Yöntem makalesi

Kombine skleraksi aşırı ekspresyonu ve 2D tek eksenli gerilim yoluyla indüklenmiş pluripotent kök hücre kaynaklı iTenositlerin üretilmesi

DOI:

10.3791/65837

⸱

1 Mart 2024

 ,  , 
1Orthopaedic Stem Cell Research Laboratory, Cedars-Sinai Medical Center, 2Board of Governors Regenerative Medicine Institute, Cedars-Sinai Medical Center, 3Department of Biomedical Sciences, Cedars-Sinai Medical Center, 4Department of Orthopedics, Cedars-Sinai Medical Center, 5Department of Surgery, Cedars-Sinai Medical Center

Bu makalede

Özet

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Bu makale, bir lentiviral vektör ve bir 2D biyoreaktör aracılığıyla tek eksenli germe kullanarak Skleraxis'in kombine aşırı ekspresyonu ile iPSC'den türetilmiş mezenkimal stromal hücreler üreterek iTenositler üretme prosedürünü açıklamaktadır.

Özet

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Günümüzün tendon ve bağ onarımındaki zorlukları, tendon rejenerasyonunu desteklemek için hücre bazlı tedavi için uygun ve etkili bir adayın belirlenmesini gerektirmektedir. Mezenkimal stromal hücreler (MSC'ler), tendon onarımı için potansiyel bir doku mühendisliği stratejisi olarak araştırılmıştır. Multipotent olmalarına ve in vivo rejeneratif potansiyele sahip olmalarına rağmen, kendi kendini yenileme kapasiteleri sınırlıdır ve fenotipik heterojenlik sergilerler. İndüklenmiş pluripotent kök hücreler (iPSC'ler), yüksek kendini yenileme kapasiteleri ve benzersiz gelişimsel plastisiteleri nedeniyle bu sınırlamaları aşabilir. Tenosit gelişiminde, Skleraksi (Scx), tendon farklılaşmasının çok önemli bir doğrudan moleküler düzenleyicisidir. Ek olarak, mekanoregülasyonun embriyonik tendon gelişimini ve iyileşmesini yönlendiren merkezi bir unsur olduğu gösterilmiştir. Bu nedenle, tenosit üretmek için gerekli olabilecek biyolojik ve mekanik stimülasyonun sinerjik etkisini kapsüllemek için bir protokol geliştirdik. iPSC'ler mezenkimal stromal hücreler (iMSC'ler) haline geldi ve akış sitometrisi yoluyla klasik mezenkimal stromal hücre belirteçleri ile karakterize edildi. Daha sonra, bir lentiviral vektör kullanılarak, iMSC'ler SCX'i (iMSCSCX+) stabil bir şekilde aşırı eksprese etmek için dönüştürüldü.Bu iMSCSCX+ hücreleri, bir 2D biyoreaktör kullanılarak tek eksenli çekme yüklemesi yoluyla iTenositlere daha da olgunlaştırılabilir. Elde edilen hücreler, erken ve geç tendon belirteçlerinin yukarı regülasyonunun yanı sıra kollajen birikiminin gözlemlenmesiyle karakterize edildi. Bu iTenosit üretme yöntemi, araştırmacılara tendon hücre tedavisi uygulamaları için potansiyel olarak sınırsız bir kullanıma hazır allojenik hücre kaynağı geliştirmede yardımcı olmak için kullanılabilir.

Giriş

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Tendon ve bağ onarımındaki çağdaş sorunların üstesinden gelmek için, hücre bazlı tedavilere uygun uygun bir hücre adayına ihtiyaç vardır. Tendon onarımı için doku mühendisliğinde bir araştırma yolu, potansiyel stratejiler olarak kemik iliği kaynaklı mezenkimal stromal hücrelerin (BM-MSC'ler) ve adipoz doku kaynaklı stromal hücrelerin (ASC'ler) araştırılmasını içerir. Bu hücreler multipotent yeteneğe, büyük bolluğa ve in vivo rejeneratif potansiyele sahiptir. Ek olarak, hayvan modellerinde gelişmiş iyileşme kapasitesi ve gelişmiş fonksiyonel sonuçlar göstermişlerdir1. Bununla birlikte, bu hücreler sınırlı kendini yenileme yetenekleri, fenotipik çeşitlilik ve özellikle tendon oluşumu için sınırlı kapasite sergilerler. İndüklenmiş pluripotent kök hücre (iPSC) teknolojisi, olağanüstü kendini yenileme kapasitesi ve eşsiz gelişimsel uyarlanabilirliği nedeniyle bu kısıtlamalara bir çözüm sunar. Araştırma ekibimiz ve diğerleri, iPSC'lerin mezenkimal stromal hücre benzeri varlıklara (iMSC'ler) başarılı bir şekilde farklılaşmasını sağlamıştır2,3. Bu nedenle, iMSC'ler tendon hücre tedavisi uygulamaları için allojenik bir kaynak olma potansiyeline sahiptir.

Skleraksi (SCX), tendon gelişimi için gerekli olan bir transkripsiyon faktörüdür ve farklılaşmış tenositler için en erken saptanabilir belirteç olarak kabul edilir. Ek olarak, SCX, diğerlerinin yanı sıra tip 1a1 zincir kollajen 1 (COL1a1), mohawk (MKX) ve tenomodulin (TNMD) dahil olmak üzere aşağı akış tendon farklılaşma belirteçlerini aktive eder 4,5,6. Tendon olgunlaşması sırasında eksprese edilen diğer genler arasında tübülin polimerizasyonunu teşvik eden protein ailesi üyesi 3 (TPPP3) ve trombosit kaynaklı büyüme faktörü reseptörü alfa (PDGFRa)7 bulunur. Bu genler tendon gelişimi ve olgunlaşması için gerekli olmakla birlikte, ne yazık ki tendon dokusuna özgü değildir ve kemik veya kıkırdak gibi diğer kas-iskelet dokularında eksprese edilir 5,7.

Tendon gelişimi sırasında belirteçlerin ekspresyonuna ek olarak, mekanostimülasyon embriyonik tendon gelişimi ve iyileşmesi için önemli bir unsurdur 4,5,6. Tendonlar mekano-duyarlıdır ve büyüme modelleri çevrelerine tepki olarak değişir. Moleküler düzeyde, biyomekanik ipuçları tenositlerin gelişimini, olgunlaşmasını, bakımını ve iyileşme tepkilerini etkiler8. Fizyolojik yükleri ve biyomekanik ipuçlarını modellemek için çeşitli biyoreaktör sistemleri kullanılmıştır. Bu model sistemlerden bazıları ex vivo doku yüklemesi, çift eksenli veya tek eksenli gerilim uygulayan 2D hücre yükleme sistemleri ve iskele ve hidrojel kullanan 3D sistemleriiçerir 9,10. 2D sistemler, mekanik stimülasyonun tendona özgü genler veya hücre kaderi bağlamında hücrelerin morfolojisi üzerindeki etkilerini incelerken avantajlıdır, 3D sistemler ise hücre-ECM etkileşimlerini daha doğru bir şekilde kopyalayabilir 9,10.

