Method Article

CryoEM Durum Güncellemesi ve Yenilikçi Gelişmeler

DOI:

10.3791/65021

March 3rd, 2023

In This Article

Abstract

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

TARTIŞILAN MAKALELER:

Truong, C. D. et al. Elektron kristalografik çalışmaları için bir lipid tek tabaka yöntemi kullanılarak numune hazırlama. Görselleştirilmiş Deneyler Dergisi. (177), E63015 (2021).

Johnson, M. C., Grant, A. J., Schmidt-Krey, I. Soyma-leke tekniği: Çok katmanlı veya konsantre biyolojik numunelerden tek katmanları ayırmak için bir kriyo-EM numune hazırlama yöntemi. Görselleştirilmiş Deneyler Dergisi. (184), E64099 (2022).

Chang, Y.-C., Chen, C.-Y., Tsai, M.-D. Cryo-EM için yüksek sıcaklıkta numune ızgaralarının hazırlanması. Görselleştirilmiş Deneyler Dergisi. (173), E62772 (2021).

Kang, M.-H., Lee, M., Kang, S., Park, J. Yüksek verimli kriyojenik elektron mikroskobu için kontrollü kalınlığa sahip mikro desenli çip üretimi. Görselleştirilmiş Deneyler Dergisi. (182), E63739 (2022).

Bieber, A., Capitanio, C., Wilfling, F., Plitzko, J., Erdmann, P. S. Yüksek çözünürlüklü kriyo-elektron tomografisi için 3D bağıntılı odaklanmış iyon ışını frezeleme ile numune hazırlama. Görselleştirilmiş Deneyler Dergisi. (176), E62886 (2021).

DiCecco, L.-A. et al. Sıvı ve buzda virüs düzeneklerinin yüksek çözünürlüklü görüntülemesini geliştirme. Görselleştirilmiş Deneyler Dergisi. (185), E63856 (2022).

Kumar, A., P, S., Gulati, S., Dutta, S. Tek parçacıklı kriyo-elektron mikroskobu için kullanıcı dostu, yüksek verimli ve tam otomatik veri toplama yazılımı. Görselleştirilmiş Deneyler Dergisi. (173), E62832 (2021).

Discussion

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Biyolojik moleküllerin kriyo-elektron mikroskobu (kriyoEM) için 2017 Nobel Ödülü verilmeden önce bile, alan heyecan yaratıyordu. Çözünürlük devrimi iyi bir şekilde devam ediyordu ve yapısal biyoloji, x-ışını kristalografisi1'in altın standardına yaklaşan bir karakterizasyon yöntemi olarak kriyoEM'ye bakıyordu. Başlangıçta, kriyoEM alanı öncelikle kriyotransmisyon elektron mikroskopları (kriyoTEM'ler) tarafından üretilen verileri kapsıyordu. Artık mikroskoplar, numune hazırlama cihazları ve numune hazırlama yöntemleri geliştikçe, üretilen veri türleri de daha çeşitli hale geldi. CryoEM artık cryoTEM ile protein karakterizasyonu için ayrılmamıştır. Alan büyüdü ve artık kriyo taramalı elektron mikroskoplarından ve odaklanmış iyon ışınından (kriyoSEM/FIB) üretilen verileri içeriyor. Etki, moleküller, hücreler, dokular ve hidrojeller gibi sentetik malzemeler üzerinde görüntüleme araştırmaları da dahil olmak üzere birçok disiplinde daha geniş bir şekilde hissedilmektedir.

Görüntüleme yeteneklerindeki ilerlemeler, kriyoEM geliştirmede itici bir güç olmuştur. Kameralar, dedektörler ve görüntü işlemedeki gelişmeler, daha az enerji girişi ile görüntülemenin önünü açmış ve bu da hassas biyolojik numunelerin görüntüleme sürecinde hayatta kalmasını sağlamıştır. TEM'lerde, düşük doz ışın maruziyeti, bir 3D rekonstrüksiyon 2,3 oluşturmak için tek bir numunenin birden fazla açıdan tekrar tekrar görüntülendiği tomografi uygulamasına çevrilmiştir. SEM/FIB'lerdeki ilerlemeler aynı zamanda daha az enerji kullanırken çözünürlüğün artmasına da yol açtı. Daha da önemlisi, bu, iletken olmayan numunelerin daha iyi görüntülenmesine yol açmıştır, bu da SEM/ FIB'lerde 4,5'te daha iyi hacimli görüntüleme anlamına gelir. Bu gelişmeler, tüm biyolojik elektron mikroskobu görüntülemeyi geliştirmiştir, ancak özellikle numunelerin hassas olduğu ve kontrastı iyileştirmek için ek ağır metallerin eklenmediği kriyo görüntülemeyi geliştirmiştir.

