Bu içeriği görüntülemek için JoVE aboneliğiniz gereklidir. Giriş yapın veya ücretsiz denemenizi bugün başlatın.

Yöntem makalesi

Demir Açlığı ve Anaerobik Büyümeyi Takiben Yersinia psödotuberculosis Tip III Sekresyon Sistemi Aktivitesinin Ölçülmesi

1.4K görüntülenme

⸱

DOI:

10.3791/66642

⸱

31 Mayıs 2024

 ,  ,  , 
1Department of Microbiology and Environmental Toxicology, University of California, Santa Cruz

Bu makalede

Özet

Bakteriler, oksijen ve demir biyoyararlanımında farklılık gösteren konakçı dokuları kolonize eder, ancak bakterileri incelemek için çoğu yaklaşım havalandırılmış, zengin ortam kullanır. Bu protokol, insan patojeni Yersinia pseudotuberculosis'in değişen demir konsantrasyonları ve oksijen gerilimi altında kültürlenmesini ve önemli bir virülans faktörü olan Yersinia tip III sekresyon sisteminin aktivitesinin ölçülmesini açıklar.

Özet

Birçok Gram-negatif patojen için önemli bir virülans mekanizması, sitotoksik veya immünomodülatör efektör proteinleri konakçı hücrelere translokasyona geçiren iğne benzeri bir uzantı olan tip III sekresyon sistemidir (T3SS). T3SS, hücre dışı olarak erişilebilir olduğu ve patojenik olmayan bakterilerde büyük ölçüde bulunmadığı için antimikrobiyal keşif kampanyaları için bir hedeftir. Son çalışmalar, Yersinia ve Salmonella'nın T3SS'sinin, memeli enfeksiyonu sırasında karşılaşılan önemli nişe özgü sinyaller olan demir ve oksijene yanıt veren faktörler tarafından düzenlendiğini göstermiştir. Burada tarif edilen, Yersinia pseudotuberculosis'in demir açlığı için bir yöntemdir ve daha sonra isteğe bağlı olarak inorganik demir takviyesi vardır. Oksijen mevcudiyetinin etkisini değerlendirmek için, bu demir açlığı süreci hem aerobik hem de anaerobik koşullar altında gösterilmiştir. Son olarak, kültürlerin 37 ° C'lik memeli konak sıcaklığında inkübe edilmesi, T3SS ekspresyonunu indükler ve süpernatan içine salınan efektör proteinleri görselleştirerek Yersinia T3SS aktivitesinin nicelleştirilmesine izin verir. Burada detaylandırılan adımlar, muhtemelen verimli Yersinia demir alımı ve süpürme sistemleri nedeniyle, sağlam demir açlığını indüklemek için yetersiz olan demir açlığının yokluğunda demir şelatörlerin kullanımına göre bir avantaj sunmaktadır. Benzer şekilde, asitle yıkanan laboratuvar cam malzemeleri, sağlam demir açlığını indüklemek için gerekli olan artık demirin uzaklaştırılmasını sağlamak için detaylandırılmıştır. Ek olarak, artık demiri ortamdan uzaklaştırmak için bir kenetleme maddesi kullanılması ve bakteriyel demir depolarını tüketmek için demir yokluğunda bakterilerin birkaç nesil boyunca kültürlenmesi açıklanmaktadır. Trikloroasetik asit kaynaklı protein çökeltme, SDS-PAGE ve gümüş boyamanın standart protokollerini içeren bu prosedür, T3SS aktivitesini ölçmenin erişilebilir yollarını gösterir. Bu prosedür Y. pseudotuberculosis için optimize edilmiş olsa da, benzer sağlam demir alım sistemlerine sahip patojenlerde yapılan çalışmalar için bir çerçeve sunar. Antibiyotik direnci çağında, bu yöntemler, konakçı ile ilgili koşullar altında T3SS'yi hedef alan antimikrobiyal bileşiklerin etkinliğini değerlendirmek için genişletilebilir.

