Bu içeriği görüntülemek için JoVE aboneliğiniz gereklidir. Giriş yapın veya ücretsiz denemenizi bugün başlatın.

Yöntem makalesi

Koroid pleksustaki genlerin hedefli yıkımı

2K görüntülenme

⸱

DOI:

10.3791/65555

⸱

16 Haziran 2023

 ,  ,  ,  ,  ,  ,  , 
1State Key Laboratory of Ophthalmology, Optometry and Visual Science, Eye Hospital, Wenzhou Medical University, 2Department of Neurology, the First Affiliated Hospital of Wenzhou Medical University, 3Rehabilitation Medicine Center, The Second Affiliated Hospital of Wenzhou Medical University, 4Integrative & Optimized Medicine Research Center, China-USA Institute for Acupuncture and Rehabilitation, Wenzhou Medical University

* These authors contributed equally

Bu makalede

Özet

Burada, diğer beyin bölgelerinde herhangi bir etkiden kaçınırken koroid pleksustaki gen ekspresyonlarını seçici olarak değiştirmek için bir yöntem açıklıyoruz.

Özet

Koroid pleksus (ChP), hem fizyolojik hem de patolojik koşullar altında merkezi sinir sistemine (MSS) immün hücre infiltrasyonu için kritik bir geçit görevi görür. Son araştırmalar, ChP aktivitesinin düzenlenmesinin CNS bozukluklarına karşı koruma sağlayabileceğini göstermiştir. Bununla birlikte, diğer beyin bölgelerini etkilemeden ChP'nin biyolojik işlevini incelemek, hassas yapısı nedeniyle zordur. Bu çalışma, adeno-ilişkili virüsler (AAV'ler) veya TAT dizisinden (CRE-TAT) oluşan siklizasyon rekombinasyon enzimi (Cre) rekombinaz proteini kullanılarak ChP dokusunda gen yıkımı için yeni bir yöntem sunmaktadır. Sonuçlar, lateral ventriküle AAV veya CRE-TAT enjekte edildikten sonra, floresansın sadece ChP'de yoğunlaştığını göstermektedir. Bu yaklaşımı kullanarak, çalışma, RNA interferansı (RNAi) veya X-overP1 (Cre / LoxP) sistemlerinin Cre / lokusu kullanılarak ChP'deki adenozin A2A reseptörünü (A2AR) başarılı bir şekilde yıktı ve bu yıkımın deneysel otoimmün ensefalomiyelit (EAE) patolojisini hafifletebileceğini gösterdi. Bu teknik, ChP'nin CNS bozukluklarındaki rolü üzerine gelecekteki araştırmalar için önemli etkilere sahip olabilir.

Giriş

Koroid pleksusun (ChP) genellikle beyin omurilik sıvısı (BOS) ve beyin kaynaklı nörotrofik faktör (BDNF) salgılayarak beyin fonksiyonel homeostazının korunmasına yardımcı olduğu düşünülüyordu1,2. Son otuz yılda artan araştırmalar, CHP'nin merkezi sinir sistemine (CNS) bağışıklık hücresi infiltrasyonu için farklı bir yolu temsil ettiğini ortaya koymuştur.

Tek katmanlı bir ChP epitelinden oluşan ChP'nin sıkı bağlantıları (TJ'ler), makromoleküllerin ve bağışıklık hücrelerinin beyne girmesini önleyerek immünolojik homeostazı korur3. Bununla birlikte, belirli patolojik koşullar altında, ChP dokusu, BOS ve kandaki tehlikeyle ilişkili moleküler paternleri (DAMP'ler) algılar ve bunlara yanıt verir, bu da anormal bağışıklık infiltrasyonuna ve beyin işlev bozukluğunayol açar 4,5. Kritik rolüne rağmen, ChP'nin küçük boyutu ve beyindeki benzersiz konumu, diğer beyin bölgelerini etkilemeden işlevini incelemeyi zorlaştırır. Bu nedenle, özellikle ChP'de gen ekspresyonunu manipüle etmek, işlevini anlamak için ideal bir yaklaşımdır.