2D yükleme sistemlerinde, hücreler ve kültür substratı arasındaki gerilme homojendir, yani hücrelerin hücre iskeletine uygulanan yük tamamen kontrol edilebilir. Çift eksenli yükleme ile karşılaştırıldığında, tenositler ağırlıklı olarak in vivo9 kollajen demetlerinden tek eksenli yüklemeye maruz kaldığından, tek eksenli yükleme fizyolojik olarak daha önemlidir. Günlük aktiviteler sırasında tendonların %6'ya kadar tek eksenli gerilme yüküne maruz kaldığı bulunmuştur11. Spesifik olarak, önceki çalışmalar, %4-5 fizyolojik aralıklarında yüklemenin, SCX ve TNMD gibi tendonla ilgili belirteç ekspresyonunu koruyarak ve ayrıca artan kollajen üretimini koruyarak tenojenik farklılaşmayı teşvik ettiği gösterilmiştir 9,10. % 10'dan fazla suşlar travmatik olarak ilişkili olabilir, ancak fizyolojik olarak anlamlı olmayabilir12,13.

Burada, tenosit üretimi için gerekli olabilecek mekanik ve biyolojik stimülasyonun sinerjik etkisini hesaba katan bir protokol sunulmaktadır. İlk olarak, embriyoid cisimlerin büyüme faktörlerine kısa süreli maruz kalması yoluyla iPSC'leri iMSC'lere indüklemek için tekrarlanabilir bir yöntem tanımladık ve akış sitometrisi kullanılarak MSC yüzey belirteçleri ile doğrulanmıştı. Daha sonra, iMSC'leri SCX'in (iMSCSCX+) kararlı aşırı ekspresyonuna sahip olacak şekilde tasarlamak için bir lentiviral transdüksiyon yöntemini detaylandırıyoruz. Daha fazla hücre olgunlaşması için, iMSCSCX+ , fibronektin kaplı silikon plakalara ekilir ve CellScale MCFX biyoreaktörü kullanılarak optimize edilmiş tek eksenli gerilim protokolüne tabi tutulur. Tenterojenik potansiyel, erken ve geç tendon belirteçlerinin yukarı regülasyonunun yanı sıra kollajen birikimi14 gözlemlenerek doğrulandı. Bu iTenosit üretme yöntemi, tendon hücre tedavisi uygulamaları için sınırsız kullanıma hazır, allojenik bir kaynak sunabilen bir kavram kanıtıdır.

Protokol

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

iTenosit üretmek için bu protokol üç ana adımda gerçekleştirilebilir: iPSC'lerden iMSC'lere (10 gün), iMSC'den iMSCSCX+ 'a (2 hafta), iMSCSCX+ 'dan iTenositlere (en az 4 gün). Protokoldeki her önemli adım, deneysel zaman çizelgesine bağlı olarak daha sonra duraklatılabilir ve yeniden başlatılabilir. Hücrelerin kültürlenmesi ile ilgili yöntemler için steril teknikler kullanılmalıdır. Bu protokoldeki tüm hücreler 37 °C, %5CO2 ve %95 nemde büyütülmelidir.

