Yöntem makalesi

Fitokimyasalların Helicoverpa armigera Üzerindeki İnsektisidal Etkisinin Değerlendirilmesi için Beslenme Deney Sistemi Geliştirilmesi

DOI:

10.3791/65278

⸱

26 Mayıs 2023

 ,  ,  , 
1Biochemical Sciences Division, CSIR-National Chemical Laboratory, 2Academy of Scientific and Innovative Research (AcSIR)

Bu makalede

Özet

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Bu protokol, bir fitokimyasalın lepidopteran böcek larvaları üzerindeki potansiyel toksik etkisini değerlendirmek için zorunlu besleme testini açıklar. Bu, öldürücü ve öldürücü dozu, caydırıcı aktiviteyi ve fizyolojik etkiyi optimize etmek kolay, oldukça ölçeklenebilir bir böcek biyo-tahlilidir. Bu, çevre dostu böcek ilaçlarını taramak için kullanılabilir.

Özet

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Bir lepidopteran böceği olan Helicoverpa armigera, dünya çapında bir dağılıma sahip polifag bir zararlıdır. Bu otçul böcek, bitkiler ve tarımsal üretkenlik için bir tehdittir. Buna karşılık, bitkiler böceğin büyümesini ve hayatta kalmasını olumsuz yönde etkileyen çeşitli fitokimyasallar üretir. Bu protokol, bir fitokimyasalın (quercetin) böcek büyümesi, gelişmesi ve hayatta kalması üzerindeki etkisini değerlendirmek için zorunlu bir beslenme tahlili yöntemini gösterir. Kontrollü koşullar altında, yenidoğanlar önceden tanımlanmış bir yapay diyetle ikinci girişe kadar tutuldu. Bu ikinci instar larvaların 10 gün boyunca kontrol ve kuersetin içeren yapay bir diyetle beslenmelerine izin verildi. Böceklerin vücut ağırlığı, gelişim evresi, frass ağırlığı ve ölüm oranı alternatif günlerde kaydedildi. Test süresi boyunca vücut ağırlığındaki değişim, beslenme düzenindeki farklılık ve gelişimsel fenotipler değerlendirildi. Açıklanan zorunlu beslenme testi, doğal bir yutma modunu simüle eder ve çok sayıda böceğe kadar ölçeklendirilebilir. Fitokimyasalların büyüme dinamikleri, gelişimsel geçiş ve H. armigera'nın genel uygunluğu üzerindeki etkisini analiz etmeye izin verir. Ayrıca, bu kurulum beslenme parametrelerindeki ve sindirim fizyolojisi süreçlerindeki değişiklikleri değerlendirmek için de kullanılabilir. Bu makale, toksikolojik çalışmalarda, böcek öldürücü molekül taramasında ve bitki-böcek etkileşimlerinde kimyasal etkilerin anlaşılmasında uygulamaları olabilecek besleme tahlil sistemleri için ayrıntılı bir metodoloji sunmaktadır.

Giriş

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Mahsul verimliliğini etkileyen biyotik faktörler esas olarak patojenik ajanlar ve zararlılardır. Çeşitli böcek zararlıları, tarımsal ürün kaybının %15 ila %35'ine neden olur ve ekonomik sürdürülebilirlik uygulamalarını etkiler1. Coleoptera, Hemiptera ve Lepidoptera takımlarına ait böcekler, yıkıcı zararlıların ana takımlarıdır. Çevrenin son derece uyarlanabilir doğası, çeşitli hayatta kalma mekanizmalarının geliştirilmesinde lepidopteranlara fayda sağlamıştır. Lepidopteran böcekler arasında, Helicoverpa armigera (Pamuk kurdu) yaklaşık 180 farklı mahsulle beslenebilir ve üreme dokularına önemli zararlar verebilir2. Dünya çapında, H. armigera istilası yaklaşık 5 milyar dolarlık bir kayba neden olmuştur3. Pamuk, nohut, güvercin bezelyesi, domates, ayçiçeği ve diğer mahsuller H. armigera'ya ev sahipliği yapar. Yaşam döngüsünü konukçu tesislerin farklı bölümlerinde tamamlar. Dişi güvelerin bıraktığı yumurtalar yapraklarda çatlar, ardından larva dönemlerinde vejetatif dokularla beslenirler. Larva aşaması, obur ve son derece uyarlanabilir doğası nedeniyle en yıkıcıdır 4,5. H. armigera, polifaji, mükemmel göç yetenekleri, daha yüksek doğurganlık, güçlü diyapoz ve mevcut böcek kontrol stratejilerine karşı direncin ortaya çıkması gibi dikkate değer özellikleri nedeniyle küresel bir dağılım ve yeni bölgelere tecavüz göstermektedir6.

