Bu içeriği görüntülemek için JoVE aboneliğiniz gereklidir. Giriş yapın veya ücretsiz denemenizi bugün başlatın.

Yöntem makalesi

Otomatik Üç Boyutlu Nöron Rekonstrüksiyon Yazılımı Kullanılarak Dendritik Omurga Ölçümü

3.3K görüntülenme

⸱

DOI:

10.3791/66493

⸱

27 Eylül 2024

 ,  ,  , 
1Section on Synapse Development Plasticity, National Institute of Mental Health, National Institutes of Health, 2Colgate University

Bu makalede

Özet

Dendritik dikenler, çoğu uyarıcı sinapsın post-sinaptik bölmeleridir. Dendritik omurga morfolojisindeki değişiklikler, nörogelişim, yaşlanma, öğrenme ve birçok nörolojik ve psikiyatrik bozukluk sırasında meydana gelir ve güvenilir dendritik omurga analizinin önemini vurgular. Bu protokol, otomatik üç boyutlu nöron rekonstrüksiyon yazılımı kullanılarak dendritik omurga morfolojisinin doğru ve tekrarlanabilir bir şekilde ölçülmesini açıklar.

Özet

Sinaptik bağlantılar, nöronlar arasında bilgi alışverişine ve işlenmesine izin verir. Uyarıcı sinapsların post-sinaptik bölgesi genellikle dendritik dikenler üzerinde oluşur. Dendritik dikenler, sinaptik plastisite, nörogelişim ve nörolojik ve psikiyatrik bozukluklar etrafında odaklanan araştırmalarda büyük ilgi gören yapılardır. Dendritik dikenler, ömürleri boyunca toplam omurga sayısı, dendritik omurga boyutu ve farklı süreçlere yanıt olarak morfolojik olarak tanımlanmış alt tip değişikliği gibi özelliklerle yapısal değişikliklere uğrarlar. Dendritik dikenlerin bu yapısal değişikliklerini düzenleyen moleküler mekanizmaların tanımlanması morfolojik ölçüme dayanır. Bu, deneysel kanıt sağlamak için doğru ve tekrarlanabilir dendritik omurga analizini zorunlu kılar. Bu çalışma, Neurolucida 360 (otomatik üç boyutlu nöron rekonstrüksiyon yazılımı) kullanılarak dendritik omurga miktar tayini ve sınıflandırması için ayrıntılı bir protokolü özetlemektedir. Bu protokol, toplam omurga yoğunluğu, omurga başı hacmi ve omurga alt tiplerine sınıflandırma gibi temel dendritik omurga özelliklerinin belirlenmesine izin verir ve böylece dendritik omurga yapısal fenotiplerinin etkili bir şekilde analiz edilmesini sağlar.

Giriş

Dendritik dikenler, genellikle glutamaterjik sinapsların 1,2 post-sinaptik bölgesini içeren dendritlerin çıkıntılarıdır. Dendritik dikenler, sinaptik plastisite alanında özellikle ilgi çekicidir. Sinaptik kuvvet değiştiğinde omurgalar sıklıkla değişir, uzun süreli sinaptik güçlenmede daha büyük ve daha güçlü hale gelir veya uzun süreli sinaptik depresyonda daha küçük ve daha zayıf hale gelir 3,4,5,6,7. Sinaptik plastisitenin ötesinde, dendritik dikenlerin profili yaşam boyu değişir. Erken gelişimde, bir dendritik omurga oluşumu ve büyümesi dönemi vardır, ardından kararlı bir duruma ulaşana kadar dendritik omurga budamasıyapılır 8,9,10. Yaşlanan beyinde omurga kaybı, beyin küçülmesine ve bilişsel gerilemeye eşlik eder11. Ek olarak, birçok nörolojik, nörodejeneratif ve psikiyatrik bozukluk anormal dendritik dikenler ile karakterizedir. Şizofreniden etkilenen bireylerde çoklu beyin bölgeleri, muhtemelen değişmiş sinaptik budamadan kaynaklanan daha az dendritik dikene sahiptir12. Otizm spektrum bozuklukları ayrıca dendritik omurga patolojileri ile karakterizedir13. Dendritik omurga kaybı, hem Alzheimer hem de Parkinson hastalığının ayırt edici özelliğidir14,15. Dendritik omurga özelliklerine ilişkin araştırmaları kapsayan çok çeşitli araştırma konuları göz önüne alındığında, doğru omurga ölçümü için teknikler büyük önem taşımaktadır.

