Bu içeriği görüntülemek için JoVE aboneliğiniz gereklidir. Giriş yapın veya ücretsiz denemenizi bugün başlatın.

Yöntem makalesi

2D Hücre Kültürü Modelinde Verteporfin Sitotoksisitesini Arttırmak için Şirket İçi İnşa Edilmiş ve Işık Yayan Diyot Tabanlı Fotodinamik Terapi Cihazı

3K görüntülenme

⸱

DOI:

10.3791/64391

⸱

13 Ocak 2023

 ,  ,  ,  ,  ,  ,  ,  ,  ,  ,  , 
1Graduate Program in Pharmaceutical Sciences, Laboratory of Cancer Drug Resistance, Federal University of Parana, 2Graduate Program in Pharmaceutical Sciences, Federal University of Parana, 3Federal Institute of Parana

Bu makalede

Özet

Burada, iki boyutlu HeLa hücre kültürü ve verteporfin kullanarak in vitro fotodinamik terapi (PDT) testlerini başarılı bir şekilde gerçekleştirmek için yeni, basit ve düşük maliyetli bir cihazı fotosensitizör olarak tanımladık.

Özet

Bu yazıda, PhotoACT adı verilen in vitro fotodinamik terapi (PDT) tahlillerini gerçekleştirmek için yeni, basit ve düşük maliyetli bir cihaz açıklanmaktadır. Cihaz, bir dizi geleneksel programlanabilir ışık yayan diyot (LED), bir sıvı kristal ekran (LCD) modülü ve ticari bir mikrodenetleyici kartına bağlı bir ışık sensörü kullanılarak üretilmiştir. Prototipin kutu tabanlı yapısı, orta yoğunluklu suntalarla (MDF'ler) yapıldı. İç bölme aynı anda dört hücre kültürü multiwell mikroplakasını tahsis edebilir.

Kavramın bir kanıtı olarak, iki boyutlu (2D) kültürde fotosensitizör (PS) verteporfinin HeLa hücre hattına karşı sitotoksik etkisini inceledik. HeLa hücreleri 24 saat boyunca artan verteporfin konsantrasyonları ile tedavi edildi. İlaç içeren süpernatant ortam atıldı, yapışkan hücreler fosfat tamponlu salin (PBS) ile yıkandı ve ilaçsız ortam eklendi. Bu çalışmada, verteporfinin hücreler üzerindeki etkisi, ışığa maruz kalmadan veya 255, 255 ve 255 kırmızı-yeşil-mavi (RGB) değerleri (ortalama akıcılık 49.1 ± 0.6 J /cm2) kullanılarak ışığa 1 saat maruz kaldıktan sonra incelenmiştir. 24 saat sonra, hücre canlılığı 3-(4,5-dimetil-2-tiazolil)-2,5-difeniltetrazolyum bromür (MTT) testi ile değerlendirildi.

Deneysel sonuçlar, verteporfin ile muamele edilen hücrelerin cihazdan gelen ışığa maruz kalmasının, reaktif oksijen türlerinin (ROS) aracılık ettiği bir mekanizma aracılığıyla ilacın sitotoksik etkisini arttırdığını göstermiştir. Ek olarak, bu çalışmada açıklanan prototipin kullanımı, sonuçların ticari bir PDT cihazı ile karşılaştırılmasıyla doğrulanmıştır. Bu nedenle, bu LED tabanlı fotodinamik terapi prototipi, PDT'nin in vitro çalışmaları için iyi bir alternatiftir.

Giriş

En ölümcül bulaşıcı olmayan hastalıklar arasında kanser, erken ölümün küresel bir önde gelen nedenini temsil etmektedir. 2020'de yaklaşık 10 milyon ölümden sorumluydu ve dünya çapında altı ölümden birini temsilediyordu 1. Ek olarak, çoklu ilaç direnci (MDR) fenomeni, onaylanmış kemoterapötik protokoller bu klinik durum2 için remisyon aşamalarına ulaşamaaşamadığından muazzam bir halk sağlığı tehdidini temsil etmektedir. Kanser hücreleri çeşitli mekanizmalarla kemoterapiye direnç geliştirebilir; Bununla birlikte, bazı ATP bağlayıcı kaset (ABC) taşıyıcılarının (ATP'ye bağımlı efflux pompalar) aşırı ekspresyonu, bir tümör mikroortamında MDR gelişiminin ana nedeni olarak kabul edilir3. ÇİD'ye ek olarak, nüks ve metastaz gibi diğer kanser komplikasyonları, bu onkolojik zorluğun üstesinden gelmek için terapötik yaklaşımların geliştirilmesi ve iyileştirilmesi için acil talebi güçlendirmektedir.