1. İndüklenmiş Mezenkimal Stromal Hücrelere (iMSC'ler) insan iPSC indüksiyonu

  1. Deney hazırlığı
    1. Iscove'un Modifiye Dulbecco'nun Orta - Embriyoid Cisimcikleri (IMDM-EB) ortamını hazırlayın.
      1. 50 mL IMDM bazal ortamını 8.5 mL nakavt serum replasmanı, 500 μL Minimal Esansiyel Ortam (MEM) esansiyel olmayan amino asitler, 0.385 μL (110 mM stok) beta-merkaptoetanol ve 500 μL antibiyotik-antimikotik çözelti (AAS) ile destekleyin (nihai konsantrasyonlar sırasıyla% 17,% 1, 110 μM,% 1) (bkz.
    2. Mezenkimal Stromal Hücre (MSC) ortamını hazırlayın.
      1. 440 mL düşük glikozlu Dulbecco'nun Modifiye Eagle Medium'unu (DMEM) 50 mL fetal sığır serumu (FBS), 5 mL antibiyotik-antimikotik solüsyon (AAS) ve 5 mL L-glutamin (nihai konsantrasyonlar: sırasıyla %10, %1, 2 mM) ile destekleyin.
    3. Poli (2-hidroksietil metakrilat) (poli-HEMA) kaplı plakalar hazırlayın.
      1. Steril bir şişeye 10 g poli-HEMA ( Malzeme Tablosuna bakınız) ekleyin.
      2. Şişeye manyetik bir karıştırıcı ekleyin ve karıştırırken yavaşça 500 mL %95 EtOH ekleyin.
      3. Tüm EtOH eklendikten sonra, karıştırma modunu en az 1200 saat ek düşük ısı ile 6 rpm'de açın. Poly-HEMA çözeltisi oda sıcaklığında bir yıla kadar saklanabilir.
      4. Steril koşullar altında, bir T75 şişesine 9 mL'de 2,5 μg/cm2 ekleyin. Hacmi kültür kabının boyutuna göre ayarlayın.
      5. Steriliteyi koruyarak, kullanmadan önce EtOH'nin tamamen buharlaşması için kapların kurumasına izin verin. Bu genellikle 24-72 saat sürer.
    4. Jelatin kaplı şişeler hazırlayın.
      1. Bir cam şişeyi NaOH ile yıkayın ve jelatin preparatına adayın. Deterjan kullanmayın.
      2. % 1 jelatin çözeltisi hazırlayın (5 g jelatin ve 500 mL endotoksin içermeyen su). Cam şişeyi jelatin çözeltisi ile 30 dakika otoklavlayın.
      3. Jelatin çözeltisinin soğumasını bekleyin ve oda sıcaklığında saklanabilir.
      4. Bir T75 şişesini şişe başına 5 mL jelatin çözeltisi ile kaplayın ve hücreleri tohumlamadan önce en az 1 saat inkübe edin. Jelatin kaplı şişeler 1 gün önceden hazırlanabilir.
    5. Floresanla aktive edilen hücre sıralama (FACS) tamponunu hazırlayın.
      1. PBS'yi %2 sığır serum albümini ve %0.1 sodyum azid ile karıştırın. 4 °C'de saklayın.
  2. Embriyoid cisimciklerin (EB'ler) oluşumu
    NOT: iPSC'ler 6 oyuklu bir plakada kültürlenmeli ve kullanımdan önce %70-80 birleşmeye ulaşmalıdır.
    1. 0. günde, doku kültürü başlığına 384 şeffaf tabanlı bir PCR plakası ve 15 dakika boyunca kapaksız UV getirin.
    2. Büyüme ortamını iPSC'lerden çıkarın (Malzeme Tablosuna bakın) ve kuyucukları PBS ile yıkayın.
    3. Her bir oyuğa 0.5 mL önceden ısıtılmış yumuşak hücre ayrışma reaktifi ( Malzeme Tablosuna bakınız) ekleyin ve 37 ° C'de 5 dakika inkübe edin. iPSC'ler tek hücreler veya süspansiyon halinde kaldırılmış küçük agregalar haline gelene kadar hücreleri her 5 dakikada bir gözlemleyin.
    4. Tek hücreli bir süspansiyon sağlamak için hücre süspansiyonunu 1 mL'lik bir pipetle yeniden süspanse etti.
    5. Hücreleri oda sıcaklığında 5 dakika boyunca 300 x g'da santrifüjleyin.
    6. Süpernatanı çıkarın, IMDM-EB ortamında yeniden süspanse edin (adım 1.1.1) ve bir hemositometre veya hücre sayacı kullanarak canlı hücreleri sayın.
    7. Kuyucuk başına 25 μL hücre süspansiyonu ile 384 oyuklu plakanın kuyusu başına 5.000-25.000 hücre elde etmek için gereken uygun hücre süspansiyonu hacmini hesaplayın.
      NOT: Genel olarak, 6 oyuklu bir plakanın 2-3 birleşik (%70-80) kuyusu, 384 oyuklu bir plakada EB'ler yapabilir. EB başına hücre boyutu ampirik olarak belirlenecektir. 384 oyuklu bir plakanın tamamı için, oyuk başına 25 μL olmak üzere 9.6 mL hücre süspansiyonu kullanılmalıdır.
    8. Hücreleri oda sıcaklığında 5 dakika boyunca 300 x g'da tekrar santrifüjleyin.
    9. Süpernatanı çıkarın ve hücreleri uygun hacimde IMDM-EB ortamı ve 10 μM Y-27632 dihidroklorür (stok: 10 mM, 1000x, Malzeme Tablosuna bakınız) içinde önceden soğutulmuş 15 mL konik bir tüpte yeniden süspanse edin.
    10. Konik malzemeye soğuk çözündürülmüş bazal membran matrisi (EB değerinde 384 oyuklu plaka başına 1 mg) ekleyin (bkz.
    11. Her bir kuyucuğa 25 μL hücre süspansiyonu dağıtın. Plakaya steril bir kapak yerleştirin ve 4 °C'de 450 x g'de 7 dakika döndürün. 37 °C'de 48 saat inkübe edin.
    12. 2. günde, hücreleri 3 mL önceden ısıtılmış IMDM-EB ortamı içeren 100 mm'lik bir plakaya aktarın.
    13. EB'leri 10 mL IMDM-EB içeren özel poli-HEMA kaplı T75 şişelerine aktarın. Hacmi kültür kabının boyutuna göre ayarlayın. EB'lerin 3 gün boyunca büyümesine izin verin.
    14. 5. günde, EB'leri 10 mL IMDM-EB ortamı ile hazırlanmış jelatin kaplı T75 şişelerine aktarın. Hacmi kültür kabının boyutuna göre ayarlayın. EB'leri askıya alarak 3 gün daha büyütün.
    15. 8. günde, iki tür EB'nin gözlemlendiğinden emin olun: şişeye bağlı EB'ler ve bağlı olmayan EB'ler. Bağlı olmayan EB'leri şişeden PBS ile yıkayın.
    16. Ekli EB'lere, TGFβ-1 (10 ng/mL) ile desteklenmiş IMDM-EB ortamı ekleyin ( Malzeme Tablosuna bakın) ve 2 gün boyunca büyümelerine izin verin.
    17. 10. günde, ortamı MSC ortamı olarak değiştirin. Hücreler haftada iki kez beslenmelidir. % 70 birleştiğinde, hücreleri yeniden plakalamak için "Standart kaldırma hücreleri protokolüne" geçin. Hücreleri jelatin kaplı plakalar üzerinde yeniden plakalayın.
  3. Standart kaldırma hücreleri protokolü
    1. Yapışık hücreler% 70 birleşmeye ulaştığında, büyüme ortamını plakalardan aspire edin ve PBS ile yıkayın.
    2. Her 150 mm'lik plakaya 5 mL önceden ısıtılmış %0.25 tripsin ekleyerek hücreleri kaldırın ve 37 °C'de 5 dakika inkübe edin. Tripsin hacmini kültür kabının boyutuna göre ayarlayın.
    3. Mikroskop altında, hücrelerin çoğunun her plakadan kaldırıldığını kontrol edin. Hala bağlı hücreler varsa, hücreleri yerinden çıkarmak için plakaların kenarlarına hafifçe vurun.
    4. Önceden ısıtılmış büyüme ortamının hacmini iki katına ekleyerek hücreleri konik bir tüpte toplayın.
    5. Hücreleri oda sıcaklığında 300 x g'da 5 dakika santrifüjleyin. Süpernatanı çıkarın ve sonraki adımlara geçin.
  4. MSC marker ekspresyonu için akış sitometrisi değerlendirmesi
    NOT: Kemik iliği MSC'leri gibi insan MSC'leri pozitif kontrol olarak kullanılmalıdır.
    1. "Standart kaldırma hücreleri protokolünü" uygulayın (adım 1.3).
    2. Süpernatanı 3 mL FACS tamponu ile yeniden süspanse edin ve tüm hacmi FACS tüplerine aktarın.
    3. Oda sıcaklığında 300 x g'da 5 dakika santrifüjleyin. FACS tamponu ile yıkama adımını iki kez daha tekrarlayın.
    4. Boyanmış tüplere 2 μL fare antihuman CD90-FITC, fare antihuman CD44-APC ve antihuman CD105-PE ekleyin ( Malzeme Tablosuna bakınız) ve 4 ° C'de 45 dakika inkübe edin.
    5. İzotip kontrol tüplerine 20 μL fare IgG2a-FITC, fare IgG1-PB ve fare IgG1-PE ekleyin (bkz.
    6. Karanlıkta 4 °C'de 15 dakika inkübe edin. Tüm tüpleri 3 mL FACS tamponu ekleyerek ve 300 x g'da (oda sıcaklığında) 5 dakika santrifüjleyerek yıkayın. Hücreleri her tüp için 250 μL FACS tamponunda yeniden süspanse edin.
    7. Akış sitometrisi14 kullanarak MSC'lerin yüzey belirteçlerinin ekspresyonunu analiz edin. Uyarma ve emisyon dalga boyları şöyle olmalıdır: CD90-FITC, 495 nm'de uyarma zirvesi ve 519 nm'de emisyon zirvesi; CD44-APC, 640'ta uyarma zirvesi ve 660 nm'de emisyon zirvesi; CD105-PE, 561 nm'de uyarma zirvesi ve 574 nm'de emisyon zirvesi.