Terpenler, flavonoidler, alkaloidler, polifenoller, siyanojenik glukozitler ve diğerlerinden çeşitli kimyasal moleküller, H. armigera istilasının kontrolü için yaygın olarak kullanılmaktadır7. Bununla birlikte, kimyasal moleküllerin sık sık uygulanması, kalıntılarının edinilmesi nedeniyle çevre ve insan sağlığı üzerinde olumsuz etkiler yaratmaktadır. Ayrıca, çeşitli haşere avcıları üzerinde zararlı bir etki göstererek ekolojik bir dengesizliğe neden olurlar 8,9. Bu nedenle, haşere kontrolünün kimyasal molekülleri için güvenli ve çevre dostu seçeneklerin araştırılması gerekliliği vardır.

Bitkiler tarafından üretilen doğal böcek öldürücü moleküller (fitokimyasallar), kimyasal pestisitlere umut verici bir alternatif olarak kullanılabilir. Bu fitokimyasallar, alkaloidler, terpenoidler ve fenolikler 7,10 sınıflarına ait çeşitli ikincil metabolitleri içerir. Quercetin, çeşitli tahıllarda, sebzelerde, meyvelerde ve yapraklarda bulunan en bol flavonoidlerden (fenolik bileşik) biridir. Böceklere karşı beslenme caydırıcı ve böcek öldürücü aktivite gösterir; Ayrıca, zararlıların doğal düşmanlarına zararlı değildir11,12. Bu nedenle, bu protokol, H. armigera üzerindeki toksik etkisini değerlendirmek için quercetin kullanan besleme testini göstermektedir.

Doğal ve sentetik moleküllerin bir böceğin beslenmesi, büyümesi, gelişmesi ve davranış kalıpları üzerindeki etkisini değerlendirmek için çeşitli biyo-tahlil yöntemleri geliştirilmiştir13. Yaygın olarak kullanılan yöntemler arasında yaprak disk testi, seçim besleme testi, damlacık besleme testi, temas testi, diyet kaplama testi ve zorunlu besleme testibulunur 13,14. Bu yöntemler, pestisitlerin böceklere nasıl uygulandığına göre sınıflandırılır. Zorunlu beslenme testi, olası insektisitleri ve bunların öldürücü dozlarını test etmek için en yaygın kullanılan, hassas, basit ve uyarlanabilir yöntemlerden biridir14. Zorunlu bir beslenme tahlilinde, ilgilenilen molekül yapay bir diyetle karıştırılır. Bu, diyet bileşimi üzerinde tutarlılık ve kontrol sağlayarak sağlam ve tekrarlanabilir sonuçlar üretir. Besleme tahlillerini etkileyen önemli değişkenler böceğin gelişim evresi, insektisit seçimi, çevresel faktörler ve örneklem büyüklüğüdür. Testin süresi, iki veri kaydı arasındaki aralık, diyetle beslenmenin sıklığı ve miktarı, böceklerin sağlığı ve operatörlerin kullanım becerisi de besleme testlerinin sonucunu etkileyebilir14,15.

