Yöntem makalesi

Kemirgen Retinalarındaki Yapısal Değişiklikleri Değerlendirmek için Görüntü Kılavuzluğunda Optik Koherens Tomografi

DOI:

10.3791/64783

⸱

10 Şubat 2023

 ,  ,  ,  ,  ,  ,  ,  ,  ,  ,  ,  , 
1State Key Laboratory of Ophthalmology, Optometry, and Vision Science, Eye Hospital, Wenzhou Medical University, 2Department of Ophthalmology, The First People's Hospital of Guiyang

* These authors contributed equally

Bu makalede

Özet

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Burada sunulan protokol, görüntü kılavuzluğunda optik koherens tomografi (OCT) için veri toplama ve veri analizi prosedürlerini detaylandırır ve oküler hastalıkların çoklu kemirgen modellerinde uygulanmasını gösterir.

Özet

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Yaşa bağlı makula dejenerasyonu, glokom, retinitis pigmentosa ve üveit gibi oküler hastalıklara her zaman retinal yapısal değişiklikler eşlik eder. Fundusu etkileyen bu hastalıklar her zaman fotoreseptör hücreleri, retinal ganglion hücreleri, retina kan damarlarındaki hücreler ve koroidal vasküler hücrelerdeki hücreler dahil olmak üzere retinadaki belirli hücre tiplerinde tipik anormallikler gösterir. Noninvaziv, yüksek verimli ve uyarlanabilir görüntüleme teknikleri hem klinik uygulama hem de temel araştırmalar için gereklidir. Görüntü kılavuzluğunda optik koherens tomografi (OCT), fundus fotoğrafçılığı ve yüksek çözünürlüklü OKT'yi bir araya getirerek, küçük lezyonların yanı sıra retina mimarisindeki önemli değişikliklerin doğru teşhisini sağladığı için bu gereksinimleri karşılar. Bu çalışma, görüntü kılavuzluğunda OCT için veri toplama ve veri analizi prosedürlerini detaylandırır ve koroidal neovaskülarizasyon (CNV), optik sinir ezilmesi (ONC), ışığa bağlı retina dejenerasyonu ve deneysel otoimmün üveit (EAU) kemirgen modellerinde uygulamasını gösterir. Bu teknik, göz alanındaki araştırmacıların kemirgen retinal yapısal değişikliklerini rahat, güvenilir ve izlenebilir bir şekilde tanımlamasına yardımcı olur.

Giriş

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Fundusu etkileyen oküler hastalıklar her zaman retinadaki fotoreseptör hücreleri, retinal ganglion hücreleri, retina kan damarlarındaki hücreler ve koroidal kan damarlarındaki hücreler gibi belirli hücre tiplerinde tipik anormallikler sergiler ve bu da daha sonra hastaların görme keskinliğini etkileyebilir1. Geri dönüşü olmayan görme bozukluğunu önlemek için zamanında tanı ve uygun tedaviler gereklidir1. Optik koherens tomografi (OKT), diğerlerinin yanı sıra yaşa bağlı makula dejenerasyonu, retinitis pigmentosa, glokom, üveit ve retina dekolmanı dahil olmak üzere bir dizi oküler hastalığı değerlendirmek için klinikte yaygın olarak kullanılmaktadır 2,3,4. Bu tür noninvaziv, yüksek verimli ve uyarlanabilir görüntüleme tekniği, deney hayvanlarında hastalık koşullarının zamanında değerlendirilmesi için de gereklidir5,6,7,8,9,10.

Görüntü kılavuzluğunda optik koherens tomografi (OCT), 1.8 μm uzunlamasına çözünürlükte ve 2 μm eksenel çözünürlükte hayvan retinalarının kesitsel görüntülerini üretmek için interferometri kullanır. Retinal mimari değişikliklerin araştırılmasında en az üç avantajı vardır: 2,3,4,5,6,7,8,9,10. Birincisi, araştırmacıların aynı hayvan retinasındakiilgilenilen yeri dinamik olarak takip etmelerini sağlayan invaziv olmayan bir tekniktir 5,6,7,8,9,10. İkincisi, bu özellik her deney için örneklem boyutunu önemli ölçüde azaltır3. Bu arada, 2,3,4,5,6,7,8,9,10 araştırma projelerinde önemli ölçüde zaman ve emek tasarrufu sağlar. Üçüncüsü, görüntü kılavuzlu OCT, OCT görüntülerini yakalarken renkli fundus görüntüleri elde eder ve böylece kullanıcılar için doğru ve güvenilir sonuçlar sağlar.