Başlangıçta, ChP'de eksprese edilen genlere özgü promotörlerin kontrolü altında Cre'yi eksprese eden siklizasyon rekombinasyon enzimi (Cre) transgenik hatları, floklanmış aday genlerleüreme yoluyla hedef genleri silmek için yaygın olarak kullanıldı 6,7,8. Örneğin, transkripsiyon faktörü Forkhead kutusu J1 (FoxJ1), yalnızca doğum öncesi fare beyninin7 ChP epitelinde eksprese edilir. Bu nedenle, FoxJ1-Cre çizgisi genellikle ChP 6,9'da bulunan genleri silmek için kullanıldı. Bununla birlikte, bu stratejinin başarısı büyük ölçüde destekleyicinin özgüllüğüne bağlıdır. FoxJ1'in beynin diğer bölümlerindeki ve periferik sistemdeki kirpikli epitel hücrelerinde de mevcut olması nedeniyle, FoxJ1 ekspresyon modelinin yeterince ayırt edici olmadığı yavaş yavaş keşfedildi7. Bu sınırlamanın üstesinden gelmek için, floklanmış transgenik hatların ventriküllerine rekombinaz vermek için intraserebroventriküler (ICV) Cre rekombinaz enjeksiyonu yapıldı. Bu strateji, yalnızca ChP dokusunda tdTomato floresansının varlığı ile kanıtlandığı gibi yüksek özgüllük göstermiştir10,11. Bununla birlikte, bu yöntem hala floklanmış transgenik fare hatlarının mevcudiyeti ile sınırlıdır. Bu sorunu çözmek için araştırmacılar, ChP'ye özgü yıkımı veya hedef genlerin aşırı ekspresyonunu elde etmek için adeno-ilişkili virüsün (AAV) ICV enjeksiyonunu kullandılar12,13. ChP enfeksiyonu için farklı AAV serotiplerinin kapsamlı bir değerlendirmesi, AAV2/5 ve AAV2/8'in diğer beyin bölgelerini enfekte etmemekle birlikte CHP'de güçlü enfeksiyon yetenekleri sergilediğini ortaya koydu. Bununla birlikte, AAV2/8'in ventrikülleri çevreleyen ependimayı enfekte ettiği bulunurken, AAV2/5 grubunda enfeksiyon görülmedi14. Bu yöntem, floklanmış transgenik hayvanları edinme sınırlamalarının üstesinden gelme avantajına sahiptir.

Bu makale, iki yöntem kullanarak ChP'de gen yıkımı için adım adım bir protokolü açıklamaktadır: adenozin A2A reseptörünün (A 2A R) shRNA'sını taşıyan AAV2/5'in ICV'si ve A2AR'nin ChP'ye özgü yıkımını elde etmek için TAT dizisi (CRE-TAT) rekombinazından oluşan Cre rekombinaz proteini. Çalışma bulguları, CHP'de A2AR'nin yıkılmasının deneysel otoimmün ensefalomiyeliti (EAE) hafifletebileceğini düşündürmektedir. Bu ayrıntılı protokol, ChP fonksiyon çalışmaları ve ChP'deki genlerin spesifik yıkımı için yararlı rehberlik sağlar.

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Protokol

Bu çalışmada açıklanan tüm hayvan prosedürleri, NIH Laboratuvar Hayvanlarının Bakımı ve Kullanımı Kılavuzunda belirtilen ve Wenzhou Tıp Üniversitesi'ndeki Kurumsal Hayvan Bakımı ve Kullanımı Komitesi tarafından onaylanan yönergelere uygun olarak yürütülmüştür.

1. Hayvanlar

  1. 8-12 haftalık ve 20-22 g ağırlığındaki erkek C57BL/6 fareleri satın alın.
  2. Transgenik Rosa-LSL (Lox-StoP-Lox)-tdTomato (Ai9) fare serisini ve erkek A2AR flox/flox farelerini edinin.
  3. Fareleri rastgele iki gruba atayın ve 1 hafta boyunca standart 12 saat ışık/12 saat karanlık döngü altında kafes başına en fazla beş fare olacak şekilde kafeslerde barındırın.
  4. Farelere yeterli yiyecek ve su sağlayın ve onları 25 °C'de sabit bir sıcaklıkta tutun.