Boyama, yani Golgi yöntemi veya boya dolgusu yoluyla nöronların etiketlenmesi veya floresan proteinlerin eksprese edilmesi, dendritik omurga görselleştirmesi için yaygın yöntemlerdir 16,17,18. Görselleştirildikten sonra, dikenler çeşitli ücretsiz ve ticari olarak temin edilebilen yazılım istemcileri ile analiz edilebilir. Analizin istenen çıktısı, hangi yazılımın en çok kullanılacağını belirlemede önemli bir faktördür. Fiji, dendritik omurga yoğunluğuna odaklanan sorular için uygun bir yazılım seçeneğidir. Bununla birlikte, bu teknik büyük ölçüde, önyargı potansiyelini ortaya çıkarabilecek zaman alıcı manuel saymaya dayanır. SpineJ gibi yeni eklentiler, otomatik nicelemeye izin vererek ayrıca daha doğru omurga boynu analizine olanak tanır19. Bu yaklaşımların bir dezavantajı, SpineJ iki boyutlu görüntü yığınlarıyla sınırlı olduğundan, omurga hacmini belirlemek için üç boyutlu bir analizin kaybıdır. Ek olarak, omurga alt tipi bilgisinin elde edilmesi bu süreçlerle zorlaşır. Dört baskın omurga alt tipi, ince, mantar, güdük ve filopodia, hepsi bireysel işlevleri çağrıştırır ve büyük ölçüde morfoloji20 ile sınıflandırılır. İnce dikenler, uzun bir boyun ve tanımlanmış bir kafa ile karakterizedir21. Mantar dikenleri çok daha büyük ve belirgin bir omurga kafasınasahiptir 22. Güdük omurgalar kısadır ve baş ile boyun arasında çok az fark vardır23. Filopodia, uzun, ince boyunlu ve açıkça gözlemlenebilir bir başı olmayan olgunlaşmamış dikenlerdir24. Sınıflandırma değerli bilgiler sağlarken, dikenler bir boyut sürekliliği üzerinde bulunur. Kategorilere ayırma, morfolojik ölçüm aralıklarınadayanmaktadır 25,26. Sınıflandırma için omurgaların manuel olarak ölçülmesi, bu yaklaşımdaki araştırmacılar için lojistik yükü artırır.

Özellikle üç boyutlu dendritik omurga analizine odaklanan diğer yazılım seçenekleri, omurga hacmi ve alt tip özellikleri 27,28,29,30,31 ile ilgili araştırmalar için daha uygundur. Zayıf z-düzlemi çözünürlüğü ve smear gibi üç boyutlu analizin sunduğu zorluğa rağmen, bu yazılım seçenekleri, dendritlerin ve dendritik dikenlerin kullanıcı güdümlü yarı otomatik bir şekilde güvenilir üç boyutlu yeniden yapılandırılmasına izin verir. Tanımlanan omurgaların alt tiplerine göre otomatik olarak sınıflandırılması da bu omurga analizi yazılım paketlerinin bazılarında bulunan bir özelliktir. Bu, potansiyel iş yükü ve deneysel önyargı endişelerini iyileştirebilir. Neurolucida 360, güvenilir ve tekrarlanabilir üç boyutlu dendritik omurga tanımlaması ve sınıflandırmasına olanak tanıyan, ticari olarak temin edilebilen bir yazılımdır32. Burada, bu yazılımı kullanarak sabit dokuyu etkili bir şekilde hazırlamak, görüntüler elde etmek ve nihayetinde dendritik dikenleri ölçmek ve sınıflandırmak için kapsamlı bir protokol sunuyoruz.

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Protokol

Tüm hayvan prosedürleri, ABD Ulusal Sağlık Enstitüleri Intramural Araştırmalarında Hayvanları Kullanma Yönergelerini takip etti ve Ulusal Ruh Sağlığı Enstitüsü Hayvan Bakımı ve Kullanımı Komitesi tarafından onaylandı.