Giriş

Yersinia, Vibrio, Escherichia, Pseudomonas ve Shigella gibi klinik olarak anlamlı birçok Gram-negatif patojen, efektör proteinleri konakçı hücrelere enjekte etmek için tip III salgı sistemini (T3SS) kodlar1. Birçok bakteri türünde, T3SS sıkı düzenleyici kontrol altındadır2. Örneğin, Yersinia T3SS efektör proteinlerinin hedef konak hücrelere translokasyonu, konak savunma mekanizmalarını bozmak ve konak dokuların bakteriyel kolonizasyonunu sağlamak için kritik öneme sahiptir. Bununla birlikte, Yersinia T3SS aktivitesi metabolik olarak külfetlidir ve konakçı immün reseptörleri tarafından tanınmayı tetikleyebilir3. Buna göre, belirli çevresel ipuçlarını algılayan düzenleyiciler, birçok bakteri türünde T3SS genlerinin ekspresyonunu kontrol eder. Yersinia gibi patojenler, enfeksiyon döngüleri sırasında kritik virülans faktörlerinin ekspresyonunu etkileyen çevresel değişiklikler yaşadığından, bakteriyel patojenler tarafından işgal edilen konakçı nişlerinin göze çarpan özelliklerini taklit eden laboratuvar koşullarının geliştirilmesi önemlidir. Spesifik olarak, oksijen gerginliği ve demir mevcudiyeti, uzay-zamansal bir şekilde çeşitli doku bölgeleri arasında farklılık gösterir ve T3SS 4,5,6 gibi virülans genlerinin ekspresyonunu etkiler. Bu nedenle, bu yöntemin amacı, oksijen ve demirin Yersinia T3SS'nin ekspresyonunu nasıl etkilediğini değerlendirmektir. Bu, konakçı-patojen etkileşiminin dinamikleri hakkında fikir verecektir.

Burada açıklanan yöntem, Yersinia pseudotuberculosis'in aerobik ve anaerobik olarak nasıl kültürleneceğini ve ayrıca aerobik veya anaerobik büyüme sırasında Yersinia demir depolarının nasıl tüketileceğini detaylandırır. Bu değişken koşullar altında bakterilerin başarılı bir şekilde kültürlenmesiyle ilgili olarak burada vurgulanan birkaç önemli husus vardır. İlk olarak, anaerobik kültürleme, medya tarifinde belirtilen bir değişiklik olan ek glikoz takviyesi gerektirir. İkincisi, Y. pseudotuberculosis, demiri çevreden sağlam bir şekilde temizleyebilen sideroforlar ve diğer demir alım sistemlerini kullandığından, kültür ortamının ve laboratuvar cam malzemelerinin mümkün olduğunca demir içermemesini sağlamaya özel önem verilmektedir7. Önceki çalışmalar, demir açlığını taklit etmek için zengin ortamlı bakteri kültürlerinden demiri tüketmek için dipiridil gibi demir şelatörleri kullanmıştır 8,9. Bununla birlikte, demir açlığına neden olmak için Yersinia demir depolarının tükenmesi, cam eşyalarda ve ortamlarda kalan demirin uzaklaştırılmasını ve ayrıca demir yokluğunda uzun süreli büyümeyi gerektirir. Bu protokol, tam demir açlığını sağlamak için bakterileri birkaç nesil boyunca kültürlemenin yanı sıra, artık demiri uzaklaştırmak için cam eşyaların asitle nasıl yıkanacağını ve ortamın nasıl şelatlanacağını detaylandırır. Demir açlığı, burada yfeA ve bfd ile gösterildiği gibi, koşullar boyunca iyi karakterize edilmiş demire duyarlı genlerin nispi transkript seviyelerinin ölçülmesiyle sağlanabilir.

Bu protokolün doruk noktası, kültür süpernatantını trikloroasetik asit (TCA) ile muamele ederek ve salgılanan proteinleri SDS-PAGE aracılığıyla görselleştirerek bu koşulların her birinden salgılanan T3SS efektör proteinlerinin nasıl çökeltileceğini gösterir. Son olarak, nispi T3SS aktivitesi, salgılanan proteinlerin gümüş boyama yoluyla görselleştirilmesi ve Yersinia dış proteinleri (Yops) 10 olarak adlandırılan T3SS efektör proteinlerinin nispi seviyelerinin ölçülmesiyle değerlendirilir.

