Yöntem makalesi

Delinme Yara Hemostazı ve Montajlı Geniş Alan Elektron Mikroskobu Analizi için Örneklerin Hazırlanması

1K görüntüleme

⸱

DOI:

10.3791/66479

⸱

24 Mayıs 2024

 ,  , 
1Department of Physiology and Cell Biology, University of Arkansas for Medical Sciences

Bu makalede

Özet

Burada hemostatik trombüs oluşumu için bir ponksiyon yarası prosedürü sunulmaktadır. Oluşan trombüsler büyüktür ve yüzlerce mikron çapındadır. Bu nedenle, hacim görüntüleme yaklaşımları uygundur. Geniş alanlı transmisyon elektron mikroskobunun birçok kişi için mevcut olan yüksek çözünürlüklü bir yaklaşım olarak monte edilmesini ve hazırlık protokolünü detaylandırmasını öneriyoruz.

Özet

Vasküler hasarın normal fizyolojik kontrol süreci olan hemostaz, insan yaşamı için temeldir. Hepimiz zaman zaman küçük kesikler ve delinme yaraları alırız. Hemostazda, kendi kendini sınırlayan trombosit agregasyonu, kanamanın durmasının deliğin dışarıdan kapatılmasından kaynaklandığı yapılandırılmış bir trombüs oluşumuna yol açar. Bu yapının ayrıntılı karakterizasyonu, tıkayıcı pıhtılaşmaya yol açan aşırı trombosit agregasyonu vakası olan hemostaz ve tromboz arasında ayrımlara yol açabilir. Burada, ince kesitli elektron mikroskobunun hemostatik trombüsün içini görselleştirme yeteneğinden yararlanan, ponksiyon yaralı trombüs yapısına yönelik görüntülemeye dayalı bir yaklaşım sunulmaktadır. Herhangi bir görüntülemeye dayalı deney protokolündeki en temel adım, iyi bir numune hazırlamadır. Protokol, sonraki elektron mikroskobu için farelerde delinme yaraları ve trombositten zengin trombüslerin hazırlanması için ayrıntılı prosedürler sağlar. Oluşan delinme yara trombüsünün yerinde fiksasyonu ve daha sonra elektron mikroskobu için boyama ve gömme için işlenmesi için ayrıntılı bir prosedür verilmiştir. Elektron mikroskobu, ardışık kesitleme ile birleştirildiğinde, trombüs iç kısmının ayrıntılarını yüksek çözünürlükte görselleştirme yeteneği nedeniyle son görüntüleme tekniği olarak sunulmaktadır. Bir görüntüleme yöntemi olarak elektron mikroskobu, tarafsız örnekleme ve 2 veya 3 boyutta nanometreden milimetreye kadar ölçeklenen deneysel bir çıktı verir. Tüm delinme yara trombüsü kesitlerinin nanometre ölçeğinde görüntülemesini sağlamak için yüzlerce çerçevenin harmanlanabileceği geniş alanlı elektron mikroskobunu destekleyecek uygun ücretsiz elektron mikroskobu yazılımından bahsedilmektedir. Bu nedenle, görüntü dosyasının herhangi bir alt bölgesi, tam kesit bağlamına kolayca yerleştirilebilir.

Giriş

Kanamanın durmasına yol açan bir delinme yarası trombüsünün oluşumu hayattaki en önemli olaylardan biridir1. Ancak bu gerekliliğe rağmen, trombüs oluşumu sırasında yapısal olarak ne olduğu, bir damarda, bir arterde, bir aterosklerotik olayda veya tıkayıcı bir pıhtı olsun, bilgi çözünürlük ve görüntüleme derinliği ile sınırlıdır. Konvansiyonel ışık mikroskobu, Z1'de 200 ila 300 μm olmak üzere tam formda bir ponksiyon yara trombüsü ile karşılaştırıldığında derinlik açısından ve trombosit organellerinin boyutu ve aralıkları ile karşılaştırıldığında, genellikle 30 nm2'den daha az çözünürlük seviyesinde sınırlıdır. İki fotonlu ışık mikroskobu, gerekli görüntüleme derinliğini sağlayabilir ancak çözünürlüğü önemli ölçüde iyileştirmez. Işık mikroskobundaki en son gelişmeler, örneğin, süper çözünürlük teknikleri, pratikte XY'de ~ 20 nm ve Z'de bunun iki katı ve derinlik sınırlı, geleneksel ışık mikroskobundan daha fazla olmayan çözünürlük sınırlıdır. Ayrıca, süper çözünürlüklü ışık mikroskobu, araştırma ışık mikroskobunun çoğu gibi, iyi antikorların veya iyi etiketlenmiş yapıların bulunduğu küçük bir aday protein setine doğal olarak önyargılı bir teknik olan floresan mikroskobuna dayanmaktadır3. Sonuç olarak, konvansiyonel taramalı elektron mikroskobu, en fazla, trombositten zengin trombüsün yüzeyini görselleştirebilir.

Trombüs yapısını karakterize etmedeki bu teknik sınırlamaların üstesinden gelmek için üç hedefimiz vardı. İlk olarak, bir fare damarında veya arterinde tekrarlanabilir bir şekilde tanımlanmış bir delinme yarası üretilir ve bu daha sonra kimyasal fiksasyon ile yerinde kolayca stabilize edilebilir. İkinci olarak, membran korumasını vurgulayan bir hazırlık prosedürü uygulayın, bu hedef oluşturan trombüs içindeki tek tek trombositlerin konumunu tanımlama hedefiyle tutarlı bir hedeftir. Üçüncüsü, tek bir görüntüde nanometre ile milimetre ölçeği arasında ölçeklendirilebilen tarafsız bir görselleştirme tekniği kullanın.

Montajlı, geniş alanlı elektron mikroskobu, tek bir önemli nedenden dolayı ana uç görselleştirme tekniği olarak seçildi: elektron mikroskobu görüntülemede, bir hücrenin organellerini ve organellerin içindeki özelliklerini özetleyen çok çeşitli özellikler görülür. Ribozomlar gibi küçük nesneler tanınabilir. Bu özellik yelpazesi, elektron mikroskobunun kontrast elde etmesi için kullanılan elektron yoğun ağır metal lekeleri, uranil, kurşun ve osmiyumun çok çeşitli moleküllere bağlanması nedeniyle görülür. Bir elektron mikroskobu görüntüsünde, orada olanın çoğu görülürken, immünofloresan ve protein etiketleme yaklaşımlarında sadece yanan şey görülür. Bu, örneğin, belirli bir bireysel protein türünde bulunan antijen bölgeleri anlamına gelir. Etiketli bir molekül, genellikle bir protein söz konusu olduğunda, bu proteinin bulunduğu bölge(ler)dir. Diğer tüm moleküller karanlıktır ve aydınlatılmaz. Ancak, bu elektron mikroskobu seçimi pratik midir? Delinme yaralı trombüsün boyutu 300 x 500 μm'dir ve 3 nm piksel boyutunda, yani 100.000 x 167.000 piksellik bir görüntüdür. Yüksek kaliteli bir elektron mikroskobu kamerası 4000 x 4000 piksele sahiptir. Bu, tek bir görüntü elde etmek için yaklaşık 1000 karenin dikilmesi/karıştırılması gerektiği anlamına gelir. Bu, son 15 yılda üretilen çoğu elektron mikroskobunda mevcut olan bir olasılıktır. Mikroskop aşaması bilgisayarlıdır ve görüntüler bir bilgisayarla birleştirilebilir. Sunulan protokolün formülasyonunun altında yatan seçimlere yol açan mantık budur.