2. iMSC geçişi ve genişletme

  1. Reaktiflerin hazırlanması
    1. MSC dondurma ortamını hazırlayın.
      1. 30 mL düşük glukoz DMEM, 5 mL DMSO ve 15 mL FBS'yi birleştirin (nihai konsantrasyonlar sırasıyla% 60,% 10,% 30).
      2. Çözeltiyi steril bir 0.45 μm filtre kullanarak filtreleyin. 4 °C'de saklayın.
  2. Geçiş
    NOT: İndüksiyonu takiben, iMSC'ler, plastik doku kültürü plakaları üzerinde büyümeye bırakılmadan önce ek 2 geçiş için jelatin kaplı plakalar üzerinde büyütülmelidir. Ek olarak, hücreler %70 birleştiğinde 1:3 bölme oranıyla geçilmelidir.
    1. "Standart kaldırma hücreleri protokolünü" uygulayın (adım 1.3).
    2. Hücreleri MSC ortamında yeniden süspanse edin ve hücreleri, şişe başına 20 mL ortam ile üç yeni 150 mm'lik T175 şişesi plakasına eşit olarak dağıtın. Hücreleri 37 °C'ye getirin.
    3. Büyüme ortamını önceden ısıtılmış MSC ortamı ile değiştirerek hücreleri haftada iki kez besleyin.
  3. Donma
    1. "Standart kaldırma hücreleri protokolünü" gerçekleştirin.
    2. Hücreleri 1 mL MSC dondurma ortamında yeniden süspanse edin. 1 mL hücre süspansiyonunu bir kriyoviyal içine ekleyin ve uzun süreli depolama için sıvı nitrojene aktarmadan önce -80 °C'de 24 saat dondurucu bir kapta saklayın.
  4. Çözdürme
    1. 15 mL'lik konik bir tüpte 10 mL önceden ısıtılmış MSC ortamı hazırlayın.
    2. Kriyoviyal'i alın, 37 °C'lik bir su banyosuna daldırın ve bezelye büyüklüğünde bir buz topu kalana kadar (yaklaşık 1-2 dakika) döndürün.
    3. Hücre kültürü davlumbazında, kriyoviyal ortama 1 mL önceden ısıtılmış ortamı yavaşça ekleyin ve karıştırmak için yukarı ve aşağı pipetleyin.
    4. Hücre süspansiyonunu kriyoviyalden önceden ısıtılmış ortamla hazırlanmış 15 mL'lik konik tüpe aktarın ve 300 x g'da (oda sıcaklığında) 5 dakika santrifüjleyin.
    5. Süpernatanı çıkarın ve taze ortamla yeniden süspanse edin. Hücre süspansiyonunu, toplam hacmi 20 mL olan 150 mm'lik bir plakaya ekleyin. Hacmi kültür şişesinin boyutuna göre ayarlayın.
    6. Hücreleri bölünmeye hazır olana kadar 37 °C'de inkübe edin.

3. Lentiviral transdüksiyon kullanarak SCX'i aşırı eksprese etmek için iMSC'lerin genetik mühendisliği

NOT: Protokolün bu bölümünün tamamlanması iki hafta sürer.

  1. Ortam ve reaktiflerin hazırlanması
    1. HEK293T/17 hücre ortamını hazırlayın.
      1. 50 mL FBS ve 5 mL AAS ile 445 mL Eagle's Minimum Esansiyel Ortam (EMEM) takviyesi (nihai konsantrasyonlar sırasıyla% 10,% 1).
    2. MSC lenti paketleme ortamını hazırlayın.
      1. 50 mL oda sıcaklığındaki FBS'yi 60 °C'lik bir su banyosunda 30 dakika ısıtarak ısıyla inaktive serumu hazırlayın.
      2. 445 mL düşük glikoz DMEM'i ısıyla inaktive edilmiş FBS ve 5 mL L-glutamin ile birleştirin (nihai konsantrasyonlar: sırasıyla% 10, 2 mM.)
    3. Transfeksiyon kompleksi hazırlayın.
      1. Transfeksiyon kompleksi bileşenlerinin (Malzeme Tablosuna bakınız) buz üzerinde çözülmesine izin verin: paketleme plazmitleri VSV-G ve Delta, SCX plazmidi ve BioT15,16.
      2. Plazmitleri yavaşça girdap haline getirin ve aşağı doğru döndürün. DNA konsantrasyonlarını ölçün.
      3. DNA konsantrasyonlarına ve transfeksiyon için amaçlanan şişelerin sayısına bağlı olarak, ihtiyaç duyulan her bir bileşenin hacmini hesaplayın: bir T75 şişesi için, transfeksiyon kompleksi 750 μL serumsuz ortamdan (serumsuz DMEM veya PBS gibi), 7.5 μg SCX plazmid, 0.75 μg VSV-G plazmid, 6.75 μg Delta plazmid ve 22.5 μL BioT'den oluşacaktır. Pipetleme hatası için fazladan düşünün.
      4. Hafifçe yukarı ve aşağı pipetleyerek karıştırın. Bir santrifüjde kısa bir süre döndürün. Oda sıcaklığında 15 dakika inkübe edin ve hemen kullanın.
  2. Transfeksiyon ve lentiviral üretim
    DİKKAT: 3. günden itibaren protokol, lentivirüs ile çalışmayı gerektirir ve bu nedenle çalışma, sınırlama seviyesi 2+ operasyonel prosedürler kullanılarak gerçekleştirilmelidir. İşçiler, iki kat eldiven, bilek kaplamaları, koruyucu gözlükler, maske ve uzun pantolon ve kapalı ayakkabılar dahil olmak üzere kişisel koruyucu ekipman giymelidir. Pipet uçları, şişeler ve sıvı ortam dahil olmak üzere tüm atık ve malzemeler en az 20 dakika boyunca ağartıcı (son %1 sodyum hipoklorit) ile dekontamine edilmelidir. Elektrikli süpürgeyi kullanmayın.
    1. Tohum HEK293T/17 hücreleri.
      1. Transfeksiyondan yaklaşık 18-24 saat önce (0. gün), 293T hücrelerini kaldırın ve T75 şişelerine yerleştirin. Aşağıdaki ciltler, T75'i kültür kabı olarak kabul eder. Hacmi kullanılan hücre kültürü kabına göre ayarlayın.
      2. Kültür ortamını şişelerden çıkarın ve 5 mL PBS ile yıkayın.
        NOT: Hücreler şişenin yüzeyinden çok kolay bir şekilde kalkar. Şişenin yan tarafına PBS ekleyin ve çözeltinin hücrelere doğrudan eklenmesinden kaçının.
      3. Her şişeye 3 mL önceden ısıtılmış %0.25 tripsin ekleyin ve 37 °C'de 5 dakika inkübe edin. Hücreleri konik bir tüpe toplayın ve oda sıcaklığında 300 x g'da 5 dakika santrifüjleyin.
      4. Süpernatanı çıkarın, 293T ortamında yeniden süspanse edin ve bir hemositometre veya hücre sayacı kullanarak canlı hücreleri sayın.