T3SS aktivite testleri genellikle kültür süpernanında T3SS efektör protein seviyelerini tespit etmek için spesifik antikorlar kullanır. Bununla birlikte, T3SS efektör proteinleri için western blotting antikorları genellikle ticari olarak mevcut değildir. Bu nedenle, bu yöntemde T3SS aktivitesinin nihai görselleştirmesinin spesifik antikorlar gerektirmemesini ve bunun yerine salgılanan tüm proteinlerin görselleştirilmesine izin veren gümüş boyamadan yararlanabilmesini sağlamak için özel dikkat gösterilmiştir. Bu yöntem Y. pseudotuberculosis için özel olarak tasarlanmış ve optimize edilmiş olsa da, kesin ortam koşulları ve kuluçka süreleri değişse de diğer bakteri türlerine uyarlanabilir.

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Protokol

Reaktiflerin, ortam bileşiminin, primer dizilerinin ve ekipmanın ayrıntıları Malzeme Tablosunda listelenmiştir. Şekil 1'de genel deneysel iş akışı gösterilmektedir.

1. Asitle yıkanmış cam eşyaların ve şelatlı M9 ortamının hazırlanması

NOT: Başlamadan önce, kullanılacak tam reaktifler ve tarifler için malzeme bölümüne bakın. M9 ortamı ilk olarak Cheng ve ark.11'de Yersinia T3SS testleri için kullanıldı.

  1. 250 mL'lik bir cam şişeye 100 mL 6 N HCl dökün.
    DİKKAT: HCl son derece tehlikelidir; Bu maddeyi kullanırken uygun önlemlerin alındığından emin olun.
  2. Cam kabın ağzını bir cam tıpa ile kapatın ve HCl'yi ara sıra yön değiştirerek iyice dağıtmak için şişeyi 1 dakika dikkatlice döndürün.
  3. 6 N HCl'yi uygun şekilde atın.
  4. 100 mL deiyonize H2O ekleyerek, ağzı kapatarak, 20 saniye çalkalayarak ve ardından suyu boşaltarak cam kabı durulayın.
  5. Durulama adımını toplam 3 kez tekrarlayın.
  6. Havanın kurumasını bekleyin. Sterilize etmek için otoklav.
  7. Ortamı şelatlamak için, M9 bileşenlerini şelatlama reaktifi ile karıştırın ve oda sıcaklığında ~ 18 saat boyunca manyetik bir karıştırma çubuğu ile karıştırın. Filtre ile sterilize edin ve 1 mM'lik bir nihai konsantrasyona MgS04 ekleyin.