Sonuç olarak, farelerin damarında veya arterinde tekrarlanabilir bir yara veren ve daha sonra yerinde fiksasyon adımlarını ve daha sonra gömme adımlarını takip eden, nm ölçeğinde montajlı, geniş alanlı transmisyon elektron mikroskobu ile görselleştirilebilen bir dizi adımı sunuyoruz ve gerçek in situ ölçeği olan mm'ye yakın ölçekte görselleştirilen dikişli görüntüde sabit trombüs. Bu tür bir ölçeklenebilirlik, trombüs oluşumunu hem hematoloji/sağlıkta bir sorun olarak hem de trombositlerin ana hücre tipi olduğu gelişimsel bir biyoloji sistemi olarak anlamak için gereklidir. Bu ilerlemeler, elektron mikroskobunun önemli bir erdemini sağlar, yani kişi sadece yanan şeyi değil, orada olanı görür. Seri blok yüz taramalı elektron mikroskobu (SBF-SEM) için numunelerin hazırlanmasına ilişkin ayrıntılı bir protokol için, okuyucu Joshi ve ark.4'ün yakın tarihli bir makalesine yönlendirilir.

Protokol

Deneyler, Arkansas Tıp Bilimleri Üniversitesi'ndeki Kurumsal Hayvan Bakımı ve Kullanımı Komitesi (IACUC) tarafından gözden geçirildi ve onaylandı. Burada 8-12 haftalık, vahşi tip erkek ve dişi C57BL/6 fareler kullanıldı. Bu fareler, çok az yağ birikimi olan genç yetişkinlerdir. Aynı prosedürler, von Willebrand faktörü veya trombosit glikoprotein VI (GPVI) gibi hemostaz için önemli olan çeşitli proteinler için fare mutantları için de geçerlidir5,6. Kullanılan tüm ekipman, cerrahi aletler, reaktifler ve diğer malzemeler Şekil 1'de gösterilmiş ve Malzeme Tablosunda listelenmiştir.

1. Juguler ven/femoral arter ponksiyon yarası 1,7

  1. Farenin uyuşturulması
    1. Fareyi indüksiyon odasına yerleştirin ve izofluran buharlaştırıcıyı yüksek akış hızı ayarına getirin (500 mL/dak, %3 izofluran). İzofluran, kan damarı çapı üzerinde çok az etkisi olduğu için seçilmiştir.
      DİKKAT: İzoflurana uzun süreli maruz kalma, olumsuz sağlık etkilerine neden olabilir. Düşük akışlı bir buharlaştırıcı, anestezi gazı yakalama kutuları ve iyi oda havalandırmasının kullanılması, maruziyeti büyük ölçüde azaltabilir.
    2. Fare uyku modunda göründüğünde, farenin tepki verip vermediğini görmek için farenin ayak parmaklarından birini sıkıştırın. Öyleyse, fareyi birkaç dakika indüksiyon odasına geri yerleştirin ve ardından kıstırma testini yeniden deneyin. Fare tepki vermezse, ısıtma plakasının (daha önce alüminyum folyo ile kaplanmış) üzerine sırtüstü pozisyonda yerleştirin.
    3. Buharlaştırıcıyı düşük bir akış hızına (100 mL/dak, %1,75 izofluran) düşürün. Farenin burnunu burun konisine yerleştirin. Her uzvu uzatın ve küçük yapışkan bant parçalarıyla bantlayın.
    4. Rektal sıcaklık probunu takın ve sıcaklık kontrol cihazında sıcaklığı 37 °C'ye ayarlayın. Probun yanlışlıkla dışarı çekilmesini önlemek için sıcaklık probu kablosunu bantlayın.
  2. Fare insizyonu
    1. Makası kullanarak farenin boynunu ve göğsünü (şah damarı için) veya sağ iç bacağını (femoral arter için) tıraş edin. Kürk kırpıntılarını alkollü bir bezle silin. Gerekirse, kalan tüyleri çıkarmak için makasla alanın üzerinden tekrar geçin.
    2. Tüm kırpıntıları temizlemek için alanı taze bir alkollü ped ile tekrar silin. Alanın mümkün olduğunca temiz olması çok önemlidir. Anestezi cerrahi düzlemini bir ayak parmağı tutamıyla onaylayın.
    3. Makas ve künt forseps kullanarak, cildi sağ juguler ven üzerinden kaldırın ve kesin. Deride, şah damarını ve çevresindeki dokuların bir kısmını açığa çıkaracak kadar büyük yuvarlak bir pencere açın.
  3. Juguler venin temizlenmesi (aynı prensipler femoral arter için de geçerlidir)
    1. Künt diseksiyon tekniğini kullanarak, yağ ve lenf düğümlerinin yanı sıra bağ dokusunu nazikçe bir kenara itin.
      NOT: Geminin etrafındaki bazı genel temizlik bu adımda gerçekleşir; Bununla birlikte, şah damarı 24 saat boyunca paraformaldehit içinde sabitlendikten sonra mikroskop altında dikkatli ve kapsamlı bir temizlik yapılacaktır.
    2. 20 mL'lik bir şırıngayı 37 °C'ye ısıtılmış normal tuzlu su ile doldurun. Şırıngayı şırınga infüzyon pompasına yükleyin. 27G kelebek iğneyi ve ilgili boruyu şırıngaya takın.
    3. Şırınga pompasını 0,5 mL/dk akış hızına ayarlayın. Nazik tuzlu su akışı, delinmiş damar / arterdeki kanı yıkayacaktır. Salin akışını, doğrudan üzerine değil, delinme bölgesinin yanına birkaç mm yerleştirin.
  4. Juguler ven/femoral arterin delinmesi
    1. Zamanlayıcıyı başlatın. Juguler ven için 30G hipodermik iğne (nominal 300 μm çap) ve femoral arter için 33G hipodermik iğne (200 μm çap) alın. Daha küçük bir iğnenin kullanılması, daha yüksek basınçlı arteriyel durum için sadece biraz daha uzun kanama süresi sağlar.
    2. Eğimi yukarı bakacak şekilde çevirin. İğneyi juguler ven/femoral arter üzerine 25°'lik bir açıyla yerleştirin. Saate dikkat edin.
    3. Kabı hızlı bir şekilde delin, sadece kabın üst kısmını deldiğinizden emin olun. Geminin altını da delmemeye dikkat edin. Kanamanın tamamen durduğu zamana dikkat edin.
    4. Perfüzyon fiksasyonuna başlamadan önce trombüs oluşumu elde etmek için uygun süreyi bekleyin (Şekil 2A) (ör., trombüs gelişiminin farklı aşamalarını elde etmek için 1, 5, 10 veya 20 dakika). Hayvanı kan kaybederek ötenazi yapın veya ötenazi için yerel kurumsal yönergeleri izleyin.
  5. Transkardiyal perfüzyon fiksasyonu yapılması
    1. Ameliyat başlamadan önce peristaltik pompayı kurun. İki adet 50 mL'lik konik tüpü bir test tüpü rafına yerleştirin. Juguler ponksiyon çalışmaları için bir tüpü sodyum kakodilat tampon çözeltisinde (0.2 M sodyum kakodilat, pH 7.4'te 0.15 M sodyum klorür) hazırlanan% 4 paraformaldehit fiksatif solüsyon ile doldurun ve diğer tüpü sodyum kakodilat tampon çözeltisi ile doldurun.
      NOT: Burada ayrıntıları verilen koşullar, juguler düşük basınç durumu için yeterlidir ve daha sonra bir arterin daha yüksek basınç durumu için modifiye edilmiştir. Arterler, yani femoral arter ile daha yüksek basınçlı sistem çalışmaları için, paraformaldehit fiksatif% 0.1 glutaraldehit ile desteklenir ve harici damla fiksasyonu perfüzyon fiksasyonu ile birleştirilir.
    2. Pompa hortumunun giriş ucunu tampon çözeltisini içeren tüpe yerleştirin. Pompa hortumunun çıkış ucuna ilgili hortumla birlikte 27G'lik bir kelebek iğne takın ve iğneyi temiz bir behere yerleştirin.
    3. Peristaltik pompayı 10 mL/dk akış hızına ayarlayın. Perfüzyon pompasını açın.
    4. Tampon çözeltisi iğneden behere akmaya başladığında, pompayı kapatın. Boru ve iğne şimdi transkardiyal perfüzyon için hazırlanmıştır.
    5. Diseksiyon makası ve künt forseps kullanarak sternumun tepesinden sternumun altından birkaç milimetre sonrasına kadar deride orta hat kesimi yaparak göğüs boşluğunu ortaya çıkarın. Göğüs kafesinin tabanı boyunca, orta hattan başlayarak ve her iki tarafta medialden laterale doğru keserek enine kesiler yapın.
    6. Transkardiyal perfüzyona başlamadan hemen önce, göğüs kafesini hızlı bir şekilde kesin ve kalbi açığa çıkarmak için her iki tarafı yansıtın.
    7. Peristaltik pompayı açın. 27G kelebek iğnenin ucunu sol ventrikülün tabanına yerleştirin.
    8. İğneyi sol ventrikülde güvenli tutarken, kan ve perfüzyon sıvısının dışarı akmasına izin vermek için keskin diseksiyon makası kullanarak sağ kulak kepçesinde bir yarık açın. Zamanlayıcıdaki saati not edin.
    9. Kanı dolaşım sisteminden atmak için 3 dakika boyunca tampon solüsyonu ile perfüz. İğneyi hala sol ventrikülde güvenli tutarken, peristaltik pompayı kapatın ve peristaltik pompa hortumunun alım ucunu fiksatif solüsyonu içeren 50 mL'lik tüpe getirin.
    10. Zamanlayıcıdaki saati not edin. Peristaltik pompayı tekrar açın ve 7 dakika boyunca fiksatif solüsyon ile perfüze edin. Peristaltik pompayı kapatın.
    11. İğneyi sol ventrikülden çıkarın ve bir atık kabına yerleştirin. Pompa borusunun giriş ucunu bir damıtılmış su kabına yerleştirin.
    12. Peristaltik pompayı açın ve boruyu temizlemek için borudan yaklaşık 20 mL su akmasına ve 27G iğneyi atık kabına çıkarmasına izin verin. Pompayı kapatmadan önce tüm suyun borudan ve iğneden çıkmasına izin verdiğinizden emin olun.