      5. Hücreleri 5.3 x 104 hücre/cm2'de kaplayın ve gece boyunca 37 °C'de inkübe edin.
      6. Ertesi gün (1. gün), transfeksiyon kompleksini hazırlayın. Hücrelerden gelen büyüme ortamını 5 mL önceden ısıtılmış MSC lenti-paketleme ortamı ile değiştirin (adım 3.1.2).
      7. Transfeksiyon kompleksini hücrelere damla damla ekleyin. Transfeksiyon kompleksinin hücrelere eşit şekilde maruz kalmasını sağlamak için çanağı hafifçe eğin. Hücreleri 48 saat boyunca inkübatöre geri koyun.
        NOT: Toksisite 24 saat sonra (2. gün) gözlenmelidir.
      8. 48 saat sonra (3. gün), virüs içeren ortamı bir pipet kullanarak dikkatlice ayrı bir konik tüpe toplayın ve 300 x g'da (oda sıcaklığında) 5 dakika santrifüjleyin.
      9. 293T hücreli T75 şişesine 5 mL önceden ısıtılmış MSC lenti-paketleme ortamı ekleyin ve gece boyunca inkübatöre geri dönün.
      10. Santrifüjlemeden sonra, süpernatanı doğrudan filtreden pipetleyerek süpernatanı 0,45 μm steril bir filtre ile filtreleyin. Virüs içeren ortamı gece boyunca 4 °C'de saklayın.
      11. 24 saat sonra (4. gün), virüs içeren ortamı bir pipet kullanarak ayrı bir konik tüpe bir kez daha dikkatlice toplayın ve 300 x g'da (oda sıcaklığında) 5 dakika santrifüjleyin.
      12. Virüsü bir önceki toplama günü virüsü ile birleştirin ve homojen bir çözelti elde etmek için karıştırın. Bu noktada, deneysel zaman çizelgesine bağlı olarak protokol duraklatılabilir ve daha sonra yeniden başlatılabilir. Lentivirüs, -80 °C'de dondurulabilir ve dondurulabilir veya lentivirüs, "SCX ile iMSC'lerin Transdüksiyonu" (adım 3.3) ile devam ederken buz üzerinde saklanabilir.
        NOT: Lentivirüs alikotları dondurulduktan ve çözüldükten sonra tekrar dondurmayın.
  3. iMSC'lerin SCX ile transdüksiyonu
    1. Titre plakası transdüksiyonunu gerçekleştirin.
      1. 0. günde, "Standart kaldırma hücreleri protokolünü" gerçekleştirin.
      2. MSC ortamındaki hücreleri yeniden süspanse edin ve bir hemositometre veya hücre sayacı kullanarak canlı hücreleri sayın.
      3. 6 oyuklu bir plakaya 4 x 103 hücre /cm2 ekleyin. Kalan kısmı 20 mL MSC ortamı ile ekstra 150 mm'lik bir plakada yeniden plakalayın (bu kontrol plakası olacaktır). Hücreleri 37 °C'de 24 saat inkübe edin.
      4. Ertesi gün (1. gün), hücreler ~% 40 birleşik olmalıdır. Lenti paketleme büyüme ortamını önceden ısıtın ve polibren ve yaklaşık 3 mL lentivirüsü buz üzerinde çözün (veya virüs toplama ile aynı gün yapılırsa, kullanılana kadar buz üzerinde saklayın).
      5. İstenilen titrelere göre (yani, %12.5, %25, %50, %75, %100) kuyucuklara lenti-paketleme büyüme ortamı ve lentivirüs ekleyin. 5 μg/mL'lik bir nihai konsantrasyon elde etmek için 0,5 μL polibren ekleyin (stok konsantrasyonu: 10 mg/mL, bkz.
      6. Tüm hücrelere eşit şekilde maruz kalmayı sağlamak için plakayı döndürün. Plakayı 37 °C'de 48 saat inkübatöre geri koyun.
    2. Akış sitometrisi ile SCX lentivirüs titresi verimliliğini değerlendirin.
      1. 48 saat sonra "Standart kaldırma hücreleri protokolünü" gerçekleştirin.
      2. PBS'deki hücreleri yeniden askıya alın ve bir hemositometre veya hücre sayacı kullanarak canlı hücreleri sayın. Hücreleri oda sıcaklığında 300 x g'da 5 dakika santrifüjleyin.
      3. Süpernatanı çıkarın ve yıkamak için 3 mL FACS tamponunda yeniden süspanse edin. Hücre süspansiyonunu akış sitometri tüplerine aktarın ve 300 x g'da 5 dakika santrifüjleyin.
      4. FACS tampon yıkamasını iki kez daha tekrarlayın ve son hücre peletlerini 300 μL FACS tamponunda yeniden süspanse edin. Bir akış sitometri makinesi kullanarak her titre için GFP ekspresyonunu değerlendirin.
      5. Titrelere ve hücre canlılık sayılarına dayanarak, transdüksiyona devam etmek için uygun lentivirüs titresini belirleyin. Bu noktada, deneysel zaman çizelgesine bağlı olarak protokol duraklatılabilir ve daha sonra yeniden başlatılabilir.
    3. Büyük ölçekli SCX iletimi gerçekleştirin.
      NOT: Listelenen hacimler 1x 150 mm plaka veya 1x T175 şişe başınadır. Bu, istenen damar boyutuna ve transdüksiyon ölçeğine bağlı olarak buna göre ayarlanabilir.
      1. 0. günde, "Standart kaldırma hücreleri protokolünü" gerçekleştirin.
      2. MSC ortamındaki hücreleri yeniden süspanse edin ve bir hemositometre veya hücre sayacı kullanarak canlı hücreleri sayın. Hücreleri 4 x 103 hücre/cm2'de tohumlayın. Hücreleri 37 °C'de 24 saat inkübe edin.
      3. Ertesi gün (1. gün), hücreler ~% 40 birleşik olmalıdır. Lenti paketleme büyüme ortamını önceden ısıtın ve polibren ve önceden hesaplanmış lentivirüs miktarını buz üzerinde çözün.
      4. Karar verilen titreye bağlı olarak, kuyucuklara istenen miktarda lenti-paketleme büyüme ortamı ve lentivirüs ekleyin. 5 μg/mL polibren ekleyin (stok konsantrasyonu: 10 mg/mL).
      5. 3. günde, hücreleri floresan mikroskop altında gözlemleyin. Yeni üretilen iMSCSCX+ , GFP'yi floresan olarak yaymalıdır. Virüs içeren ortamı önceden ısıtılmış MSC ortamıyla değiştirin. Bu noktada, deneysel zaman çizelgesine bağlı olarak protokol duraklatılabilir ve daha sonra yeniden başlatılabilir.

