Method Article

Gelişmiş Doğruluk için Fare Ürodinamik Tekniklerini Optimize Etme

DOI:

10.3791/67019

⸱

June 7th, 2024

 ,  ,  ,  ,  , 
1Department of Neurological Surgery, Indiana University School of Medicine, 2Spinal Cord and Brain Injury Research Group, Stark Neurosciences Research Institute, Department of Neurological Surgery, Goodman and Campbell Brain and Spine, Indiana University School of Medicine, 3Department of Rehabilitation Medicine, Zhongda Hospital Southeast University

In This Article

Summary

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Bu protokol, kürk ve cilt tarafından idrar emilimini önlemek için cildin siyanoakrilat ile su geçirmez hale getirilmesi için bir kılavuz sağlar. Yapıştırıcının cilde uygulanması, bir mesane kateterinin implante edilmesi ve uyanık farelerde sistometri ve dış üretral sfinkter elektromiyografi kayıtları için elektrotlar için talimatlar içerir.

Abstract

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Uyanık farelerde idrar parametrelerinin doğru ölçümü, özellikle nörojenik mesane travma sonrası omurilik yaralanması (SCI) gibi durumlarda alt üriner sistem (LUT) disfonksiyonunu anlamak için çok önemlidir. Bununla birlikte, farelerde sistometri kayıtlarının yapılması dikkate değer zorluklar ortaya çıkarmaktadır. Fareler kayıt seansları sırasında yüzüstü ve kısıtlı bir pozisyonda olduğunda, idrar kürk ve deri tarafından emilme eğilimindedir ve bu da işeme hacminin (VV) hafife alınmasına yol açar. Bu çalışmanın amacı, uyanık farelerde sistometri ve eksternal üretral sfinkter elektromiyografi (EUS-EMG) kayıtlarının doğruluğunu arttırmaktı. Üretral meatus ve karın çevresinde su geçirmez bir cilt bariyeri oluşturmak, idrar emilimini önlemek ve hassas ölçümler sağlamak için siyanoakrilat yapıştırıcı kullanan benzersiz bir yöntem geliştirdik. Sonuçlar, siyanoakrilat uygulandıktan sonra, VV ve RV toplamının infüze edilen salin hacmi ile tutarlı kaldığını ve deney sonrası gözlenen ıslak alan olmadığını ve idrar emiliminin başarılı bir şekilde önlendiğini göstermektedir. Ek olarak, yöntem aynı anda dış üretral sfinkter (EUS) ile bağlantılı elektrotları stabilize etti, stabil elektromiyografi (EMG) sinyallerini sağladı ve uyanmış farenin hareketi ve deneycinin manipülasyonundan kaynaklanan artefaktları en aza indirdi. Metodolojik ayrıntılar, sonuçlar ve çıkarımlar tartışılmakta ve klinik öncesi araştırmalarda ürodinamik tekniklerin geliştirilmesinin önemi vurgulanmaktadır.

Introduction

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

İdrarın depolanması ve serbest bırakılması, idrar kesesinin ve dış üretral sfinkterin (EUS) koordineli aktivitesine bağlıdır. Nörojenik mesane gibi bazı patolojilerde, hem mesane detrusor kasları hem de sfinkter işlevsiz hale gelebilir ve özellikle travmatik omurilik yaralanması (SKY) sonrası önemli mesane sorunlarına yol açabilir1.

Küçük kemirgenler, alt üriner sistemin (LUT) klinik öncesi işlevini incelemek için deneysel bir model olarak yaygın olarak kullanılır2. Dolgu Sistometrisi (FC) ve EUS elektromiyografi (EUS-EMG) kayıt teknikleri, yöntem seçimine, doğru ölçüme ve sonuçların yorumlanmasına bağlı olarak kesin objektif bilgiler sağlayabilir3. Ürodinamik testler, işeme hacmini (VV), işeme verimliliğini (VE) ve mesane kapasitesini değerlendirmek için yaygın olarak kullanılır4. VE, mesanenin kendini ne kadar etkili bir şekilde boşaltabildiğini ölçer. Boşluklu hacmin, boşluklu ve artık hacimlerin toplamına (VV+RV) bölünmesiyle hesaplanır. Öte yandan, mesane kapasitesi, VV'nin (idrar yaparken dışarı atılan idrar miktarı) RV'ye (idrar yaptıktan sonra mesanede kalan idrar miktarı) eklenmesiyle hesaplanır5. Bu nedenle, VV ve RV ölçümü, diğer parametrelerin çıkarılmasının anahtarıdır.