2. Elektron mikroskobu için numunelerin toplanması

  1. Femoral arter ponksiyon yaraları durumunda ilk 2 dakikalık eksternal fiksatif ile desteklenen perfüzyon fiksasyonundan sonra, ponksiyon bölgesini ve trombüsü içeren juguler ven / femoral arter kısmını dikkatlice inceleyin (Şekil 2A). Keskin bir makasla, damar segmentinin distal ucu boyunca çapraz bir kesim yapın ve damar segmentinin proksimal ucu boyunca düz bir kesim yapın.
    NOT: Bu şekilde kesikler yapmak, damarın daha sonra yönlendirilmesine ve damardaki kan akışının yönünün belirlenmesine yardımcı olur.
  2. Kap segmentini taze, oda sıcaklığında,% 4 paraformaldehiti sodyum kakodilat tampon çözeltisine (0.2 M sodyum kakodilat, pH 7.4'te 0.15 M sodyum klorür) daldırın ve 1 saat oda sıcaklığında bekletin.
  3. Sabit dokuyu 24 saat boyunca 4 ° C'ye aktarın. Ertesi gün, ~5 mm kalınlığında silikon mat içeren 35 mm'lik bir kültür kabı alın (üreticinin talimatlarına göre önceden hazırlanmış). Sabit damar segmentini daldırmak için tabağa yeterince sodyum kakodilat tampon çözeltisi dökün.
  4. Işık mikroskobu altında (~ 15x büyütme) görüntülerken, dokuyu dikkatlice tampon solüsyonu içeren 35 mm'lik tabağa aktarın ve kabın her iki ucunu paslanmaz çelik minutien pimler ve ince forseps kullanarak silikon mata sabitleyin.
  5. Juguler ven/femoral arter segmentini bir çift mikro makas ve çok ince forseps kullanarak dikkatlice temizleyin.
    1. Sadece juguler ven için: Pimlerden birini çıkarın ve mikro makası kullanarak damar duvarını ponksiyon/trombüs bölgesinin karşısına uzunlamasına kesin. Kabı yavaşça açın ve 4 ila 5 pim kullanarak (her biri tel kesicilerle ikiye bölünmüş), intraluminal tarafı yukarı bakacak şekilde silikon matın üzerine sabitleyin.
  6. Tampon çözeltisini aspire edin, hızlı bir şekilde sodyum kakodilat tampon çözeltisinde% 1 paraformaldehit çözeltisi ile değiştirin ve kapağı tabağın üzerine yerleştirin. Dokunun hiçbir zaman kurumasına izin vermeyin. Her zaman sıvıya batırılmış halde tutun.
  7. Dokuyu elektron mikroskobu için işleme zamanı gelene kadar 4 ° C'de saklayın (Şekil 2B). Juguler ven / femoral arter ponksiyon yara örneklerinin bir kısmını SBF-SEM4 ile görüntüleme için ve diğerlerini WA-TEM 8,9 ile görüntüleme için işleyin. WA-TEM adımları aşağıda ayrıntılı olarak açıklanmıştır.
    DİKKAT: Formaldehit, propilen oksit, OsO4 ve 2,4,6-Tris(dimetilaminometil)fenol (DMP-30) içeren tüm işleri kimyasal çeker ocakta gerçekleştirin. Bunlar tehlikeli kimyasallardır. OsO4'e maruz kalmak körlüğe ve ölüme neden olabilir.
    NOT: Tüm durulama ve leke hacimleri, numunenin hacminin en az 2 katıdır. 1x fosfat tamponlu salin (PBS), 0.1 M sodyum kakodilat tamponu ile ikame edilebilir. Sabitleme prosedürü sırasında, numunelerin kurumasına asla izin vermemek çok önemlidir, çünkü bu, ultra yapıyı önemli ölçüde etkileyecektir. Polipropilen tüpler kullanın.