1. Sabit hipokampal dilimlerin hazırlanması

  1. Fareleri intraperitoneal Ketamin / Xylazine enjeksiyonu ile uyuşturun (Ketamin: 100 mg / kg; Ksilazin: 8 mg / kg). Anesteziyi kuyruk tutamıyla doğrulayın ve fareyi perfüzyon plakasına yapıştırın.
  2. Büyük cerrahi makas kullanarak, göğüsteki deriyi ve kürkü çıkarın, bu da alttaki göğüs kafesinin daha kolay görüntülenmesini sağlar.
  3. Karaciğer ve diyaframdan kaçınarak göğüs kafesinin genişliğinin altında yatay bir kesim yapın. İnce forseps kullanarak, ksifoid sürecini yukarı çekin ve göğüs kafesinin her iki yan tarafını kesin. Göğüs kafesini boyun bölgesine doğru çevirin ve hemostat forseps kullanarak yerine kenetleyin.
  4. Kalbin sol ventrikülüne 21 G'lik bir kelebek iğne yerleştirin ve yaklaşık 5 mL / dk'da 1x PBS oda sıcaklığında perfüze etmeye başlayın. Küçük bir cerrahi makasla sağ kulakçıkta küçük bir kesi yapın. Atriyumdan çıkan çözelti berraklaşana kadar PBS ile perfüzasyon yapın.
  5. Tüpe kabarcık girmediğinden emin olmak için perfüzyon pompasını kapatın. Boruyu PBS'den PBS'deki buz gibi soğuk %4 paraformaldehite (PFA) yerleştirin. Hayvan tamamen sertleşene kadar, yaklaşık 25 mL PFA ile 5 mL / dk oranında perfüz.
    NOT: Optimum sabitleme için PFA'nın taze olduğundan emin olun (stok 1°C'de saklanırsa 4 haftadan eski olmamalıdır).
  6. Cildi kafatasının yüzeyinden küçük bir cerrahi makasla çıkarın. Kafatasının merkezi çatlağı boyunca küçük cerrahi makasla orta sagital bir kesim yapın. Koku soğancığına ve beyincik üzerinde rostral yanal kesimler yapın.
  7. Beyni ortaya çıkarmak için kafatasını ince forseps ile açın. Bir spatula kullanarak beyni koku alma ampullerinden nazikçe çıkarın ve gece boyunca PBS'de %4 PFA'ya yerleştirin.
    NOT: Daha kapsamlı bir kemirgen perfüzyonu protokolü için lütfen Gage ve ark.33'e bakın.
  8. 1 gün boyunca PBS'deki %4 PFA'yı %15 sükroz ile değiştirerek sabit beyni kriyoprotekte edin. Bunu takiben,% 15 sakarozu% 30 sükroz ile PBS çözeltisinde 1 gün boyunca beyin çözelti içinde batana kadar değiştirin.
  9. Beyni sükroz çözeltisinden çıkarın ve PBS içeren bir Petri kabına yerleştirin. Bir neşter bıçağı kullanarak beyincik ve koku soğancığını kesin.
  10. Numune tutucu yüzeyine 1-2 cm çapında küçük bir miktar optimum kesme sıcaklığı bileşiği (OCT) yerleştirin. Beyni, OCT'deki kaudal kesim yüzeyi ile numune tutucuya koronal olarak monte edin. Numune tutucuyu gözle görülür şekilde donana kadar, yaklaşık 5-7 dakika toz haline getirilmiş kuru buza yerleştirerek beyni hızlı bir şekilde dondurun.
  11. Düzgün kesitler oluşturmak için kriyostatın bıçak açısının 0° ile 5° arasında ayarlandığından emin olun. Optimum dilim düzleştirme için rulo plaka açısını ayarlayın. Özel talimatlar için lütfen ekipman kılavuzuna bakın.
  12. Örnek tutucuyu, beynin ventral yüzeyi bıçağa en yakın olacak şekilde kriyostata yerleştirin. Beyni 30 μm dorsal hipokampal bölümlere ayırın ve tüm dilimleri rostral hipokampusa atın.
    NOT: Protokolün bu kısmı, istenen herhangi bir beyin bölgesine uyarlanabilir. Adım 1.9-1.12, ilgilenilen bölgeye bağlı olarak değişecektir.
  13. Dorsal hipokampal dilimleri PBS'ye aktarın. Bir boya fırçası kullanarak, hipokampal bölümleri bir mikroskop lamına nazikçe monte edin. Fazla solüsyonu pamuklu çubuklarla veya hassas görev mendilleriyle çıkarın.
  14. Tüm beyin dilimlerini kaplayan mikroskop lamına 100 μL sert ayarlı montaj ortamı uygulayın. Kabarcıkları önlemek için, lameli forseps kullanarak montaj ortamına yavaşça indirin. Kabarcıklar oluşursa, kaçmalarına izin vermek için lamellere forseps ile hafifçe vurun. Görüntülemeden önce slaytların gece boyunca ayarlanmasına izin verin.

2. Yüksek çözünürlüklü konfokal görüntüleme

  1. Floresan hücreleri tanımlamak için düşük büyütmeli göz mercekleri kullanın. 63x (NA = 1.4) veya daha yüksek bir hedefe geçin ve hedefe uygun daldırma ortamı uygulayın.
    NOT: En iyi sonuçlar için, 63x veya daha yüksek objektife sahip bir lazer taramalı konfokal mikroskop kullanın.
  2. Görüntü elde etmek için sınırlı örtüşme ile iyi etiketlenmiş dendritik segmentleri tanımlayın. Floresan dendritlerin doygun olmadığından emin olmak için lazer gücünü ve kazancını ayarlayın. Ek olarak, tarama hızını azaltmak daha iyi görüntü çözünürlüğü sağlayabilir.
  3. Gelecekteki analizler için tüm dendritik segmentleri kapsayan z-yığınları edinin. 10 μm'den daha büyük Z-yığınları, z-düzleminde dendritik örtüşme potansiyeli nedeniyle istenmeyen bir durumdur.
    NOT: Mevcut en küçük z adımlı boyutu (0.2-0.7 μm) ve 1 havadar birim iğne deliği boyutunu kullanın. Daha küçük adım boyutu, z-yığınında daha fazla görüntü ile sonuçlanır ve birçok mikroskobun sınırlı Z çözünürlüğünü telafi eder.
  4. İsteğe bağlı: Varsa, görüntüleri dekonvole etmek için mikroskobun ilgili evrişim çözme yazılımı işlevselliğini kullanın. Bu, daha yüksek çözünürlüklü görüntülere izin verecektir.