2. AAV2/5-shRNA ile A 2A R'nin ChP'ye özgü yıkımı

  1. Her fareyi tartın ve değerleri not edin.
  2. Fareleri intraperitoneal olarak 60-80 mg/kg pentobarbital'e eşdeğer 6-8 mL/kg'lık bir dozda %1 pentobarbital sodyum ile uyuşturun ve fareyi sıcak tutmak için bir ısıtma yastığına yerleştirin.
    NOT: Başarılı bir ameliyat sağlamak için farenin ağırlığına göre doğru dozda pentobarbital sodyum uygulamak çok önemlidir. Anestezi, mortaliteye neden olabileceğinden çok derin olmamalıdır, ancak işlem sırasında fare uyanabileceğinden ve potansiyel olarak virüs enjeksiyonunun etkinliğini etkileyebileceğinden çok sığ olmamalıdır. Uygun anestezi dozunu ayak parmağını sıkıştırarak kontrol edin ve farelerin yanıt vermediğinden emin olun.
  3. Anestezi uygulanmış farelerin üst kıllarını kesmek için özel bir fare tıraş makinesi kullanın.
  4. Kurumasını önlemek için her iki göze de göz merhemi sürün ve beyni hareketsiz hale getirmek için fareleri stereotaksik bir aparata sabitleyin. Hayvanı steril bir örtü ile örtün.
  5. Postoperatif enfeksiyonu azaltmak için farelerin baş ve boyun derisini üç tur iyodofor dezenfektan ve% 75 alkol ile iyice sterilize edin. Daha sonra farelerin kafa derisine topikal olarak% 1 lidokain uygulayın ve kafatasını mikroskop altında tamamen ortaya çıkarmak için küçük bir kesi yapın.
    NOT: Prosedür boyunca steril aletler kullanın.
  6. İki adet 10 μL'lik şırınga hazırlayın: biri satın alınan AAV2/5-A2AR-shRNA (titre: 6.27 × 10 9 vg/μL) ve diğeri satın alınan AAV2/5-Scramble (titre: 6.21 × 109 vg/μL).
    NOT: Şırıngayı kullanırken, ön ucun bir cam kılcal damara bağlanması gerekir ve cam kılcal damarın uzunluğu kontrol edilerek 10 μL'lik bir aralık elde edilebilir.
  7. Bregma ve lambdayı bulmak için mikroskobu kullanın ve koordinat noktasını ayarlayın (AP: -0.58; ML: ±1.10; DL: -2.20) 10 μL şırınga üzerinde (Şekil 1). Koordinat noktası, fare beyni stereotaksik atlas15'e dayanmaktadır.
  8. Ayarlanan koordinat noktasında kafatasında küçük bir delik açın.
    NOT: Mikroskop altında, kafatasının yüzeyine karşı steril bir mikro matkap kullanılarak delme işlemi gerçekleştirilir. Sondajdan sonra, beyni kaplayan meninksler çıkarılarak ve altta yatan beyin parankimini açığa çıkararak, kan damarlarının yaralanması önlenir. Bu adım, cam kılcal damarın ucunun meninksler tarafından kırılmasını önler. Açılan deliğin çapı, iğne ucunun beyin dokusuna girmesine izin verecek kadar yeterli olmalıdır.
  9. 2 μL AAV2/5-A2AR-shRNA virüsünü 100 nL/dk'lık sabit bir hızda lateral enjeksiyon yoluyla beyin ventrikülüne uygulayın. Geri çekmeden önce iğneyi 10 dakika yerinde tutun. Virüsün tek taraflı enjeksiyonla uygulandığını unutmayın.
  10. Yapıştırıcı hızlı bir şekilde uygulanmazsa iğneyi çıkardıktan sonra BOS ile durulanabilen virüs kaybını önlemek için tıbbi biyofibrin yapıştırıcı kullanarak yaralı cildi derhal kapatın. Ayrıca, virüs kaybına da neden olabileceğinden, BOS'u silmek için pamuklu çubuk kullanmayın.
  11. İyileşmeyi kolaylaştırmak için, vücut ısısını 37.0 ± 0.5 °C'de tutmak için fareyi bir ısıtma yastığına yerleştirin ve farenin kafa derisine topikal olarak %1 lidokain uygulayın. EAE modelini indüklemeden önce farelerin 2 hafta iyileşmesine izin verin, çünkü bu süre AAV2 / 5-A 2A R-shRNA virüs ekspresyonu ve ardındanA 2AR yıkımı için gereklidir.

3. X-overP1 (Cre/LoxP) sisteminin Cre/lokusu ile A 2A R'nin ChP'ye özgü yıkımı

NOT: Aşağıdaki prosedürler daha önce açıklanan yöntem kullanılarak gerçekleştirilebilir. Ayrıntılı enjeksiyon yöntemleri için 2.1-2.11 adımlarına bakın.