3. Montajlı geniş alanlı transmisyon elektron mikroskobu (WA-TEM) için numunenin hazırlanması

NOT: Bu adım, araştırmacının WA-TEM'e hazırlanmayı taahhüt ettiği bir karar noktasını temsil eder. Bu hazırlık prosedürü SBF-SEM'i desteklemez. SBF-SEM hacim EM için, tüm boyama plastiğe gömülmeden önce yapılmalıdır. SBF-SEM hazırlık protokolü için lütfen4'e bakınız.

  1. Doku örneğini 35 mm'lik tabakta 2x Hank'in dengeli tuz çözeltisi (HBSS) veya oda sıcaklığında (RT) PBS ile yıkayın. Numuneyi sabit tutun ve bu hazırlık adımları aracılığıyla numunenin yönünü izlemeye izin verin.
  2. Buz üzerinde 20 dakika boyunca 0,8 mL %0,05 malakit yeşili / %2,5 glutaraldehit/ 0,1 M sodyum kakodilat (pH 6,7 - 7,0) ile sabitleyin.
  3. Sabitleyiciyi çıkarın ve numuneyi 4 kez 5 dakika boyunca 0.1 M sodyum kakodilat ile yıkayın. 0.1 M sodyum kakodilatı çıkarın.
  4. 0.8 mL% 0.8 K3Fe (CN) 6 veya K4Fe (CN)6 /% 1.0 OsO4 K3Fe (CN) 6 ile 0.1 M sodyum kakodilat içinde sonek. Işığı dışarıda tutmak için tabağın üzerine bir kapak yerleştirin (OsO4 ışığa duyarlıdır). RT'de 20 dakika ila 1 saat boyayın.
  5. OsO4'ü çıkarın ve 4x'i her biri 0,1 M sodyum kakodilat tamponu ile 5 dakika durulayın. Sodyum kakodilat tamponunu çıkarın ve buz üzerinde 20 dakika boyunca %1 tanik asit ile boyayın.
  6. Tanik asidi çıkarın ve 0.1 M sodyum kakodilat tamponu 1x ve 2x ile 5 dakika boyunca moleküler dereceli damıtılmış (DI) su ile 5 dakika yıkayın.
  7. % 0,5 uranil asetat (UA) ile 1 saat RT veya gece boyunca karanlıkta 4 ° C'de boyayın.
  8. Uranil asetatı çıkarın ve her biri moleküler dereceli damıtılmış su ile 5 dakika boyunca 5 kez durulayın. Son yıkamadan önce ve numune hala DI suya batırılmış durumdayken, sabitlenmiş numunenin etrafındaki silikon matı bir tıraş bıçağıyla kesin. Bu küçük silikon mat parçasını plakadan kaldırın ve bir polipropilen tüpe yerleştirin.
    NOT: Numunenin tüp içindeyken silikon parçasına sabitlenmiş kalması önemlidir. Bu adımda polipropilen tüplere geçmek gereklidir, çünkü sonraki adımlarda kullanılan propilen oksit 35 mm'lik plakaların polistirenini bozacaktır.
  9. Son tamponu çıkardıktan sonra, 1x'i% 25 etanol ile kısaca durulayın. %25 etanolü atın ve %25 etanol ile buz üzerinde 3 dakika inkübe edin.
  10. % 25 etanolü çıkarın. 1x'i %50 etanol ile kısaca durulayın. %50 etanolü atın ve %50 etanol ile buz üzerinde 3 dakika inkübe edin.
  11. %50 etanolü çıkarın ve 1x'i %75 etanol ile kısaca durulayın. %75 etanolü atın ve %75 etanol ile buz üzerinde 3 dakika inkübe edin.
  12. %75 etanolü çıkarın ve 1x'i %95 etanol ile kısa bir süre durulayın. % 95 etanolü atın ve% 95 etanol ile buz üzerinde 3 dakika inkübe edin.
  13. %95 etanolü çıkarın ve her seferinde en az 10 dakika olmak üzere 3 kez% 100 etanol (200 geçirmez) ile yıkayın. % 100 etanolü çıkarın ve propilen oksit (PO) ekleyin. PO ile her biri en az 10 dakika 3 kez durulayın.
  14. Reçine karışımını aşağıda açıklandığı gibi hazırlayın.
    1. Tamamen sıvılaştırmak için reçine bileşenlerini 60 °C'de ısıtın. 12.5 mL Embed-218, 7.5 mL Araldite 502 ve 27.5 mL DDSA'yı 60 ° C'de 50 mL'lik bir tüpte iyice karıştırın. Bu karışım 4 °C'de 6 ay saklanabilir. Kullanmadan önce 60 °C'ye ısıtın. Kullanmadan önce gerekli miktarı alın.
  15. Örnekleri aşağıda açıklandığı gibi gömün.
    1. Reçine karışımının bir kısmını bir tüpe yerleştirin ve 20 μL / mL DMP-30 aktivatörü ekleyin. 60 °C'de döndürerek iyice karıştırın; renk koyulaşmalıdır.
    2. Bu aktif reçine alikotunu PO içinde% 50 oranında seyreltin ve reçine ile PO'nun tamamen karışmasına izin verin.
    3. Numune içeren tüpten son PO durulamasını çıkarın ve tüpü neredeyse tamamen dolduracak şekilde %50 reçine/PO karışımı ile değiştirin. Numuneyi gece boyunca oda sıcaklığında döndürün.
    4. Ertesi gün, yeni bir reçine alikotunu (numune başına 1 mL) 20 μL/mL DMP-30 ile karıştırın.
  16. Numuneyi, numune tüpünden bir diseksiyon mikroskobu altında (~6x büyütme) küçük bir hacimde %50 reçine/PO karışımı olan bir polipropilen kaba yerleştirin ve pimleri dikkatlice dokudan çıkarın. Sadece dokuyu bir DMP-30 aktivatörü ile az miktarda %100 reçine içeren başka bir polipropilen kaba aktarın.
  17. DMP-30 aktivatörü ile %100 reçine ile bir silikon gömme kalıbını doldurun ve numuneyi dikkatlice kalıba yerleştirin. Kalıbı fırına koyun ve 60 °C'de en az 48 saat pişirin. Hazırlanan numune Şekil 2B'de gösterilmiştir.
  18. 10,11'de açıklandığı gibi montajlı geniş alan transmisyon elektron mikroskobu (WA-TEM) görüntülemesi gerçekleştirin. İlk delinmeden 3 boyutlu olarak işlenmiş 1 dakikalık trombüse giden sürecin bir tasviri için Şekil 3'e bakınız. Montajlı WA-TEM elektron mikroskobu görüntülemesi için ayrıntılı bir protokolün dahil edilmesi buraya dahil edilmemiştir ve numune hazırlama ile ilgili mevcut protokollerin kapsamı dışındadır.
    NOT: WA-TEM, bilgisayarlı bir aşamaya sahip çoğu modern transmisyon elektron mikroskobunun yeterince takdir edilmeyen bir yeteneğidir. Bu işlevleri destekleyen shareware yazılımı10,11, Colorado Üniversitesi, Boulder (http://bio3d.colorado.edu/SerialEM/, http://bio3d.colorado.edu/imod/.)

