Bu protokol, klonlanmış domuz embriyolarını solungaçlar halinde laparotomi yoluyla transfer etmek için kullanılan cerrahi tekniğin uygulanmasını açıklar.
Bu içeriği görüntülemek için JoVE aboneliğiniz gereklidir. Giriş yapın veya ücretsiz denemenizi bugün başlatın.
Yöntem makalesi
Gilts'te Laparotomi ile Embriyo Transferi Ameliyatı
Bu makalede
Özet
Özet
Bu protokol, biyomedikal araştırmalar için genetiği değiştirilmiş domuzların üretiminde yaygın olarak kullanılan bir yöntem olan klonlanmış domuz embriyolarının yumurta kanalına aktarılması için cerrahi tekniği göstermeyi amaçlamaktadır. Somatik hücre nükleer transferi (SCNT) ile üretilen klonlanmış embriyoların 2. günde 4 hücreye kadar olan aşamalarda yumurta kanalına transferi için dokuz solungaça hormonal senkronizasyon ve laparotomi uygulandı. Gebelik tanısı transplantasyon ameliyatından 30 gün sonra ultrason muayenesi ile konuldu. Ameliyat edilen dokuz yaldızdan altısı ultrason muayenesinde hamilelik belirtileri gösterdi. Bununla birlikte, ekografi ile değerlendirildiği gibi fetal gelişimde herhangi bir ilerleme olmadığından, biyolojik materyalin toplanması ve üreme sisteminin değerlendirilmesi için solungaçlara 60. günde nekropsi yapıldı. Rahim boynuzlarında, yumurtalıklarda ve yumurta kanallarında yapışıklıklar gözlendi. Ötenazi yapılan solungaçların ikisinin uterus lümeninden, gebelik yaşları 12 ila 20 gün arasında değişen bir ve dört embriyonik yapı elde edildi. Muhtemelen transfer edilen embriyoların sayısı ve kalitesi de dahil olmak üzere çeşitli faktörlerden etkilenen klonlanmış domuz embriyolarının transferinin düşük verimlilik oranına atfedilen canlı domuz yavrularının olmamasına rağmen, sunulan cerrahi tekniğin hızlı ve güvenli olduğu kanıtlanmıştır.
Giriş
Domuzlar, insanlara anatomik, fizyolojik ve genetik benzerlikleri nedeniyle biyomedikal araştırmalar için mükemmel bir deneysel modeldir1. Bu hayvanlar, insanlara nakledildiğinde düşük reddedilme riskini destekleyen organlar, hücreler veya dokular üretmek amacıyla ksenotransplantasyon ile ilgili araştırmalarda sıklıkla kullanılmıştır. Ksenotransplantasyon araştırması, insan nakli için organ arzını artırmayı ve böylece hastaların bekleme listesini azaltmayı amaçlamaktadır2.
Ksenotransplantasyon için domuz üretimi, genetik olarak düzenlenmiş domuz hücrelerinden klonların üretimi de dahil olmak üzere birkaç adımı içerir. Genetiği değiştirilmiş klonlanmış embriyoların in vitro üretiminden sonra, embriyolar, uterus fizyolojisini yeni conceptus3'ün alımı ve gebeliği için hazırlamak için senkronize bir kızgınlık döngüsü ile bir dişi domuzun üreme sistemine aktarılır.
Domuzlarda embriyo transferi non-invaziv veya invaziv yöntemlerle yapılabilir4. Non-invaziv yöntemler arasında herhangi bir cerrahi müdahale gerektirmeyen transservikal transfer yer almaktadır. Bununla birlikte, bu yöntem daha sonraki gelişim aşamalarında (yani morula veya blastosist aşamaları) embriyoların transferi ile sınırlıdır ve kateter yerleştirme yerinin veya embriyo birikiminin kesin olarak belirlenmesine izin vermez5. Laparoskopi ve laparotomi, invaziv embriyo transferi yöntemleri olarak kabul edilir. Laparoskopi daha az invazivdir ancak spesifik ve maliyetli ekipman gerektirir ve üreme yapılarını manipüle etmedeki zorluk ve kullanılan kateter tipi gibi çeşitli faktörlere bağlı olarak etkinliği önemli ölçüde değişir (%20'den azdan %80'in üzerine kadar) 4,6. Bu nedenle, laparoskopi ile transfer, laparotomi ile cerrahi transfer yöntemlerine kıyasla hala daha az verimlidir4.