Bu makale, görüntü kılavuzluğunda OCT için görüntü toplama ve veri analizi prosedürlerini açıklar ve koroidal neovaskülarizasyon (CNV)11,12, optik sinir ezilmesi (ONC)13,14,15,16, ışığa bağlı retina dejenerasyonu 17,18,19,20,21 fare ve sıçan modellerinde uygulamasını detaylandırır ve deneysel otoimmün üveit (EAU)22,23. Bu çok yönlü teknikle, araştırmacılar yüksek çözünürlüklü OCT görüntülerinin yanı sıra fundus görüntülerini de rahat ve verimli bir şekilde yakalayabilirler.

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Protokol

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Tüm hayvan prosedürleri, Görme ve Oftalmoloji Araştırmaları Derneği'nin Oftalmik ve Görme Araştırmalarında Hayvanların Kullanımına İlişkin Beyanı'na uygundur ve Wenzhou Tıp Üniversitesi (WMU) Kurumsal Hayvan Bakımı ve Kullanımı Komitesi tarafından onaylanmıştır. Sıçanlara ve farelere, 12 saatlik karanlık / aydınlık bir döngüde 18 lux çevresel ışık yoğunluğu ile su ve yiyeceğe ücretsiz erişim verildi.

1. Oküler hayvan modellerinin hazırlanması

  1. Fare lazerle indüklenen koroidal neovaskülarizasyon (CNV) modeli 11,12
    1. 4 haftalık dişi fareleri (C57BL / 6J arka plan) ketamin ve ksilazin ile uyuşturun ve adım 3.2'yi takip ederek öğrencileri tropikamid fenilefrin göz damlası ile genişletin. Ayak parmağını sıkıştırdıktan sonra herhangi bir hareket algılanmadığında farenin uygun şekilde uyuşturulduğunu düşünün.
    2. Işık kaynağı kutusunu, yazılımı ve lazer kutusunu (dalga boyu: 532 nm), çıkış enerjisi 100 mW'a ve süresi 100 ms'ye ayarlanmış şekilde devreye alın.
    3. Fareyi deney platformuna yerleştirin ve fare fundusunun görünümü netleşene kadar farenin ve platformun konumunu ayarlayın.
    4. Lazer kutusunun ekranındaki Lazer AÇIK düğmesine basın ve kırmızı lazer referans noktasının odağını ayarlayın. Lazer referans noktasını hareket ettirin ve optik diskten bir ila iki papiller çap uzağa ayarlayın. Lazer hasarına neden olmak için ayak pedalını çalıştırın.
    5. Çarpmadan hemen sonra buharlaşan bir baloncuğun oluşup oluşmadığını belirlemek için hemen bir kontrol yapın, bu başarılı lazer hasarının bir işaretidir. Her göz için üç ila beş lazer noktası oluşturun.
  2. Fare optik sinir ezilme (ONC) model 13,14,15,16
    1. Dişi fareleri (C57BL / 6J arka planı) doğum sonrası günde (P) 21 ila P35'te adım 3.2'yi takip ederek uyuşturun. Ayak parmağını sıkıştırdıktan sonra herhangi bir hareket algılanmadığında farenin uygun şekilde uyuşturulduğunu düşünün.
    2. Fareyi cerrahi bir mikroskop altına yerleştirin ve konjonktiva kesisinin boyutunun yaklaşık 1 mm olduğundan emin olarak yaylı makas kullanarak bir gözün konjonktivasını kesin.
    3. İntraorbital optik siniri açığa çıkarın ve optik diskten 0,5 mm uzakta 5 saniye boyunca ince forseps ile ezin. Bunu yaparken orbital kasları ve diğer dokuları nazikçe saptırın ve bir kenara koyun. Cerrahi gözdeki herhangi bir kan damarına zarar vermekten kaçının.
      NOT: Beyaz salkım optik sinire dokunurken veya koparırken göz küresi sallanacağından dikkatli olun.
    4. Kornea kuruluğunu önlemek için ameliyat sonrası oftalmik merhem sürün.
  3. Fare ışığına bağlı retina dejenerasyonu (LIRD) modeli 17,18,19,20,21
    1. Deney öncesi hazırlıklar: Fare kafeslerini (30 cm x 18 cm x 13 cm) alüminyum folyo ve demir ağ örtü ile kapatın. Her kafesi, üstünde beyaz bir ışık bulunan bir kağıt kutuya (52 cm x 35 cm x 30 cm) yerleştirin.
    2. Karanlığa adapte olan 6 haftalık erkek fareler (BALB / c) gece boyunca karanlık odada ve daha sonra her gözde tropikamid fenilefrin göz damlası kullanarak gözleri genişletin. Kornea alanının 3 / 4'ü iris tarafından örtülemeyene kadar öğrenciyi tamamen genişletin; Bu genellikle 3 dakikadan fazla sürmez.
    3. Fareleri 2 saat boyunca 10.000 lux beyaz ışıkla aydınlatın. Fareleri ameliyat sonrası gece boyunca karanlıkta tutun ve ardından normal karanlık ortamlara dönün. Etkili bir ışık uyaranı sağlamak için, her zaman bir fareyi kafeste tutun.
  4. Sıçan deneysel otoimmün üveit (EAU) modeli
    1. Deney öncesi hazırlıklar: 2.5 mg / mL Mycobacterium tuberculosis H37Ra 22,23 ile tam Freund adjuvanında (1: 1 ağırlık / hacim) 2.5 mg hIRBP161-180'i emülsifiye edin.
    2. Her Lewis erkek sıçanın sol ayak pedine (yaklaşık 180 g) deri altından 100 μL emülsiyon enjekte edin.