Işığın küratif kullanımı yüzyıllardır uygulanmaktadır4 ve fotodinamik terapi (PDT) solid tümörler için klinik olarak onaylanmış bir terapötik yaklaşımı temsil etmektedir. PDT, tümör hücrelerinde seçici sitotoksisite uygulamak için reaktif oksijen türleri (ROS) üretmek için bir fotosensitizörün (PS) uygulanmasını ve ardından hafif ışınlamayı birleştirir. Bu terapötik yaklaşım, cerrahi, radyasyon ve kemoterapi dahil olmak üzere geleneksel yöntemlerden üstündür5; bağ dokularında daha düşük sitotoksisite gösteren minimal invaziv bir tekniktir6. Doğrudan tümörde veya mikro ortamında ışık uygulaması ve PS birikimi, hassas hedefleme ve sonuç olarak küçük, istenmeyen sistemik yan etkiler7 ve aynı bölgede tekrarlanan tedavi olasılığını sağlar. Dahası, maliyet diğer yaklaşımlardan daha düşüktür. Umut verici özellikleri nedeniyle PDT, özellikle inoperabl tümörlerde veya adjuvan kanser tedavisi7 durumunda hem tek başına hem de tek başına uygun bir seçenek olarak düşünülebilir ve kemoterapi 8,9 ile ilişkili MDR için bir alternatifi temsil eder.

PDT kullanılarak yüksek objektif yanıt oranı gösteren ilk rapor 1975 yılında fare ve sıçan model10'da tanımlanmıştır. O zamandan beri, PDT kullanılarak, 2D hücre kültürü11,12'de insan tümör hücre hatları ile hem in vivo hem de in vitro pozitif sonuçlar7 ile çalışmalar yapılmıştır. Klinik olarak onaylanmış PS'nin geniş uygulanabilirliği göz önüne alındığında, spesifik birikim yolakları ve absorpsiyon piklerinin dalga boyu aralıklarına bakılmaksızın, genel süreç aşağıdaki gibidir: (i) PS alımı, (ii) tümörde veya mikro ortamında PS konsantrasyonunun zirveye ulaşması, (iii) ışık uygulaması, (iv) PS-ışık etkileşimi, (v) PS uyarılmış durum enerjisinin doku substratına veya çevresindeki oksijen moleküllerine aktarılması, (vi) singlet oksijen veya süperoksit anyonu içeren ROS üretimi, (vii) esasen nekroz veya apoptoz (doğrudan ölüm), otofaji (sitoprotektif mekanizma), doku iskemisi (vasküler hasar), immün modülasyon veya bu mekanizmaların örtüşmesi yoluyla tümör hücresi ölümü7. Bu son aşamada, spesifik bir hücre ölüm yolunun aktivasyonu, hücre özellikleri, deneysel tasarım ve en önemlisi PS hücre içi lokalizasyonu ve PDT ile ilişkili hedeflenen hasar gibi birçok faktöre bağlıdır13.

Verteporfin, yaşa bağlı makula dejenerasyonunu tedavi etmek için Norveç ve Çin'de klinik kullanım için düzenleyici kurumlar tarafından onaylanan ikinci nesil bir PS'dir7. Doz verildikten sonra, bu ön ilacın kısmen mitokondri14'te biriktiği ve hücresel protein tirozin fosforilasyonunu ve DNA fragmantasyonunu indükleyerek tümör hücresi apoptozu 15,16'ya yol açtığı bildirilmiştir. Verteporfin içselleştirmesi için 24 saatlik inkübasyondan sonra, bitişik moleküllere etkili elektromanyetik radyasyon transferi seviyeleri elde etmek için 690 nm dalga boyu kurulumu kullanan bir PDT protokolü önerilir 7,17.

