$$\rightleftharpoonup{xx}$$
$$\longleftharp{xx}$$,
$$\longrightharp{xx}$$,
Platelet Lysate (PL), daha önce kurumsal yönergelere uygun olarak daha önce açıklandığı şekilde elde edilir3 , IdISBa Biobank tarafından başlangıç malzemesi olarak sağlanan taze buffy paltolar kullanılarak. Mevcut proje için kullanımları Etik Kurulu tarafından onaylanmıştır (IB 1995/12 BIO).
1. PL'den EV izolasyonu
- Daha büyük gövdelerin çıkarılması
- PL'nin oda sıcaklığında çözülmesi.
- 4 °C'de 15 dakika boyunca 1.500 x g'da santrifüj PL. Peletin hücre kalıntılarını içerdiği için atın.
- Süpernatantı toplayın ve 4 °C'de 30 dakika boyunca 10.000 x g'da ardışık iki santrifüj gerçekleştirin.
NOT: Pelet mikrovesiküller gibi daha büyük EV'lere karşılık gelir ve bu durumda atılır.
- Süpernatantı önce 0,8 μm gözenekli membrandan sonra 0,2 μm gözenekli membrandan filtreleyin.
NOT: Bu adımlar, istenen tüm EV'leri kaldırır.
- Filtrelenmiş PL'yi bir kenara alın ve kullanıma kadar -20 °C'de saklayın.
- Boyut dışlama kromatografisi
- Filtrelenmiş PBS ile kromatografi ekipmanına bağlı sütunu istenen akış hızında dengeleyin.
NOT: Kullanılan akış hızı sütun özelliklerine bağlıdır; bu durumda, 0,5 mL / dak olarak ayarlanır.
- İşlenen PL'yi (5 mL) bir şırınna ile ekipmana yükleyin.
- PL'yi sütuna enjekte edin ve 15 mL tüplerde 5 mL fraksiyonları toplamaya başlayın.
- Ev zenginleştirilmiş fraksiyonları toplayın ve kullanıma kadar -80 °C'de saklayın.
NOT: Deneyi ilk kez gerçekleştirirken, tüm fraksiyonları protein nicelemesi ve immünodeteksiyon ile karakterize ederek EV'lerle zenginleştirilmiş olanı belirleyin3,11. Bu deneyde, 9.
- Kromatografik sütunu % 0,2 NaOH çözeltisinin 30 mL'si ile yıkayın ve dengeye ulaştığında% 20 etanol çözeltisinde saklayın.

Şekil 1: Platelet Lysate (PL) hücre dışı veziklin (EV) izolasyonunun şematik diyagramı. PL, daha büyük gövdeleri çıkarmak için önce 1.500 x g'da, daha sonra 10.000 x g'da santrifüj edilir. Süpernatant 0.8 ve 0.2 μm filtreler aracılığıyla filtrelenmiştir. İşlenmiş PL sütuna yüklenir ve EV'ler boyut dışlama kromatografisi ile ayrılır. Bu rakamın daha büyük bir sürümünü görüntülemek için lütfen buraya tıklayın.
2. EV karakterizasyonu
NOT: Fonksiyonel çalışmalar yapmak için EV karakterizasyonu gereklidir12. Elektron mikroskopisi veya batı lekesi karakterizasyonu daha önce bildirilmiştir13. Bu rapor, Ti yüzey fonksiyonelleştirme için temel karakterizasyon tekniklerine odaklanacaktır.
- Nanopartikül Takip Analizi (NTA)
- EV'leri (1:1000) 0,2 μm filtreli PBS'de seyreltin.
NOT: Çok konsantre numuneler veya çok seyreltilmiş numuneler NTA tayini için aralık dışında olacak ve ayarlama gerekecektir.
- Seyreltilmiş EV'lerin 1 mL'sini bir şırınna ile NTA ekipmanına yükleyin ve NTA ekipmanına enjekte edin.
- Parçacık konsantrasyonu ve boyut dağılımı belirleme için üreticinin protokolünü izleyin.
- Protein konsantrasyonu
- 1 μL EV çözeltisi kullanarak konsantrasyonu belirleyin. Absorbansı 280 nm dalga boyunda bir spektrofotometre ile ölçün.
NOT: EV'ler partikül sayısına kıyasla düşük protein seviyeleri sunmalıdır.