2. OCT modülü kurulumu

  1. Optik fiberi ve OCT kontrol kablosunu OCT tarama kafası ile OCT motoru arasına bağlayın (Şekil 1A). Fiber üzerindeki çentiği konektör üzerindeki bir yuvayla hizalayın ve ucu yerine oturana kadar yavaşça sokun (Şekil 1B).
    NOT: Kontrol kablosunu bağlamadan önce OCT motorunun güç anahtarını KAPALI konuma getirin. Optik fiber çok kırılgandır, bu nedenle fiber ucun her iki ucundan da kaçının (Şekil 1C). Bu modül sık kullanılıyorsa, OCT tarama kafasının ve fiberin/kablonun takılmasından ve sökülmesinden kaçınılmalıdır.
  2. Fare veya sıçan OCT objektif merceğini makine gövdesinin önüne geçirin (Şekil 1A). OCT tarama kafasını, MR odak göstergesi makine gövdesinden uzağa bakacak şekilde OCT merceğine yerleştirin (Şekil 1A).
  3. OCT tarama kafasını iki kelebek vidayla sabitleyin: biri lenste ve diğeri kamera gövdesinde. Tarama kafasını sıkıca sabitleyin.
  4. Ana güç anahtarını, ardından kamera ışığını ve ardından OCT yazılımını açın.
    NOT: Bilgisayarın onu bulması için kameranın açılması için biraz zamana ihtiyacı vardır.

3. OCT deneyleri için hayvan hazırlığı

  1. OCT deneylerinden 10 dakika önce, hayvanın gözlerine tropikamid fenilefrin göz damlası damlatın ve fazla göz damlasını temiz bir havluyla silin.
  2. Deneyden 5 dakika önce, fareye 200 μL anestezik solüsyon enjekte edin ve fareye intraperitoneal olarak 2.0 mL enjekte edin. Ayak parmağını sıkıştırdıktan sonra herhangi bir hareket algılanmadığında farenin/farenin uygun şekilde uyuşturulduğunu düşünün.
    NOT: Anestezik solüsyonlar, salin içinde ketamin (12 mg / mL) ve ksilazinden (fare için 1 mg / mL ve sıçan için 2 mg / mL) oluşuyordu; tipik olarak, 1 g hayvan vücut kütlesi başına 10 μL anestezik çözelti uygulanır. Çözeltiler en fazla 2 hafta boyunca 4 ° C'de saklandı.
  3. Anestezi uygulandıktan sonra, oküler yüzey kuruluğunu önlemek için korneayı jel merhem ile yağlayın.