  1. Deney grubu olarak bir Rosa-LSL (Lox-StoP-Lox)-tdTomato faresinin her bir lateral ventrikülüne 2 μL CRE-TAT rekombinaz ve kontrol grubu olarak 2 μL steril fosfat tamponlu salin (PBS) enjekte edin. Yukarıdakiyle aynı protokolü kullanarak (bölüm 2), kontrol grubu olarak 2 μL steril PBS ile birlikte A2A Rflox/ flox farelerinin lateral ventriküllerinin her birine 2 μL CRE-TAT rekombinaz enjekte edin.
  2. Donmuş doku kesitleri hazırlayın ve CRE-TAT rekombinaz enjeksiyonundan 2 hafta sonra nükleer boyama yapın. Daha fazla bilgi için 4.1-4.3 arasındaki adımlara bakın.

4. Farelerde transkardiyal perfüzyon

  1. Fareleri derinlemesine uyuşturmak için 60-80 mg / kg pentobarbital sodyum uygulayın. Anestezi düzlemini bir ayak parmağı tutamıyla onaylayın ve 40 mL steril PBS solüsyonu ve ardından 20 mL% 4 paraformaldehit (PFA) kullanarak transkardiyal perfüzyon gerçekleştirin.
    NOT: Başarılı perfüzyon karaciğerde beyaz bir renkle gösterilirken, perfüzyon sırasında genişlemiş akciğerlerin veya ağızdan PBS çıkışının varlığı prosedürün başarısız olduğunu gösterir.
  2. Minimum protein bozulmasını sağlayarak fare beynini hızla çıkarın.
  3. Fare beynini gece boyunca %4 PFA/PBS'ye batırın, ardından 72 saat boyunca %30 sükroz PB çözeltisi ile değiştirin.
    NOT: Beyin dokusunun aşırı dehidrasyonundan kaçınmak çok önemlidir, bu nedenle beyin sükroz PB çözeltisinde çok uzun süre bırakılmamalıdır.

5. Donmuş doku kesiti ve boyama

  1. Daha önce susuz kalmış fare beynini optimum kesme sıcaklığı (OCT) yapıştırıcısına gömün, gömülü beyni dondurun ve 20 μm kalınlığındaki koronal bölümleri kesmek için kayan bir mikrotom kullanın.
  2. Beyin bölümlerini cam slayta yerleştirin. Beyin bölümleri kuruduktan sonra, sonraki deneyler için -20 ° C'lik bir buzdolabında saklayın.
  3. Her cam slaytı bir çerçeve kasasına yerleştirin ve slaytı iyice durulamak için çerçeveyi PBS ile dolu bir kaba daldırın. Beyin slaytlarını PBS solüsyonu ile her seferinde 10 dakika boyunca üç kez nazikçe durulayın.
    NOT: Beyin bölümlerinin cam kaydıraktan düşmesini önlemek için dikkatli olunmalıdır.
  4. Beyin slaytlarını 4 dakika boyunca 6 ′, 6-diamidino-2-fenilindol (DAPI) çözeltisi ile boyayın.
  5. Beyin slaytlarını PBS solüsyonu ile 5 dakika durulayın.
  6. Beyin bölümlerine bir damla antifade montaj ortamı uygulayın.
  7. Beyin bölümlerine bir lamel yerleştirin, lameli oje ile kapatın ve geleneksel bir floresan mikroskobu kullanarak bölümleri analiz edin.

6. EAE indüksiyonu

NOT: shRNA veya CRE-TAT rekombinaz enjeksiyonundan 2 hafta sonra EAE indüksiyonu gerçekleştirin11.