2. Değişen demir seviyeleri ve oksijen gerilimi altında Y. pseudotuberculosis'in kültürlenmesi

  1. Lizojeni Et Suyu (LB) agar plakaları üzerinde çizgi Y. pseudotuberculosis (bu çalışmada IP2666pIB1 suşu kullanılmıştır) ve oda sıcaklığında inkübe edin.
    NOT: Yersinia'nın 37 ° C'de, özellikle düşük kalsiyumlu ortamda inkübe edilmesi, T3SS aktivitesine, büyümenin durmasına yol açar ve sonuçta T3SS12'yi kodlayan Yersinia virulence (pYV) için plazmit kaybını seçer. Bu nedenle, bu protokol, T3SS aktivitesinin ölçülmesi gerekene kadar Yersinia'nın 26 ° C inkübasyonunu kullanır.
  2. 48 saat sonra, görünür koloniler oluştuğunda, %0.2 glikoz, 1 mg / L FeSO4.7H 2O içeren ve kasamino asitlerle (burada M9 ortamı olarak anılacaktır) takviye edilmiş 4 mL M9 ortamını aşılayın tek, izole edilmiş bir koloniden ve gece boyunca 26 ° C'de yaklaşık 18 saat boyunca 250 rpm'de havalandırma ile kültür.
    NOT: Aşağıdaki adımdan başlayarak ve devam ederek asitle yıkanmış cam eşyalar kullanın.
  3. Aşağıdaki adımları izleyerek şelatlı M9 ortamına alt kültür.
    NOT: Sonraki tüm adımlar için, standart %0,2 glikoz yerine %0,9 glikoz içeren M9 ortamı kullanılır.
    1. Bir spektrofotometre kullanarak, gece boyunca kültürün optik yoğunluğunu (OD600) ölçün.
    2. Gece boyunca kültürü, demir takviyesi içermeyen250 mL asitle yıkanmış bir şişede% 0.9 glikoz içeren ve FeSO4.7H 2O içermeyen toplam 14 mL steril şelatlı M9 ortamında 0.1'lik bir OD 600 değerine seyreltin.
    3. 250 rpm'de havalandırma ile 26 °C'de 8 saat inkübe edin.
  4. Paralel olarak aerobik ve anaerobik kültürlere alt kültür.
    1. Büyüyen kültürlerin OD600'ünü ölçün.
    2. Aerobik inkübasyona devam etmek için, büyüyen kültürleri,250 mL asitle yıkanmış bir şişede% 0.9 glikoz ve FeSO4.7H 2O içermeyen 14 mL steril şelatlı M9 ortamında 0.1'lik bir OD 600 değerine alt kültür ve demir takviyesi olmadan 12 saat boyunca 26 ° C'de havalandırma ile kültür.
    3. Anaerobik kültürleme için, iki asitle yıkanmış cam tüpe 14 mL steril şelatlı M9 ortamında 0.1'lik bir OD600 değerine kadar alt kültür. İlk tüpe, 1 mg / L'lik bir nihai konsantrasyon için ("yüksek demir" olarak anılır) filtre ile sterilize edilmiş (0.22 μm polietersülfon membran kullanılarak) FeSO4.7H 2Oekleyin. İkinci tüpte, 0.01 mg / L'lik bir nihai konsantrasyon için FeSO4.7H 2O ekleyin ("düşük demir" olarak adlandırılır). Bu, 10 mg / mL FeSO4.7H 2O stok çözeltisi kullanılarak yapılabilir. Her iki tüpü de anaerobik bir odada oda sıcaklığında 12 saat anaerobik olarak inkübe edin.
      NOT: 1 mg/L FeSO4.7H 2O, sağlam Yersinia büyümesi için demir dolgun koşullar sağlar. Tersine, anaerobik kültürlere sadece 0.01 mg / L FeSO4.7H 2O eklenmesi, anaerobik koşullar altında yeterli büyümeyi sağlar, ancak yine de demir açlığı tepkilerini mümkün kılarken, aerobik kültürler, T3SS aktivitesinin uyarılmasından önce demir açlığı tepkilerini uyarmak için herhangi bir ilave demir yokluğunda 12 saat boyunca büyütülür.
  5. Tip III sekresyon sistemi aktivitesini indükleyin.
    1. Anaerobik kültürleri 37 °C'ye kaydırın ve T3SS'yi indüklemek için anaerobik inkübasyona 4 saat devam edin.
    2. Aerobik olarak büyüyen kültürün OD600'ünü ölçün.
    3. Asitle yıkanmış iki şişeye, aerobik olarak büyüyen kültürleri, 14 mL steril şelatlı M9 ortamında 0.2'lik bir OD600 değerine alt kültürleyin. İlk şişeye, 1 mg / L'lik bir nihai konsantrasyon için filtreyle sterilize edilmiş FeSO4.7H 2O ekleyin. İkinci şişeye, 0.01 mg / L'lik bir son konsantrasyon için FeSO4.7H 2O ekleyin. Her iki şişeyi de 2 saat boyunca 250 rpm'de 26 ° C'de havalandırma ile inkübe edin.
    4. 2 saat sonra, aerobik kültürleri 250 rpm'de havalandırma ile 37 °C'ye kaydırın ve T3SS'yi indüklemek için 4 saat inkübe edin.