3. Dendritik omurga ölçümü

  1. Neurolucida 360'ı açın (v2022.1.1 veya üstü). Görüntü dosyasını omurga analiz yazılımında açın (Dosya > Görüntüyü > Aç). Görüntü dosyasının ana pencerede ve 3B Ortamda görünür olduğundan emin olun. 3B ortam penceresi görünmezse, İzleme sekmesindeki ana pencerenin üst araç çubuğundaki 3B Ortam'a sol tıklayın (Ek Şekil 1)
    NOT: Protokolün bu bölümü, yalnızca fare dokusundan elde edilen dendritler için değil, herhangi bir dendritik görüntü için uyarlanabilir.
  2. 3B Ortam penceresinin Görüntü Görüntüsünü Değiştir sekmesindeyken, görüntünün Görüntüyü Farklı Görüntüle kutusunda 3B Ses Düzeyi olarak görüntülendiğinden emin olun. Görüntü sekmesinin Görüntü Yığını Ayarları kutusunda, Yüzeyi Farklı Göster açılır menüsünde Maksimum Projeksiyon'u seçin. (Ek Şekil 2)
  3. İzleme için uygun bir dendritik segment belirleyin.
    1. 3B Ortam penceresinin üst araç çubuğundaki Pivot Noktasını Taşı aracını sol tıklatın. Yeni bir pivot noktası ayarlamak için istediğiniz dendrite sol tıklayın. Bu, etkili yakınlaştırmayı etkinleştirmek için yönü değiştirecektir.
    2. Reset Orientation (Yönlendirmeyi Sıfırla) simgesine sol tıklayarak orijinal yönlendirmeyi yeniden oluşturun. Pivot noktasını ayarladıktan sonra, dendriti izlemeye başlamak için Pivot Noktasını Taşı aracına sol tıklayın. (Ek Şekil 2).
      NOT: İdeal dendrit, koordinat düzlemlerinin herhangi birinde diğer dendritlerle sınırlı örtüşme olan ve başka bir dendrit ile kesişmeyen veya altındaki bir başkasıyla yüzeysel olmayan dendrittir. Komşu dikenlerin izlenen dendrite uygun olmayan şekilde atanmasını önlemek için XY düzlemindeki diğerlerine düşük yakınlıktaki dendritler de tercih edilir. Somadan farklı kalınlık, düzen ve mesafelerdeki dendritlerin farklı dendritik omurga yoğunluklarına sahip olduğuna da dikkat edilmelidir34,35. Bunun deneysel tasarımda hesaba katılması gerekir. İkincil dereceden dendritler <1.5 μm kalınlıkta izleme için ideal adaylardır (Şekil 1).
  4. 3D Ortam penceresinin Ağaç sekmesine sol tıklayın. İzleme modu için User-Guides'ı ve User-Guided Tracing Options'daki yöntem olarak Directional Kernels'i sol tıklayın.
  5. İzlemeye başlamak için dairesel bir çekirdek göründüğünde dendrite sol tıklayın. İmleci dendritik segment boyunca hareket ettirin. Bu, çekirdekleri otomatik olarak dolduracaktır. Çekirdekler otomatik olarak doldurulmuyorsa, adım 3.51'e bakın.
    1. Çekirdekler dolana kadar imleci dendrit üzerinde yavaşça ileri geri hareket ettirin. Mevcut algılanan çekirdekleri korumak için sol tıklayın. Çekirdeklerin doldurulması durursa, bir çekirdek dendritin daha aşağısına dolduğunda manuel olarak yerleştirmek için sol tıklayın. İzlemeyi sonlandırmak için sağ tıklayın. İzlenen dendritin en az 7 μm uzunluğunda olduğundan emin olun (Ek Şekil 3).
  6. 3B Ortamın üç yönünü de (eğim, sapma ve yuvarlanma) kullanarak, 3B Ortam penceresini sol tıklatıp sürükleyerek dendritik izlemenin doğruluğunu doğrulayın. Dendritik izlemenin dendrit üzerindeki uygun konumun dışında olduğu noktaları belirleyin. Yukarıdan aşağıya doğru bir şekilde izlendiği durumlar olabilir, ancak z boyutunda noktalar dendrit üzerinde değildir (Şekil 2).
  7. Düzgün izlenmeyen dendritik segmentleri düzeltmek için, Ağaç menüsündeki Düzenle sekmesine sol tıklayın. İlgilendiğiniz dendriti sol tıklayın, ardından Noktalar'ı sol tıklayın.
  8. Yanlış yerleştirilmiş noktaları tıklama ve sürükleme yoluyla dendrit segmentine geri taşıyın. Noktayı sol tıklatıp Sil düğmesini tıklatarak yabancı noktaları silin. Dendrit yeterince doldurulmamışsa noktaların boyutunu değiştirin. Noktanın boyutunu değiştirmek için, bir noktaya sol tıklayın ve boyutu değiştirmek için kalınlık kaydırıcısını ayarlayın (Ek Şekil 4).
    NOT: Yetersiz doldurulmuş dendritler, dendritik segmentin bileşenleri olan yanlış dikenlerin tanımlanmasına neden olabilir. Tersine, dendritlerin aşırı doldurulması gerçek dikenleri gizleyebilir.
  9. Adım 3.10'da omurga tanımlamasına geçmeden önce görüntüdeki birden fazla dendrit için 3.3-3.8 adımlarını tekrarlayın.
  10. 3D Ortam penceresindeki Omurga sekmesine sol tıklayın. Dış aralık, minimum yükseklik ve minimum voksel sayısı için algılama ayarlarını yapın. Hazırlığa bağlı olarak, değişiklikler için açık ve spesifik bir gerekçe olması durumunda önceden ayarlanmış değerlerin değiştirilmesi gerekebilir. Önceden ayarlanmış koşullar Dış Aralık: 2,5 μm, Minimum Yükseklik: 0,3 μm, Minimum Voksel Sayısı: 10 Voksel'dir.
    NOT: Hücre kültürleri ve akut dokular gibi farklı preparatlar ve farklı gelişimsel zaman noktaları, mevcut literatürden türetilmesi gereken farklı kriterler gerektirecektir. Algılama ayarlarının değiştirilmesinin sonuçları önemli ölçüde değiştirebileceğini unutmamak da çok önemlidir. Örneğin, daha yüksek bir minimum yükseklik kısa dikenleri hariç tutabilir. Algılama ayarları, deneyin tüm seyri boyunca tutarlı kalmalıdır.
  11. Dedektör Hassasiyetini %70'e ayarlayın ve Tümünü Algıla'ya sol tıklayın. Bu, tüm dendritler üzerindeki bu dedektör hassasiyeti tarafından tanımlanan dikenleri dolduracaktır. Dikenlerin dendrite özgü bir şekilde seçilmesi isteniyorsa, En Yakın Daldaki Tümünü Algılamak için Görüntüye Tıklayın kutusuna sol tıklayın ve farklı dedektör hassasiyetlerine sahip her bir dendrite manuel olarak sol tıklayın.
    NOT: Bu aşamada, dendritik dikenlerin tümünün çoğalmaması normaldir. Benzer şekilde, diken olmayanlar uygunsuz şekilde doldurulabilir. Başlangıçtaki %70 hassasiyet de esnektir; Bu, hazırlığa bağlı olarak değişebilir.