4. iMSCSCX+ geçiş ve genişletme

  1. Protokolün 2. adımında açıklandığı gibi, iMSC'lerde olduğu gibi iMSCSCX+ 'ın geçişini, genişletilmesini, dondurulmasını ve çözülmesini gerçekleştirin.

5. Mekanik yükleme

NOT: Bu bölüm en az 4 gün sürer ancak hücre kasılmasının gözlenip gözlenmediğine bağlı olarak daha uzun olabilir.

  1. Deney hazırlığı
    1. Silikon plakaları hazırlayın.
      1. Otoklav 2 silikon plaka (bkz. Daha sonra, steril koşullar altında, silikon plakaları otoklav torbasından çıkarın ve 150 mm'lik plakalara yerleştirin.
      2. 130 μL fibronektini (100x, Malzeme Tablosuna bakınız) 15 mL'lik konik bir tüpte 13 mL steril PBS ile birleştirin. Karıştırmak için tüpü birkaç kez ters çevirin.
      3. Silikon plakaların her bir oyuğuna 400 μL fibronektin çözeltisi ekleyin. Plakaları 37 °C'de en az 2 saat veya gece boyunca inkübe edin.
      4. Kullanmadan önce, fibronektin çözeltisini aspire edin ve fibronektin çözeltisinin tamamen buharlaşmasını sağlamak için plakaların hücre kültürü başlığında en az 30 dakika kurumasını bekleyin.
        NOT: Fibronektin çözeltisi önceden kuyucuklardan çıkarılabilir ve şimdi kaplanmış plakalar kullanıma kadar birkaç haftaya kadar 37 ° C'de oturabilir.
    2. MSC streç ortamını hazırlayın.
      1. 15 mL'lik konik bir tüpte 14 mL önceden ısıtılmış MSC ortamına 140 μL askorbik asit (stok: 100x, nihai konsantrasyon: 50 μg/mL) ekleyerek MSC streç ortamını hazırlayın.
        NOT: Askorbik asit, her ortam değişikliğinden önce MSC ortamına taze olarak eklenmelidir.
  2. iMSCSCX+ 'ın silikon plakalara tohumlanması
    1. "Standart kaldırma hücreleri protokolünü" uygulayın (adım 1.3).
    2. MSC ortamındaki hücreleri yeniden süspanse edin ve bir hemositometre veya hücre sayacı kullanarak canlı hücreleri sayın.
    3. 1.25 x 104 hücre/cm2 elde etmek için gereken hücre süspansiyonu hacmini hesaplayın.
    4. Bu hacimdeki MSC streç medyayı 15 mL konik borudan çıkarın. Hedef hücreleri ekleyin. Yeni hücre süspansiyonunu homojen hale getirin.
    5. Her iki silikon plakanın her kuyucuğuna 400 μL yeni hücre süspansiyonu ekleyin.
    6. Kapağı 150 mm'lik plakaların üzerine geri koyun ve 24 saat boyunca 37 °C'de inkübatöre geri koyun.
  3. Tek eksenli gerilim
    1. Ertesi gün, germe aparatını (Malzeme Tablosuna bakınız)ddH2Ove ardından %70 etanol ile durulayın. Cihazı silin, hücre kültürü başlığına yerleştirin ve 15 dakika UV'ye koyun.
    2. Tohumlanmış plakaları alın ve kuyucukların iyi hücre bağlantısı olup olmadığını kontrol edin.
    3. İnkübatörde bir plak bırakın (statik kontrol) ve ikinci tohumlanan silikon plağı, vidaları silikon plaktaki deliklerle hizalayarak germe aparatına yerleştirin. Steriliteyi sağlamak için aparatın kapağını değiştirin.
    4. Tohumlanmış silikon plakalı cihazı elektronik kaynağa takın ( Malzeme Tablosuna bakın) ve 37 °C'de inkübatöre yerleştirin.
    5. Programda, döngüsel germe protokolünü günde 2 saat% 4 sinüzoidal zorlanma, 0,5 Hz olarak ayarlayın. Başlat düğmesine bir kez basarak esnemeye başlayın. Germe hemen başlamalıdır.
    6. Hücreleri en az 3 gün gerin. Hücreleri günlük olarak izleyin ve hücre kasılması gözlemlenebiliyorsa germe protokolünü durdurun. Medyayı iki günde bir yeni MSC streç medyayla değiştirin.

Sonuçlar

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

İnsan iPSC'lerinin iMSC'lere göre farklılaşması
Daha önce açıklandığı gibi, iPSC'leri iMSC'lere ayırmak için mevcut protokol, embriyoid cisimciklerininoluşumunu içerir 2. Bu işlem, iPSC'lerden iMSC'leri indüklemek için yaklaşık on gün sürer (Şekil 1A



figure-results-1

figure-results-2

figure-results-3

figure-results-4

figure-results-5

Tartışma

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Bu protokolde, iTenositler üç ana adımla üretilir: (1) iPSC'lerin iMSC'lere indüksiyonu, (2) bir lentiviral vektör kullanılarak SCX'in aşırı ekspresyonu ve (3) hücrelerin 2D tek eksenli gerilim yoluyla olgunlaşması.

iPSC'leri iMSC'lere ayırmak için sunulan protokol daha öncegrubumuz 2 tarafından tanımlanmıştır. Bu yayından bu yana, iMSC'lerin klinik araştırmalarda 21,22,23 kullanılması için yerleşik bir protokol ve ticari olarak temin edilebilen farklılaşma kitleri de dahil olmak üzere çok sayıda protokol geliştirilmiştir. Daha önce iMSC'lerin üç soyluluk potansiyelinin gözden geçirilmesi de araştırılmıştır2. Metodolojiler farklılık gösterse de, tüm protokoller, MSC yüzey işaretleyicilerinin kararlı bir şekilde ifade edilmesini sağlamak için birkaç geçiş için iMSC'lerin farklılaşma sonrası genişlemesine duyulan ihtiyacı vurgulamaktadır. Bu aşamada, yaklaşık% 70 birleşmede 1: 3 bölünmüş bir oranın kullanılması, geçişten sonraki 4-6 gün içinde nispeten birleşik bir plaka ile sonuçlanacaktır.

Transdüksiyon için en uygun titreyi seçerken, hücre canlılığı ve verimliliği arasında bir denge kurmak çok önemlidir. % 100 titre ile transdüksiyona tabi tutulan iMSC'ler en yüksek seviyede SCX-GFP pozitif hücreler gösterebilse de, bu hücrelerin transdüksiyondan sonra üç pasajı bölmeyi bıraktığını belirtmekte fayda var (Şekil 3C), muhtemelen DNA kaynaklı toksisite nedeniyle. Bu nedenle,% 100'den daha az bir titre kullanılması tavsiye edilir. Silikon plakaları tohumlamadan önce, akış sitometrisi kullanılarak SCX-GFP seviyelerinin yeniden değerlendirilmesi önerilir. Veriler, verimliliğin istenen eşiğin altında olduğunu gösteriyorsa, özellikle in vivo uygulamalar için tohumlamadan önce iMSCSCX+ hücrelerinin ayrılması tavsiye edilir.

iMSCSCX+ hücreleri silikon plakalara yerleştirildikten sonra, germeden önce hücre yapışmasına izin vermek için gece boyunca 37 °C'de inkübe edilmelidir. Silikon plakalarda tarif edilen 1.25 x 104 hücre /cm2 hücre yoğunluğu, statik gerilime katkıda bulunabilecek tek tabakalı aşırı büyümeyi önlemek için optimize edilmiştir24. Ek olarak, çalışmalar, değişen sertlikteki substratlarda birleşik kültürlerde doğrudan hücreden hücreye temasın hücre davranışını değiştirebileceğini düşündürmektedir 24,25,26. Pilot deneyler sırasında, özellikle daha sonraki zaman noktalarında, silikon plakalardan bazı görünür hücre ayrılması gözlenmiştir (Şekil 4D). Bu, aşırı birleşme nedeniyle ECM hücre tabakalarının oluşumunabağlanabilir 24. Bu nedenle, kritik parametreler hücre yoğunluğunu ve gerilme nöbetlerinin sayısını içerir. Mevcut yöntemlerde, gen ekspresyon analizi ile tenojenik potansiyelin değerlendirilmesi için hücreler 3. ve 7. günlerde toplandı. Bununla birlikte, hücrelerin 2D biyoreaktörde en az üç gün gerilmesi ve ardından aşırı büyümeyi ve hücre ayrılmasını önlemek için gerilmiş ve statik plakaların izlenmesi önerilir.

Birkaç esneme nöbetinden sonra, bir dereceye kadar hücre hizalaması ve organizasyonu gözlemlenebilir (Şekil 4C1,E). Bu, in vitro24,27 tek eksenli suşa yanıt olarak gerinim eksenine dik hücre hizalamasının gözlendiği birçok çalışma ile uyumludur. Buna karşılık, statik plaka stokastik hücre organizasyonunu gösterir (Şekil 4C2,E).