Ürodinamik testler sırasında farelerde VV'nin hassas bir şekilde ölçülmesi çeşitli zorluklar ortaya çıkarmaktadır. Kemirgenlerin idrarı, yüzüstü pozisyonda fiziksel olarak kısıtlandığında, yerçekimininetkisiyle ventral karın duvarından aşağı doğru çekilme eğilimindedir 6. Bu fenomen, idrarın karın kürkü ve derisi tarafından emilmesine yol açabilir ve bu da atılan idrar hacmini hafife alır. Fare tarafından üretilen az miktarda idrar göz önüne alındığında, bu absorbansın sonuçların doğruluğu üzerindeki etkisi daha da belirgindir7. Ayrıca, SCI modellerinde, detrusor sfinkter dissinerjisinin (DSD) etkisine bağlı olarak VV genellikle normal farelerden daha düşüktür, bu da sızıntı noktası basınçları ve kürk tarafından idrar emilimi riskini artırır8. Bu faktörlerin sonuçlar üzerinde önemli bir etkisi vardır. Bu nedenle, farelerde terminal ürodinamik çalışmalar sırasında VV ve RV'nin doğru ölçümü çok önemlidir9. Şu anda, fare modellerinde idrar hacminin doğru bir şekilde nasıl ölçüleceği konusunda yayınlanmış literatürde sağlanan metodolojilerde ayrıntı eksikliği vardır.

Siyanoakrilat yapıştırıcı, hızlı ve etkili bağlanma özellikleri nedeniyle insan ve hayvan modellerinde cerrahi prosedürlerde yaygın olarak kullanılan bir yapıştırıcı türüdür 10,11,12. Bu yapıştırıcı, cilde uygulandığında güçlü ve esnek bir bağ oluşturduğu için özellikle yaraları ve yırtıkları kapatmak için kullanışlıdır13. Ayrıca, kürk ve yaralarla temas edebilecek idrar ve ıslaklığa karşı büyük bir bariyer olabilir11.

Bu makalede, uyanık farelerde sistometri ve EUS-EMG kayıtlarında kesin sonuçlar elde etmek için siyanoakrilat yapıştırıcı kullanan yeni ve uygun maliyetli bir teknik geliştirdik. Bu yöntem, mesane disfonksiyonunun altında yatan nedenleri anlamada ve AÜS bozuklukları için daha etkili tedaviler geliştirmede faydalı olacaktır.

Protocol

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Hayvan çalışma protokolü, Indiana Üniversitesi Tıp Fakültesi Kurumsal Hayvan Bakımı ve Kullanımı Komitesi tarafından onaylandı. Onay Kodu: 21098MD/R/MSS/HZ Onay Tarihi: 29 Eylül 2021.

1. Kateterin hazırlanması

  1. 30 cm'lik bir polietilen PE-30 tüp (.017 inç x .030 inç) kesin. Tüpün bir ucunu alevlendirmek için bir çakmak kullanın, aleve temas etmediğinden emin olun ve tüp uygun şekilde yuvarlak, çan şeklinde bir uç oluşturduğunda çakmağı geri çekin.
  2. 25G iğnenin yaklaşık 3 / 4'ünü tüpün diğer ucuna dikkatlice yerleştirin. 1 mL'lik bir şırınga hazırlayın ve steril% 0.9 NaCl ile doldurun. Şırıngayı 25 G iğneye bağlayın.
  3. Uygun bir yuvarlak uç olup olmadığını ve iğnenin uçlarından sızıntı olup olmadığını kontrol etmek için salini hafifçe demleyin. Basınç hissedilmediğinden ve salinin kateterden düzgün bir şekilde aktığından emin olun.

