impact of intracardiac neurons on cardiac electrophysiology and arrhythmogenesis in an ex vivo Langendorff system. Journal of Visualized Experiments. (135), e57617(2018).
  21. Quinn, A. T., Kohl, P. Cardiac mechano-electric coupling: Acute effects of mechanical stimulation on heart rate and rhythm. Physiological Reviews. 101 (1), 37-92 (2021).
  22. Ripplinger, C. M., Noujaim, S. F., Linz, D. The nervous heart. Progress in Biophysics and Molecular Biology. 120 (1-3), 199-209 (2016).
  23. Pauza, D. H., Pauziene, N., Pakeltyte, G., Stropus, R. Comparative quantitative study of the intrinsic cardiac ganglia and neurons in the rat, guinea pig, dog and human as revealed by histochemical staining for acetylcholinesterase. Annals of Anatomy. 184, 125-136 (2002).
  24. Golovko, V., Gonotkov, M., Lebedeva, E. Effects of 4-aminopyridine on action potentials generation in mouse sinoauricular node strips. Physiological Reports. 3 (7), 12447(2015).
  25. Sharpe, E. J., St. Clair, J. R., Proenza, C. Methods for the isolation, culture, and functional characterization of sinoatrial node myocytes from adult mice. Journal of Visualized Experiments. (116), e54555(2016).
  26. Doi, M., Ogawa, E., Arai, T. Effect of a photosensitization reaction performed during the first 3 min after exposure of rat myocardial cells to talaporfin sodium in vitro. Lasers in Medical Science. 32 (8), 1873-1878 (2017).
  27. Takanari, H., et al. A new in vitro co-culture model using magnetic force-based nanotechnology. Journal of Cellular Physiology. 231 (10), 2249-2256 (2016).
  28. Nakashima, T., et al. Rapid electrical stimulation causes alterations in cardiac intercellular junction proteins of cardiomyocytes. American Journal of Physiology-Heart and Circulatory Physiology. 306 (9), 1324-1333 (2014).
  29. Suzuki, S., et al. Effects of aldosterone on Cx43 gap junction expression in neonatal rat cultured cardiomyocytes. Circulation Journal. 73 (8), (2009).
  30. Horiba, M., et al. T-type Ca2+ channel blockers prevent cardiac cell hypertrophy through an inhibition of calcineurin-NFAT3 activation as well as L-type Ca2+ channel blockers. Life Sciences. 82 (11-12), 554-560 (2008).
  31. Inoue, N., et al. Rapid electrical stimulation of contraction modulates gap junction protein in neonatal rat cultured cardiomyocytes: involvement of mitogen-activated protein kinases and effects of angiotensin II receptor agonist. Journal of the American College of Cardiology. 44 (4), 914-922 (2004).
  32. Aalders, J., et al. Effects of fibrillin mutations on the behavior of heart muscle cells in Marfan syndrome. Scientific Reports. 10 (16756), (2020).
  33. Matsuura, K., et al. Creation of mouse embryonic stem cell-derived cardiac cell sheets. Biomaterials. 32 (30), 7355-7362 (2011).
  34. Fujita, H., Shimizu, K., Nagamori, E. Application of a cell sheet-polymer film complex with temperature sensitivity for increased mechanical strength and cell alignment capability. Biotechnology and Bioengineering. 103 (2), 370-377 (2009).
  35. Baba, S., et al. Generation of cardiac and endothelial cells from neonatal mouse testis-derived multipotent germline stem cells. Stem Cells. 25 (6), 1375-1383 (2007).
  36. Baba, S., et al. Flk1+ cardiac stem/progenitor cells derived from embryonic stem cells improve cardiac function in a dilated cardiomyopathy mouse model. Cardiovascular Research. 76 (1), 119-131 (2007).
  37. Shimizu, K., et al. Construction of multi-layered cardiomyocyte sheets using magnetite nanoparticles and magnetic force. Biotechnology and Bioengineering. 96 (4), 803-809 (2007).
  38. Haraguchi, Y., Shimizu, T., Yamato, M., Kikuchi, A., Okano, T. Electrical coupling of cardiomyocyte sheets occurs rapidly via functional gap junction formation. Biomaterials. 27 (27), 4765-4774 (2006).