PDT için ışık kaynağı ile ilgili olarak, klasik diyot lazer sistemleri genellikle pahalı, teknik olarak karmaşık, büyük boyutlu ve dolayısıyla taşınabilir olmayan 18,19'dur. LED tabanlı PDT ekipmanlarında da gözlemlenebilen tek dalga boyu profilinin bir sonucu olarak, her fotosensitizör uygulaması için bağımsız ünitelere olan talep, diyot lazer sistemlerinin kullanımını daha da karmaşık ve ekonomik olarak imkansız hale getirmektedir20,21. Bu nedenle, LED makinelerin kullanımı sadece maliyet22 ve bakım sorunlarını çözmek için değil, aynı zamanda yüksek güç çıkışı ve daha az zararlı 23 ve daha geniş aydınlatma kapasitesi 24,25,26,27 sağlamak için en umut verici alternatif olarak kabul edilir.

LED tabanlı ekipmanın PDT deneylerine sunabileceği potansiyel katkıya rağmen28, çoğu ticari seçenek hala taşınabilirlik eksikliği, yüksek maliyet ve karmaşık inşaat projeleri ve işletme29 gibi dezavantajlara sahiptir. Bu çalışmanın temel amacı, in vitro PDT testleri için basit ve güvenilir bir araç sunmaktı. Bu makalede, ucuz, kullanıcı dostu ve taşınabilir olan, şirket içi LED tabanlı bir PDT cihazı olan PhotoACT açıklanmaktadır. Kavramın bir kanıtı olarak, bu cihazın bir 2D hücre kültürü modelinde verteporfinin sitotoksisitesini arttırdığı gösterilmiştir ve bu nedenle PDT deneylerinde bir araştırma aracı olarak kullanılabilir.

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Protokol

NOT: Bu protokolde kullanılan tüm malzemeler, reaktifler ve yazılımlarla ilgili ayrıntılar için Malzeme Tablosu'na bakın.

1. Cihaz yapımı

  1. Testere 3 mm kalınlığında orta yoğunluklu suntalar (MDF) Şekil 1A'da gösterilen boyutlara sahip parçalar elde etmek için.
    NOT: Bilgisayar sayısal denetimi (CNC) kesimi için vektör dosyasını (Ek Dosya 1) kullanın.
  2. Aşağıdaki boyutlarda iki kutu oluşturun (uzunluk x genişlik x yükseklik): Büyük kutular için 330 mm x 235 mm x 225 mm ve küçük kutular için 300 mm x 220 mm x 150 m (Şekil 1B).
  3. Bir namlu jakı konektörü takmak için daha büyük kutunun arkasını delin. Elektrik kabloları için bir geçit sağlamak üzere daha büyük kutunun üstünü ve alt kısmını delin ve küçük kutunun üstünü ve altını delin (Şekil 1C).
  4. Homojen ışık insidansını teşvik etmek için tüm iç yüzeyleri siyah mürekkeple boyayın (Şekil 1D).
  5. Paralel olarak, daha küçük kutunun üst iç yüzeyine her biri 10 LED'li üç LED bant takın (Şekil 1E).
  6. Küçük kutunun alt iç yüzeyinin ortasına bir parlaklık sensörü takın (Şekil 1F).
  7. Kontrol ünitesinin yapısını (Şekil 1G) 3B baskı dosyasını (Ek Dosya 2) kullanarak yazdırın.
  8. Tüm bileşenleri (güç düğmesi, potansiyometreler, zaman/çalıştırma dokunmatik yüzeyi, LED'ler, parlaklık sensörü, LCD, zil sesi ve güç kaynağı) kontrol ünitesinin iç kısmına monte edilmiş bir ESP32 kontrol kartının bağlantı noktalarına takın (Şekil 2).
  9. Programlama kodunu (Ek Dosya 3, Ek Dosya 4 ve Ek Dosya 5) yükleyin ve tüm bağlantıların çalışıp çalışmadığını kontrol etmek için bir test çalıştırın (Şekil 1H).
  10. Kutuları monte edin ve boşlukları önlemek için bunları birbirine sabitleyin ve sonuç olarak dış ışık paraziti ve yayılan ışık kaybı. Monte edilmiş kontrol ünitesini prototipin üst kısmındaki delinmiş alana takın (Şekil 1I).
  11. Aynı malzemeden bir ön kapıyı ve 330 mm x 225 mm (uzunluk x genişlik) boyutlarını iki küçük menteşeli büyük kutuya sabitleyin. Ayrıca, prototip kapağını güçlendirmek için cırt cırtlı bantları daha büyük kutuya yana doğru takın (Şekil 1J). Ekipmanın ön kapısını manipüle etmek için bir tutamak takın.
  12. İşlemler sırasında daha fazla stabilite sağlamak için prototipin altına dört lastik ayak yastığı takın (Şekil 1K).