2. Elektrotların hazırlanması

  1. 20 cm uzunluğunda 2 çelik tel hazırlayın. Çelik telleri alın ve telin 5 mm'sini sıyırmak için kaplama bölgesinin her iki ucuna kum cilası uygulayın.
  2. 25G'lik bir iğne alın ve telin bir tarafına yerleştirin. Tele zarar vermemek için iğneyi dikkatli bir şekilde soktuğunuzdan emin olun. Telin soyulmuş kısmını bir kanca gibi bükün. Kanca, telin EUS kasına bağlanmasına yardımcı olacaktır.
  3. Pimi şeritli telin diğer ucuna takmak için lehim kullanın. Lehimleme, pimi kabloya sabitlemeye ve güçlü bir bağlantı sağlamaya yardımcı olacaktır. Kalay-kurşun lehimlemeyi eriyene ve teli ve pimi kaplayana kadar ısıttığınızdan emin olun.

3. Hayvanın hazırlanması

  1. Dişi C57BL/6 fareyi (8 haftalık, 18-20 g vücut ağırlığında) 12 saatlik aydınlık-karanlık döngüsü ve suya ve standart gıda peletlerine sınırsız erişim ile Kurumsal Hayvan Bakımı'na göre hayvan tesisinde barındırın.

4. Ameliyat sırasında anestezi

  1. Hayvanları %2 izofluran ve saf oksijen (1 L/dk) odasına yerleştirin. Maskeye aktarmadan önce negatif ayak parmağı çimdikleme muayenesi kullanarak hayvanın tam anestezisini onaylayın. Onaylandıktan sonra, gaz durumunu bir maske ile değiştirin.
  2. Anestezi maskesinin steril cerrahi alan üzerinde uygun pozisyonda sabitlendiğinden emin olun. Anestezi uygulamaya devam etmek için hayvanı, burnu inhalasyon küçük bir maske (% 2 izofluran ile 0.8-1 L / dak) ile steril örtünün üzerine sırtüstü yerleştirin.

5. Cerrahi hazırlık

  1. Hayvanın uzuvlarını bantla sabitleyin. Alt karın bölgesinin kürkünü ve üretral meatus (genital bölge) çevresini tıraş etmek için elektrikli bir tıraş bıçağı kullanın.
  2. Gözlerde herhangi bir olası kuruluğu önlemek için bir göz merhemi sürün. Povidon-iyot solüsyonu kullanarak traş edilmiş alanı hazırlayın ve solüsyonu %70 etanol ile silin. Ameliyat bölgesine steril bir örtü koyun.