Bu çalışma, quercetin'in H. armigera sağkalımı ve zindeliği üzerindeki etkisini değerlendirmek için zorunlu beslenme testini göstermeyi amaçlamaktadır. Böcek vücut ağırlığı, ölüm oranı ve gelişimsel kusurlar gibi çeşitli parametrelerin değerlendirilmesi, quercetin'in böcek öldürücü etkileri hakkında fikir verecektir. Bu arada, yutulan gıdanın dönüşüm etkinliği (ECI), sindirilmiş gıdanın dönüşüm etkinliği (ECD) ve yaklaşık sindirilebilirlik (AD) dahil olmak üzere beslenme parametrelerinin ölçülmesi, quercetin'in antifeedant özelliklerini vurgulayacaktır.

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Protokol

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

H. armigera larvaları , ICAR-Ulusal Tarımsal Böcek Kaynakları Bürosu (NBAIR), Bangalore, Hindistan'dan elde edilmiştir. Bu çalışmada toplam 21 adet ikinci instar larvası kullanıldı.

1. Nohut bazlı yapay diyetin hazırlanması

NOT: Yapay bir diyet hazırlamak için gerekli bileşenlerin bir listesi Tablo 1'de belirtilmiştir.

  1. Tüm fraksiyonları Tablo 1'de listelendiği gibi bir beherde ayrı ayrı tartın ve bir spatula/manyetik karıştırıcı kullanarak homojen bir karışım hazırlayın.
  2. C Fraksiyonunu yaklaşık 100 °C'de bir mikrodalga kullanarak 5 dakika kaynatın, Fraksiyon A'ya ekleyin ve iyice karıştırın.
  3. İyice karıştırdıktan sonra, Fraksiyon B'yi eklemeden önce karışık fraksiyonun biraz soğumasını bekleyin (Fraksiyon B, ısıya dayanıksız bileşenler içerir).
  4. Şeffaf, polistiren, 150 mm x 150 mm Petri kabına dökün.

2. Quercetin içeren yapay diyetin hazırlanması

  1. Uygun miktarda (1.000 ppm) quercetin hidratı tartın ( Malzeme Tablosuna bakınız) ve etanol (2 mg / mL), dimetil sülfoksit (DMSO; 30 mg / mL) veya dimetil formamid (DMF) gibi minimum organik çözücü hacminde uygun şekilde çözün. Burada DMSO, quercetin'i çözmek için kullanılır.
  2. Çözünmüş quercetin'i Fraksiyon B'ye ekleyin, ardından Fraksiyon A ve C'nin karışımına ekleyin (Fraksiyon B'den indirgenen su hacmi, eklenen DMSO hacmine eşittir).
  3. Quercetin'i çözmek için kullanılan eşit hacimde organik çözücüyü kontrol diyetine ekleyin.
    NOT: Şekil 1 , yapay ve quercetin içeren diyetlerin hazırlanmasının şematik gösterimini göstermektedir.

3. H. armigera kültürünün yetiştirilmesi ve bakımı

NOT: Böcek yetiştirme ve bakımı için uygun şekilde temizlenmiş ve sterilize edilmiş malzemeler kullanın. Sterilite ve güvenlikle ilgili tüm standart çalışma uygulamalarını 16,17,18 izleyerek böcekleri dikkatli bir şekilde kullanın.

  1. H. armigera yumurtalarını, adım 3.3'te açıklandığı gibi, üreme odasında (müslin bezle kaplı plastik kavanoz) korunmuş koşullarda saklayın. Ardından, yeni ortaya çıkan yenidoğanları taze hazırlanmış nohut bazlı yapay bir diyetle ince bir boya fırçası kullanarak nazikçe aktarın.
  2. Larvaları yetiştirmek için yapay bir diyet ve yetişkin güveler için %1 (a/h) multi-vitamin içeren %20 (a/h) sükroz çözeltisi (Malzeme Tablosuna bakınız) kullanın19,20.
    NOT: H. armigera'nın üçüncü ve daha yaşlı larvaları yamyamlık eğilimi gösterdiğinden, her larvayı ayrı bir şişede yetiştirmek gerekir.
  3. Böcek kültürü odasında sıcaklığı 25 ± 1 °C'de ve bağıl nemi %70'te tutun, 16 saat ışık: 8 saat karanlık fotoperiyot21.
  4. Homojenlik için laboratuvarda bir nesil böcek yetiştirin ve daha sonra besleme tahlili için kullanın.
  5. İsteğe bağlı olarak, larva ve pupaların büyümesini hızlandırmak için böcek kültürü odasının sıcaklığını 28 °C'ye yükseltin22.