2. Hücre hatları: ekim, tohumlama ve tedavi

  1. Kimyasal
    1. 100 mM'lik bir konsantrasyon elde etmek için porfirini dimetil sülfoksit (DMSO) içinde çözün.
      DİKKAT: DMSO dikkatli bir şekilde manipüle edilmelidir (kişisel koruyucu ekipman kullanımı ile ve havalandırılan bir alanda ele alınmalıdır). Aşırı ışığa maruz kalmayı önlemek için hem stok hem de seyreltilmiş çözeltileri dikkatlice manipüle edin.
  2. Hücre çizgileri
    1. HeLa hücre hattını, fetal sığır serumu ve %1 gentamisin ile desteklenmiş Dulbecco'nun Modifiye Kartal Ortamı (DMEM) düşük glikozlu ortamında geliştirin.
    2. Kültür şişelerini 37 ° C'de% 5 CO2 hücre kültürü inkübatöründe tutun.
    3. Hücreleri% 80 -% 90 birleşime ulaşana kadar yönetin ve inceleyin.
  3. Tohumlama işlemi
    1. Kültür ortamını şişeden çıkarın.
    2. Hücre tek katmanını PBS ile yıkayın.
    3. Akıcı hücre kültürünü tripsin-EDTA (% 0.5) ile 37 ° C'de 5 dakika boyunca 1x ayırın. Tripsin etkisini, hücreleri% 10 fetal sığır serumu ve% 1 gentamisin ile desteklenmiş kültür ortamı ile yeniden askıya alarak durdurun.
    4. Yeniden askıya alınan hücreleri bir hemositometre ile sayın ve bunları 2.0 × 104 hücre / kuyuda 96 delikli bir plakaya tohumlayın.
    5. Karanlık ve aydınlık koşullar için iki tabak hazırlayın.
    6. Hücre bağlantısı için plakaları 24 saat boyunca inkübe edin.
  4. Tedavi süreci
    1. Ortamı her iki 96 delikli plakadan çıkarın.
    2. Hücreleri 100 μL artan verteporfin konsantrasyonları (0.045 ila 24 μM, seri seyreltme) ile tedavi edin.
    3. Verteporfin içselleşmesine izin vermek için hücreleri 24 saat boyunca ilaç tedavisi ile inkübe edin.
    4. 24 saat sonra, ilacı içeren ortamı atın, hücrelerin tek katmanını PBS (100 μL) ile yıkayın ve ilaçsız ortam (100 μL) ekleyin.
    5. Işığa maruz kalmaktan korumak için bir mikro plakayı alüminyum folyo ile örtün ve 24 saat boyunca inkübe edin. Bu plaka PDT sonuçları için kontrol verileri sağlayacaktır (karanlık durum). Diğer mikro plaka, cihazdaki ışığa maruz kalma durumunda kullanılacaktır.