  1. 2.5 mg miyelin oligodendrosit glikoproteinini (MOG35-55) 2 mL PBS ile karıştırarak sulu bir çözelti oluşturun. M. tuberculosis'i (H37Ra) eksik Freunds adjuvanı (IFA) ile karıştırarak tam bir Freunds adjuvanı (CFA) yağ çözeltisi hazırlayın.
  2. Sulu ve yağ çözeltilerini 1:1 oranında karıştırın. Karışımı su içinde yağ haline getirmek için bir tee borusu kullanın.
    NOT: Tee borusuna üç boru da denir. MOG35-55 ve CFA'yı tamamen karıştırmak için akan çözeltinin yönünü kontrol edebilen plastik bir tüptür.
  3. Buz banyosu koşullarında EAE modeli için MOG antijen emülsiyonunu yapmak için yüksek hızlı bir homojenizatör kullanın.
  4. Fareleri, 60-80 mg / kg pentobarbital'e eşdeğer 6-8 mL / kg'lık bir dozajda% 1 pentobarbital sodyum ile intraperitoneal olarak uyuşturun.
  5. MOG antijen emülsiyonunu her biri toplam dört enjeksiyon için 10 mL / kg'lık bir hacimde dört farklı noktaya (boyun, sırt, sol ve sağ kalça) deri altından enjekte edin.
    NOT: Farklı bölgelerin farelerin morbidite ve mortalitesi üzerinde farklı etkileri olabileceğinden, enjeksiyon bölgesini dikkatlice seçmek önemlidir. Ek olarak, tekrarlanan MOG enjeksiyonları bağışıklık toleransına yol açabilir, bu nedenle araştırma ekibi bu potansiyel sorunu önlemek için tek bir enjeksiyon yöntemi seçti.
  6. MOG enjeksiyonundan hemen sonra 5 mg / kg'lık bir dozajda intraperitoneal olarak 500 ng / mL boğmaca toksini (PT) enjekte edin.
    NOT: PT, kan-beyin bariyerinin (BBB) geçirgenliğini arttırır ve T hücrelerinin beyne infiltrasyonunu kolaylaştırır.
  7. 48 saat sonra, PT solüsyonunu intraperitoneal olarak aynı hacimde enjekte edin.

7. Nörolojik defisit skoru

  1. Aşağıdaki nörolojik eksikliklere göre EAE insidansını ve şiddetini değerlendirmek için 0 ile 15 arasında değişen bir derecelendirme ölçeği16 kullanarak fareleri günlük olarak değerlendirin ve derecelendirin:
    Kuyruk: 0 hiçbir belirti olmadığını, 1 yarı felçli bir kuyruğu ve 2 tamamen felçli bir kuyruğu gösterir.
    Uzuvlar: 0 belirti olmadığını, 1 zayıf veya değişmiş bir yürüyüşü, 2 parezi ve 3 tamamen felçli bir uzvu temsil eder.
  2. Tam felçli kuadriplejik bir hayvana 12 puan verin ve ölüm oranına 15 puan verin.

8. Hematoksilen-eozin (H & E) boyama

  1. Susuz kalmış fare beynini alın ve erimiş parafine gömün. Parafin bloğunun daha sonra kullanmak üzere soğumasını ve katılaşmasını bekleyin.
    NOT: Doku hasarını önlemek için parafin bloğu tamamen kuru ve soğuk olmalıdır.
  2. Fare beyni parafin bloğunu 5 μm kalınlığında slaytlar halinde kesin. Parafin fare beyni bölümünü bir cam slayt üzerine yerleştirin ve 60 °C fırında 3 saat kurutun.
  3. Slaytları sırayla 10 dakika ksilen çözeltisi I, 10 dakika ksilen çözeltisi II, 3 dakika %100 alkol I, 3 dakika %100 alkol II, 3 dakika %95 alkol, 3 dakika %90 alkol, 3 dakika %80 alkol, 3 dakika %70 alkol ve 1 dakika damıtılmış suya batırın.

9. Kantitatif polimeraz zincir reaksiyonu (qPCR) analizi

  1. Fareleri PBS ile perfüze ettikten sonra, ChP'yi ventriküllerden çıkarın ve RNA'yı Trizol ile çıkarın. İlk Strand cDNA Sentez Kitini kullanarak cDNA'yı sentezleyin.
  2. Ex Taq SYBR-green premiksi ve gerçek zamanlı bir PCR sistemi kullanarak qPCR analizi gerçekleştirin. Aşağıdaki A2AR primerlerini kullanın: ileri - GCCATCCCATTCGCCATCA; ters - GCAATAGCCAAGAGGCTGAAGA.