4. Besleme tahlili için kurulum

  1. Her set için 21 saniye instar larvası toplayın (kontrol ve tedavi) ve yaklaşık 1-3 saat diyetten uzak tutun.
  2. Kontrol ve quercetin içeren diyeti küçük parçalara ayırın, verilen diyetin ve böceğin vücudunun ağırlığını kaydedin ve böcekleri dikkatlice kültür şişelerine aktarın. Böceklerin ilgili diyetle beslenmesine izin verin.
    NOT: Bu, beslenme testinin 0. günü olarak düşünülmelidir.
  3. Tahlilin 10. gününe kadar alternatif günlerde (2, 4, 6, 8 ve 10. günler) verilen diyet, yenmemiş diyet ve frass verilen böcek vücudunun ağırlığını kaydedin.
  4. 10. Günden sonra, daha fazla gelişimsel ve morfolojik değişiklikleri gözlemlemek için kendi diyetleriyle beslenmelerini sağlayın.
    NOT: Gelişimsel değişiklikler şu yollarla yapılır: (1) larva kütikül yamaları, bir kafa kapsülü ve torasik bacaklar ile pupaların arka yarım gövdesi gibi larva-pupa ara ürünleri; (2) tamamen kararmış bir gövdeye sahip prepupae; (3) vücut büzülmesi olan cılız pupalar; (4) pupa güvesi eski pupa derisi ile ara güveler. Morfolojik değişiklikler, anormal gövdeleri, bükülmüş kanatları ve eklemli bacakları olan hatalı biçimlendirilmiş güve yetişkinlerini içerir. Bu değişiklikler daha sonra kontrol diyetinde beslenen böceklerle karşılaştırılır.
  5. Gelişimsel ve morfolojik kusurların incelenmesi gerekmiyorsa, böcekleri 10. günde dondurun.
    NOT: Larvaları dondurmadan önce, artık diyeti sindirim sisteminden çıkarmak için en az 3 saat diyetten mahrum bırakılmaları gerekir.

5. Veri kaydı ve analizi

  1. GraphPad Prism yazılımında (Malzeme Tablosuna bakın), "Hoş Geldiniz veya Yeni Tablo" iletişim kutusundan bir XY veri tablosu seçin ve buna, alt sütunlarda değerleri yan yana çoğaltan böcek sayısını girin. Daha sonra başlık adını X eksenine gün sayısı olarak verin ve A ve B gruplarında başlık adını sırasıyla kontrol ve quercetin tedavisi olarak verin. Vücut ağırlığı grafiğini oluşturmak için her böceğin vücut ağırlığını kontrol altına alın ve tedavi edin.
    NOT: GraphPad'de yapılan analizler numune büyüklüğüne ve tedavi sayısına göre değişiklik gösterebilir.
  2. Bir öğrenci t-testi kullanarak kontrol ve tedavi grupları arasındaki böcek vücut ağırlığını karşılaştırın (α = 0.05).
  3. Grafik yazılımını kullanarak hayatta kalma yüzdesi için bir Kaplan-Meier eğrisi çizmek için 10. günde canlı ve ölü larvaları ve pupaları sayın.
  4. Pupa sayısını sayın ve verilen formülü kullanarak pupa yüzdesini hesaplayın:
  5. Pupa yüzdesi (%) = (oluşan pupa sayısı/toplam larva sayısı) x 100
  6. Aşağıdaki formülleri kullanarak larva gelişimini beslenme indeksleri23 açısından karşılaştırın, ECI (%) = (larvaların ağırlık artışı/yenen yemin ağırlığı) x 100
    ECD (%) = (larvaların ağırlık artışı/[yenen yemin ağırlığı - frassın ağırlığı]) x 100
    AD (%) = ([yenen yemin ağırlığı - yenen yemin ağırlığı]/yenen yemin ağırlığı) x 100