Dişi domuzlarda laparotomi yoluyla embriyo transferi ameliyatı nispeten basit ve hızlı bir işlemdir ve tipik olarak yaklaşık 30 dakika sürer. Ancak inhalasyon anestezi aparatı ile donatılmış bir cerrahi merkezde ve uzman bir ekiple yapılmalıdır. Ticari domuz türleri (Landrace, Large White veya bunların melezleri gibi) için, hayvanların hatırı sayılır ağırlığı (yaklaşık 130-150 kg) nedeniyle yaldızları kaldırmak için vinçler ve geniş, sağlam bir ameliyat masası gibi özel ekipmanlar gereklidir.
Ameliyatın başarılı olması için embriyoların önceden gelişim aşamaları açısından değerlendirilmesi gerekir. 4 hücreye kadar olan embriyoların rahim tüpüne transfer edilmesi önerilir. Morula ve blastosist gibi 4 hücrenin ötesindeki aşamalardaki embriyolar rahim boynuzunatransfer edilmelidir 7,8.
Dünya çapındaki araştırma grupları, genetiği değiştirilmiş klonlanmış domuz embriyolarının üretimini ve cerrahi transferini gerçekleştiriyor olsa da, bu prosedürü videolar aracılığıyla gösteren iyi tanımlanmış protokoller hala yoktur. Bu yaklaşım, gebeliğin başarısı için çok önemlidir, çünkü teknik, tubal ostiumun lokalizasyonunu ve embriyoları içeren pipetin yerleştirilmesini içeren, embriyoların yumurta kanalının tam konumuna hassas bir şekilde yerleştirilmesini gerektirir. Bu teknik, tüm prosedürün açıklayıcı videoları ile daha iyi anlaşılabilir. Bu nedenle, bu makale, ksenotransplantasyon veya diğer ilgili amaçlar için kullanılacak genetiği değiştirilmiş domuzların gelecekteki üretimi için önemli bir ön koşul olan klonlanmış embriyoların solungaçların yumurta kanalına aktarılması için laparotomi ameliyatını göstermeyi amaçlamaktadır.
Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.
Protokol
Bu çalışma, São Paulo Üniversitesi Veterinerlik ve Hayvan Bilimleri Fakültesi Araştırmalarında Hayvan Kullanımı Etik Kurulu, 6088030523 numaralı protokol tarafından onaylanmıştır. Brezilya'nın São Paulo eyaleti, Itu şehrinde bulunan Água Branca çekirdek domuz çiftliğinden dokuz yedi aylık yaldız, ikinci kızgınlık tespitinden hemen sonrakullanıldı 9. Çalışmada kullanılan reaktiflerin ve ekipmanların detayları Malzeme Tablosunda listelenmiştir.
1. Hayvan hazırlama
- Cerrahi işlemden önce hayvanları 12 saat aç bırakın ve su erişimini 4 saat kısıtlayın.
- 40 mm x 12 mm'lik bir iğne kullanarak, aynı 50 mL şırıngada 10 mg / kg ketamin ve 0.2 mg / kg midazolam hazırlayın. İlaç uygulamasını kolaylaştırmak, hayvandan güvenli bir mesafeyi korumak ve serbestçe hareket etmesine izin vermek için şırıngayı bir IV uygulama setine takın.
- Anestezik öncesi ilacı, dış kulak kanalına kaudal olan trapezius kasına intramüsküler enjeksiyon yoluyla uygulayın.
- Kulak damarını 20 G'lik bir kateter ile kanüle edin ve 10 mL / kg / s oranında% 0.9 NaCl çözeltisi ile intraoperatif sıvı tedavisi için bir makrodrip uygulama setine bağlayın.
- İntravenöz olarak 4 mg / kg propofol ile anestezi indükleyin (kurumsal olarak onaylanmış protokolleri izleyerek).
- Bir laringoskop ve bir manşet10 ile 9 numara orotrakeal tüp kullanarak hayvanın orotrakeal entübasyonunu gerçekleştirin.
- % 1.5 ila% 2 izofluran inhalasyonu ile anesteziyi koruyun. Ek olarak, dakikada 100 ila 120 atış arasında tutulması gereken kalp atış hızı, %99 ile %100 arasında tutulması gereken oksijen satürasyonu, kas gevşemesi, hareket yokluğu ve reflekslerin değerlendirilmesi gibi fizyolojik parametreleri değerlendirerek anesteziyi izleyin.