6. Cerrahi prosedür

  1. Mesane kateter implantasyonu
    1. Cerrahi mikroskop altında, Metzenbaum düz, künt makas kullanılarak, abdominopelvik cildin orta hattında 1-2 cm'lik bir kesi oluşturulur. Kesi yarasından mesaneyi ortaya çıkarmak için orta hattaki fasya ve kasları kesmeye devam edin.
    2. Mesane insizyonel yaradan göründüğünde, cerrahi alanın net bir görüntüsünü elde etmek için çevredeki organları veya dokuları gerektiği gibi geri çekmeye devam edin. Mesane üzerinde gereksiz manipülasyon veya gerginlikten kaçınmaya dikkat edin, çünkü bu, idrar kaçırma veya çevredeki yapıların yaralanması gibi komplikasyonlara yol açabilir.
    3. Mesane kubbesini kavrayın ve konik uçlu bir iğne ile 5-0 emilmeyen monofilament sütür kullanarak bir çanta ipi yerleştirin.
    4. Mikro makas kullanarak, çanta ipi içinde küçük bir sistostomi oluşturun ve idrar dışarı akana kadar bir delik açın.
    5. Kateterin yuvarlak uçlu ucunu kavrayın ve delikten geçirin. Tüpün ucu delikten geçtikten sonra, çanta ipini tüpün etrafına dikin. Ardından, uç kısmı dikişin altında hissedilene kadar tüpü yavaşça dışarı doğru çekin.
    6. Mesaneyi şişirmek için tüpün diğer ucundan 1 mL salini yavaşça infüze edin. Kateter çevresinde herhangi bir sızıntı olup olmadığını kontrol edin. Sızıntı varsa, ek bir dikiş yerleştirin.
    7. Salin üretradan çıktığında, mesaneyi sıkıştırmak için salini geri çekin.
  2. EUS elektrot implantasyonu (Şekil 1)
    1. Karın kesisini pelvik tabana kadar uzatmak için cerrahi makas kullanın.
    2. Mesane ile aynı hizada, kasları ve zarları pudendal kanallara hareket ettirin ve üretra ve dış sfinkter kasını bulun. İliak ve orta kaudal damarlara ve pudendal sinirlere zarar vermemeye dikkat edin.
    3. Elektrot içeren iğneyi kullanarak cildi üretral meatustan 1 cm uzakta iki taraflı olarak delin.
    4. Kanca ucunu forseps ile dikkatlice tutun ve iğneyi yavaşça ciltten çekin.
    5. Elektrotun ucunu kullanarak, EUS kasını iki taraflı olarak dikkatlice asın. Çok derin yumruklamaktan kaçının, çünkü bu kaslara zarar verebilir ve bu da olası idrar sızıntısına neden olabilir.
    6. Pelvik ve karın kaslarını ve cildini dikmek için 3-0 emilmeyen monofilamenti kullanın.
  3. Cildin su geçirmez hale getirilmesi
    1. Elektrotları yerine sabitlemek için elektrotların çıktığı cilde ince bir tabaka siyanoakrilat yapıştırıcısı sürün.
    2. Siyanoakrilat yapıştırıcıyı üretral meatusu çevreleyen 1 cm uzağa ve karın ve dikişli bölgeye 3 cm daha uzatarak uygulayın. Yapıştırıcı ile teması önlemek için, meatusu forseps ile dikkatlice tutun.
    3. Yapıştırıcıyı kurutmak için hızlandırıcı sıvısını çekmek için 0,5-10 μL'lik bir mikropipet kullanın.
      DİKKAT: Hızlandırıcı sıvı yanıcı bir sıvıdır.
    4. Uygun yapışma reaksiyonunu sağlamak için hızlandırıcı sıvıyı ekleyin. Bu, yapıştırıcının daha hızlı kurumasına yardımcı olacak ve güvenli bir şekilde oturmasını sağlayacaktır.
  4. Ürodinami hazırlık
    1. 4,5 cm uzunluğunda, genişliğinde ve derinliğinde ters polistiren bir tartım teknesi hazırlayın. Farenin üretra etusunu bu boşluğa koymak için 4 cm'lik bir tabana sahip üçgen şeklinde kesin. Tek kullanımlık taban kalıbını, 37 mm x 24 mm x 5 mm, idrarı toplamak için boşluğun altına koyun.
    2. Fareyi yüzüstü pozisyonda yeniden konumlandırın ve dikkatlice gaz maskesi ile donatılmış özel yapım bir plakaya taşıyın.
    3. Üretral meatusun oluk içinde düzgün bir şekilde yerleştirildiğinden emin olun. Farenin başını ve uzvunu bantla nazikçe tutun ve fare tam bilincini geri kazanana kadar plakayı bir ısıtma yastığının üzerine yerleştirin (Şekil 2).
    4. Sistometriyi yalnızca fare tamamen uyanık olduğunda, yani anesteziden iyileştikten en az 40 dakika sonra gerçekleştirin.