3. Cihazın çalışması

  1. PDT aygıtını elektrik prizine takın ve güç düğmesine basarak açın.
  2. Diğer mikro plakayı (ışık durumu) PDT cihazına yerleştirin ve ön kapıyı cırt cırtlı bantlarla sabitleyerek ekipmanı kapatın.
  3. RGB yapılandırmasını ayarlamak için potansiyometreleri kullanın (burada bir RGB 255 , 255, 255 denemesi) ve ışık emisyonunun rengini ayarlayın.
    NOT: Her RGB kombinasyonunun, farklı fotosensitizörlerle yapılan deneyler ve sonuç olarak farklı absorbans eğrileri için ayarlanması gereken belirli bir emisyon spektrumu vardır.
  4. Zaman yapılandırmasını ayarlamak için (+)/(-) dokunmatik yüzeye basın (burada 60 dakikalık bir deneme) ve tahlilin süresini ayarlayın.
    NOT: Işınım değeri ile ilişkili olarak zaman konfigürasyonu, işlemin akıcılığını (tahlilde uygulanan ışık dozu) belirleyecektir.
  5. Ekrandaki kurulum bilgilerini kontrol edin.
  6. Testi başlatmak için Başlat düğmesine basın. Tahlilin başında tek bip sesi duyulduğundan emin olun.
  7. Deney sırasında, ekranda ışıma ve kalan süre gibi gerçek zamanlı bilgileri gözlemleyin.
  8. PDT testi sırasında ön kapıyı açmayın veya herhangi bir konfigürasyonu değiştirmeyin.
  9. Tahlilin sonunda, dört bip sesi ve elektronik sistemin tüm LED'leri kapatmasını bekleyin. Ekranda deney sırasında Bitti mesajını ve harcanan son enerji miktarını-akıcılığını- gözlemleyin.
    NOT: Akıcılık nihai değeri denklem (1) kullanılarak hesaplanır:
    figure-protocol-1 (1)
    Burada F, J/cm2'ye, I ise mW/cm2 veya mJ/s·cm2'ye eşittir. Işınım değeri, LED'lerin gücünü (yayan kaynak) ve karanlık odanın düzgün ışınlanmış alanını (660cm2) dikkate alır (denklem [2]):
    figure-protocol-2 (2)
    Teorik ışıma değeri, tüm PDT testi boyunca cihaz ekranında gösterilir. İşlemin sonunda, akıcılığı hesaplamak için denklem (3) kullanın:
    Akıcılık (F) = ışıma (I, sabit değer) × çalışma süresi(ler)i (3)

4. Hücre canlılığı testi

  1. PDT testinden sonra, ışığa maruz kalan mikro plakayı örtün ve 24 saat boyunca inkübe edin.
  2. Kuluçka döneminden sonra, kültür ortamını her iki plakadan çıkarın, hücrelerin tek katmanını PBS (100 μL) ile yıkayın ve MTT çözeltisi (0.5 mg / ml, 100 μL) ekleyin. Formazan kristal oluşumuna izin vermek için hem plakaları -karanlık hem de aydınlık koşullarda- 4 saat boyunca inkübe edin.
  3. MTT çözeltisini dikkatlice çıkarın ve mor kristalleri bir DMSO / etanol (1: 1) çözeltisi ile çözün.
  4. Kristallerin tamamen çözünmesinden sonra, 595 nm'de bir mikroplaka okuyucu kullanarak absorbans ölçümünü gerçekleştirin.
    NOT: Cihaz, akış sitometrisi30 ile ışığa maruz kaldıktan sonra fotosensitizörler tarafından tetiklenen ROS aracılı hücre ölümü gibi diğer önemli deneylerde kullanılabilir.

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Sonuçlar

PhotoACT olarak adlandırılan son PDT cihazı, dört adede kadar çok kuyulu mikro plakayı tahsis etmek için karanlık bir oda içeriyordu ve üst iç yüzeyi, farklı görünür ışık spektrumları yaymak üzere programlanmış 30 dağınık LED seti ile donatılmıştı (Şekil 3 ve Ek Dosya 6). Cihaz iki ilişkili kutu kullanılarak inşa edilmiştir: PDT tahlilleri için karanlık bir oda olarak tasarlanmış bir iç kutu ve iç odayı örtmek ve kontrol ünitesini tutmak için harici bir kutu (

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Tartışma

Son PhotoACT cihazı, ticari olarak temin edilebilen, düşük maliyetli bileşenlerle toplam maliyeti 50 dolardan az olan bileşenlerle inşa etmek için uygundu. Ek avantajlar arasında düşük bakım talepleri, birden fazla kültür plakası türünü ışınlama kapasitesi, tahlil başına dört üniteye kadar aynı anda kullanım, taşınabilirliğe izin veren düşük ağırlık (2 kg) / boyut (44cm3), doğru ve tekrarlanabilir ışınlama (veriler gösterilmemiştir) ve bilgisayarlara veya diğer makinelere bağlantı gerektirmeyen kullanıcı dostu...