3. T3SS efektör proteinlerinin trikloroasetik asit (TCA) çökeltilmesi

  1. Anaerobik inkübasyon tamamlandıktan sonra, kültürlerin OD600'ünü ölçün.
  2. Eşit hücre kütlesi elde etmek için tüm anaerobik numuneleri normalleştirin ( Tablo 1'de verilen örneğe bakın). Anaerobik kültürleme için, genellikle demir açlığı çeken kültürlerde ~ 0.5 ve demir içeren kültürler için ~ 1 OD600 değeri bekleyin. Bu durumda, 6 mL demir açlığı çeken kültürler ve 3 mL demir içeren kültürler kullanın.
    NOT: Kalan kültür, toplam RNA'nın hasat edilmesi ve hedef mRNA'nın kararlı durum seviyelerini ölçmek için kantitatif PCR kullanılması gibi başka amaçlar için kullanılabilir (burada açıklanmamıştır).
  3. Her kültürün normalleştirilmiş hacimlerini 15 mL'lik tüplere aktarın.
  4. Salgılanan protein çökeltisinin etkinliğini kontrol etmek için, her tüpe 4 μL 0.5 mg / mL sığır serum albümini (BSA) ekleyin.
  5. 4 ° C'de 15 dakika boyunca 3200 x g'da pelet kültürleri.
  6. 10 mL'lik bir şırıngaya 0.22 μm'lik bir PVDF filtresi takın ve her peletlenmiş kültürün süpernatantını 15 mL'lik yeni bir tüpe süzün.
    NOT: Bu filtreleme adımı, numunede istenmeyen sitoplazmik proteinlere neden olacak şekilde tüm bakteri hücrelerinin transfer edilme olasılığını en aza indirir.
  7. Her numuneye 6.1 N TCA'nın süpernatan hacminin% 10'unu ekleyin.
  8. 1 dakika boyunca kuvvetlice girdap. Tüpleri gece boyunca 4 °C soğuk odada buz üzerinde inkübe edin.
    NOT: Kuluçka süresi ihtiyaca göre optimize edilebilir. 1 saatlik bir inkübasyon kadar kısa bir süre, sekresyonun sağlam olduğu koşullar veya suşlar için işe yarayabilir.
  9. 4 saatlik inkübasyon tamamlandıktan sonra pelet toplama ve TCA çökeltme adımlarını aerobik kültürlerle tekrarlayın.
    NOT: Eşdeğer hücre kütlesine sahip hacimleri peletleyerek aerobik kültürleri normalleştirin.
  10. Her numuneden 2 mL'lik taze 2 mL'lik bir tüpe ekleyin ve 4 °C'de 15 dakika boyunca 21.000 x g'da santrifüjleyin.
  11. Bir vakum eki kullanarak süpernatanı aspire edin ve tüpün altına veya yanlarına dokunmamaya dikkat edin.
    NOT: Peletin görselleştirilmesi zor olabilir ve tüpün uzunluğu boyunca bir pus olarak görünebilir.
  12. Her çökeltme reaksiyonundan elde edilen tüm içerik tek bir 2 mL'lik tüpe çökeltilene kadar 3.10 ve 3.11 adımlarını tekrarlayın. Bu, üç veya dört ardışık santrifüjleme adımı alabilir, ancak her numuneden salgılanan tüm proteinlerin 2 mL'lik bir tüpe konsantrasyonuna izin verir.
  13. Peletleri yıkamak için, her tüpe nazikçe 1 mL buz gibi %100 aseton ekleyin. Numune kaybını önlemek için yeniden askıya almayın ve tüpün kenarlarına dokunmayın.
  14. Numuneleri 21.000 x g'da 4 °C'de 15 dakika santrifüjleyin.
  15. Süpernatanı aspire edin ve tüpün altına veya yanlarına dokunmamaya dikkat edin.
  16. Buz gibi soğuk aseton yıkama adımları 3.13 ve 3.14'ü tekrarlayın.
  17. Süpernatanı son kez aspire ettikten sonra, tüpleri açın ve peletin tezgah üzerinde yaklaşık 1 saat tamamen kurumasını bekleyin.
  18. Kurutulan her numuneye 50 μL FSB: DTTT çözeltisi ekleyin. Protein kaybını önlemek için tekrar askıya almayın.
  19. Her numuneyi 1 dakika boyunca iyice vorteksleyin ve FSB: DTT solüsyonunun tüm tüpün duvarlarını kapladığından emin olun. Bu, aynı anda birden fazla tüpü tutabilen bir girdap ataşmanı kullanılarak optimize edilebilir.
  20. Numuneleri 95 °C'de 15 dakika kaynatın.
  21. Numuneleri oda sıcaklığında maksimum hızda 30 saniye boyunca kısa bir süre santrifüjleyin.
  22. İleride kullanana kadar -80 °C'de saklayın.