Sonuçlar

Delinme yarası kanama süresi üzerindeki ilaç etkilerinin kantitatitasyonu
Delinme yarası kanama süreleri, farelerde kolayca gerçekleştirilebilecek bir ilaç riskinin fizyolojik bir modelini sağlar. Bir delinme yarası deneyinden elde edilen sonuçlar tahmine dayalıdır. Burada dabigatran doz-yanıt kanama eğrisi gösteriliyor. Bir trombin inhibitörü olan dabigatran, DOAC12 olarak adlandırılan oral doğrudan etkili bir anti-pıhtılaştırıcı olarak kullanılır. Juguler ven ponksiyon yara modeli, farelerde gecikmiş trombüs oluşumu yoluyla potansiyel uzun süreli kanama yoluyla farklı dabigatran dozlarının doğasında bulunan riski değerlendirmek için kullanıldı. Juguler ven ponksiyonundan 20 dakika önce intravenöz olarak (i.v.) 15, 50 veya 150 μg / kg dabigatran'ın değişen bir dozu uygulandı. Dabigatranın çeşitli konsantrasyonlarında kanama süresi ortalamalarını gösteriyoruz (Şekil 4). Doz düzeyinde, kanama süresinde önemli bir uzama gözlenir, p <0.051. Bu, ilacın insanlarda kullanımında önemli bir risk faktörü olduğunu gösterir. Deneysel olarak, bu dozlardaki ilacın, oluşturan trombüsün ultrastrüktürü üzerinde önemli bir etkisi vardır.

Oluşan bir ponksiyon yara trombüsünde trombosit aktivasyon durumunun değerlendirilmesi
WA-TEM yaklaşımı, hem daha düşük büyütmede bakıldığında tek bir düzlemde bir yara alanına genel bir bakış hem de daha yüksek büyütmede çok fazla ayrıntı sağlar (Şekil 5). Elde edilen ayrıntılar doğrudan genel bakış bağlamına yerleştirilebilir. Bu yaklaşımı, diskoid şekilli trombositlerin oluşturan bir ponksiyon yara trombüsüne alımını değerlendirmek için kullandık. Dolaşımdaki trombositler diskoiddir, dolayısıyla adı ve tam bir salgı granülü seti içerir. Önemli bir soru, dolaşımdaki trombositlerin, kalan trombositlerin serbest akış özelliklerini bozmadan büyüyen trombüse nasıl alınabileceğidir. Çalışmamız, dolaşımdaki trombositlerin, tam bir organel seti içeren diskoid trombositler olarak bir bağlama işlemi yoluyla teker teker trombüse alındığı bir Tether ve Activate hipotezine işaret etmektedir2. Bunun kanıtı, ponksiyondan 1 dakika sonra juguler ven trombüsünün WA-TEM'inden gelir. Hala kanayan yaranın ortasından tam trombüs dilimleri elde etmek için kesit aldıktan sonra, otomatik bir aşama ve SerialEM yazılımı10 kullanarak bir transmisyon elektron mikroskobu kullanarak trombüsün enine kesitteki tüm boyutu boyunca dikdörtgen bir XY raster ızgarasında 500-800 kare, 4.000 x 4.000 piksel, 3.185 nm piksel boyutu görüntüledik. Çerçeveler daha sonra IMOD program paketi11'in bir parçası olan eTomo yazılımı kullanılarak birleştirildi. Bu, farklı boyutlarda tek bir görüntü ile sonuçlanır, örneğin, düşük yakınlaştırmada tam ekran, 0.02 veya daha yüksek yakınlaştırmada ayrıntılı, yine IMOD program paketinin bir parçası olan 3DMOD yazılımı kullanılarak 0.25 ila 1.0 piksel arasında 120.000 piksel x 120.000 piksel (Şekil 5). Net olarak, yazılım güdümlü analiz, delme deliği içindeki periferik olarak bağlı, trombüsle ilişkili diskoid trombositlerin bir ip üzerinde boncuklar halinde aralıklı olduğunu buldu. Trombüs içinde kısa bir mesafede, diskoid şekil daha az belirgindi ve trombositler birbirleriyle daha sıkı bir şekilde ilişkiliydi. Trombüsün daha derinlerinde, trombositler yuvarlaklaştırıldı, sıkıca paketlendi ve kısmen degranüle edildi. Bir morfoloji dizisi, trombositlerin trombüse uzun bir bağ molekülü, muhtemelen von Willebrand faktörü yoluyla ilk bağlandığını ve daha sonraki trombosit aktivasyon adımlarının, oluşturan trombüsün iç kısmı ile sınırlı olduğunu önerdi. Bu nedenle, trombüse trombosit alımı, juguler ven içindeki kan dolaşımını bozmadan gerçekleşebilir.

figure-results-1
Şekil 1: Şah damarı/femoral arter ponksiyon yarası trombüs deneyi yapmak için cerrahi kurulum. Cerrahi ekipman (A) ve aletler (B), deney sırasında zamanlama kritik olduğu için hareketin verimliliği için dikkatlice düzenlenmiştir. (C) Perfüzyon fiksasyonundan sonra, ponksiyon yaralı trombüsünü içeren damarın bir kısmı, ışık mikroskobu altında görüntülenirken 35 mm'lik bir kültür kabında silikon bir mata tutturulur. Bu rakamın daha büyük bir sürümünü görüntülemek için lütfen buraya tıklayın.

figure-results-2
Şekil 2: Bir kan damarından WA-TEM veya SBF-SEM için bölümlere ayrılacak plastik gömülü numunelere geçiş. (A) Delinme yarası ve biriken ekstravasküler trombüs oluşumu (daire ve ok) olan bir femoral arter gösterilmiştir. (B) WA-TEM için kesit almak üzere plastiğe bir trombüs (daire ve ok) gömülür ve sonraki 2D görüntüleme için bir mikrotom bulunur. (C) Bir trombüs (daire ve ok) plastiğe gömülür, bir SBF-SEM görüntüleme odası içindeki bir pime takmak için 1 mm'den daha az kısa bir çubuk verecek şekilde kesilir. Bu rakamın daha büyük bir sürümünü görüntülemek için lütfen buraya tıklayın.

figure-results-3
Şekil 3: Trombüs oluşumuna giden delinme yarası: Bir delinme yarasından (A) ponksiyondan 1 dakika sonra juguler ven trombüsünün (B) görüntü dilimine hazırlık akışının şeması. Damar duvarı görüntü diliminde mavi ile etiketlenmiştir, damar duvarının yanındaki küçük siyah noktalar kırmızı kan hücreleridir ve trombüs trombosit agregatları koyu gri alanlar olarak görünür. Bu rakam1'den değiştirildi. Bu rakamın daha büyük bir sürümünü görüntülemek için lütfen buraya tıklayın.

figure-results-4
Şekil 4: Bir juguler ven ponksiyon yarası deneyinde oluşturulan grafik biçiminde bir veri örneği. Bir dabigatran doz-yanıt kanama eğrisi gösterilmiştir. Bu rakam1'den değiştirildi. Çeşitli dabigatran konsantrasyonlarındaki kanama süresi ortalamaları, artı veya eksi standart sapmayı gösteren hata çubukları ile birlikte gösterilir. Student'ın t-testi kullanılarak yapılan istatistiksel analizde p değeri <0.05 olarak bulunmuştur. Bu rakamın daha büyük bir sürümünü görüntülemek için lütfen buraya tıklayın.

figure-results-5
Şekil 5: Bir montaj oluşturmak için bir araya getirilmiş bir dilimin WA-TEM görüntüleri. (A) Tek tek yüksek çözünürlüklü çerçeveler toplanır ve daha sonra özellikleri daha geniş bir bağlama yerleştirmek amacıyla bir araya getirilir. (B) Yakınlaştırma yoluyla, önemli ayrıntılar bağlam içinde ortaya çıkarılabilir (poli: polimorfonükleer lökosit, endo: endotel ve col: kollajen lifleri). Bu rakamın daha büyük bir sürümünü görüntülemek için lütfen buraya tıklayın.