Görüntüleme yetenekleri geliştikçe numune hazırlama cihazları da gelişti. KriyoEM numune hazırlamada ilk adım, numunelerin başarılı bir şekilde vitrifikasyonudur. Hidratlı numuneler amorf buz oluşturacak şekilde dondurulur, böylece buz kristallerinin oluşumunun neden olduğu hasar önlenir. Önde gelen stratejiler, moleküller ve küçük hücreler için sıvı etan içinde daldırmalı dondurma veya kalınlığı birkaç yüz mikrona kadar olan daha büyük numuneler için yüksek basınçlı dondurmadır (HPF). Daldırmalı dondurma teknolojisindeki gelişmeler, hava/su arayüzü boyunca kendi kendine montajı azaltarak moleküllerin tüm yönlerde daha iyi yakalanmasını sağlar6. Ek olarak, HPF teknolojisindeki gelişmeler, numunelerin dondurulmadan birkaç dakika önce ışıkla ve elektrikle uyarılmasına olanak tanır7. Son zamanlarda, canlı hücrelerin floresan görüntülemesi ile HPF dondurması 8 arasında kısa bir zaman gecikmesine (<2 s) izin veren bir floresan mikroskobu ile arayüz oluşturabilen yeni bir HPF teknolojisigeliştirilmiştir.

Yukarıdaki ilerlemeler kriyoEM alanına enerji vermiş ve yeni yöntemlerin geliştirilmesine ilham vermiştir. Ayrıca yerleşik tekniklerin yeniden canlandırılması da söz konusudur. Burada, bu stratejileri hızla genişleyen araştırma alanına yaymak amacıyla kriyoEM'i ilerletmeye odaklanan bir yöntem koleksiyonu sunuyoruz.

Görüntüleme yetenekleri ve numune hazırlama cihazlarındaki gelişmeler, kriyoEM alanındaki ilerlemelerin arkasındaki önemli bir itici güç olsa da, bu araştırmadaki en büyük engel, numunelerin uygulamalı olarak hazırlanması olmaya devam ediyor. Truong ve ark.9 hava/su arayüzünde lipid tek tabaka oluşumundan yararlanan bir yöntem sunmaktadır. TEM ızgarasında bir lipit tabakası oluşur ve ilgilenilen zar proteinleri için bir iskele görevi görür. Çok katmanlı veya istiflenmiş membran numuneleri için Johnson ve ark.10 , ızgara üzerinde TEM görüntüleme için uygun olan tek bir katman bırakarak fazla katmanları "soymak" için bir strateji sunmaktadır. Başka bir makalede Chang ve ark.11 bazı proteinlerin sıcaklığa bağımlı olduğunu ve ilgili yapının yüksek sıcaklıklarda gözlendiğini kabul etmişlerdir. Numunelerin yüksek sıcaklıklarda ızgaraya uygulanmasına izin verirken, daldırma-dondurmadan sonra camsı buz elde etmeye devam eden modifiye edilmiş bir daldırma-dondurma yöntemini tanımlarlar. Kriyo ızgara hazırlama sürecini daha fazla kontrol etmek için Kang ve ark.12 , gözeneklerin kontrol edilebilir bir derinliğe sahip olduğu TEM ızgaraları için mikro desenli çipler üretmek için yüksek verimli bir yöntem sunmaktadır. Bu yöntem, ızgara hazırlığı sırasında amorf buzun kalınlığını kontrol etmek için başka bir değişken sağlayabilir.

Çoklu görüntüleme yöntemlerinin korelasyonu etkilidir. Bieber ve ark.13 , ilgilenilen bir floresan bölgesini bulmak için donmuş bir ızgaranın bir kriyo floresan mikroskobunda görüntülendiği bir kriyo iş akışını tanımlamaktadır. Izgara daha sonra, floresan görüntüsünü SEM görüntüsüyle hizalamak için referansların kullanıldığı bir kriyoSEM/FIB'ye aktarılır, böylece floresan bölgenin FIB frezeleme için hedeflenmesine izin verilir. Hedef bölge birkaç yüz nanometreye kadar inceltilir ve daha sonra ızgara, inceltilmiş hedef konumda tomografi için bir kriyoTEM'e aktarılır. DiCecco ve ark.14 , sıvı TEM ve kriyoTEM arasında bir korelasyon olduğunu göstererek, yüksek çözünürlüklü kriyoTEM verilerini dinamik hareket halindeki moleküllerin TEM verileriyle birleştirme hedefine yaklaşmaktadır.

Büyük veri setlerinin otomatik olarak edinilmesi de bir ilgi alanıdır. Değerli cihaz zamanının en üst düzeye çıkarılması gerekir ve otomasyon önemli bir adımdır. Kumar ve ark.15 , kriyoTEM görüntüleme için otomatik bir veri toplama yazılımının tıkla tıkla kurulumunu tanımlamaktadır.