  12. Dendriti her üç yönde de tıklayıp sürükleyerek bu dedektör hassasiyeti tarafından seçilen dikenleri inceleyin. Tespit edilen dikenlerin çoğu tam olarak doldurulmamışsa, adım 3.12.1'e geçin. Tespit edilen dikenler aşırı doldurulmuşsa, adım 3.12.2'ye geçin. Tespit edilen dikenler yeterince doldurulmuş gibi görünüyorsa, adım 3.13'e geçin.
    1. Dedektör Hassasiyetini %5-%10 oranında artırın ve Tümünü Algıla'ya tekrar sol tıklayın. Bu, daha önce tespit edilen tüm dikenleri daha yüksek hassasiyette yenileriyle değiştirecektir. Tespit edilen dikenler yeterince dolana kadar gerektiği kadar tekrarlayın.
    2. Dedektör Hassasiyetini %5-%10 oranında azaltın ve Tümünü Algıla'ya tekrar sol tıklayın. Bu, daha önce tespit edilen tüm dikenleri daha düşük hassasiyette yenileriyle değiştirecektir. Tespit edilen dikenler yeterince dolana kadar gerektiği kadar tekrarlayın.
  13. 3B Ortamın Omurga sekmesinde Mevcut Omurgaları Koru'ya sol tıklayın. En Yakın Şubede Tümünü Algılamak için Görüntüye Tıklayın seçiliyse, seçimini kaldırın.
    NOT: Mevcut Dikenleri Koru seçeneğini işaretleyerek, yeni tanımlanan dendritik dikenlerin manuel olarak daha önce tanımlanmış dikenlerin üzerine yazmamasını sağlar. Önceki çalışmanın üzerine yazmamak için devam etmeden önce bu kutunun seçili olduğundan emin olun.
  14. Pivot Noktasını Taşı'ya sol tıklayın ve pivot noktasını ayarlamak için daha fazla omurga algılaması gerektiren dendrite sol tıklayın.
    1. Pivot Noktasını Taşı seçimini kaldırın. Doldurulmamış bir dendritik omurgayı tanımlayın. Dedektör Hassasiyetini önceki algılamanın %10-20 ötesine çıkarın ve omurgaya sol tıklayın. Tespit edilen omurga yetersiz veya aşırı doluysa, adım 3.14.3 veya 3.14.4'e geçin. Omurga tam olarak yerleşmezse, Seçilen konumda bir omurga tespit edilemiyor mesajı görünecektir. Bu durumda, adım 3.14.2'ye geçin.
    2. Omurga tespit edilene ve yeterince doldurulana kadar Dedektör Hassasiyetini kademeli olarak, muhtemelen %100'ün üzerine çıkarın. Omurga tespit edilmiş ancak yetersiz doldurulmuşsa, adım 3.14.3'e geçin. Omurga aşırı doldurulmuşsa, adım 3.14.4'e geçin (Şekil 3).
    3. Düzenle sekmesine sol tıklayın ve az doldurulmuş sırta sol tıklayın. Kaldır'a sol tıklayın. Düzenle sekmesinin seçimini kaldırın. Hassasiyeti %5-10 oranında artırın ve omurgaya sol tıklayın. Omurga hala yetersiz doldurulmuşsa bu adımı tekrarlayın.
    4. Düzenle sekmesine sol tıklayın ve aşırı doldurulmuş sırta sol tıklayın. Kaldır'a sol tıklayın. Düzenle sekmesinin seçimini kaldırın. Hassasiyeti %5-10 oranında azaltın ve omurgaya tıklayın. Omurga hala aşırı doluysa bu adımı tekrarlayın.
  15. Görsel tanımlama ile tanımlanan tüm dikenler tespit edilene kadar 3.14-3.14.4 adımlarını tekrarlayın. Komşu dendritlere ait herhangi bir diken, gerçek sinyale karşılık gelen yanlış dikenler veya omurga olarak yanlış etiketlenmiş potansiyel dendrit segmentleri için dendriti iki kez kontrol edin. Remove (Kaldır ) işleviyle bu sahte dikenleri silin.
  16. Dendrit üzerinde tanımlanan dikenleri inceleyin. Bazı durumlarda, birden fazla diken tek bir konglomera omurga olarak görünebilir. Bir omurga iki kişiyi kapsıyor gibi görünüyorsa, Düzenle sekmesine sol tıklayın. Sırtı sol tıklatın ve Seçimi Gizle'yi sol tıklatın. Bir konglomera omurgasını onayladıktan sonra, Düzenle sekmesinde Seçimi Göster'e sol tıklayın ve Böl'ü seçin. Bir konglomerada ikiden fazla diken varsa, bu adımın tekrarlanması gerekebilir (Şekil 4).
    NOT: Konglomera omurgası adım 3.16'dan sonra ayrılmazsa, omurgayı çıkarın. Ardından, daha düşük bir hassasiyette konglomeranın daha yoğun omurgasını seçin. Daha yoğun omurga dolduğunda, diğer doldurulmamış omurgayı seçmek için hassasiyeti artırın. Alternatif olarak, konglomera omurgasını silmek ve ardından hassasiyeti artırmak, uygun bölünmeye izin verebilir.
  17. Görsel olarak tanımlanabilir tüm dikenler algılanıp uygun şekilde doldurulduktan sonra, Omurga sekmesinde, dikenleri dört alt türe ayırmak için Tümünü Sınıflandır'a sol tıklayın: ince, mantar, güdük ve filopodia (Şekil 5).
    NOT: Omurga sınıflandırma parametreleri, Omurga sekmesindeki Sınıflandırma kutusunun Ayarlar penceresinden değiştirilebilir. Dedektör ayarlarında olduğu gibi, mevcut parametreleri değiştirmek için net bir gerekçe şiddetle tavsiye edilir. Önceden ayarlanmış değerler baş-boyun oranı: 1.1, uzunluk-kafa oranı: 2.5, mantar kafası boyutu: 0.35 μm, Filopodium Uzunluğu - 3 μm'dir.
  18. 3D Environment (3B Ortam) penceresinin üst araç çubuğunda, Save and View in Neurolucida Explorer'ı seçin. Neurolucida Explorer, verilerin izlemelerden toplandığı yerdir. Çalışma, tüm izleri ve dikenleri içeren bir .dat dosyası olarak kaydedilecektir.
  19. Görünüm sekmesindeki Explorer penceresinde, tüm dendritleri ve dikenleri vurgulamak için Tümünü Seç'e sol tıklayın.
  20. Üst araç çubuğundaki Analiz sekmesine sol tıklayın. Yapı açılır menüsünü sol tıklayın. Sol tıklama Dallı Yapı Analizi.
  21. İlgilenilen değişkenlere bağlı olarak, analizlerden herhangi biri seçilebilir. Omurga yoğunluğu ve ortalama omurga hacmi etrafında odaklanan sorular için en yararlı ikisi, Her Dendrit > Her Ağaç ve Omurga Detayları > Dikenler'dir. Tamam'ı seçtiğinizde veriler iki ayrı pencerede görünür.
  22. Daha fazla derleme ve analiz için verileri bir elektronik tabloya kopyalayın.
    NOT: Tek tek ağaç dendrit ile ayrılacak, ancak omurga hacmi olmayacaktır. Elektronik tablodaki sıralama işlevi kullanılarak, omurga ayrıntıları özelliklere göre filtrelenebilir.