Tartışma

Şah damarlarında ve femoral arterlerde hemostatik trombüs oluşturulması, in situ perfüzyon fiksasyonu ve montajlı geniş alan transmisyon elektron mikroskobu için örnek işleme için ayrıntılı bir ponksiyon yarası prosedürü sunuyoruz. Genel prosedürler, ultrastrüktürel analiz için hemostatik trombüs oluşturmak ve deneysel farelerde, örneğin farklı tip ve dozajlarda farmasötik ilaçlarla tedavi edilen farelerde kanama sürelerini karşılaştırmak için yararlıdır. Kontrol vahşi tip farelerdeki kanama sürelerini, nakavt farelerdeki kanama süreleriyle (yani, yapışkan ligandlarla etkileşime giren trombositlerdeki çeşitli glikoproteinler için nakavtlar) ve müteakip yüksek çözünürlüklü elektron mikroskobu ile karşılaştırmak için de yararlıdır. Protokol, elektron mikroskobunu güçlü bir seçim haline getiren özelliklerin kaybıyla birlikte birincil okuma olarak immünofloresan analizine kolayca uyarlanabilir. Öte yandan, immünofloresan, bir yapı içindeki proteinleri bulmak için birincil araçtır. Herhangi bir teknik protokolde olduğu gibi, diğerlerinden daha kritik olan bazı adımlar vardır ve protokol içinde sonraki analizler için önemli seçim noktaları olarak ele alınabilecek adımlar vardır.

Kritik adımlar, sonraki analizler için seçim noktaları ve sınırlamalar aşağıda açıklanmıştır. Gerçek iğne delme adımı: Delinme yarası, damar veya artere 25°'lik bir açıyla tutulan bir şırınga iğnesi ile yapılır. Bu, damarın veya arterin her iki tarafında delinme olasılığını en aza indirir. Öte yandan 90°'lik bir açı, intravasküler endotel tabakasını kazımama veya kan damarının dışındaki ekstravasküler kollajen matrisine zarar vermeme şansını en üst düzeye çıkarır, ancak damarın veya arterin her iki tarafını delme riski daha yüksektir. Seçim, deneyim, el ve güvenden biridir.

Buradaki birincil fiksasyon, tek bir reaktif aldehit grubu içeren küçük bir molekül olan perfüze paraformaldehit ile yapılır. Tek bir kimyasal olarak reaktif grup içerdiğinden, paraformaldehitin hücresel bileşenleri çapraz bağlama eğilimi çok azdır ve antijenisiteyi yok etme eğilimi çok azdır ve bu nedenle, özetle, iki reaktif aldehit içeren ve dolayısıyla çok daha fazla moleküler çapraz bağlama üreten elektron mikroskobu için ortak bir fiksatif olan glutaraldehite nispeten zayıf bir fiksatif olarak kabul edilir13. Bu, yapıyı korumak için tasarlanmış yerinde bir adımdır. Perfüzyon adımları, trombüs tuzağına düşmemiş kırmızı kan hücrelerini preparattan temizler. Bu, çoğu kırmızı kan hücresinden arınmış bir preparat verir ve trombosit özelliklerine odaklanmayı kolaylaştırır. Ekstravasküler olarak uygulanan bir glutaraldehit/paraformaldehit karışımı ile in situ fiksasyon kullanmayı araştırdık. Bu prosedür, özellikle yüksek akış/basınç durumunda etkilidir. Bununla birlikte, dolaşımdaki kırmızı kan hücrelerini yerinde sabitler. Bu, ponksiyon yara trombüsünü oluşturan trombosit agregatlarının şekli ve bileşimi için elektron mikrograflarının müteakip segmentasyon analizini karmaşıklaştırabilir. Glutaraldehit kullanımı, fiksatif tarafından üretilen yüksek otofloresan seviyesi nedeniyle alternatif immünofloresan prosedürlerini büyük ölçüde karmaşıklaştırır.

Sabit kan damarının bir silikon ped üzerine sabitlenmesi/yayılması, trombüsün gömme amacıyla konumlandırılması için çok önemlidir. Bu adımda, numunenin kan akışına göre oryantasyonu izlenir ve sonraki adımlar için bilinir. Delinme deliği ve oluşan trombüs açık kan damarına kolayca yerleştirilebilir. Buna karşılık, eksize edilmiş, sağlam kan damarlarında trombüs bulmak zordur. Bu, özellikle sabit dolaşımdaki kırmızı kan hücreleri açısından zengin bir örnekte doğru olacaktır. Samanlıktaki iğnenin nerede olduğunu takip edebilmek çok önemlidir.

Teşhir sonrası kan damarının açılması ve oluşan trombüsün, delinme deliğinin bulunduğu yerin fotoğraflanması bir seçim noktası sunar. Genel protokolde, sunulan sonraki adımlar, numunenin WA-TEM için hazırlanmasına özgüdür. Bu adımda, diğer protokol seçimleri yapılabilir. Bir yandan, numune elektron mikroskobu yerine immünofloresan mikroskobu için işlenebilir. Öte yandan, numune, WA-TEM yerine seri blok yüz taramalı elektron mikroskobu (SBF-SEM veya başka bir hacim elektron mikroskobu yaklaşımı) için işlenebilir. SBF-SEM için işlem adımları kesinlikle farklıdır, çünkü bu prosedüre hazırlanmak için elektron mikroskobu için tüm ağır metal boyama adımlarının gömme öncesi yapılması gerekir4.

Bu protokoldeki ağır metal boyama adımları, nükleik asit açısından zengin biyolojik kompleksler olan ribozomlar ve kromozomlara karşı zarları vurgulamak için tasarlanmıştır. Diğer ağır metal boyama protokolleri, örneğin Storrie ve Attardi14 ve Liu ve ark.15 kullanılabilir.

Damar ve arterlerdeki farklılıklara dikkat etmek önemlidir. Arterin ven karşısındaki yüksek basıncıdengelenmelidir 16,17. Örneğin, juguler yaraya karşı femoral arter yarasını üretmek için daha küçük çaplı bir iğne kullanılır. Bu, daha yüksek basıncı telafi eder ve neredeyse eşit kanama durdurma süresi verir. Juguler ven ponksiyon yarası prosedüründe, hipertonik koşullar altında fiksatif olarak paraformaldehit kullanılması tercih edilir, çünkü küçük, tek aldehit içeren bir fiksatif olarak paraformaldehit hızlı etki eder, ancak antijenitiyi sağlam bırakma eğiliminde olan zayıf bir fiksatiftir. Bu, burada tarif edilen protokollerin, ışık veya elektron mikroskobu seviyesi 18,19'da antikor aracılı lokalizasyon çalışmaları ile tamamlanabileceği anlamına gelir. Femoral arter ponksiyon yarası durumunda, arteriyel trombüsü stabilize etmek ve sabitlemek için 0.1 M sodyum kakodilat tamponu, pH 7.4 içinde paraformaldehit ile birlikte daha güçlü bir çapraz bağlama fiksatifi olan glutaraldehit kullanılır. Bu modifikasyon, bir arterin bir damara karşı daha yüksek kan basıncını dengelemek için gereklidir. Arteriyel durumda, sodyum kakodilat konsantrasyonu, juguler ven trombüsü için fiksatif çözeltide kullanılan konsantrasyonun yarısıdır.