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Açıklamalar

Yazarlar rakip çıkarlar olmadığını beyan ederler.

Teşekkürler

Arthur Henrique Gomes de Oliveira ve Lucas Julian Cruz Gomes'e çekim sürecine yardımcı oldukları için teşekkür ederiz. Bu proje Brezilya Araştırma Konseyi (CNPq, hibe numaraları 400953/2016-1-404286/2021-6) ve Fundação Araucária-PPSUS 2020/2021 (SUS2020131000003) tarafından desteklenmiştir. Bu çalışma kısmen Coordenação de Aperfeiçoamento de Pessoal de Nível Superior-Brasil (CAPES)-Finance Code 001 tarafından finanse edilmiştir.

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Malzemeler

Bu makalede kullanılan malzemelerin listesi
AdŞirketKatalog numarasıYorumlar
% 0.5 Tripsin-EDTA (10x)Gibco15400054Memeli hücre kültürü ayrışma reaktifi
3D yazıcıFlashforgeFinder model
96 kuyulu plakalar2D hücre kültürü için kullanılan steril olmayan, polistiren ve düz tabanlı kuyucuklara sahip yüksek bağlayıcı yüzey plakaları
Arduino
Parlaklık sensörü0.1-40.000+ lux algılama seviyesine ve I2C arayüzüne sahip TSL2561 model
Düğmeler
Buzzer
Hücre kültürü ŞişeleriSteril, polistiren, Doku Kültürü (TC) ile işlenmiş yüzeyli dikdörtgen tabanlı şişe, eğimli boyun ve havalandırma kapağı (boyutları)
Santrifüj TüpleriTestin tohumlama aşamasında hücre kültürü seyreltmesi için kullanılan 15/50 mL kapasiteli steril polipropilen tüpler
CO2 İnkübatör
Kontrol kartıESP32
Tasarım YazılımıTrimbleSketchUp
DMEM Yüksek GlikozGibco11965092DMEM (Dulbecco'nun Modifiye Kartal Ortamı), birçok farklı memeli hücresinin büyümesini desteklemek için yaygın olarak kullanılan bir bazal ortamdır.
DMSOSigma-AldrichD4540-500MLDimetil sülfoksit, vb; % 99,5 (GC), bitki hücre kültürü için uygun
Fetal Sığır Serumu Gibco12657029FBS, zaman ve geçişler boyunca hücre büyümesinin tutarlılığını sağlayarak en iyi değeri sağlar.
Gentamisin (50 mg/mL)Gibco15750060Başlangıçta mantardan saflaştırılmış suda çözünür antibiyotik ilaç  Micromonospora purpurea. Gentamisin, hücre kültürü kontaminasyonunu önleyerek etki eder
Testin tohumlama adımında hücre sayımı için kullanılan Hemositometre
Ters Laboratuvar MikroskobuLeicaDM IL LED
Laminer Akış DavlumbazKabini, çalışma boyunca HEPA filtreli havanın sabit, tek yönlü akışını sağlayarak çalışma ortamını kirleticilerden korumak için tasarlanmıştır alan. Hücre yetiştirme ve tedavi prosedürlerinin çeşitli adımlarında kullanılır
LCD ekran
LED RGB WS28125050 RGB SMD modeli. 30 LED'li, 1 metre uzunluğunda ve 9 watt
MDF lif levhalı3mm kalınlığında orta yoğunluklu lif levhalar
Mikrosantrifüj TüpleriSteril, emniyet kapaklı ve 1.5/2.0 mL kapasiteli polipropilen tüpler. Testin tedavi adımında küçük hacimleri manipüle etmek için uygun araçlar
Mikroplaka okuyucuThermoFischerMultiskan FC Mikroplaka Fotometre, geniş bir dalga boyu absorbans aralığını (340-850 nm) tespit etmek için tasarlanmıştır. Ekipman, MTT inkübasyonundan sonra hücre canlılığını değerlendirmek için kullanıldı.
MTT ReaktifiInvitrogenM64943- (4,5-Dimetiltiyazol-2-il) -2,5-difeniltetrazolyum bromür. Hücre canlılığı tahlilleri için kullanılır
İşletim SistemiGerçek Zamanlı Mühendisler ltd.FreeRTOS
P10 mikripipetElektronik olmayan, tek kanallı, 1-10 & mu; L kapasiteli
P1000 mikropipetElektronik olmayan, tek kanallı, 10-1000 μ L kapasiteli
P200 mikropipetElektronik olmayan, tek kanallı, 20-200 μ L kapasiteli
PDT EkipmanıLumaCareModel LC-122
Fosfat Tamponlu Tuzlu Tuz pH 7.4Gibco10010031Kültivasyon ve tahlil prosedürleri sırasında hücreleri yıkamak için kullanılan dengeli tuz formülasyonu
Potansiyometreler
İpuçlarıSteril olmayan, evrensel uyum, 10/200/1000 μ L maksimum hacim
VerteporfinSigma-AldrichSML0534-5MGVerteporfin, & ge; %94 (HPLC)
Neubauer desenli hazne, , dahili işlemcili, bant