- Spektrofotometreyi kullanarak absorbans okumasını elde etmek için üreticinin talimatlarını izleyin.
3. Titanyum yüzey fonksiyonelleştirme
NOT: Bu yöntemde, c.p. sınıf IV, 6,2 mm çapında ve 2 mm yüksekliğinde işlenmiş titanyum diskler kullanılır. Diskler Ti cımbızla manipüle edilebilir, ancak yüzeyi çizmemek önemlidir. Ayrıca, işlenmiş taraf tüm işlem boyunca yukarı doğru bakmalıdır.
- Ti diskler yıkama
NOT: Ti yıkama için kullanılan çözeltilerin hacmi Ti diskleri kapsayacak şekilde yeterli olmalıdır. Ti diskleri cam bir kabın içine yerleştirin ve üzerlerine çözeltiler dökün. Ardından, çözeltiyi dekante 1000'den fazla çıkarın.
- Ti implantları deiyonize (DI) suyla yıkayın ve ardından suyu atın.
- Ti implantları % 70 etanol ile yıkayın ve ardından çözeltiyi çıkarmak için dejenaant.
- İmplantları DI suyuna yerleştirin ve 5 dakika boyunca 50 °C'de sonikat. Suyu atın.
- Ti implantları 50 °C'de @ NaOH çözeltisinde ajitasyonla 10 dakika boyunca kuluçkaya yatır. Çözümü atın.
DİkKAT: NaOH çözeltisi hazırlık sırasında ılıktır. Çözelti aşındırıcıdır ve bir duman kaputunun içinde kullanılmalıdır.
- İmplantları 50 °C'de DI suyunda 5 dakika sonicate edin ve ardından suyu çıkarın.
- Nötr pH'a ulaşana kadar DI suyu (en az 5) ile birkaç yıkama gerçekleştirin. pH göstergeleri ile pH'ı kontrol edin.
- İmplantları 50 °C'de DI suyunda 5 dakika boyunca sonicate edin ve suyu çıkarın.
- Ti implantları 50 °C'de P HNO3 çözeltisinde ajitasyon ile 10 dakika kuluçkaya yatırın. Çözümü kaldırın.
DİkKAT: HNO3 aşındırıcı ve oksitleyici bir maddedir ve duman kaputunun içinde kullanılmalıdır.
- İmplantları 5 dakika boyunca 50 °C'de DI suyunda sonicate edin. Suyu çıkarın.
- Nötr pH elde edilene kadar DI suyu (en az 5) ile birkaç yıkama gerçekleştirin. pH göstergeleri ile pH'ı kontrol edin.
- İmplantları 5 dakika boyunca 50 °C'de DI suyunda sonicate edin. Suyu çıkarın.
NOT: Bu noktada Ti implantların p etanol çözeltisinde depolanması ile deney durdurulabilir.
- Ti pasivasyonu
NOT: Ti passivasyon adımları, Ti disklerin aşağıda listelenen sırayla farklı çözümlerle tamamen kaplanmasıyla gerçekleştirilir. Ti diskler cam bir kabın içine yerleştirilir ve çözeltiler hafifçe üzerlerine dökülür. Tüm yıkama adımlarında kullanılan hacimler implantları tamamen örtmeli ve dekantasyonu ile çıkarılmalıdır.
- Ti implantları nazik ajitasyon altında oda sıcaklığında 30 dakika boyunca% 30 HNO3 çözeltisinde kuluçkaya yatırın. Çözümü kaldırın.
- Nötr pH'a ulaşana kadar DI suyu (en az 5) ile birkaç yıkama gerçekleştirin. pH göstergeleri ile pH'ı kontrol edin.
- Di suyunda oda sıcaklığında gece boyunca Ti implantları kuluçkaya bırakın.
- İmplantları 40 °C'de vakum koşullarında 10 dakika kurutun.
- EV'ler dökümü düşürüyor
NOT: Hücre fonksiyonel çalışmaları için hücre kültürü kabininde çalışmak önemlidir.
- Ti implantları, işlenmiş tarafı yukarı bakacak şekilde 96 kuyulu bir tabağa yerleştirin.
NOT: İmplantlar ters çevrilirse, onları geri döndürmek için bir iğne kullanılabilir.