Burada sunulan elektron mikroskobu için numune işleme prosedürü WA-TEM'e göre uyarlanmıştır ve sınırlı hacimli elektron mikroskobu bilgisi verir. WA-TEM, akış1'e paralel veya dik tam trombüs kesitleri boyunca 3.185 nm piksel boyutu veya daha küçük sınırlı bir dizi yüksek çözünürlüklü görüntü üretir. Cam ve elmas bıçakların bir kombinasyonu, trombüs içine tahmini %10, %25, %50, %75 ve %90 oranında bir dizi kesiti manuel olarak üretmek için kullanılır. Tam trombüs kesitleri elde etmek, 4.000 x 4.000 piksel elektron mikroskobu kalitesinde bir kamera ile yüzlerce karenin görüntülenmesini gerektirir. Çerçeveler daha sonra birbirine dikilir. Tam kesitli bir görüntü elde etmek için yaklaşık 400 - 800 kare gerekir. WA-TEM, SBF-SEM ile tamamlanabilir. SBF-SEM, SEM görüntüleme odası1'in vakumu içine yerleştirilmiş bir elmas bıçakla küçük adımlarla aşamalı olarak kesilirken blok yüzünün bir dizi ardışık görüntüsünü üretir. Bu görüntüler, oluşan trombüsün tam 3 boyutlu bir görüntüsünü vermek için bir araya getirilebilir. Mikrotom SEM görüntüleme odasının içinde olduğundan, SBF-SEM için tüm boyama adımları gömme öncesi yapılmalıdır. Bu iki elektron mikroskobu yaklaşımının kombinasyonu, sınırlı sayıda enine kesit, WA-TEM veya milimetreye yakın boyuttaki delinme yara trombüsünün (SBF-SEM) tam derinliği boyunca ~ 3 nm veya daha fazla çözünürlükte görüntülemeye izin verir. Dikişli WA-TEM görüntülerinin 3DMOD yazılımında10 görüntülenmesi, çeşitli yakınlaştırma seviyeleri arasında hızlı manipülasyona izin verir, böylece yüksek çözünürlüklü görünümler bile tam trombüs genişliği kesiti içinde bağlam içine yerleştirilebilir.

Sonuç olarak, farelerde delinme yaralı trombüslerin üretilmesi, bunların yerinde sabitlenmesi ve trombüsün ven veya arter içinde kolayca yerleştirilebileceği ve izlenen kan akışına göre yöneliminin izlenebileceği şekilde elektron mikroskobu için işlenmesi için kanıtlanmış bir protokol sunuyoruz. Kullanıcının numunelerin nasıl analiz edileceğine dair seçimler yapabilmesi için çeşitli karar noktaları sunulur. Hücredeki diğer bileşenlere karşı zarları vurgulayan elektron mikroskobu için hazırlığa odaklanıyoruz. Sonuç olarak, protokolün diğer araştırmalara göre en genel olan kısmı, geniş alan transmisyon elektron mikroskobunun (WA-TEM), hücrelerin nano ölçekli bilgisini destekleyen bir montaj yaklaşımı olduğunu, yani büyük bir yapı içindeki trombositleri, milimetre boyutuna yakın, burada oluşturan trombüsün takdir edilmesidir. Sonuçta ortaya çıkan ayrıntıları genel bağlam içine yerleştirme yeteneği, çeşitli adımları tam bir prosedürde birleştirmenin merkezi gücüdür.

Açıklamalar

Yazarların bu çalışma ile ilgili herhangi bir çıkar çatışması yoktur.

Teşekkürler

Yazarlar, Arkansas Tıp Bilimleri Üniversitesi'ndeki meslektaşlarına (Jerry Ware ve Sung W. Rhee), Pennsylvania Üniversitesi'ne (Tim Stalker ve Lawrence Brass), Kentucky Üniversitesi'ne (Sidney W. Whiteheart ve Smita Joshi) ve Ulusal Sağlık Enstitüleri Ulusal Biyogörüntüleme ve Biyomühendislik Enstitüsü'ne (Richard D. Leapman ve Maria A. Aronova) çok şey öğrendik. Yazarlar, Amerikan Kalp Derneği ve Ulusal Sağlık Enstitüleri Ulusal Kalp, Akciğer ve Kan Enstitüsü'ne (R01 HL119393, R56 HL119393, R01 BS'ye 155519 ve NIH hibelerinden R01 HL146373 ve R35 HL150818) mali destek için takdirlerini ifade etmektedir.