KriyoEM alanı gelişmeye devam ettikçe, numune hazırlamada daha fazla ilerleme görülecek ve kriyoEM'in etkisi daha fazla disiplinde geniş çapta hissedilecektir. Bazı ilerlemeler yeni teknikleri değil, mevcut tekniklerin güçlendirilmesini içerecektir. Teknikler daha hızlı, daha kolay ve daha sağlam olacak ve daha yüksek verim elde edecek. Otomasyon veri çıkışını artırdıkça, temel geliştirme alanları görüntü analizi ve veri işleme olacaktır. Ayrıca yapay zeka da önemli bir rol oynayacak. Bu gelişmelerin gerçekleşmesi daha yavaş olsa da, bu teknolojinin daha geniş çapta erişilebilir olmasını sağlayacak enstrümantasyon maliyetlerinde ve ayak izinde bir azalma görmeyi beklemeliyiz.

Disclosures

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Yazarların açıklayacak hiçbir şeyi yoktur.

Acknowledgements

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Bu koleksiyona katkılarından dolayı tüm yazarlara ve bu alandaki sürekli ilerleme için meslektaşlarımıza teşekkür ederiz. Bu çalışma kısmen Ulusal Kanser Enstitüsü'nden Koch Enstitüsü Destek (çekirdek) Hibe P30-CA14051 tarafından desteklenmiştir. Koch Enstitüsü'nün Robert A. Swanson (1969) Biyoteknoloji Merkezi'ne, özellikle Peterson (1957) Nanoteknoloji Malzemeleri Çekirdek Tesisi'ne teknik destek için teşekkür ederiz.

References

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
  1. Kühlbrandt, W. The resolution revolution. Science. 343 (6178), 1443-1444 (2014).
  2. McEwen, B. F., Marko, M. The emergence of electron tomography as an important tool for investigating cellular ultrastructure. Journal of Histochemistry & Cytochemistry. 49 (5), 553-563 (2001).
  3. Dover, S. D., Elliott, A., Kernaghan, A. K. Three-dimensional reconstruction from images of tilted specimens: the paramyosin filament. Journal of Microscopy. 122, 23-33 (1981).
  4. Schertel, A., et al. Cryo FIB-SEM: Volume imaging of cellular ultrastructure in native frozen specimens. Journal of Structural Biology. 184 (2), 355-360 (2013).
  5. Wu, G. H., et al. Multi-scale 3D cryo-correlative microscopy for vitrified cells. Structure. 28 (11), 1231-1237 (2020).
  6. Darrow, M. C., Moore, J. P., Walker, R. J., Doering, K., King, R. S. Chameloen: Next generation sample preparation for cryoEM based on Spotiton. Microscopy and Microanalysis. 25, 994-995 (2019).
  7. Watanabe, S., et al. Ultrafast endocytosis at Caenorhabditis elegans neuromuscular junctions. Life. 2, 00723(2013).
  8. Heiligenstein, X., et al. HPM live μ for a full CLEM workflow. Methods in Cell Biology. 162, 115-149 (2021).
  9. Truong, C. D., et al. Sample preparation using a lipid monolayer method for electron crystallographic studies. Journal of Visualized Experiments. (177), e63015(2021).
  10. Johnson, M. C., Grant, A. J., Schmidt-Krey, I. The peel-blot technique: A cryo-EM sample preparation method to separate single layers from multi-layered or concentrated biological samples. Journal of Visualized Experiments. (184), e64099(2022).
  11. Chang, Y. -C., Chen, C. -Y., Tsai, M. -D. Preparation of high-temperature sample grids for cryo-EM. Journal of Visualized Experiments. (173), e62772(2021).
  12. Kang, M. -H., Lee, M., Kang, S., Park, J. Fabrication of micro-patterned chip with controlled thickness for high-throughput cryogenic electron microscopy. Journal of Visualized Experiments. (182), e63739(2022).
  13. Bieber, A., Capitanio, C., Wilfling, F., Plitzko, J., Erdmann, P. S. Sample preparation by 3D-correlative focused ion beam milling for high-resolution cryo-electron tomography. Journal of Visualized Experiments. (176), e62886(2021).
  14. DiCecco, L. -A., et al. Advancing high-resolution imaging of virus assemblies in liquid and ice. Journal of Visualized Experiments. (185), e63856(2022).
  15. Kumar, A., P, S., Gulati, S., Dutta, S. User-friendly, high-throughput, and fully automated data acquisition software for single-particle cryo-electron microscopy. Journal of Visualized Experiments. (173), e62832(2021).

Reprints and Permissions

Request permission to reuse the text or figures of this JoVE article

Request Permission

Tags

CryoEMSample PreparationLipid Monolayer MethodElectron CrystallographyPeel blot TechniqueHigh temperature Sample GridsMicro patterned ChipHigh throughput Cryogenic Electron Microscopy3D correlative Focused Ion Beam MillingCryo electron TomographyVirus Assemblies ImagingAutomated Data Acquisition SoftwareSingle particle Cryo electron Microscopy

Related Articles