Kaynaklar

  1. Ferlay, J., et al. International agency for research on cancer. Global Cancer Observatory: Cancer Today. 23 (7), https://gco.iarc.fr/today/home 323-326 (2018).
  2. Gottesman, M. M., Fojo, T., Bates, S. E. Multidrug resistance in cancer: role of Atp-dependent transporters. Nature Reviews Cancer. 2 (1), 48-58 (2002).
  3. Szakacs, G., Paterson, J. K., Ludwig, J. A., Boothe-Genthe, C., Gottesman, G. A. Targeting multidrug resistance in cancer. Nature Reviews Drug Discovery. 5 (3), 219-234 (2006).
  4. Ackroyd, R., Kelty, C., Brown, N., Reed, M. The history of photodetection and photodynamic therapy. Photochemistry and Photobiology. 74 (5), 656-669 (2001).
  5. Hamblin, M. R. Photodynamic therapy for cancer: what's past is prologue. Photochemistry and Photobiology. 96 (3), 506-516 (2020).
  6. Barr, H., et al. The contrasting mechanisms of colonic collagen damage between photodynamic therapy and thermal injury. Photochem Photobiol. 46 (5), 795-800 (1987).
  7. Algorri, J. F., Ochoa, M., Roldán-Varona, P., Rodríguez-Cobo, L., López-Higuera, J. M. Photodynamic therapy: A compendium of latest reviews. Cancers. 13 (17), 4447(2021).
  8. Aniogo, E. C., Plackal, B., George, B. P. A., Abrahamse, H. The role of photodynamic therapy on multidrug resistant breast cancer. Cancer Cell International. 19, 91(2019).
  9. Spring, B. Q., Rizvi, I., Xu, N., Hasan, T. The role of photodynamic therapy in overcoming cancer drug resistance. Photochemical & Photobiological Sciences. 14 (8), 1476-1491 (2015).
  10. Dougherty, T. J., Grindey, G. B., Fiel, R., Weishaupt, K. R., Boyle, D. G. Photoradiation therapy. II. Cure of animal tumors with hematoporphyrin and light. Journal of the National Cancer Institute. 55 (1), 115-121 (1975).
  11. Etcheverry, M. E., Pasquale, M. A., Garavaglia, M. Photodynamic therapy of HeLa cell cultures by using LED or laser sources. Journal of Photochemistry and Photobiology B: Biology. 160, 271-277 (2016).
  12. Guo, Q., Dong, B., Nan, F., Guan, D., Zhang, Y. 5-Aminolevulinic acid photodynamic therapy in human cervical cancer via the activation of microRNA-143 and suppression of the Bcl-2/Bax signaling pathway. Molecular Medicine Reports. 14 (1), 544-550 (2016).
  13. Mroz, P., Yaroslavsky, A., Kharkwal, G. B., Hamblin, M. R. Cell death pathways in photodynamic therapy of cancer. Cancers. 3 (2), 2516-2539 (2011).
  14. Mahalingam, S. M., Ordaz, J. D., Low, P. S. Targeting of a photosensitizer to the mitochondrion enhances the potency of photodynamic therapy. ACS Omega. 3 (6), 6066-6074 (2018).
  15. Granville, D. J., Levy, J. G., Hunt, D. W. C. Photodynamic treatment with benzoporphyrin derivative monoacid ring A produces protein tyrosine phosphorylation events and DNA fragmentation in murine P815 cells. Photochemistry and Photobiology. 67 (3), 358-362 (1998).
  16. Castano, A. P., Demidova, T. N., Hamblin, M. R. Mechanisms in photodynamic therapy: part two - cellular signaling, cell metabolism and modes of cell death. Photodiagnosis Photodynamic Therapy. 2 (1), 1-23 (2014).
  17. Detty, M. R., Gibson, S. L., Wagner, S. J. Current clinical and preclinical photosensitizers for use in photodynamic therapy. Journal of Medicinal Chemistry. 47 (16), 3897-3915 (2004).