4. Görüntü Kılavuzlu OCT Görüntüleme

NOT: Yazılım arayüzü üç bölüme ayrılmıştır: parlak alan görüntüsü, OCT kontrol sekmeleri ve OCT ekranı (Şekil 2).

  1. Parlak alan görüntüsüne bakarken, gerekirse hayvan bilgilerinin ek açıklamasını yazın.
  2. Görüntüde çizgi kaplaması olsun ya da olmasın parlak alan görüntüsü yakalamak için onay kutusunu kullanarak Işın Konumu Kontrolleri'ni AÇIK veya KAPALI konuma getirin.
  3. Tarama ışınını daha hassas bir şekilde yerleştirmek için, yukarı, aşağı, sola veya sağa yönlendirmek üzere hassas kontrol için Konum Dürtme oklarını kullanın. Kalınlık değerlerini ve rengi seçin ve ilgilenilen konumu hedefleyen ışın için bir açı seçin (ör. kalın, siyah ve 0). Kazanç değerini 14 db'ye sürükleyin.
  4. OCT kontrol sekmelerine gidin. Menüden Dosya/File_Settings'yi seçin ve ardından OCT ve fundus görüntülerinin kaydedileceği bir yol oluşturun.
  5. Tarama türünü, boyutunu ve hayvanı (sıçan veya fare) belirtin; Göz, sol veya sağ ve Görüntüleme Retina'yı seçin.
    NOT: OCT, tam, yarım, çeyrek ve sekizinci boyutlarda çizgi, daire ve 3B birim tarama türlerini yakalayabilir.
  6. Görüntü kontrollerini ayarlayın. Değerleri ayarlayın: kontrast için 60, gama için 100 ve parlaklık için 0.
  7. Fareyi deney platformuna yerleştirin ve fare fundusunun görünümü netleşene kadar farenin ve platformun konumunu ayarlayın. Optik diski merkeze yerleştirmek için konumu hassas bir şekilde ayarlayın.
  8. Başlangıçta referans kolunu fareler için 850'ye ve sıçanlar için 830'a ayarlayın ve ardından <-1 veya +1> düğmelerine tıklayarak konumu hassas bir şekilde ayarlayın. OCT görüntüsünü yatay olarak ayarlayın ve ardından OCT görüntüsünü tam görünümün üst 1/3'üne taşıyın.
  9. Gerekirse, retina üzerinden sinyalin parlaklığını ayarlamak için polarizasyon kaydırıcısını hareket ettirin.
  10. Fundus görüntüsünün yanı sıra net ve kararlı bir OCT görüntüsünü gözlemledikten sonra, kare sayısını ayarlayın (genellikle 20, 50, 80 veya 100) ve ardından Ortalama'ya basın.
    NOT: OCT görüntülerinin yakalanması birkaç saniye sürer. Daha fazla kare sayısı, görüntü yakalamanın tamamlanmasının daha uzun sürdüğü ancak daha yüksek kaliteli yakalanan bir görüntü ürettiği anlamına gelir.
  11. OCT ve fundus görüntülerini kaydetmek için Kaydet'e basın ve ardından başka bir örnek yakalamak için Yeniden Başlat'a tıklayın.
    NOT: Hayvanların uyanmadan önce 37 ° C'lik bir ısıtma plakasında iyileşmelerine izin verildi. Hayvanlar, sternal yaslığı sürdürmek için yeterli bilinci yeniden kazanana kadar gözetimsiz bırakılmadı. Tedavi gören hayvanlar, tamamen iyileşene kadar diğer hayvanların yetiştirme sistemine geri gönderilmedi.