NOT: Vücut ısısı da 37.5-38.5 °C arasında kalacak şekilde izlenmeli ve kontrol edilmelidir. Gerektiğinde, parametrelerin kontrolünü sağlamak için izoflurana ek olarak propofol kullanılabilir. Fentanil hidroklorür, her 20 dakikada bir 0.02 mg / kg'lık bir dozda analjezik olarak uygulanmalıdır. Tüm parametreler her 5 dakikada bir kaydedilmelidir. - Perioperatif analjezi tek doz 0.002 mg / kg fentanil intravenöz ve 4 mg / kg tramadol hidroklorür ile intramüsküler olarak gluteal veya trapezius kasına uygulayın.
- Kalp atış hızının intraoperatif izlenmesi için kardiyak elektrotları torasik bölgeye yerleştirin. Her 5 dakikada bir kalp atış hızını, rektal sıcaklığı ve oksijen doygunluğunu kaydedin.
2. Cerrahi prosedür
- Yaldızı sırt yaslanacak şekilde ameliyat masasına yerleştirin.
- Cerrahi alanın kontaminasyonunu en aza indirmek için hayvanın bacaklarını prosedürel eldivenlerle örtün.
- Cerrahi bir kesme makinesi kullanarak sondan bir önceki meme bezi çifti arasında ventral kaudal abdominal epilasyon işlemi gerçekleştirin.
- Klorheksidin emdirilmiş antiseptik bir fırça ile preoperatif cilt antisepsisi yapın, göbek skar bölgesinden son meme bezi çiftine kadar dairesel hareketler yapın. Klorheksidini temiz, nemli bir kompres ile çıkarın.
- Cerrahın ve asistanın cerrahi antisepsi yaptığından ve ameliyat için steril cerrahi önlük ve eldiven giydiğinden emin olun.
NOT: Hayvan, ameliyat bölgesinden ayrı bir hazırlık alanında ameliyat için hazırlanmalıdır. - Ameliyat masasını, Malzeme Tablosunda listelenen uygun ve önceden sterilize edilmiş aletlerle hazırlayın.
- Steril gazlı bez ve klorheksidin antiseptik kullanarak, bölgeyi kılçık şeklinde temizleyerek, kesi bölgesinden başlayarak ve yanal olarak genişleyerek son cerrahi alan antisepsisini gerçekleştirin.
- Bu işlemi klorheksidin antiseptik ile üç kez tekrarlayın ve ardından işlemi alkolik klorheksidin ile tekrarlayın.
- Hayvanı steril bir cerrahi örtü ile tamamen örtün ve makas kullanarak, örtü fenestratize edilmemişse, cerrahi örtüde yaklaşık 10 x 20 cm² dikdörtgen bir açıklık oluşturun.
- Cerrahi örtüyü sondan bir önceki kasık meme bezi çiftinin üzerine yerleştirin. Cerrahi örtüyü hayvanın derisine sabitlemek için 4 Backhaus kelepçesi yerleştirin.
- Cildi bir neşter ile kesin ve yaklaşık 10 cm uzunluğunda bir kesi oluşturun.
- Hemostatik forseps ve/veya emilebilir sütür boyutu 2 ile deri altı damarların hemostazını elde edin.
- Deri altı dokusunu parmaklarınızla veya ince uçlu makas yardımıyla inceleyin, karın kaslarındaki linea alba'ya ulaşmak için kesiyi derinleştirin.
NOT: Linea alba'yı daha sert ve lifli bir alan olarak hissetmek için karnın orta hattını palpe edin; Rectus abdominis kaslarının ayrılmasını gözlemleyin ve linea alba'yı doğru bir şekilde tanımlamak için diseksiyon sırasında doku kıvamındaki değişikliği not edin11. - Allis forseps ile kas sistemini kavrayın ve bir neşter ile linea alba'da bir kesi yapmak için kaldırın.
- Yapışıklıkların varlığını değerlendirmek için işaret parmağını insizyona sokun. Diğer organlara ve alttaki yapılara zarar vermemek için kesiği linea alba kaudal ve kraniyal olarak künt/künt veya ince/künt makasla dikkatlice uzatın.
- Rahim boynuzlarını ve/veya yumurtalıkları bulmak ve dışlamak için cerrahın bir elinin karın boşluğuna sokulabilmesi için yeterli uzunlukta bir kesi yapın. İşlem sonunda karın boşluğuna girişi ve kas sisteminin tek bir tabaka halinde dikilmesini kolaylaştırmak için bir Gosset ekartörü kullanılabilir.
- Rahim boynuzlarından biri yumurtalıklardan önce bulunuyorsa, rahim boynuzunun ucuna ve ipsilateral yumurtalığa ulaşana kadar nazikçe takip edin. Bu prosedür sırasında, rahim içinde gebeliği tehlikeye atabilecek sıvı varlığını değerlendirin.