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Sonuçlar

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

1.000 ppm quercetin içeren bir diyetle beslenen böcek larvaları, kontrol grubuna kıyasla vücut ağırlığında ~% 57'lik önemli bir azalma göstermiştir (Şekil 2A). Vücut ağırlığındaki azalma, kuersetin ile tedavi edilen larvaların vücut boyutunun azalmasına neden oldu (Şekil 2B). Kuersetin ile beslenen larvaların beslenme hızında kontrole kıyasla kayda değer bir azalma gözlenmiştir (Şekil 2C).

Ayrıca, kuerset...

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Tartışma

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Laboratuvar biyoanalizleri, sonuçları tahmin etmek ve kısa bir süre içinde makul bir maliyetle çeşitli bileşikler üzerinde karşılaştırmalı toksisite verileri üretmek için yararlıdır. Besleme biyo-tahlili, böcek-böcek ilacı ve böcek-bitki-böcek öldürücüler arasındaki etkileşimleri yorumlamaya yardımcı olur. Öldürücü doz 50 (LD50), öldürücü konsantrasyon 50 (LC50) veya başka herhangi bir öldürücü konsantrasyon veya doz24,25 oluşturma sürecini ...

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Açıklamalar

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Yazarlar herhangi bir çıkar çatışması beyan etmemişlerdir.

Teşekkürler

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

SM, YP ve VN, Hindistan Hükümeti, Yeni Delhi Üniversite Hibeleri Komisyonu tarafından verilen bursu kabul eder. RJ, MLP036626, MLP101526 ve YSA000826 proje kodları kapsamında mali destek için Hindistan'daki Bilimsel ve Endüstriyel Araştırma Konseyi'ne (CSIR) ve Pune, Hindistan'daki CSIR-Ulusal Kimya Laboratuvarı'na teşekkür eder.

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Malzemeler

Bu makalede kullanılan malzemelerin listesi
AdŞirketKatalog numarasıYorumlar
Agar AgarHimediaRM666Katılaştırıcı ajan
Askorbik asitHimediaCMS1014C vitamini kaynağı
Bengal GramNANA Proteinve karbonhidrat kaynağı
KazeinSigmaC-5890Protein kaynağı
KolesterolSisco Araştırma Laboratuvarları34811Yağ asidi kaynağı
Kolin KlorürHimediaGRM6824Amonyum tuzu
DMSOSigma 67-68-5Solvent
GraphPad Prizma v8.0https://www.graphpad.com/guides/prism/latest/user-guide/using_choosing_an_analysis.htm
Metil ParabenHimediaGRM1291Antifungal ajan
Multivitamin kapsülüGalaxoSmithKlineNAVitamin kaynağı
QuercetinSigmaQ4951-10GFitokimyasal
Sorbik AsitHimediaM1880Antimikrobiyal ajan
StreptomisinHimediaCMS220Antibiyotik
E Vitamini kapsülüNukind HealthcareNAE Vitamini kaynağı
Maya ÖzüHimediaRM027Amino asit kaynağı