  18. Allison, R. R. Photodynamic therapy: oncologic horizons. Future Oncology. 10 (1), 123-142 (2014).
  19. Chepurna, O., et al. Photodynamic therapy with laser scanning mode of tumor irradiation. Optical Fibers and Their Applications 2015. 9816, 323-326 (2015).
  20. Huang, Z. A review of progress in clinical photodynamic therapy. Technology in Cancer Research and Treatment. 4 (3), 283-293 (2005).
  21. Chepurna, O., et al. LED-based portable light source for photodynamic therapy. Optics in Health Care and Biomedical Optics. 11190, 109-115 (2019).
  22. Hasson, O., Wishkerman, A. CultureLED: A 3D printer-based LED illumination cultivation system for multi-well culture plates. HardwareX. 12, 00323(2022).
  23. Wu, X., et al. Localised light delivery on melanoma cells using optical microneedles. Biomedical Optics Express. 13 (2), 1045-1060 (2022).
  24. Erkiert-Polguj, A., Halbina, A., Polak-Pacholczyk, I., Rotsztejn, H. Light-emitting diodes in photodynamic therapy in non-melanoma skin cancers-own observations and literature review. Journal of Cosmetic and Laser Therapy. 18 (2), 105-110 (2016).
  25. Neupane, J., Ghimire, S., Shakya, S., Chaudhary, L., Shrivastava, V. P. Effect of light emitting diodes in the photodynamic therapy of rheumatoid arthritis. Photodiagnosis and Photodynamic Therapy. 7 (1), 44-49 (2010).
  26. Lins, E. C., et al. A novel 785-nm laser diode-based system for standardization of cell culture irradiation. Photomedicine and Laser Surgery. 31 (10), 466-473 (2013).
  27. Hopkins, S. L., et al. An In vitro cell irradiation protocol for testing photopharmaceuticals and the effect of blue, green, and red light on human cancer cell lines. Photochemical and Photobiological Sciences. 15 (5), 644-653 (2016).
  28. Zhang, K., Waguespack, M., Kercher, E. M., Spring, B. Q. An automated and stable LED array illumination system for multiwell plate cell culture photodynamic therapy experiments. Research Square. , 1-18 (2022).
  29. Gálvez, E. N., et al. Analysis and evaluation of the operational characteristics of a new photodynamic therapy device. Photodiagnosis and Photodynamic Therapy. 37, 102719(2022).
  30. Bretin, L., et al. Photodynamic therapy activity of new human colorectal cancer. Cancers. 11 (10), 1474(2019).
  31. T. SketchUp. , Available from: https://www.sketchup.com/ (2022).
  32. LCDR PhotoDynamic Therapy (PDT) Equipment Repository. GitHub, Inc. , Available from: https://github.com/PhotoDynamicTherapy (2022).
  33. W3C CSS Color Module Level 3. W3C, Inc. , Available from: https://www.w3.org/TR/css-color-3/#SRGB (2022).

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Yeniden basım ve izinler

Etiketler

LED Tabanlı Cihaz2D Hücre KültürüFotosensitizör AnaliziHeLa Hücre HattıReaktif Oksijen TürleriMTT AnaliziAkış SitometrisiIşık Maruziyeti
2D Hücre Kültürü Modelinde Verteporfin Sitotoksisitesini Arttırmak için Şirket İçi İnşa Edilmiş ve Işık Yayan Diyot Tabanlı Fotodinamik Terapi Cihazı
Bize Ulaşın
Kütüphaneye Öner

Gizlilik

Kullanım Koşulları

Politikalar

Telif Hakkı © 2026 MyJoVE Corporation. Tüm hakları saklıdır.