4. T3SS efektör proteinlerini görselleştirmek için SDS-PAGE ve gümüş boyama

  1. Her anaerobik numuneden 15 μL ve her aerobik numuneden 10 μL'yi, merdiven olarak 3 μL ticari olarak temin edilebilen lekelenmemiş bir standartla birlikte% 12.5'lik bir SDS-PAGE jeline yükleyin.
  2. Jeli 100 V'ta yaklaşık 90 dakika çalıştırın. Bu ayarlar kullanılan aparata göre değişiklik gösterebilir.
  3. Üreticinin talimatlarını izleyerek gümüş boyama protokolünü takip edin, böylece Şekil 2'de gösterildiği gibi bir jel elde edin.

5. Bağıl T3SS aktivitesinin ölçülmesi

  1. Jeli görüntüleme sistemine yerleştirin ve niceleme için amaçlanan tüm bantların görüntü çerçevesinde olduğundan emin olun.
    NOT: BSA'nın moleküler ağırlığı ~66 kDa iken, T3SS efektör proteini YopE'nin moleküler ağırlığı ~23 kDa'dır.
  2. Yazılımda, tüm kuyucuklardaki tüm YopE bantlarını seçin.
  3. Referans YopE bandını uygun örneğe ayarlayın.
  4. Tüm YopE bantları için yazılım tarafından hesaplanan bağıl niceleme değerlerini dışa aktarın.
  5. Yazılıma geri döndüğünüzde, tüm kuyulardaki tüm BSA bantlarını seçin.
  6. Referans BSA bandını, referans YopE bandıyla aynı örnekten olduğundan emin olacak şekilde ayarlayın.
  7. Tüm BSA bantları için yazılım tarafından hesaplanan bağıl niceleme değerlerini dışa aktarın.
  8. Göreli YopE ifade düzeylerini hesaplamak için, YopE göreli miktar değerini her numune için BSA göreli miktar değerine bölün.

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Sonuçlar

Bu yöntem, salgılanan Yops'un ilgilenilen bir referans koşuluna göre çeşitli koşullar arasında göreceli olarak karşılaştırılmasına izin verir. Genel deneysel iş akışı Şekil 1'de gösterilmiştir. Tablo 1, hücre kültürü normalizasyonunun tipik olarak her bir kültür koşulu örneğinde nasıl gerçekleşeceğinin ve her bir süpernatana eklenecek TCA hacminin bir temsilini göstermektedir. Burada, wildtype (WT) Y. pseudotuberculosis IP2666pIB1'in yanı sıra iki konjenik mutant, Δ...

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Tartışma

T3SS, birçok patojenik bakteride önemli bir virülans faktörüdür; Bu nedenle, regülasyonunu incelemek için laboratuvar tekniklerinin geliştirilmesi, patogenezin anlaşılması ve potansiyel terapötiklerin geliştirilmesi için önemlidir1. Demir ve oksijenin, T3SS ekspresyonunu düzenlemek için bakteriyel patojenler tarafından algılanan önemli konak ipuçları olduğu bilinmektedir5; bu nedenle, bu yöntem, anaerobik veya aerobik koşullar altında, demi...

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Açıklamalar

Yazarlar rekabet eden hiçbir mali çıkar beyan etmemektedir.

Teşekkürler

BioRender.com kullanılarak oluşturulan Grafik Görüntüler. Bu çalışma Ulusal Sağlık Enstitüleri (www.NIH.gov) hibe R01AI119082 tarafından desteklenmiştir.