- Yumurtalığı bulduktan sonra, yavaşça çekin ve dikkatlice açığa çıkarın. Yaldızın senkronizasyonunun beklendiği gibi olup olmadığını değerlendirmek için yumurtlama öncesi foliküller, hemorajik corpora lutea, siklik corpora lutea ve corpus albicans'ın varlığını değerlendirin.
- Yumurtalığı kaplayan uterus tüpünün fimbriyalarını nazikçe çıkarın, mukozasını temizleyin ve uterus tüpünün ostiumunu bulun.
NOT: Cerrah fimbriaların ostiumunu tanımlamakta zorlanırsa, embriyoları içeren Tomcat kateterini yerleştirmek için kan damarlarını delmekten kaçınarak yuvarlak gövdeli bir dikiş iğnesi ile yumurta kanalının ampullası üzerinde bir cep yapılabilir. - Embriyoları içeren bir Tomcat kateterini, uterus tüpünün ampulla bölgesine ulaşana kadar fimbriaların ostiumuna dikkatlice yerleştirin.
- Embriyo içeren sıvıyı uterus tüpüne itmek için Tomcat kateterine 1 mL'lik bir şırınga takın. Yumurtalığı fimbriae ile örtün ve karın boşluğuna geri koyun.
- Kontralateral uterus boynuzunu ve yumurtalığı bulun ve 2.17-2.21 adımlarını tekrarlayın.
- Karın boşluğu içindeki yapıları yeniden konumlandırın ve abdominorafiye başlamadan önce yapışmaları önlemek için 1 L salin solüsyonu veya ısıtılmış Ringer laktat solüsyonu (39 °C) ekleyin.
- Karın kaslarını emilebilir sütür ile 2 numara "X" dikişte (Sultan) dikişsiz dikişle dikin.
- Emilebilir sütür boyutu 2 kullanılarak sürekli bir yatak sütürü ile cilt altı dokusuna yaklaştırın.
- Cildi 2 numara naylon sütürle kesintili basit dikişler, cerrahi zımbalar veya etil-siyanoakrilat yapıştırıcı ile kapatın. Bu prosedürde yapıştırıcı kullanımını tercih ettik.
- Cerrahi yarayı hidrojen peroksit içine batırılmış gazlı bezle temizleyin ve cerrahi yapıştırıcının cerrahi yara üzerine sabitlenmesini arttırmak için bir kompres ile kurulayın. Rifamisin veya Pearson merhemi uygulayın, gazlı bezle örtün ve son olarak cerrahi yapıştırıcı uygulayın.
NOT: Yara 5 gün boyunca pansuman ile kapalı kalmalıdır.
3. Ameliyat sonrası bakım
- Luna ve ark.12 tarafından önerilen ölçeğe göre, hayvanları en az önümüzdeki 3 ardışık gün boyunca karakteristik klinik ağrı belirtileri açısından değerlendirin.
NOT: Bu ölçek, duruş, etkileşim ve çevreye ilgi, aktivite, iştah ve etkilenen bölgeye dikkat gibi farklı seviyelerde ağrı yaşarken domuzlar tarafından sergilenen farklı davranışlara dayanmaktadır. Puan, değerlendirilen her parametre için sergilenen davranış türüne bağlı olarak 0 ile 3 arasında değişir. Değerlendirmenin sonunda, tüm puanların toplamı hayvanın yaşadığı ağrının yoğunluğunu yansıtır, burada 0 ağrıyı temsil etmez ve 18 çok yoğun ağrıyıtemsil eder 12. - Ağrıyı, enflamatuar süreçleri ve enfeksiyonu önlemek için postoperatif bakım olarak 3 gün boyunca günde bir kez intramüsküler olarak (gluteal veya servikal kasta) tek bir doz 15 mg / kg amoksisilin ve 0.4 mg / kg% 2 meloksikam uygulayın.
NOT: Kullanılan ağrı ölçeğinde ağrı skoru 6'ya eşit veya daha büyükse (0'dan 18'e kadar puan), anti-enflamatuar ve antibiyotiğe ek olarak günde bir kez kas içine (gluteal veya servikal kasta) 5.000 mg / hayvan sodyum dipiron uygulayın. Alternatif olarak, yerel IACUC kılavuzlarında belirtildiği gibi analjezi gerçekleştirin. - Ameliyattan sonraki 6. günde, %2 alkolik klorheksidin solüsyonuna batırılmış gazlı bezle yara temizliği için cerrahi yapıştırıcıyı çıkarın ve 10. güne kadar topikal Pearson merhemi uygulayın, bu süre içinde dikiş çıkarılması veya kullanılıyorsa cerrahi zımbaların çıkarılması önerilir.