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Sonuçlar

AAV2 / 5-shRNA veya CRE-TAT'ın ICV enjeksiyonu ile ChP'ye özgü A2AR yıkımı
EAE patogenezinde nöral bilginin güçlü bir düzenleyicisi olarak CHP'deki A2AR'nin rolü belirsizliğini korumaktadır. ChP'ye özgü A 2A R ekspresyonunun yıkılması, EAE ve diğer sinir sistemi iltihaplanmalarında A2AR'nin merkezi bağışıklık sistemi üzerindeki düzenleyici etkilerine ışık tutabilir. Bu çalışmada, A 2A R flox/ flox farelerinin CHP'sindeA 2AR ekspresyonun...

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Tartışma

Araştırma, ChP genlerinin hedeflenen yıkımı için iki farklı yaklaşım sundu. İlk yaklaşım, Cre rekombinaz içeren CRE-TAT'ın A2AR flox/flox farelerine ICV enjeksiyonunu içeriyordu. İkinci yaklaşım, A2AR'nin shRNA'sını taşıyan AAV2/5'in ICV enjeksiyonunu gerektiriyordu. Bu iki stratejiyi kullanarak, çalışma ChP içinde A 2A R'nin seçici olarak yıkılmasını sağladı ve ChP'de A2AR sinyalini inhibe etmenin EAE patolojisi üzerindeki koruyucuetkilerini gösterebildi. Bu protoko...

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Açıklamalar

Yazarlar, beyan etmek için rekabet eden mali çıkarları veya başka açıklamaları olmadığını belirtmektedir.

Teşekkürler

Çin Ulusal Doğa Bilimleri Vakfı'nın (31800903 No'lu Hibe, W. Zheng'e verildi) ve Wenzhou Bilim ve Teknoloji Projesi'nin (No. Y2020426, Y. Y. Weng'e verildi) bu çalışma için desteğini minnetle kabul ediyoruz.

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Malzemeler

Bu makalede kullanılan malzemelerin listesi
AdŞirketKatalog numarasıYorumlar
A2ARflox/flox farelerDevlet Anahtar Oftalmoloji, Optometri ve Görsel Bilimler Laboratuvarı, Wenzhou Tıp Üniversitesi
AAV2 / 5-A < sub>2A< / sub>R-ShRNA virüsüŞanghay Heyuan Biyoteknoloji A.Ş.LTD PT-4828
antifade montaj ortamıBeyotime Biyoteknoloji0100-01
borosilikat cam kılcalPekin Meiyaxian Technology Co., LtdB100-50-10
beyin stereotaksik aparatıRWD, Shenzhen69100
C57BL / 6 farePekin Hayati Charles Nehri Laboratuvar Hayvanları Teknolojisi Şirketi
CRE-TAT rekombinazMilliporeSCR508
DAPIAbsinB25A031
dondurulmuş dilimleme makinesiLeicaCM1950
H37RaBecton Dickinson ve şirket231141
Hamilton şırıngaHamilton, AmerikanP / N:  86259
Eksik Freunds adjuvanSigmaF5506
Lazer konfokal mikroskopZeissLSM900
MOG35-55Suzhou Qiangyao Biotechnology Co., LTD4010006243
OCT yapıştırıcıEpredia6502p
paraformaldehitChengdu Kelong Kimyasal Reaktif Şirketi30525-89-4
pentobarbital sodyumBoyun BiotechPC13003
Pipet tabancasıEppendorfN45014F
PrimeScript 1. İplikçik cDNA Sentez KitiTakara  6110A Gerçek Zamanlı
PCR SistemiBioRadCFX96
Rosa-LSL (Lox-StoP-Lox)-tdDomates fareleriJackson Laboratuvarı
sükrozSangon BiotechA502792-0500
süper yüksek hızlı homojenizatörIKA3737025
TrizolInvitrogen15596026
ksilen çözeltisiChengdu Kelong Kimyasal Reaktif Şirketi1330-20-7