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Malzemeler

Bu makalede kullanılan malzemelerin listesi
AdŞirketKatalog numarasıYorumlar
10 mL Luer-Lok Uçlu şırıngaBD301029
10x SDS Koşu Tamponu Ev yapımı0.25 M Tris baz, 1.92 M Glisin, 1 L hacimde %1 SDS
%12.5 SDS-Page JelEv yapımı
15 mL kültür tüpleriFalcon352059İlk gece için 
15 mL Falcon tüpleriFalcom352196Süpernatan toplama için
250 mL kültür şişesiBelco251000250
6 N Hidroklorik asit çözeltisiFisher Scientific7732185
AsetonFisher ChemicalA949-44 L
Bio Rad ChemiDoc MP Görüntüleme SistemBio RadModel Numarası: Üniversal Başlık III
Borosilikat cam kültür tüpleriFisherbrand14-961-34Anaerobik kültür için
Chelex 100 ReçineBio Rad142-1253
Chelex M9 +%0,9 Glikoz ortamıEv yapımı6 g/L Na2HPO4, 3 g/L KH2PO4, 0,5 g/L NaCl, 1 g/L NH4Cl, %1 kasamino asitler, %0.9 dekstroz, %0.0005 tiamin, 5 g/L Chelex 100 Reçine. Ortamı oda sıcaklığında 18 saat karıştırın, 500 mL Corning filtrasyon ünitesi kullanarak süzün, ardından 1 mM MgSO4 nihai çözelti için MgSO4 ekleyin
Nihai Numune Tamponu (FSB)Ev yapımı0,1 M Tris-HCl, %4 SDS, %20 gliserol, %0,2 Bromofenol Mavisi
FSB: DTT çözümüEv yapımıFSB+0.2M DTT
Görüntü Laboratuvarı YazılımıBio Radhttps://www.bio-rad.com/en-us/product/image-lab-software?ID=KRE6P5E8ZYazılımı
Isotemp Isı BloğuFisher Scientific88860021
LB Agar PlakalarıEv yapımı10 g Tripton, 5 g Maya özü, 10 g NaCl, 1 L toplam hacimde 15 g Agar. Otoklavlanmış
M9 +% 0.2 Glikoz OrtamıEv yapımı6 g / L Na2< / sub>HPO4< / sub>, 3 g / L KH2< / sub>PO < sub>4< / sub>, 0.5 g / L NaCl, 1 g / L NH < alt >4< / sub>Cl, 1 mM MgSO4, 1 mg/L FeSO47H2O, %1 kasamino asitler, %0.2 dekstroz, %0.0005 tiamin ve nbsp;
Şırınga için Millex-GP PES 0.22um filtre ekiFeSO47H2O filtrasyonu içinMilliporeSLGPR33RS
Şırınga için Millex-GV PVDF 0.22um filtre ekiSüpernatant filtrasyonu içinMilliporeSLGVR33RS
Precision Plus Protein Lekesiz StandartBio Rad1610363
SDS-PAGE Jel AparatıBio RadModel Numarası: Mini PROTEAN Tetra Hücresi
SilverXpress Gümüş Boyama Kiti InvitrogenLC6100
BellyDancer ShakerIBI BilimselBDRAA1155
Trikloroasetik asit çözeltisi 6.1NSigma AldrichT0699
Vinil Anaerobik OdaCoy Lab Ürünlerihttps://coylab.com/products/anaerobic-chambers/vinyl-anaerobic-chambers/#details
qPCR Primer dizileri 
yfeA ileri - CAC AGT CAG CAG ACC TTA TCT T
yfeA ters - GGC AGA CGG GAC ATC TTT AAT A
bfd ileri - ccagcatcagccccatacag
bfd ters - tggcttgtcggatgcacttc
yopE ileri - CCATAAACCGGTGGTGAC
yopE ters - CTTGGCATTGAGTGATACTG
500 mL Filtre Sistemi Corning 431097