Bildiğimiz kadarıyla, sadece birkaç çalışma, MSC'lerin tenositlere veya ligamentositlerefarklılaşması için SCX aşırı ekspresyonunun ve mekanik stimülasyonun sinerjik etkilerini araştırmıştır 24,28,29. Gaspar ve ark. burada tarif edilene benzer bir 2D biyoreaktör sistemi kullandılar, ancak daha yüksek seviyelerde toplam gerinim uyguladılar (12 saat/gün boyunca 1 Hz'de %10). İlginç bir şekilde, BM-MSC'lerde ve insan tenositlerinde SCX, TNMD ve COL1a1 ekspresyonundaki değişiklikleri tespit edemediler. Bununla birlikte, bu, çalışmalarında kullanılan daha yüksek uygulanan suşlara bağlanabilir24. Chen ve ark. çok katmanlı tabakalar halinde bir araya getirilmiş hESC-MSC'lerde SCX'i aşırı eksprese etmek için bir lentiviral vektör kullandı. Tek eksenli döngüsel yük uyguladılar (21 güne kadar 2 saat / gün boyunca 1 Hz'de %10 gerinim) ve COL1a1, COL1a2, COL14 ve TNMD'nin yukarı regülasyonunun yanı sıra ECM birikiminin arttığını gözlemlediler29. Nichols ve ark. tam uzunlukta murin Scx cDNA ile C3H10T1/2 hücrelerini geçici olarak transfekte etti ve hücreleri tek eksenli siklik suş altında (% 1, 1 Hz, 14 güne kadar 30 dakika / gün) 3D kollajen hidrojellerde kültürledi. Bulgularımıza benzer şekilde, grupları gergin ve aşırı eksprese edilen yapılarda SCX ve COL1A1'in yüksek ekspresyonunu gözlemledi, ancak döngüsel gerilmeye yanıt olarak TNMD ekspresyonunda hiçbir değişiklik bulamadı28.

Ek olarak, MKX gibi tendonla ilgili diğer belirteçlerin aşırı ekspresyonunu düşünmek ilgi çekici olabilir. Tsutsumi ve ark. C3H10T1/2 hücrelerinde MKX'in aşırı eksprese edilmesinin ve bunları bir 3D sistemde döngüsel mekanik gerilmeye maruz bırakmanın birleşik etkisini araştırdı. Kollajen fibril demetlerinin ve aktin filamentlerinin30 hizalanması ile birlikte SCX, COL1a1, DCN ve COL3a1'de önemli bir yukarı regülasyon gösterdiler.

iTenosit oluşturmak için bu yöntemin sınırlamaları olduğunu kabul etmek önemlidir. Ticari olarak temin edilebilen 2D biyoreaktör, kavram kanıtlama çalışmaları için avantajlı olsa da, boyutu verimi kısıtlar. Bu hücrelere yüksek verimli tahliller için veya tendon onarım tedavileri için potansiyel bir hazır hücre kaynağı olarak ihtiyaç duyulursa, tek eksenli gerdirmeyi daha büyük ölçekte uygulayabilen sistemlerin araştırılması düşünülmelidir. Ayrıca, daha ileri araştırmalar, stabil tenojenik ekspresyonunu doğrulamak için iTenositlerin genişlemesini kapsamalıdır ve in vivo rejenerasyona katkılarının değerlendirilmesi, tenojenik potansiyellerini değerlendirmek için çok önemlidir.

Açıklamalar

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Tüm yazarların ifşa etmesi gereken herhangi bir çıkar çatışması yoktur.

Teşekkürler

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Bu çalışma kısmen NIH/NIAMS K01AR071512 ve CIRM DISC0-14350 tarafından Dmitriy Sheyn'e desteklenmiştir. İki lentivirüs ambalaj plazmidi, Simon Knott laboratuvarından (Biyomedikal Bilimler Bölümü, Cedars-Sinai Tıp Merkezi) bir hediyeydi.

Malzemeler

Bu makalede kullanılan malzemelerin listesi
AdŞirketKatalog numarasıYorumlar
2-merkaptoetanol ve nbsp;Sigma AldrichM3148
AccutaseStemCell Teknolojileri7920hücre ayrışma reaktifi
Antibiyotik-antimikotik çözeltiThermofisher15240096
Anti-CD105Ancell326-050
APC fare anti-insan CD44BD Biosciences559942
APC fare IgG2 K izotip kontrolüBD Biosciences555745
BenchMark fetal sığır serumuGeminiBio100-106
BiglycanThermofisherHs00959143_m1
Sığır serum albüminiMillipore SigmaA3733
Kollajen tip I alfa 1 zincirli insan Taqman astarıThermofisherHs00164004_m1
Kollajen tip III alfa 1 zincirli insan Taqman astarThermofisherHs00943809_m1
Dimetil sülfoksitMillipore SigmaD8418
DMEM, düşük glikoz, piruvat, glutamin yok, fenol kırmızısıyok Thermofisher11054020
Eagle'ın minimum esansiyel ortamı (EMEM)ATCC30-2003
Fibronektin sığır plazmasıSigma AldrichF1141
FITC fare anti-insan CD90BD Biosciences555595
Domuz derisinden JelatinSigma AldrichG1890
Keçi anti Fare IgG1-PEBio-RadSTAR117
HEK 293T / 17ATCCCRL-11268
IMDM, fenol kırmızısı yokThermofisher21056023
iPSC'ler: 83i-cntr-33n1Sedir-Sina iPSC Çekirdek TesisN/Ahttps://biomanufacturing.cedars-sinai.org/product/cs83ictr-33nxx/
İzotip Kontrol Antikoru, fare IgG2a-FITCMiltenyi Biotec130-113-271
KnockOut serum replasmanıThermofisher10828010
L-askorbik asitSigma AldrichA4544
L-GlutaminThermofisher2503081
MatrigelCorning354230bazal membran matrisi
MechanoCulture FXCellScaleN/Agerme aparatı
MEM esansiyel olmayan amino asit çözeltisiThermofisher11140050
Mohawk insan Taqman astarıThermofisherHs00543190_m1
mTeSR PlusKök Hücre Teknolojileri100-0276
PBSThermofisher10010023
Trombosit kaynaklı büyüme faktörü reseptörü Bir insan Taqman astarıThermofisherHs00998018_m1
Poli (2-hidroksietil metakrilat)Sigma Aldrich192066
Polibren enfeksiyonu / transfeksiyon reaktifleriMillipore SigmaTR-1003
Rekombinant insan  TGF-beta 1 protein insan Taqman astarıRnD Sistemleri240-B
Scleraxis insan Taqman astarıThermofisherHs03054634_g1
SCXA (SCX) (NM_00108050514) insan etiketli ORF klonuOriGeneRC224305L4
Silikon plakalarCellScaleN/A
Sodyum azidMillipore SigmaS2002
Tenascin C insan Taqman astarıThermofisherHs00370384_m1
Tenomodulin insan Taqman astarıThermofisherHs00223332_m1
Trombospondin 4 insan Taqman astarıThermofisherHs00170261_m1
Transfeksiyon reaktifi, BioT BiolandScientific LLCB01-01
Tripsin-EDTA (%0,25)Thermofisher25200072
Tübülin polimerizasyonunu teşvik eden protein ailesi üyesi 3ThermofisherHs03043892_m1
Y-27632 dihidroklorürBiyogemler1293823