  39. Miyagawa, S., et al. Tissue cardiomyoplasty using bioengineered contractile cardiomyocyte sheets to repair damaged myocardium: Their integration with recipient myocardium. Transplantation. 80 (11), 1586-1595 (2005).
  40. Watts, M., et al. Decreased bioavailability of hydrogen sulfide links vascular endothelium and atrial remodeling in atrial fibrillation. Redox Biology. 38, 101817(2021).
  41. Feng, Y., Cao, H., Zhang, Y. Prediction model of sinoatrial node field potential using high order partial least squares. Bio-Medical Materials and Engineering. 26, 1805-1811 (2015).
  42. Feng, Y., Cao, H., Wang, Y., Zhang, Y. Fuzzy linguistic prediction model for sinoatrial node field potential analysis in acute hyperglycemia environment. Bio-Medical Materials and Engineering. 26, Suppl 1 881-887 (2015).
  43. Suzuki, K., Matsumoto, A., Nishida, H., Reien, Y., Maruyama, H., Nakaya, H. Termination of aconitine-induced atrial fibrillation by the KACh-channel blocker tertiapin: underlying electrophysiological mechanism. Journal of Pharmacological Sciences. 125 (4), 406-414 (2014).
  44. Chang, S. -L., et al. Heart failure enhances arrhythmogenesis in pulmonary veins. Clinical and Experimental Pharmacology and Physiology. 38 (10), 666-674 (2011).
  45. Wang, Y. -J., et al. Time-dependent block of ultrarapid-delayed rectifier K+ currents by aconitine, a potent cardiotoxin, in heart-derived H9c2 myoblasts and in neonatal rat ventricular myocytes. Toxicological Sciences. 106 (2), 454-463 (2008).
  46. Lai, Y. -J., Huang, E. Y. -K., Yeh, H. -I., Chen, Y. -L., Lin, J. J. -C., Lin, C. -I. On the mechanisms of arrhythmias in the myocardium of mXinα-deficient murine left atrial-pulmonary veins. Life Sciences. 83 (7-8), 272-283 (2008).
  47. Gustafson-Wagner, E. A., et al. Loss of mXinα, an intercalated disk protein, results in cardiac hypertrophy and cardiomyopathy with conduction defects. American Journal of Physiology-Heart and Circulatory Physiology. 293 (5), 2680-2692 (2007).
  48. Clark, R. B., et al. A rapidly activating delayed rectifier K+ current regulates pacemaker activity in adult mouse sinoatrial node cells. American Journal of Physiology-Heart and Circulatory Physiology. 286, 1757-1766 (2004).
  49. Bell, R. M., Mocanu, M. M., Yellon, D. M. Retrograde heart perfusion: The Langendorff technique of isolated heart perfusion. Journal of Molecular and Cellular Cardiology. 50 (6), 940-950 (2011).
  50. Nikmaram, M. R., et al. Characterization of the effects of Ryanodine, TTX, E-4031 and 4-AP on the sinoatrial and atrioventricular nodes. Progress in Biophysics and Molecular Biology. 96 (1-3), 452-464 (2008).
  51. Fenske, S., et al. Comprehensive multilevel in vivo and in vitro analysis of heart rate fluctuations in mice by ECG telemetry and electrophysiology. Nature Protocols. 11 (1), 61-86 (2016).
  52. Masé, M., Glass, L., Ravelli, F. A model for mechano-electrical feedback effects on atrial flutter interval variability. Bulletin of Mathematical Biology. 70 (5), 1326-1347 (2008).
  53. Franz, M. R., Bode, F. Mechano-electrical feedback underlying arrhythmias: The atrial fibrillation case. Progress in Biophysics and Molecular Biology. 82 (1-3), 163-174 (2003).
  54. Bucchi, A., Tognati, A., Milanesi, R., Baruscotti, M., DiFrancesco, D. Properties of ivabradine-induced block of HCN1 and HCN4 pacemaker channels. Journal of Physiology. 572 (2), 335-346 (2006).

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Yeniden basım ve izinler

Bu JoVE makalesinin metnini veya şekillerini yeniden kullanmak için izin iste

İzin iste

Etiketler

Microelectrode Array RecordingSinoatrial NodeCardiac PacemakingIntrinsic Heart RateMouse Heart PreparationPacemaker CellsExtracellular Field PotentialsPharmacological InterrogationBeat Frequency AnalysisElectrophysiology Techniques

İlgili makaleler