Kaynaklar

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
  1. Popp, J., Pető, K., Nagy, J. Pesticide productivity and food security. A review. Agronomy for Sustainable Development. 33 (1), 243-255 (2013).
  2. da Silva, F. R., et al. Comparative toxicity of Helicoverpa armigera and Helicoverpa zea (Lepidoptera: Noctuidae) to selected insecticides. Insects. 11 (7), 431(2020).
  3. Usman, A., Ali, M. I., Shah, M., e Amin, F., Sarwar, J. Comparative efficacy of indigenous plant extracts and a synthetic insecticide for the management of tomato fruit worm (Helicoverpa armigera Hub.) and their effect on natural enemies in tomato crop. Pure and Applied Biology. 7 (3), 1014-1020 (2018).
  4. Honnakerappa, S. B., Udikeri, S. S. Abundance of Helicoverpa armigera (Hubner) on different host crops. Journal of Farm Science. 31, 436-439 (2018).
  5. Edosa, T. T. Review on bio-intensive management of African bollworm, Helicoverpa armigera (Hub.): Botanicals and semiochemicals perspectives. African Journal of Agricultural Research. 14 (1), 1-9 (2019).
  6. Zhou, Y., et al. Migratory Helicoverpa armigera (Lepidoptera: Noctuidae) exhibits marked seasonal variation in morphology and fitness. Environmental Entomology. 48 (3), 755-763 (2019).
  7. Souto, A. L., et al. Plant-derived pesticides as an alternative to pest management and sustainable agricultural production: Prospects, applications and challenges. Molecules. 26 (16), 4835(2021).
  8. Özkara, A., Akyıl, D., Konuk, M. Pesticides, environmental pollution, and health. Environmental Health Risk-Hazardous Factors to Living Species. , (2016).
  9. Alengebawy, A., Abdelkhalek, S. T., Qureshi, S. R., Wang, M. -Q. Heavy metals and pesticides toxicity in agricultural soil and plants: Ecological risks and human health implications. Toxics. 9 (3), 42(2021).
  10. Tlak Gajger, I., Dar, S. A. Plant allelochemicals as sources of insecticides. Insects. 12 (3), 189(2021).
  11. Riddick, E. W. Potential of quercetin to reduce herbivory without disrupting natural enemies and pollinators. Agriculture. 11 (6), 476(2021).
  12. Gao, Y. -L., et al. The effect of quercetin on the growth, development, nutrition utilization, and detoxification enzymes in Hyphantria cunea Drury (Lepidoptera: Arctiidae). Forests. 13 (11), 1945(2022).
  13. Durmuşoğlu, E., Hatipoğlu, A., Gürkan, M. O., Moores, G. Comparison of different bioassay methods for determining insecticide resistance in European Grapevine Moth, Lobesia botrana (Denis & Schiffermüller) (Lepidoptera: Tortricidae). Turkish Journal of Entomology. 39 (3), 271-276 (2015).
  14. Paramasivam, M., Selvi, C. Laboratory bioassay methods to assess the insecticide toxicity against insect pests-A review. Journal of Entomology and Zoology Studies. 5 (3), 1441-1445 (2017).
  15. Clark, E. L., Isitt, R., Plettner, E., Fields, P. G., Huber, D. P. W. An inexpensive feeding bioassay technique for stored-product insects. Journal of Economic Entomology. 107 (1), 455-461 (2014).
  16. Waldbauer, G. P., Cohen, R. W., Friedman, S. An improved procedure for laboratory rearing of the corn earworm, Heliothis zea (Lepidoptera: Noctuidae). The Great Lakes Entomologist. 17 (2), 10(2017).
  17. Friesen, K., Berkebile, D. R., Zhu, J. J., Taylor, D. B. Laboratory rearing of stable flies and other muscoid Diptera. JoVE. (138), e57341(2018).
  18. Zheng, M. -L., Zhang, D. -J., Damiens, D. D., Lees, R. S., Gilles, J. R. L. Standard operating procedures for standardized mass rearing of the dengue and chikungunya vectors Aedes aegypti and Aedes albopictus (Diptera: Culicidae)-II-Egg storage and hatching. Parasites & Vectors. 8, 1-7 (2015).