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Sonuçlar

Bu analiz yönteminin etkin bir şekilde kullanılması, izleme için dendritik segmentlerin seçimi ile başlar. Şekil 1'de açıklandığı gibi, izleme için ideal dendritler diğer dendritlere yakın değildir. Paralel olarak çalışan dendritler, komşu bir dendritten dikenlerin yanlış tanımlanmasına neden olabilir. Farklı bir z-düzleminde doğrudan kesişen veya dik olarak çalışan dendritler, doğru dendritik izlemeye de önemli zorluklar katar. Dendrit kalınlığındaki farklılıklara dikkat etmek de önemlidir....

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Tartışma

Bu protokol, numune hazırlama, görüntüleme ve üç boyutlu rekonstrüksiyon yazılımı kullanılarak dendritik omurga miktar tayini ve sınıflandırma sürecinin belirli adımlarını detaylandırır. Bu yazılım, çok çeşitli araştırmalara katkıda bulunan sağlam yapısal veriler üretebilen güçlü bir araçtır. Süreç boyunca, bu protokolü daha az metodolojik bir yük haline getiren ve verilerin genel çıktısını artıran bazı kritik adımlar vardır. Dendritik dikenleri etiketleme yöntemi, araştırmacıların bu pr...

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Açıklamalar

Yazarların açıklanacak herhangi bir çıkar çatışması yoktur.