5. Kalınlık ölçümü ve kantitatif analiz

NOT: Bu OCT yerleşik analiz yazılımına sahiptir. OCT görüntüleri bu yazılım kullanılarak bölümlere ayrılabilir ve analiz edilebilir (Şekil 3).

  1. Analiz yazılımını açın ve analiz edilmesi gereken bir OCT görüntüsü açın.
  2. Katman sayısını seçin ve ardından İlk Katmanları Al'a basın (Şekil 3A). Yazılım katmanları otomatik olarak çizecektir.
  3. Kalem simgesini tıklatın ve ardından katmanı hassas bir şekilde ayarlamak için hedef katmandaki noktaları hareket ettirin (Şekil 3A, B). Tüm katmanları dikkatlice tek tek değiştirin.
    NOT: Daha fazla katman eklemek mümkündür. Artı simgesine tıklayın, OCT görüntüsünün üzerine birkaç nokta çizin ve ardından Onay simgesine basın. Yeni bir katman oluşturulacaktır.
  4. Katmanların ince ayarlamaları tamamlandıktan sonra, segmentlere ayrılmış OCT'nin ayrıntılı değerlerini (CSV formatı) ve farklı görüntü türlerini dışa aktarın (Şekil 3A).
    NOT: Katmanlar, kalınlık, kalınlık haritası, OCT'siz katmanlar ve ekran görüntüleri dahil olmak üzere farklı görüntü türlerini dışa aktarmak mümkündür. Her görüntünün optik siniri ile örtüşen ortadaki değerin, orada retina tabakası olmadığı için terk edilmesi ve sıfır olarak ayarlanması gerekir.

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Sonuçlar

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Görüntü kılavuzluğunda OCT, farelerde lazerle indüklenen koroidal neovaskülarizasyonda (CNV) lazer noktasının gelişimini izlemek için kullanılabilir. Şekil 1'de gösterildiği gibi, yenidoğan kan damarları Bruch zarından ve retina pigment epitel (RPE) tabakasından geçti ve lazer yaralanmasından sonra fibrotik bir skar oluşturdu11,12. Bu lezyon noktası tam boyutlu tarama (Şekil 4A) veya yarım boyutlu tarama...

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Tartışma

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Bu protokol, görüntü kılavuzlu OCT'nin görüntü toplama ve kalınlık ölçümü için talimatlar sağlar. Araştırmacılar, oküler hastalıkların en popüler dört kemirgen modelini göstererek, görüntü kılavuzluğunda OCT'nin ciddi retinal yapısal değişiklikleri incelemede mükemmel performans sağladığını buldular. Öyle ki, yüksek çözünürlüklü görüntülerle, OCT görüntülerinde de çok küçük lezyonlar kolaylıkla bulunabilir. Görüntü kılavuzluğunda OCT'nin yardımıyla, laboratuvardaki bir grup ayrıca bir mi...

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Açıklamalar

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Yazarların hiçbirinin açıklanacak herhangi bir çıkar çatışması yoktur.

Teşekkürler

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Yazarlar, Devlet Anahtar Oftalmoloji, Optometri ve Görme Bilimi Laboratuvarı üyelerine teknik destekleri ve el yazması ile ilgili faydalı yorumları için teşekkür eder. Bu çalışma, Çin Ulusal Doğa Bilimleri Vakfı (82101169, 81800857, 81870690), Çin'in Zhejiang İl Doğa Bilimleri Vakfı (LGD22H120001, LTGD23H120001, LTGC23H120001), Wenzhou Programı Çin Bilim ve Teknoloji Bürosu (Y20211159), Guizhou Bilim ve Teknoloji Destek Projesi (Qiankehezhicheng [2020] 4Y146) ve Devlet Anahtar Oftalmoloji Laboratuvarı Projesi, Optometri ve Görme Bilimi (No. K03-20220205).