4. Gebeliğin ultrasonografik gebelik tanısı
- Embriyo transferi ameliyatından 30 gün sonra ultrason cihazı (frekans aralığı 4.5 ila 8.5 MHz) ile transabdominal gebelik ultrasonografik değerlendirmesi yapın.
- Proba ultrason jeli uygulayın ve mediale bakacak şekilde kasık karın bölgesinin yakınına yerleştirin.
NOT: Rahim lümenindeki sıvı nedeniyle yuvarlatılmış yankısız embriyonik veziküllerin görselleştirilmesi gebeliği gösterir. Rahim içi sıvının görüntülenememesi veya embriyonik veziküllerin tanımlanması olmadan rahim içi sıvının varlığı, gebeliğin olmadığını düşündürür.
5. Hayvanların ötenazisi
NOT: Ultrasonografik incelemede gebelik yaşına karşılık gelen büyüklük ve görünümde fetüsler sunmayan solungaçlara ötenazi yapın.
- 40 mm x 12 mm'lik bir iğne kullanarak, intravenöz uygulama setine bağlı aynı 50 mL şırıngada 15 mg / kg ketamin ve 2 mg / kg midazolam çekin ve preanestezik ilaç olarak dış kulak kanalına kaudal servikal bölgedeki trapezius kasına intramüsküler olarak uygulayın.
- Auriküler veni 20 G'lik bir kateter ile kanüle edin ve bradikardi oluşana kadar bir bolusta intravenöz olarak 4 mg / kg propofol ile anestezi uygulayın (kurumsal olarak onaylanmış protokolleri izleyerek).
- Daha sonra, intravenöz olarak 10 ila 20 mL% 19.1 potasyum klorür uygulayın. Kardiyak bölgeye bir stetoskop yerleştirerek solunum hareketlerinin yokluğunu, soluk mukoza zarlarını, kornea refleks kaybını ve kalp atışlarının yokluğunu gözlemleyerek kardiyopulmoner arresti onaylayın.
- Nekropsiye edilmiş dişilerden13 her türlü intrauterin içeriği (embriyonik doku, sıvı veya mukoza salgıları) toplayın ve olası patojenleri tespit etmek için mikrobiyolojik analiz ve ayrıca klonların genotipik karakterizasyonu için (gerekirse) iletin. Corpora lutea, yumurtalık kistleri, anormal sekresyonlar ve uterus, yumurtalıklar ve yumurta kanallarında yapışıklıkların oluşumunu görsel olarak kontrol edin14.
Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.
Sonuçlar
Bu makale, klonlanmış embriyoların solungaç kanalına transfer edilmesi için yapılan laparotomi cerrahisini göstermeyi amaçlamaktadır. Tüm hayvanlar, anestezi iyileşmesi sırasında herhangi bir intraoperatif olay veya komplikasyon olmaksızın yeterli bir anestezi düzleminde kaldı. Ameliyat bittikten sonra yaldızların ayağa kalkması ortalama 2-3 saat sürdü.
Tüm cerrahi işlemler ortalama 44 dk sürdü. Dokuz yaldız ameliyat edildi, yaldız başına ortalama 185 klonlanmış embriyo transfer edildi ve topl...
Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.
Tartışma
Tarif edilen cerrahi yöntem daha önce klonlanmış domuzların veya genetiği değiştirilmiş klonlanmış domuzların üretimi ile çalışan diğer araştırma grupları tarafından gerçekleştirilmiştir ve bu tekniğin uygulanmasından sonraki doğum raporları 15,16,17,18,19,20. Çeşitli hücre hatlarından üretil...
Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.
Açıklamalar
Yazarların hiçbiri herhangi bir çıkar çatışmasını açıklamaz
Teşekkürler
Sao Paulo Üniversitesi (FMVZ/USP), Sao Paulo, Brezilya, FAPESP (hibe 2022/11459-3, Sao Paulo Araştırma Vakfı), EMS Pharma, CNPq (hibe 405254/2022-9) ve Água Branca domuz yetiştiriciliği, Itu, Sao Paulo, Brezilya.
Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.