- EV'lerin çözeltisini çözün ve ajitasyonla karıştırın. 3 sn için nabız için bir girdap kullanın.
- EV'leri Ti yüzeye yatırın. Bu çalışmada, NTA tarafından belirlenen konsantrasyona göre implant başına en fazla 4 x 1011 EV'yi hareketsiz hale getirmek için Ti'ye 40 μL'lik EV çözeltisi damlaları yerleştirilir.
- Ti'yi içeren plakaları, damlalar tamamen kuruyana (~2 saat) 37 °C'de vakum koşulları altında yerleştirin.
NOT: İmplant sayısına ve vakum odasında bulunan suya bağlı olarak süreyi ayarlayın.

Şekil 2: Damla dökümü ile Ti pasivasyon ve EV fonksiyonelleştirme şematik diyagramı. Ti implantlar oda sıcaklığında 0 HNO3 çözeltisinde 30 dakika kuluçka ile önce pasif hale gelir. DI suyu ile birkaç yıkamadan sonra, pH nötr ulaşır. Daha sonra, Ti implantlar DI suyunda oda sıcaklığında gece boyunca inkübe edilir. Bundan sonra, implantlar 40 ° C'de vakum koşullarında kurutulur. EV'lerin hareketsiz hale getirilmesi için Ti implantlara 40 μL EV çözeltisi biriktirilir. Daha sonra, implantlar, EV'ler yüzeye fiziksel olarak bağlanana kadar 2 saat boyunca vakumda inkübe edilir. Bu rakamın daha büyük bir sürümünü görüntülemek için lütfen buraya tıklayın.
4. Ti yüzey karakterizasyonu
- Sürüm çalışması
- Ti yüzeyini 37 °C'de 200 μL filtrelenmiş PBS ile kuluçkaya yatırın.
NOT: PBS, NTA ölçümüne müdahaleleri önlemek için filtrelenir.
- PBS'yi farklı zaman noktalarında değiştirin ve -80 °C'de saklayın.
NOT: Bu çalışmada 2-, 6, 10 ve 14 günlük zaman noktaları analiz edilmiştir.
- Üreticinin talimatlarına göre NTA tarafından parçacık çalışmaları için depolanan PBS'yi analiz edin.
NOT: PBS'de farklı zamanlarda partikül konsantrasyonu, zaman içinde EV'lerin serbest bırakma profilinin bir temsilidir.
- Biyouyumbilite çalışmaları
NOT: İnsan göbek kordonu türevi mezenkimal kök hücreler (hUC-MSC) IdISBa Biobank'tan kurumsal yönergelere uygun olarak elde edilir.
- Kullanıma kadar FBS ile desteklenmiş DMEM düşük glikozda hUC-MSC'nin bakımını yaptırın. Ortamı haftada iki kez değiştirin.
- Hücre tohumlama için, hücreleri 5 mL PBS ile şişelerde iki kez yıkayın.
- Trypsine hUC-MSC 1 mL tripsin çözeltisi ekleyerek. Hücrelerin monolayerini tamamen kapladığından emin olun. Tripsin çözeltisini çıkarın ve hücre kültürü şişesini yaklaşık 2 dakika boyunca 37 °C'ye yerleştirin. Mikroskop altında hücre müfrezesini görüntüleyin. Ayrılmış hücreler yuvarlak şekilli görünecek ve süspansiyonda olacaktır.
- DMEM düşük glikozdaki hücreleri %1 EV'ler FBS tükenmiş olarak yeniden biriktirin.
NOT: FBS-EV'leri çıkarmak için %1 FBS ile desteklenmiş medya hazırlayın ve ardından 18 saat boyunca 120.000 x g'da ultracentrifuge hazırlayın. Trombosit EV'lere müdahaleleri önlemek için EV'lerin çıkarılması önemlidir.
- Neubauer chamber14 ile hücre sayısını sayarak hücre konsantrasyonu belirleyin.
- hUC-MSC'yi 50.000 hücre/mL konsantrasyonuna getirin.
- Ti implantlarına hücre çözeltisinin 200 μL tohum.
- 48 saat sonra, 50 μL ortam toplayın ve üreticinin protokolüne göre laktat dehidrogenaz (LDH) aktivite kiti kullanarak sitotoksik belirlemeyi gerçekleştirin.