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Malzemeler

Bu makalede kullanılan malzemelerin listesi
AdŞirketKatalog numarasıYorumlar
BALB/c fareBeijing Vital River Laboratory Animal Technology Co., LtdHayvan modeli hazırlıkları
C57BL/6JNifdc fareBeijing Vital River Laboratory Animal Technology Co., LtdHayvan modeli hazırlıkları
Carbomer Eye GelFabrik GmbH Bausch & LombKorneayı nemlendirin 
Komple Freund' s adjuvanSigma F5881EAU deneyi
Deneysel platformPhoenix Teknoloji GrubuHayvan modeli hazırlıkları
hIRBP161-180Şanghay Sangon Biyoloji Mühendisliği Teknolojisi & Hizmetler A.Ş.EAU deneyi
: Ketamin,Ceva Sante, Animale,Genel anestezi
Lazer kutusu, Haag-Streit Grubu,Merilas 532αHayvan modeli hazırlıkları
Lewis sıçanPekin Hayati Nehir Laboratuvarı Hayvan Teknolojisi Co, LtdHayvan modeli preparatları
Mycobacterium Tuberculosis< / em> H37RASigma ve nbsp;344289EAU deneyi
Phoneix Micron IVTechnology GroupHayvan modeli hazırlıkları
Doku forsepsSuzhou Mingren Medical Instrument Co., LtdMR-F101A-5Hayvan modeli hazırlıkları
Tropicamid Fenilefrin Göz DamlasıSANTEN OY, JaponyaGöz dilatasyonu
Vannas makasıSuzhou Mingren Medical Instrument Co., LtdMR-S121AHayvan modeli hazırlıkları
XylazineCeva Sante AnimaleGenel anestezi
, Görüntü kılavuzlu OCT ve görüntü kılavuzlu lazer ile Phoenix