  19. Nagarkatti, S., Prakash, S. Rearing Heliothis armigera (Hubn.) on an artificial diet. Technical Bulletin Commonwealth Institute of Biological Control. , (1974).
  20. Adhav, A. S., Kokane, S. R., Joshi, R. S. Functional characterization of Helicoverpa armigera trehalase and investigation of physiological effects caused due to its inhibition by Validamycin A formulation. International Journal of Biological Macromolecules. 112, 638-647 (2018).
  21. Abbasi, B. H., et al. Rearing the cotton bollworm, Helicoverpa armigera, on a tapioca-based artificial diet. Journal of Insect Science. 7 (1), 35(2007).
  22. Armes, N. J., Jadhav, D. R., Bond, G. S., King, A. B. S. Insecticide resistance in Helicoverpa armigera in South India. Pesticide Science. 34 (4), 355-364 (1992).
  23. Waldbauer, G. P. The consumption and utilization of food by insects. Advances in Insect Physiology. 5, Academic Press. 229-288 (1968).
  24. Carpinella, M. C., Defago, M. T., Valladares, G., Palacios, S. M. Antifeedant and insecticide properties of a limonoid from Melia azedarach (Meliaceae) with potential use for pest management. Journal of Agricultural and Food Chemistry. 51 (2), 369-374 (2003).
  25. Diaz Napal, G. N., Palacios, S. M. Bioinsecticidal effect of the flavonoids pinocembrin and quercetin against Spodoptera frugiperda. Journal of Pest Science. 88, 629-635 (2015).
  26. ffrench-Constant, R. H., Roush, R. T. Resistance detection and documentation: the relative roles of pesticidal and biochemical assays. Pesticide Resistance in Arthropods. , 4-38 (1990).
  27. Gikonyo, N. K., Mwangi, R. W., Midiwo, J. O. Toxicity and growth-inhibitory activity of Polygonum senegalense (Meissn.) surface exudate against Aedes aegypti larvae. International Journal of Tropical Insect Science. 18 (3), 229-234 (1998).
  28. Sharma, R., Sohal, S. K. Bioefficacy of quercetin against melon fruit fly. Bulletin of Insectology. 66 (1), 79-83 (2013).
  29. Després, L., David, J. -P., Gallet, C. The evolutionary ecology of insect resistance to plant chemicals. Trends in Ecology & Evolution. 22 (6), 298-307 (2007).
  30. Shi, G., Kang, Z., Ren, F., Zhou, Y., Guo, P. Effects of quercetin on the growth and expression of immune-pathway-related genes in silkworm (Lepidoptera: Bombycidae). Journal of Insect Science. 20 (6), 23(2020).
  31. Selin-Rani, S., et al. Toxicity and physiological effect of quercetin on generalist herbivore, Spodoptera litura Fab. and a non-target earthworm Eisenia fetida Savigny. Chemosphere. 165, 257-267 (2016).
  32. Ateyyat, M., Abu-Romman, S., Abu-Darwish, M., Ghabeish, I. Impact of flavonoids against woolly apple aphid, Eriosoma lanigerum (Hausmann) and its sole parasitoid, Aphelinus mali (Hald). Journal of Agricultural Science. 4 (2), 227(2012).
  33. Brito-Sierra, C. A., Kaur, J., Hill, C. A. Protocols for testing the toxicity of novel insecticidal chemistries to mosquitoes. JoVE. (144), e57768(2019).
  34. Mitchell, C., Brennan, R. M., Graham, J., Karley, A. J. Plant defense against herbivorous pests: exploiting resistance and tolerance traits for sustainable crop protection. Frontiers in Plant Science. 7, 1132(2016).

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Yeniden basım ve izinler

Bu JoVE makalesinin metnini veya şekillerini yeniden kullanmak için izin iste

İzin iste

Etiketler

Feeding AssayHelicoverpa ArmigeraPhytochemical InsecticidesArtificial DietQuercetin TreatmentInsect GrowthLarval DevelopmentNutritional IndicesSurvival AnalysisPest Management

İlgili makaleler