Kaynaklar

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
  1. Lim, W. L., Liau, L. L., Ng, M. H., Chowdhury, S. R., Law, J. X. Current progress in tendon and ligament tissue engineering. Tissue Engineering and Regenerative. 16 (6), 549-571 (2019).
  2. Sheyn, D., et al. Human induced pluripotent stem cells differentiate into functional mesenchymal stem cells and repair bone defects. Stem Cells Translational Medicine. 5 (11), 1447-1460 (2016).
  3. Czaplewski, S. K., Tsai, T. L., Duenwald-Kuehl, S. E., Vanderby, R., Li, W. J. Tenogenic differentiation of human induced pluripotent stem cell-derived mesenchymal stem cells dictated by properties of braided submicron fibrous scaffolds. Biomaterials. 35 (25), 6907-6917 (2014).
  4. Jo, C. H., Lim, H. J., Yoon, K. S. Characterization of tendon-specific markers in various human tissues, tenocytes and mesenchymal stem cells. Tissue Engineering and Regenerative. 16 (2), 151-159 (2019).
  5. Shukunami, C., et al. Scleraxis is a transcriptional activator that regulates the expression of Tenomodulin, a marker of mature tenocytes and ligamentocytes. Scientific Reports. 8 (1), 3155(2018).
  6. Huang, A. H., Lu, H. H., Schweitzer, R. Molecular regulation of tendon cell fate during development. Journal of Orthopaedic Research. 33 (6), 800-812 (2015).
  7. Harvey, T., Flamenco, S., Fan, C. M. A Tppp3(+)Pdgfra(+) tendon stem cell population contributes to regeneration and reveals a shared role for PDGF signalling in regeneration and fibrosis. Nature Cell Biology. 21 (12), 1490-1503 (2019).
  8. Yang, G., Rothrauff, B. B., Tuan, R. S. Tendon and ligament regeneration and repair: clinical relevance and developmental paradigm. Birth Defects Research Part C: Embryo Today. 99 (3), 203-222 (2013).
  9. Wang, T., et al. In vitro loading models for tendon mechanobiology. Journal of Orthopaedic Research. 36 (2), 566-575 (2018).
  10. Wu, S. Y., Kim, W., Kremen, T. J. Jr In vitro cellular strain models of tendon biology and tenogenic differentiation. Frontiers in Bioengineering and Biotechnology. 10, 826748(2022).
  11. Screen, H. R., Lee, D. A., Bader, D. L., Shelton, J. C. An investigation into the effects of the hierarchical structure of tendon fascicles on micromechanical properties. Proceedings of the Institution of Mechanical Engineers, Part H. 218 (2), 109-119 (2004).
  12. Tatullo, M., et al. Mechanical influence of tissue culture plates and extracellular matrix on mesenchymal stem cell behavior: A topical review. International Journal of Immunopathology and Pharmacology. 29 (1), 3-8 (2016).
  13. Ding, S., Kingshott, P., Thissen, H., Pera, M., Wang, P. Y. Modulation of human mesenchymal and pluripotent stem cell behavior using biophysical and biochemical cues: A review. Biotechnology and Bioengineering. 114 (2), 260-280 (2017).
  14. Papalamprou, A., et al. Directing iPSC differentiation into iTenocytes using combined scleraxis overexpression and cyclic loading. Journal of Orthopaedic Research. 41 (6), 1148-1161 (2023).
  15. Pryce, B. A., Brent, A. E., Murchison, N. D., Tabin, C. J., Schweitzer, R. Generation of transgenic tendon reporters, ScxGFP and ScxAP, using regulatory elements of the scleraxis gene. Developmental Dynamics. 236 (6), 1677-1682 (2007).
  16. Stewart, S. A., et al. Lentivirus-delivered stable gene silencing by RNAi in primary cells. RNA. 9 (4), 493-501 (2003).
  17. Mendicino, M., Bailey, A. M., Wonnacott, K., Puri, R. K., Bauer, S. R. MSC-based product characterization for clinical trials: an FDA perspective. Cell Stem Cell. 14 (2), 141-145 (2014).
  18. Bourin, P., et al. Stromal cells from the adipose tissue-derived stromal vascular fraction and culture expanded adipose tissue-derived stromal/stem cells: a joint statement of the International Federation for Adipose Therapeutics and Science (IFATS) and the International Society for Cellular Therapy (ISCT). Cytotherapy. 15 (6), 641-648 (2013).
  19. Dunkman, A. A., et al. The tendon injury response is influenced by decorin and biglycan. Annals of Biomedical Engineering. 42 (3), 619-630 (2014).
  20. Liu, H., et al. Crucial transcription factors in tendon development and differentiation: their potential for tendon regeneration. Cell and Tissue Research. 356 (2), 287-298 (2014).
  21. Bloor, A. J. C., et al. Production, safety and efficacy of iPSC-derived mesenchymal stromal cells in acute steroid-resistant graft versus host disease: a phase I, multicenter, open-label, dose-escalation study. Nature Medicine. 26 (11), 1720-1725 (2020).
  22. McGrath, M., Tam, E., Sladkova, M., AlManaie, A., Zimmer, M., de Peppo, G. M. GMP-compatible and xeno-free cultivation of mesenchymal progenitors derived from human-induced pluripotent stem cells. Stem Cell Research and Therapy. 10 (1), 11(2019).
  23. Lian, Q., Zhang, Y., Liang, X., Gao, F., Tse, H. F. Directed differentiation of human-induced pluripotent stem cells to mesenchymal stem cells. Methods in Molecular Biology. 1416, 289-298 (2016).
  24. Gaspar, D., Ryan, C. N. M., Zeugolis, D. I. Multifactorial bottom-up bioengineering approaches for the development of living tissue substitutes. FASEB Journal. 33 (4), 5741-5754 (2019).
  25. Mao, A. S., Shin, J. W., Mooney, D. J. Effects of substrate stiffness and cell-cell contact on mesenchymal stem cell differentiation. Biomaterials. 98, 184-191 (2016).
  26. Tilghman, R. W., et al. Matrix rigidity regulates cancer cell growth and cellular phenotype. PLoS One. 5 (9), e12905(2010).
  27. Chagnon-Lessard, S., Jean-Ruel, H., Godin, M., Pelling, A. E. Cellular orientation is guided by strain gradients. Integrative Biology (United Kingdom). 9 (7), 607-618 (2017).
  28. Nichols, A. E. C., Werre, S. R., Dahlgren, L. A. Transient scleraxis overexpression combined with cyclic strain enhances ligament cell differentiation. Tissue Engineering Part A. 24 (19-20), 1444-1455 (2018).
  29. Chen, X., et al. Force and scleraxis synergistically promote the commitment of human ES cells derived MSCs to tenocytes. Scientific Reports. 2, 977(2012).
  30. Kataoka, K., et al. In vitro neo-genesis of tendon/ligament-like tissue by combination of mohawk and a three-dimensional cyclic mechanical stretch culture system. Frontiers in Cell and Developmental Biology. 8, 307(2020).

Yeniden basım ve izinler

Bu JoVE makalesinin metnini veya şekillerini yeniden kullanmak için izin iste

İzin iste

Etiketler

Uyar lm Pluripotent K k H creleriTenosit retimiMezenkimal Stromal H crelerTendon RejenerasyonuH cre Tabanl TedaviBiyoreakt r GermeKolajen BirikimiGen Ekspresyon Analizi

İlgili makaleler