Teşekkürler

Teknik yardım için Carolyn Smith, Sarah Williams Avram, Ted Usdin ve NIMH SNIR'a teşekkür ederiz. Ayrıca Colgate Üniversitesi Bethesda Biyomedikal Araştırma Çalışma Grubu'na da teşekkür ederiz. Bu çalışma NIMH Intramural Programı (1ZIAMH002881'den Z.L.'ye) tarafından desteklenmektedir.

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Malzemeler

Bu makalede kullanılan malzemelerin listesi
AdŞirketKatalog numarasıYorumlar
518F Daldırma YağıZeiss444960-0000-000
KriyostatLeicaCM3050SDilim hazırlama için
İnce ForsepsFST11150-10
Hemostat ForsepsFST13020-12
Büyük Cerrahi MakasFST14002-16
LSM 880 Konfokal MikroskopZeissLSM 880
Mikroskop Kapağı CamFisherbrand12-541-035
Mini-Peristaltik Pompa IIHarvard Aparatı70-2027Perfüzyonlar için
Neurolucida 360MBF Biosciencev2022.1.1Omurga Analiz Yazılımı
Neurolucida ExplorerMBF Biosciencev2022.1.1Omurga Analiz Yazılımı
OCT BileşiğiSakura Finetek4583Kriyostat kesitleme için
Paraformaldehit (%37)FisherbrandF79-1
Plan-Apochromat 63x/1.40 Oil DICZeiss440762-9904-000
Neşter BıçağıFST10022-00
Küçük Cerrahi MakasFST14060-09
Spatula FST10091-12
SükrozFIsherbrandS5-500
Superfrost Plus MicroslidesDiaggerES4951+
Vectashield HardSet Montaj OrtamıVektör LaboratuvarlarıH-1400-10