Kaynaklar

  1. Deng, W., et al. Assembly, structure, function regulation of type III secretion systems. Nat Rev Microbiol. 15 (6), 323-337 (2017).
  2. Springer International Publishing. Bacterial Type III Protein Secretion Systems. 427, Springer International Publishing. Cham. (2020).
  3. Schubert, K. A., Xu, Y., Shao, F., Auerbuch, V. The Yersinia type III secretion system as a tool for studying cytosolic innate immune surveillance. Annu Rev Microbiol. 74, 221-245 (2020).
  4. Cassat, J. E., Skaar, E. P. Iron in infection and immunity. Cell Host Microbe. 13 (5), 509-519 (2013).
  5. Singhal, R., Shah, Y. M. Oxygen battle in the gut: Hypoxia and hypoxia-inducible factors in metabolic and inflammatory responses in the intestine. J Biol Chem. 295 (30), 10493-10505 (2020).
  6. Marteyn, B., et al. Modulation of Shigella virulence in response to available oxygen in vivo. Nature. 465 (7296), 355-358 (2010).
  7. Rakin, A., Schneider, L., Podladchikova, O. Hunger for iron: the alternative siderophore iron scavenging systems in highly virulent Yersinia. Front Cell Infect Microbiol. 2, (2012).
  8. Lesic, B., Carniel, E. Horizontal Transfer of the high-pathogenicity island of Yersinia pseudotuberculosis. J Bacteriol. 187 (10), 3352-3358 (2005).
  9. Green, E. R., et al. Fis is essential for Yersinia pseudotuberculosis virulence and protects against reactive oxygen species produced by phagocytic cells during infection. PLOS Pathog. 12 (9), e1005898(2016).
  10. Cornelis, G. R. The Yersinia Ysc-Yop "Type III" weaponry. Nat Rev Mol Cell Biol. 3 (10), 742-753 (2002).
  11. Cheng, L. W., Anderson, D. M., Schneewind, O. Two independent type III secretion mechanisms for YopE in Yersinia enterocolitica. Mol Microbiol. 24 (4), 757-765 (1997).
  12. Straley, S. C. The low-Ca2+ response virulence regulon of human-pathogenic yersiniae. Microbial Pathog. 10 (2), 87-91 (1991).
  13. Balada-Llasat, J. -M., Mecsas, J. Yersinia has a tropism for B and T cell zones of lymph nodes that is independent of the type III secretion system. PLoS Pathog. 2 (9), e86(2006).
  14. Adams, W., Morgan, J., Kwuan, L., Auerbuch, V. Yersinia pseudotuberculosis YopD mutants that genetically separate effector protein translocation from host membrane disruption: YopD central region promotes Yop translocation. Mol Microbiol. 96 (4), 764-778 (2015).
  15. Hooker-Romero, D., et al. Iron availability and oxygen tension regulate the Yersinia Ysc type III secretion system to enable disseminated infection. PLOS Pathog. 15 (12), e1008001(2019).
  16. Balderas, D., et al. Genome scale analysis reveals IscR directly and indirectly regulates virulence factor genes in pathogenic Yersinia. mBio. 12 (3), e00633-00721 (2021).
  17. Bearden, S. W., Perry, R. D. The Yfe system of Yersinia pestis transports iron and manganese and is required for full virulence of plague. Mol Microbiol. 32 (2), 403-414 (1999).
  18. Zhou, D., et al. Global analysis of iron assimilation and fur regulation in Yersinia pestis: Global analysis of iron assimilation and fur regulation in Yersinia pestis. FEMS Microbiol Lett. 258 (1), 9-17 (2006).
  19. Wijerathne, H., et al. a new class of [2Fe-2S] protein that functions in bacterial iron homeostasis, requires a structural anion binding site. Biochemistry. 57 (38), 5533-5543 (2018).
  20. Bearden, S. W., Staggs, T. M., Perry, R. D. An ABC transporter system of Yersinia pestis allows utilization of chelated iron by Escherichia coli SAB11. J Bacteriol. 180 (5), 1135-1147 (1998).
  21. Miller, H. K., et al. IscR is essential for Yersinia pseudotuberculosis type III secretion and virulence. PLoS Pathog. 10 (6), e1004194(2014).

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Yeniden basım ve izinler

Daha fazla makale keşfet

Efektör Protein SalınımıSDS-PAGE AnaliziGümüş BoyamaOksijen ErişilebilirliğiProtein PresipitasyonuBakteriyel Virülans
Demir Açlığı ve Anaerobik Büyümeyi Takiben Yersinia psödotuberculosis Tip III Sekresyon Sistemi Aktivitesinin Ölçülmesi
Bize Ulaşın
Kütüphaneye Öner

Gizlilik

Kullanım Koşulları

Politikalar

Telif Hakkı © 2026 MyJoVE Corporation. Tüm hakları saklıdır.