Kaynaklar

  1. Damkier, H. H., Brown, P. D., Praetorius, J. Cerebrospinal fluid secretion by the choroid plexus. Physiological Reviews. 93 (4), 1847-1892 (2013).
  2. Lun, M. P., Monuki, E. S., Lehtinen, M. K. Development and functions of the choroid plexus-cerebrospinal fluid system. Nature Reviews: Neuroscience. 16 (8), 445-457 (2015).
  3. Wolburg, H., Paulus, W. Choroid plexus: biology and pathology. Acta Neuropathologica. 119 (1), 75-88 (2010).
  4. Solar, P., Zamani, A., Kubickova, L., Dubovy, P., Joukal, M. Choroid plexus and the blood-cerebrospinal fluid barrier in disease. Fluids Barriers CNS. 17 (1), 35(2020).
  5. Marques, F., et al. The choroid plexus in health and in disease: dialogues into and out of the brain. Neurobiology of Disease. 107, 32-40 (2017).
  6. Myung, J., et al. The choroid plexus is an important circadian clock component. Nature Communications. 9 (1), 1062(2018).
  7. Zhang, Y., et al. A transgenic FOXJ1-Cre system for gene inactivation in ciliated epithelial cells. American Journal of Respiratory Cell and Molecular Biology. 36 (5), 515-519 (2007).
  8. Johansson, P. A., et al. The transcription factor Otx2 regulates choroid plexus development and function. Development. 140 (5), 1055-1066 (2013).
  9. Xu, H., et al. Choroid plexus NKCC1 mediates cerebrospinal fluid clearance during mouse early postnatal development. Nature Communications. 12 (1), 447(2021).
  10. Spatazza, J., et al. Choroid-plexus-derived Otx2 homeoprotein constrains adult cortical plasticity. Cell Reports. 3 (6), 1815-1823 (2013).
  11. Zheng, W., et al. Choroid plexus-selective inactivation of adenosine A2A receptors protects against T cell infiltration and experimental autoimmune encephalomyelitis. Journal of Neuroinflammation. 19 (1), 52(2022).
  12. Steffensen, A. B., et al. Cotransporter-mediated water transport underlying cerebrospinal fluid formation. Nature Communications. 9 (1), 2167(2018).
  13. Zhu, L., et al. Klotho controls the brain-immune system interface in the choroid plexus. Proceedings of the National Academy of Sciences. 115 (48), E11388-E11396 (2018).
  14. Chen, X., et al. Different serotypes of adeno-associated virus vector- and lentivirus-mediated tropism in choroid plexus by intracerebroventricular delivery. Human Gene Therapy. 31 (7-8), 440-447 (2020).
  15. Konsman, J. P. The mouse brain in stereotaxic coordinates. Psychoneuroendocrinology. 6 (28), 827-828 (2003).
  16. Weaver, A., et al. An elevated matrix metalloproteinase (MMP) in an animal model of multiple sclerosis is protective by affecting Th1/Th2 polarization. FASEB J. 19 (12), 1668-1670 (2005).
  17. Kertser, A., et al. Corticosteroid signaling at the brain-immune interface impedes coping with severe psychological stress. Science Advances. 5 (5), 4111(2019).
  18. Kaiser, K., et al. MEIS-WNT5A axis regulates development of fourth ventricle choroid plexus. Development. 148 (10), (2021).
  19. Compston, A., Coles, A. Multiple sclerosis. Lancet. 372 (9648), 1502-1517 (2008).
  20. Reboldi, A., et al. C-C chemokine receptor 6-regulated entry of TH-17 cells into the CNS through the choroid plexus is required for the initiation of EAE. Nature Immunology. 10 (5), 514-523 (2009).
  21. Jovanova-Nesic, K., et al. Choroid plexus connexin 43 expression and gap junction flexibility are associated with clinical features of acute EAE. Annals of the New York Academy of Sciences. 1173, 75-82 (2009).
  22. Jovanova-Nesic, K., Jovicic, S., Sovilj, M., Spector, N. H. Magnetic brain stimulation upregulates adhesion and prevents Eae: MMP-2, ICAM-1, and VCAM-1 in the choroid plexus as a target. International Journal of Neuroscience. 119 (9), 1399-1418 (2009).
  23. Mills, J. H., Alabanza, L. M., Mahamed, D. A., Bynoe, M. S. Extracellular adenosine signaling induces CX3CL1 expression in the brain to promote experimental autoimmune encephalomyelitis. Journal of Neuroinflammation. 9, 193(2012).

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Yeniden basım ve izinler

Etiketler

Gen SusturmaAdenozin 2A Resept rRNA nterferansCre RekombinazAAV Enjeksiyonumm n H cre nfiltrasyonuDeneysel Otoimm n EnsefalomiyelitStereotaksik EnjeksiyonMSS Bozukluklar
Koroid pleksustaki genlerin hedefli yıkımı
Bize Ulaşın
Kütüphaneye Öner

Gizlilik

Kullanım Koşulları

Politikalar

Telif Hakkı © 2026 MyJoVE Corporation. Tüm hakları saklıdır.