Kaynaklar

  1. Gray, E. G. Electron microscopy of synaptic contacts on dendrite spines of the cerebral cortex. Nature. 183, 1592-1593 (1959).
  2. Ramón Y Cajal, S. Sobre la fibras nerviosas de la capa molecular del cerebelo. Rev Trim Histol Norm. 1, 33-49 (1888).
  3. Desmond, N. L., Levy, W. Changes in the numerical density of synaptic contacts with long-term potentiation in the hippocampal dendate gyrus. J Comp Neurol. 253, 466-475 (1986).
  4. Engert, F., Bonhoeffer, T. Dendritic spine chances associated with hippocampal long-term synaptic plasticity. Nature. 399, 66-70 (1999).
  5. Yang, Y., Wang, X. B., Frerking, M., Zhou, Q. Spine expansion and stabilization associated with long-term potentiation. J Neurosci. 28 (22), 5740-5751 (2008).
  6. Oh, W. C., Parajuli, L. K., Zito, K. Heterosynaptic structural plasticity on local dendritic segments of hippocampal ca1 neurons. Cell Rep. 10 (2), 162-169 (2015).
  7. Shinoda, Y., Tanaka, T., Tominaga-Yoshino, K., Ogura, A. Persistent synapse loss induced by repetitive ltd in developing rat hippocampal neurons. PLoS One. 5 (4), e10390(2010).
  8. Markus, E. J., Petit, T. L. Neocortical synaptogenesis, aging, and behavior lifespan development in the motor-sensory system of the rat. Exp Neurol. 96 (2), 262-278 (1987).
  9. Duan, H., Wearne, S. L., Rocher, A. B., Macedo, A., Morrison, J. H., Hof, P. R. Age-related dendritic and spine changes in corticocortically projecting neurons in macaque monkeys. Cereb Cortex. 13 (9), 950-961 (2003).
  10. Chen, C. C., Lu, J., Zuo, Y. Spatiotemporal dynamics of dendritic spines in the living brain. Front Neuroanat. 8, 28(2014).
  11. Dickstein, D. L., Weaver, C. M., Luebke, J. I., Hof, P. R. Dendritic spine changes associated with normal aging. Neuroscience. 251, 21-32 (2013).
  12. Glausier, J. R., Lewis, D. A. Dendritic spine pathology in schizophrenia. Neuroscience. 251, 90-107 (2013).
  13. Phillips, M., Pozzo-Miller, L. Dendritic spine dysgenesis in autism related disorders. Neurosci Lett. 601, 30-40 (2015).
  14. Dorostkar, M. M., Zou, C., Blazquez-Llorca, L., Herms, J. Analyzing dendritic spine pathology in alzheimer's disease: Problems and opportunities. Acta Neuropathol. 130 (1), 1-19 (2015).
  15. Villalba, R. M., Smith, Y. Loss and remodeling of striatal dendritic spines in parkinson's disease: From homeostasis to maladaptive plasticity. J Neural Transm (Vienna). 125 (3), 431-447 (2018).
  16. Cheng, C., Trzcinski, O., Doering, L. C. Fluorescent labeling of dendritic spines in cell cultures with the carbocyanine dye "dii". Front Neuroanat. 8, 30(2014).
  17. Feng, G., et al. Imaging neuronal subsets in transgenic mice expressing multiple spectral variants of gfp. Neuron. 28 (1), 41-51 (2000).
  18. Baloyannis, S. J. Staining neurons with golgi techniques in degenerative diseases of the brain. Neural Regen Res. 10 (5), 693-695 (2015).
  19. Levet, F., Tonnesen, J., Nagerl, U. V., Sibarita, J. B. SpineJ: A software tool for quantitative analysis of nanoscale spine morphology. Methods. 174, 49-55 (2020).
  20. Peters, A., Kaiserman-Abramof, I. R. The small pyramidal neuron of the rat cerebral cortex. The perikaryon, dendrites and spines. Am J Anat. 127 (4), 321-356 (1970).
  21. Pfeiffer, T., et al. Chronic 2p-sted imaging reveals high turnover of dendritic spines in the hippocampus in vivo. Elife. 7, e34700(2018).
  22. Harris, K. M. Structure, development, and plasticity of dendritic spines. Curr Opin Neurobiol. 9 (3), 343-348 (1999).
  23. Hering, H., Sheng, M. Dendritic spines: Structure, dynamics, and regulation. Nat Rev Neurosci. 2 (12), 880-888 (2001).
  24. Jontes, J. D., Smith, S. J. Filopodia, spines, and the generation of synaptic diversity. Neuron. 27 (1), 11-14 (2000).
  25. Pchitskaya, E., Bezprozvanny, I. Dendritic spines shape analysis-classification or clusterization? Perspective. Front Synaptic Neurosci. 12, 31(2020).
  26. Berry, K. P., Nedivi, E. Spine dynamics: Are they all the same. Neuron. 96 (1), 43-55 (2017).
  27. Rodriguez, A., Ehlenberger, D. B., Dickstein, D. L., Hof, P. R., Wearne, S. L. Automated three-dimensional detection and shape classification of dendritic spines from fluorescence microscopy images. PLoS One. 3 (4), e1997(2008).
  28. Swanger, S. A., Yao, X., Gross, C., Bassell, G. J. Automated 4D analysis of dendritic spine morphology: Applications to stimulus-induced spine remodeling and pharmacological rescue in disease model. Mol Brain. 4, 38(2011).
  29. Basu, S., et al. Quantitative 3-D morphometric analysis of individual dendritic spines. Sci Rep. 8 (1), 3545(2018).
  30. Ekaterina, P., Peter, V., Smirnova, D., Vyacheslav, C., Ilya, B. Spinetool is an open-source software for analysis of morphology of dendritic spines. Sci Rep. 13 (1), 10561(2023).
  31. Li, B. Z., Sumera, A., Booker, S. A., Mccullagh, E. A. Current best practices for analysis of dendritic spine morphology and number in neurodevelopmental disorder research. ACS Chem Neurosci. 14 (9), 1561-1572 (2023).
  32. Dickstein, D. L., et al. Automatic dendritic spine quantification from confocal data with Neurolucida 360. Curr Protoc Neurosci. 77, 1-21 (2016).
  33. Gage, G. J., Kipke, D. R., Shain, W. Whole animal perfusion fixation for rodents. J Vis Exp. (65), e3564(2012).
  34. Parajuli, L. K., Koike, M. Three-dimensional structure of dendritic spines revealed by volume electron microscopy techniques. Front Neuroanat. 15, 627368(2021).
  35. Ferreira, J. S., et al. Distance-dependent regulation of NMDAR nanoscale organization along hippocampal neuron dendrites. Proc Natl Acad Sci U S A. 117 (39), 24526-24533 (2020).
  36. Megias, M., Emri, Z. s, Freund, T. F., Gulyas, A. I. Total number and distribution of inhibitory and excitatory synapses on hippocampal ca1 pyramidal cells. Neuroscience. 102 (3), 527-540 (2001).
  37. Katz, Y., et al. Synapse distribution suggests a two-stage model of dendritic integration in ca1 pyramidal neurons. Neuron. 63 (2), 171-177 (2009).
  38. Bourne, J., Harris, K. M. Do thin spines learn to be mushroom spines that remember. Curr Opin Neurobiol. 17 (3), 381-386 (2007).
  39. Runge, K., Cardoso, C., De Chevigny, A. Dendritic spine plasticity: Function and mechanisms. Front Synaptic Neurosci. 12, 36(2020).
  40. Tonnesen, J., Katona, G., Rozsa, B., Nagerl, U. V. Spine neck plasticity regulates compartmentalization of synapses. Nat Neurosci. 17 (5), 678-685 (2014).
  41. Mattila, P. K., Lappalainen, P. Filopodia: Molecular architecture and cellular functions. Nat Rev Mol Cell Biol. 9 (6), 446-454 (2008).
  42. Grutzendler, J., Kasthuri, N., Gan, W. Long-term dendritic spine stability in the adult cortex. Nature. 420 (6917), 812-816 (2002).

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Yeniden basım ve izinler

Daha fazla makale keşfet

Dendritik Dikensi Çıkıntı AnaliziDikensi Çıkıntı YoğunluğuDikensi Çıkıntı Baş HacmiDikensi Çıkıntı Alt Tip SınıflandırmasıSinaptik PlastisiteNeurolucida 360Hipokampal DendritlerDikensi Çıkıntı Morfolojisi
Otomatik Üç Boyutlu Nöron Rekonstrüksiyon Yazılımı Kullanılarak Dendritik Omurga Ölçümü
Bize Ulaşın
Kütüphaneye Öner

Gizlilik

Kullanım Koşulları

Politikalar

Telif Hakkı © 2026 MyJoVE Corporation. Tüm hakları saklıdır.