Malzemeler
| Ad | Şirket | Katalog numarası | Yorumlar |
|---|---|---|---|
| 0.25 mL saman | jenerik-Cerrahi | malzeme | |
| 1 mL şırınga | Descarpack | 341001 | Cerrahi malzeme |
| 10 mL şırınga | Descarpack | 324601 | Cerrahi malzeme |
| 20 mL şırınga | Descarpack | 324801 | Cerrahi malzeme |
| 3 mL şırınga | Descarpack | 324201 | Cerrahi malzeme |
| 5 mL şırınga | Descarpack | 324401 | Cerrahi malzeme |
| 60 mL şırınga | Descarpack | 323201 | Cerrahi malzeme |
| 9 mm endotrakeal tüp | Rusch | 112482-000090 | Cerrahi malzeme |
| Allis forseps | jenerik-Cerrahi | alet | |
| Amox LA | JA Saú de Hayvan | MAPA tescili: 8.781/2004 | Farmasötik ilaç |
| Bakhaus forseps | jenerik-Cerrahi | alet | |
| Kateteri 20G | Descarpack | 362401 | İntravenöz erişim için |
| kateter Cetamin | Agener Uniã o | MAPA kaydı: SP-000292-5.000011 | Anestezi |
| İletken klinik jel | RMC | ANVISA kaydı: 80122200013 | Cerrahi malzeme |
| Dipyrone D-500 | Zoetis | MAPA kaydı: SP0000728-46 | Farmasötik ilaç |
| Tek kullanımlık neşter n. 22 | Wiltex | ANVISA kaydı: 10150470565 | Cerrahi alet |
| Tek kullanımlık steril sünger fırça | Rioquimica | 7.89778E+12 | Cerrahi asepsi |
| Kolay Tarama: Go | IMV | ESCG01 | Ultrason |
| Endozime AW Plus | Ruhof | 34514 | Cerrahi aletler için deterjan |
| Fentanil (Fentanest) | Cristá lia | ANVISA kaydı: 1029800810159 | Anestezik |
| Gosset ekartör | jenerik-Cerrahi | alet | |
| Halstead-sivrisinek hemostatik forseps | jenerik-Cerrahi | alet | |
| İyileştirici merhem - Unguento Pearson Pearson | SA | MAPA kaydı: SP0000094-16 | Farmasötik ilaç |
| hidrojen peroksit çözeltisi | Rioquimica | ANVISA kaydı: 218690015 | Cerrahi malzeme |
| İzofloran | Biochimico | ANVISA kaydı: 100630222 | Anestezik |
| IV Damla seti ekstansör | jenerik-Sıvı | tedavisi | |
| IV Makro damla seti | Descarpack | 410301 | Sıvı tedavisi |
| Laktofur (ceftiofur) | Ourofino SA | MAPA kaydı: SP0000051-50 | Farmasötik ilaç |
| Laringoskop | - | Cerrahi alet | |
| Maxicam 2% | Ourofino SA | MAPA kaydı: SP0000051-69 | Farmasötik ilaç |
| Mikro gözenekli yapıştırıcı 5 cm x 10 cm | Jenerik | 1530 | Cerrahi malzeme |
| Midazolam | Hipolabor | ANVISA kaydı: 1134301430035 | Anestezik |
| Çok Yönlü IV İnfüzyon Seti | Descarpack | 413201 | Sıvı tedavisi |
| İğnesi 40 mm x 1,2 mm | Descarpack | 353601 | İlaç ve anestezik uygulamak için steril iğne. |
| İğne 40 mm x 1,6 mm | Wiltex | ANVISA kaydı: 10150470664 | İlaç ve anestezik uygulamak için steril iğne. |
| İğne tutucu | jenerik-Cerrahi | alet | |
| Naylon 2 sütür trhead | Shalon Medical | N502CTI40 | Cerrahi malzeme |
| Sıradan kalem | jenerik-Not | almak için düzenli kalem | |
| Fizyolojik çözüm% 0.9 500 mL torba | JP Farma | MS: 1.0491.0070 | Sıvı tedavisi |
| Poliglikolik asit 2 sütür ipliği | Atramat | G4099-75H | Cerrahi malzeme |
| Potasyum klorür | Samtec | ANVISA kaydı: 1559200010139 | Parenteral ilaç |
| Prosedür eldivenleri | Descarpack | 122401 | Kişisel Koruyucu Ekipman (KKD) |
| Propofol (Provive) | Uniã o Quí mika | ANVISA kaydı: 1049714490057 | Anestezik |
| Ringer laktat çözeltisi 500 mL torba | JP Farma | MS:1.0491.0061 | Sıvı tedavisi |
| Riohex %0.5 kleksidin alkol çözeltisi | Rioquimica | 218690356 | Cerrahi asepsi |
| Riohex yüzey aktif madde içeren %2 kloreksidin çözeltisi | Rioquimica | 218690356 | Cerrahi asepsi |
| Kafa derisi 21 G | Descarpack | 421201 | Cerrahi malzeme |