Malzemeler

Bu makalede kullanılan malzemelerin listesi
AdŞirketKatalog numarasıYorumlar
% 0.9 Normal SalinSolüsyonu MedlineBHL2F7123HH
27G x 3/4 EXELint kafa derisi damar setiMedlineNDA26709
30G x 1/2 EXELint hipodermik iğnelerMedlineNDA264372
33G x 1/2 EXELint özel hipodermik iğnelerMedlineNDA26393
50 mL Konik TüplerFisher Scientific06-443-20
Alkol Hazırlama Pedleri (%70 İzopropil Alkol)MedlineMDS090670Z
Alüminyum FolyoFisher Scientific01-213-100
Hayvan Isıtma PlakasıPhysitemp AletleriHP-1M
Araldite GY 502Elektron Mikroskobu Bilimleri10900
Axiocam 305 Renkli R2 Mikroskopi KamerasıCarl Zeiss Mikroskobu426560-9031-000
BD Luer-Lok Şırıngalar, 20 mLMedlineB-D303310Z
KalsiyumKlorür Fisher ScientificC79-500
Hücre Kültürü Kapları 35mm x 10mmCorning Inc.
Pamuk Uçlu AplikatörlerMedlineMDS202055H
DMP-30 Aktivatör ElektronMikroskobu Bilimleri13600
Dodecenyl Süksinik Anhidrit / DDSAElektron Mikroskobu Bilimleri13700
Pansuman Forseps, 5", kavisli, tırtıklı, dar uçluIntegra Miltex6-100
Pansuman Forseps, 5", standart, tırtıklıIntegra Miltex6-6
EMBED 812 Reçine ElektronMikroskobu Bilimleri14900
Etil Alkol, susuz 200 kanıtElektron Mikroskobu Bilimleri15055
Fisherbrand 4 Tüp RafıFisher Scientific03-448-17
Fisherbrand Dijital ZamanlayıcıFisher Scientific14-649-17
Fisherbrand Tek Şırınga İnfüzyon PompasıFisher Scientific7801001
Gazlı Bez Süngerler 2 "x 2" - 4 KatlıMedlineNON26224H
Glutaraldehit (% 10 Çözelti)Elektron Mikroskobu Sciences16120
İzofluran Sıvı İnhalan Anestezi, 100 mLMedline66794-017-10
Kuyumcu Tarzı Mikro-İnce Forseps, Stil 5FIntegra Miltex17-3052 çifte ihtiyacınız var.
L/S Pompa Borusu, Silikon, L/S 15; 25 FtVWRMFLX96410-15
L-Aspartik AsitFisher ScientificBP374-100
Kurşun NitratFisher ScientificL-62
Malakit Yeşili 4Elektron Mikroskobu Bilimleri18100
Masterflex L/S Kolay Yükleme II Pompa KafasıVWRMFLX77200-62
Masterflex L/S Değişken Hızlı Dijital SürücüVWRMFLX07528-10
MSC Xcelite 5" Tel KesicilerFisher Scientific50-191-9855
Osmiyum Tetroksit %4 Sulu ÇözeltiElektron Mikroskobu Bilimleri19150
Paraformaldehit (%16 Çözelti)Elektron Mikroskobu Bilimleri15710
Physitemp Sıcaklık Kontrol CihazıPhysitemp AletleriTCAT-2LV
Potasyum FerrosiyanürSigma-AldrichP-8131
Propilen Oksit, ACS ReaktifElektron Mikroskobu Bilimleri20401
Pyrex Cam BeherlerFisher Scientific02-555-25B
Fareler için Rektal Sıcaklık ProbuPhysitemp AletleriRET-3
Scotch Magic Görünmez Bant, 3/4 "x 1000"3M Şirket305289
Sodyum Kakodilat Tamponu 0.2M, pH 7.4Elektron Mikroskobu Bilimleri11623
SomnoFlo Düşük Akışlı Elektronik BuharlaştırıcıKent ScientificSF-01
Fareler için SomnoFlo Başlangıç KitiKent ScientificSF-MSEKIT
Paslanmaz Çelik MinutyinPimleri Güzel Bilimler Araçlar26002-10
Stereomikroskop steREO Discovery.V12Carl Zeiss Mikroskobu495015-9880-010
Sylgard 184 Silikon ElastomerDünyası Hassas AletlerSYLG184silikon mat
Tanik AsitElektron Mikroskobu Bilimleri21700
Tiyokarbohidrazid (TCH)Sigma-Aldrich88535
Uranil Asetat ElektronMikroskobu Bilimleri22400
Vannas Yaylı Mikro MakasGüzel Bilim Araçları15000-08
Von Graefe Göz Sargısı Forseps, 2.75", Kavisli, TırtıklıIntegra Miltex18-8182 çifte ihtiyaç var.
Wagner MakasGüzel Bilim Araçları14068-12
Wahl MiniFigura Hayvan DüzelticiBraintree ScientificCLP-9868
Zen Lite YazılımıCarl Zeiss Mikroskopi410135-1001-000
430165

Kaynaklar

  1. Rhee, S. W., et al. Venous puncture and wound hemostasis results in a vaulted thrombus structured by locally nucleated platelet aggregates. Comm Biol. 4 (1), 1090(2021).
  2. Pokrovskaya, I. D., et al. Tethered platelet capture provides a mechanism for restricting circulating platelet activation in the wound site. Res Pract Thromb Haemost. 7 (2), 100058(2023).
  3. Yadav, S., Storrie, B. The cellular basis of platelet secretion: emerging structure/function relationships. Platelets. 28 (2), 108-118 (2017).
  4. Joshi, S., et al. Ferric chloride-induced arterial thrombosis and sample collection for 3D electron microscopy analysis. J Vis Exp. (193), e64985(2023).
  5. Guerrero, J. A., et al. Visualizing the von Willebrand factor/glycoprotein Ib-IX axis with a platelet-type von Willebrand disease mutation. Blood. 114 (27), 5541-5546 (2009).
  6. Kato, K., et al. The contribution of glycoprotein VI to stable platelet adhesion and thrombus formation illustrated by targeted gene deletion. Blood. 102 (5), 1701-1707 (2003).
  7. Tomaiuolo, M., et al. Interrelationships between structure and function during the hemostatic response to injury. Proc NatlAcad Sci U S A. 116 (6), 2243-2252 (2019).
  8. Cocchiaro, J. L., et al. Cytoplasmic lipid droplets are translocated into the lumen of the Chlamydia trachomatis parasitophorous vacuole. Proc Natl Acad Sci. 105 (27), 9379-9384 (2008).
  9. Pokrovskaya, I. D., et al. Chlamydia trachomatis hijacks intra - Golgi COG complex - dependent vesicle trafficking pathway. Cell Microbiol. 14 (5), 656-668 (2012).
  10. Mastronarde, D. N. Automated electron microscope tomography using robust prediction of specimen movements. J Str Biol. 152 (1), 36-51 (2005).
  11. Kremer, J. R., Mastronarde, D. N., McIntosh, J. R. Computer visualization of three-dimensional image data using IMOD. J Str Biol. 116 (1), 71-76 (1996).
  12. Chan, N. C., Eikelboom, J. W., Weitz, J. J. Evolving treatments for arterial and venous thrombosis: role of the direct oral anticoagulants. Circ Res. 118 (9), 1409-1424 (2016).
  13. Kiernan, J. A. Formaldehyde, formalin, paraformaldehyde, and glutaraldehyde: what they are and what they do. Microscopy Today. 8 (1), 8-13 (2000).
  14. Storrie, B., Attardi, G. Expression of the mitochondrial genome in HeLa cells: XV. Effect of inhibition of mitochondrial protein synthesis on mitochondrial formation. J CellBiol. 56, 819-831 (1973).
  15. Liu, S., Pokrovskaya, I. D., Storrie, B. High - pressure freezing followed by freeze substitution: an optimal electron microscope technique to study Golgi apparatus organization and membrane trafficking. Meth Mol Biol. 2557, 211-223 (2023).
  16. Klarhofer, M., et al. High-resolution blood flow velocity measurements in the human finger. Mag Res Med. 45 (4), 716-719 (2001).
  17. Chaudry, R., Miao, J. H., Rehman, A. Physiology, cardiovascular. StatPearls. , Treasure Island, FL, USA. (2022).
  18. Pokrovskaya, I. D., et al. SNARE - dependent membrane fusion initiates a-granule matrix decondensation in mouse platelets. Blood Adv. 2 (21), 2947-2958 (2018).
  19. Pokrovskaya, I. D., et al. 3D ultrastructural analysis of a-granule, dense granule, mitochondria, and canalicular system arrangement in resting human platelets. Res Pract Thrombosis Haemostasis. 4 (1), 72-85 (2019).

Yeniden basım ve izinler

Etiketler

Trombosit AgregasyonuTrombus Yap sNumune Haz rlamaFare ModelleriPerf zyon FiksasyonuGeni Alan G r nt lemeArd k Kesit AlmaVask ler Yaralanma
Delinme Yara Hemostazı ve Montajlı Geniş Alan Elektron Mikroskobu Analizi için Örneklerin Hazırlanması
Bize ulaşın
Kütüphaneye tavsiye et

Gizlilik

Kullanım Şartları

İlkeler

Telif hakkı © 2026 MyJoVE Corporation. Tüm hakları saklıdır.