Kaynaklar

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
  1. Cen, L. -P., et al. Automatic detection of 39 fundus diseases and conditions in retinal photographs using deep neural networks. Nature Communications. 12, 4828(2021).
  2. Kashani, A. H., et al. Optical coherence tomography angiography: A comprehensive review of current methods and clinical applications. Progress in Retinal and Eye Research. 60, 66-100 (2017).
  3. Cheng, D., et al. Inner retinal microvasculature damage correlates with outer retinal disruption during remission in Behçet's posterior uveitis by optical coherence tomography angiography. Investigative Ophthalmology & Visual Science. 59 (3), 1295-1304 (2018).
  4. Lin, R., et al. Relationship between cone loss and microvasculature change in retinitis pigmentosa. Investigative Ophthalmology & Visual Science. 60 (14), 4520-4531 (2019).
  5. Dietrich, M., et al. Using optical coherence tomography and optokinetic response as structural and functional visual system readouts in mice and rats. Journal of Visualized Experiments. (143), e58571(2019).
  6. Jagodzinska, J., et al. Optical coherence tomography: Imaging mouse retinal ganglion cells in vivo. Journal of Visualized Experiments. (127), e55865(2017).
  7. Ye, Q., et al. In vivo methods to assess retinal ganglion cell and optic nerve function and structure in large animals. Journal of Visualized Experiments. (180), e62879(2022).
  8. Mai, X., Huang, S., Chen, W., Ng, T. K., Chen, H. Application of optical coherence tomography to a mouse model of retinopathy. Journal of Visualized Experiments. (179), e63421(2022).
  9. Allen, R. S., Bales, K., Feola, A., Pardue, M. T. In vivo structural assessments of ocular disease in rodent models using optical coherence tomography. Journal of Visualized Experiments. (161), e61588(2020).
  10. Kokona, D., Jovanovic, J., Ebneter, A., Zinkernagel, M. S. In vivo imaging of Cx3cr1gfp/gfp reporter mice with spectral-domain optical coherence tomography and scanning laser ophthalmoscopy. Journal of Visualized Experiments. (129), e55984(2017).
  11. Yan, M., Li, J., Yan, L., Li, X., Chen, J. -G. Transcription factor Foxp1 is essential for the induction of choroidal neovascularization. Eye and Vision. 9 (1), 10(2022).
  12. Wolf, A., Herb, M., Schramm, M., Langmann, T. The TSPO-NOX1 axis controls phagocyte-triggered pathological angiogenesis in the eye. Nature Communications. 11, 2709(2020).
  13. Li, L., et al. Longitudinal morphological and functional assessment of RGC neurodegeneration after optic nerve crush in mouse. Frontiers in Cellular Neuroscience. 14, 109(2020).
  14. Zhang, Y., et al. Elevating growth factor responsiveness and axon regeneration by modulating presynaptic inputs. Neuron. 103 (1), 39-51 (2019).
  15. Wang, J., et al. Robust myelination of regenerated axons induced by combined manipulations of GPR17 and microglia. Neuron. 108 (5), 876-886 (2020).
  16. Tian, F., et al. Core transcription programs controlling injury-induced neurodegeneration of retinal ganglion cells. Neuron. 110 (16), 2607-2624 (2022).
  17. Wu, K. -C., et al. Deletion of miR-182 leads to retinal dysfunction in mice. Investigative Ophthalmology & Visual Science. 60 (4), 1265-1274 (2019).
  18. Rattner, A., Nathans, J. The genomic response to retinal disease and injury: Evidence for endothelin signaling from photoreceptors to glia. Journal of Neuroscience. 25 (18), 4540-4549 (2005).
  19. Rattner, A., Toulabi, L., Williams, J., Yu, H., Nathans, J. The genomic response of the retinal pigment epithelium to light damage and retinal detachment. Journal of Neuroscience. 28 (39), 9880-9889 (2008).
  20. Hahn, P., et al. Deficiency of Bax and Bak protects photoreceptors from light damage in vivo. Cell Death & Differentiation. 11 (11), 1192-1197 (2004).
  21. Fan, J., et al. Maturation arrest in early postnatal sensory receptors by deletion of the miR-183/96/182 cluster in mouse. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 114 (21), 4271-4280 (2017).
  22. Zhou, J., et al. A combination of inhibiting microglia activity and remodeling gut microenvironment suppresses the development and progression of experimental autoimmune uveitis. Biochemical Pharmacology. 180, 114108(2020).
  23. Okunuki, Y., et al. Retinal microglia initiate neuroinflammation in ocular autoimmunity. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 116 (20), 9989-9998 (2019).
  24. Dai, X., et al. Rodent retinal microcirculation and visual electrophysiology following simulated microgravity. Experimental Eye Research. 194, 108023(2020).
  25. Dai, X., et al. Photoreceptor degeneration in a new Cacna1f mutant mouse model. Experimental Eye Research. 179, 106-114 (2019).
  26. Liu, Y., et al. Mouse models of X-linked juvenile retinoschisis have an early onset phenotype, the severity of which varies with genotype. Human Molecular Genetics. 28 (18), 3072-3090 (2019).
  27. Ou, J., et al. Synaptic pathology and therapeutic repair in adult retinoschisis mouse by AAV-RS1 transfer. Journal of Clinic Investigation. 125 (7), 2891-2903 (2015).
  28. Xiang, L., et al. Depletion of miR-96 delays, but does not arrest, photoreceptor development in mice. Investigative Ophthalmology & Visual Science. 63 (4), 24(2022).
  29. Huang, X. -F., et al. Functional characterization of CEP250 variant identified in nonsyndromic retinitis pigmentosa. Human Mutation. 40 (8), 1039-1045 (2019).
  30. Jonnal, R. S., et al. A review of adaptive optics optical coherence tomography: Technical advances, scientific applications, and the future. Investigative Ophthalmology & Visual Science. 57 (9), 51(2016).
  31. Dong, Z. M., Wollstein, G., Wang, B., Schuman, J. S. Adaptive optics optical coherence tomography in glaucoma. Progress in Retinal and Eye Research. 57, 76-88 (2017).

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Yeniden basım ve izinler

Bu JoVE makalesinin metnini veya şekillerini yeniden kullanmak için izin iste

İzin iste

Etiketler

Retinal Structural ChangesRodent Retina ImagingFundus PhotographyChoroidal NeovascularizationOptic Nerve CrushRetinal DegenerationAutoimmune UveitisPhotoreceptor CellsRetinal Ganglion Cells
Video yakında

İlgili makaleler