| Ayakkabı kılıfları | jenerik-Kişisel | Koruyucu Donanım (KKD) | |
| Steril kompresler | Cremer | ANVISA kaydı: 10071150065 | Cerrahi malzeme |
| Steril gazlı bez ped | Procitex | ANVISA kaydı: 80245210083 | Cerrahi malzeme |
| Steril cerrahi örtüler 140 cm x 90 cm | Venkuri | 7010003 | Cerrahi malzeme |
| Steril cerrahi örtüler 150 cm x 190 cm | PolarFix | F00208 | Cerrahi malzeme |
| Steril cerrahi eldivenler | Mucambo | CA: 39.317 | Kişisel Koruyucu Ekipman (KKD) |
| Stetoskop | jenerik-Cerrahi | ekipman | |
| Cerrahi başlık | Descarpack | 93201 | Kişisel Koruyucu Donanım (KKD) |
| Cerrahi önlük | Descarpack | 231101 | Kişisel Koruyucu Ekipman (KKD) |
| Cerrahi maske | Descarpack | 110701 | Kişisel Koruyucu Donanım (KKD) |
| Cerrahi makas künt-künt | jenerik-Cerrahi | alet | |
| Cerrahi makas keskin-keskin | jenerik-Cerrahi | alet | |
| Cerrahi zımba | Tradevet-Cerrahi | malzeme | |
| Tekbond süper yapıştırıcı | Tek Bond | 78072720030 | Cerrahi malzeme |
| Termometre | jenerik-Cerrahi | ekipman | , |
| Üç Musluk | Solidor | 374 | Cerrahi malzeme |
| Tramadol hidroklorid | Agener Uni & atilde; o | MAPA kaydı: SP-000292-5.000002 | Anestezik |
| Şeffaf film pansuman | Skinupper | ANVISA kaydı: 82307460014 | Cerrahi malzeme |
| Su geçirmez yapıştırıcı 10 cm x 4,5 cm | Jenerik | 364828 | Cerrahi malzeme |
Kaynaklar
- Lunney, J. K., et al. Importance of the pig as a human biomedical model. Sci Transl Med. 13 (621), 5758(2021).
- Xi, J., et al. Genetically engineered pigs for xenotransplantation: Hopes and challenges. Front Cell Dev Biol. 10, 1093534(2023).
- Chen, P. R., et al. Production of pigs from porcine embryos generated in vitro. Front Anim Sci. 3, 826324(2022).
- Wieczorek, J., et al. Laparoscopic embryo transfer in pigs - comparison of different variants and efficiencies of the method. Pol J Vet Sci. 26 (2), 295-306 (2023).
- Martinez, E. A., et al. Design, development, and application of a non-surgical deep uterine embryo transfer technique in pigs. Anim Front. 3 (4), 40-47 (2013).
- Wieczorek, J., et al. A new concept in minimally invasive embryo transfer. Ann Anim Sci. 20 (4), 1289-1308 (2020).
- Brussow, K. P., Torner, H., Kanitz, W., Ratky, J. In vitro technologies related to pig embryo transfer. Reprod Nutr Dev. 40 (5), 469-480 (2000).
- Chen, P. R., et al. Production of pigs from porcine embryos generated in vitro. Front Anim. Sci. 3, 826324(2022).
- Langendijk, P., vanden Brand, H., Soede, N. M., Kemp, B. Effect of boar contact on follicular development and on estrus expression after weaning in primiparous sows. Theriogenology. 54 (8), 1295-1303 (2000).
- Costea, R., Ene, I., Pavel, R. Pig sedation and anesthesia for medical research. Animals. 13, 3807(2023).
- Vierstraete, M., Der Vekens, N. V. an, Beckers, R., Renard, Y., Muysoms, F. Descriptive anatomy of the porcine ventral abdominal wall as a basis for training ventral hernia repair techniques. J Abdom Wall Surg. 3, (2024).
- Luna, S. P. L., et al. Validation of the UNESP-Botucatu pig composite acute pain scale (UPAPS). PLoS One. 15 (6), e0233552(2020).
- Arruda, P. H. E., Gauger, P. Optimizing sample selection, collection, and submission to optimize diagnostic value. Diseases of swine. 11th ed. Zimmerman, J. J., Karriker, L. A., Ramirez, A., Schwartz, K. J., Stevenson, G. W., Zhang, J. , Wiley-Blackwell. Hoboken, NJ. 98-111 (2019).
- Althouse, G. C., Kauffold, J., Rossow, S. Diseases of the reproductive system. Diseases of swine. 11th ed. Zimmerman, J. J., Karriker, L. A., Ramirez, A., Schwartz, K. J., Stevenson, G. W., Zhang, J. , Wiley-Blackwell. Hoboken, NJ. 373-392 (2019).
- Hao, Y., et al. Porcine skin-derived stem cells can serve as donor cells for nuclear transfer. Cloning Stem Cells. 11 (1), 101-109 (2010).
- Rim, C. H., et al. The effect of the number of transferred embryos, the interval between nuclear transfer and embryo transfer, and the transfer pattern on pig cloning efficiency. Anim Reprod Sci. 143 (1-4), 91-96 (2013).
- Choi, K., et al. Production of heterozygous alpha 1,3-galactosyltransferase (GGTA1) knock-out transgenic miniature pigs expressing human CD39. Transgenic Res. 26 (2), 209-224 (2017).
- Shim, J., et al. Human immune reactivity of GGTA1/CMAH/A3GALT2 triple knockout Yucatan miniature pigs. Transgenic Res. 30 (5), 619-634 (2021).
- Glanzner, W. G., Rissi, V. B., Bordignon, V. Somatic cell nuclear transfer in pigs. Methods Mol Biol. 2647, 197-210 (2023).
- Kim, J. H., et al. Analysis of production efficiency of cloned transgenic Yucatan miniature pigs according to recipient breeds with embryo transfer conditions. Theriogenology. 218, 193-199 (2024).
- Navarro-Serna, S., Piñeiro-Silva, C., Romar, R., Parrington, J., Gadea, J. Generation of Gene Edited Pigs. , 71-130 (2022).
- Geisert, R. D., et al. Rapid conceptus elongation in the pig: An interleukin 1 beta 2 and estrogen-regulated phenomenon. Mol Reprod Dev. 84 (9), 760-774 (2017).
- Besenfelder, U., Mödl, J., Müller, M., Brem, G. Endoscopic embryo collection and embryo transfer into the oviduct and the uterus of pigs. Theriogenology. 47 (5), 1051-1060 (1997).
- Hazeleger, W., Kemp, B. Recent developments in pig embryo transfer. Theriogenology. 56 (8), 1321-1331 (2001).
- Youngs, C. R. Factors influencing the success of embryo transfer in the pig. Theriogenology. 56 (8), 1311-1320 (2001).
- Wieczorek, J., Koseniuk, J., Mandryk, I., Poniedziałek-Kempny, K. Piglets born after intrauterine laparoscopic embryo transfer. Pol J Vet Sci. 18 (2), 425-431 (2015).
- Brüssow, K. P., Rátky, J., Antosik, P., Kempisty, B., Jaśkowski, J. M. Embryo transfer in swine - an indispensable key for the application of reproduction techniques. Electron J Pol Agric Univ. 21 (3), (2018).
- Cadwallader, J. A., Alley, M. R. Malignant hyperthermia in a crossbred landrace-large white pig. N Z Vet J. 23 (9), 207-211 (1975).
- Fatehi Hassanabad, A., et al. Prevention of postoperative adhesions: A comprehensive review of present and emerging strategies. Biomolecules. 11 (7), 1027(2021).
- Shi, J., et al. Influence of embryo handling and transfer method on pig cloning efficiency. Anim Reprod Sci. 154, 121-127 (2015).
- Castagna, C. D., et al. Ovarian cysts and their consequences on the reproductive performance of swine herds. Anim Reprod Sci. 81 (1-2), 115-123 (2004).
- Knox, R. V. Factors influencing follicle development in gilts and sows and management strategies used to regulate growth for control of estrus and ovulation. J Anim Sci. 97 (4), 1433-1445 (2019).
- Galvin, J. M., Killian, D. B., Stewart, A. N. V. A procedure for successful nonsurgical embryo transfer in swine. Theriogenology. 41 (6), 1279-1289 (1994).
- Lins, R. D. A. U., et al. Use of cyanoacrylate in the coaptation of edges of surgical wounds. An Bras Dermatol. 87 (6), 871-876 (2012).
- Horvath-Pereira, B. deO., et al. Case report: An innovative non-invasive technique to manage shell injuries in C. carbonarius. Front Vet Sci. 9, 930419(2022).
Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.
Yeniden basım ve izinler