7. Sistometri ve EUS-EMG kayıt hazırlığı

  1. İnfüzyon pompasını üreticinin talimatlarına göre kurun ve kalibre edin.
  2. 19.05 mm çapında 20 mL'lik bir şırınga alın ve oda sıcaklığında steril% 0.9 NaCl ile doldurun. Şırıngayı infüzyon pompasına sabitleyin. İnfüzyon hızını 0.01 mL / dk'ya ayarlayın.
  3. Şırıngayı PE-30 tüpü ile üç konektörün bir tarafına bağlayın. Mesane kateterini diğer tarafa bir basınç dönüştürücüsüne bağlayın. Mesane kateterini bağlamadan önce, tüm hava kabarcıklarını çıkardığınızdan emin olun.
  4. Basınç dönüştürücüyü fare mesanesi ile aynı seviyeye sabitleyin. Basınç dönüştürücü, bir amplifikatör aracılığıyla veri toplama sistemine bağlanır.
  5. Bir topraklama hattı kancasını cilde ve diğerini elektrot konektör yerlerine takın. Yazılımdaki basıncı kaydedin.
  6. Yazılımı başlattıktan sonra intravezikal basıncı (IVP) ve EUS-EMG sinyallerini kontrol edin. Örnek adını kaydedin ve saati ayarlayın.
  7. Pompa infüzyonunu başlatın. Sinyalleri kaydedin.

Results

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Verilerin analizinde sistometri ve EUS-EMG aktivite izlemeleri kullanıldı. Sürekli sistometri yöntemi, salinin mesaneye infüzyonunu ve aynı anda mesanedeki basınç ve hacim değişikliklerinin ölçülmesini içerir. VV'yi ölçmek için, 0.01 mL / dk hızında 0.4 mL salin infüze edildi ve idrar bir kapakta 40 dakika boyunca toplandı. İşeme sonrası rezidüel (PVR), salinin kateterden aspire edilmesiyle elde edilebilir. Tutkalsız normal farelerde, VV ve RV'nin toplamı genellikle 0.4 mL'den azdı. Deneyden sonra, idrarın emilmesi nedeniyle karın içindeki ve meatusu çevreleyen kürk ıslandı (Şekil 3A). Küçük kürkleri kaplamak için ince bir tutkal tabakası uygulandıktan sonra, VV ve RV toplamının 0.4 mL olduğu ve ıslak alan olmadığı gösterildi (Şekil 3B,C).

Elde edilen sistometri izleri, maksimum işeme mesane kasılma basıncı (27.2 cmH2O), kasılma süresi (16.26 s) ve kasılmalar arası aralık (4.48 dakika) dahil olmak üzere çeşitli parametrelerin ayrıntılı bir analizini sağlamıştır. Aynı zamanda, Şekil 4'te gösterildiği gibi, farelerde intravezikal basınç ve EUS-EMG sinyallerinin iyi bir kaydını yaptık.

Birçok fare ürodinamik ölçümü anestezi altında yapılır14. Bu, elektrik sinyallerinin gürültüsünü ve hayvanın hareketinden kaynaklanan idrar kaybını azaltmak için uygun bir yöntem gibi görünse de, anestezik ilaçların idrar akışını etkileyebileceğini ve bunun da yanlış veya güvenilmez sonuçlara yol açabileceğini göz önünde bulundurmak önemlidir15. Bu nedenle, uyanık hayvanlarda ürodinamik kayıt, fizyolojik duruma daha yakın sonuçlar elde etmek için daha popülerdir. Uyanık hayvanlarda ürodinamik kayıt genellikle izofluran16'dan 40-50 dakikalık bir iyileşme periyodundan sonra başlar. Bu süreç, anesteziye ihtiyaç duymadan rahat ve konforlu olduklarından emin olmak için farelerin yakından izlenmesini içerir. Bilinçli bir farenin hareketinin ürodinamik sinyalleri 5,14 etkileyebileceği ve sızıntı noktası basıncı, VV ve VE17 gibi belirli parametrelerin yanlış ölçümlerine yol açabileceği çeşitli deneylerle gözlemlenmiştir. Sonuç olarak, daha güvenilir ürodinamik sonuçlar elde etmek için bilinçli fareleri kısmen kısıtlayan bir yöntem uyguladık. Bununla birlikte, sınırlı kısıtlama ile bile, bilinçli fareler anesteziden hemen uyandıklarında hala mücadele ederler, bu da elektrot kancası ile EUS arasında kopmaya veya kararsız temasa neden olabilir ve EUS-EMG sinyallerinde önemli bir gürültü oluşturabilir. Şekil 3B'de gösterildiği gibi, bu artefaktları en aza indirmek için, elektrotların ciltten çıkış noktasında yapıştırıcı ile sabitlenmesi yaklaşımını benimsedik. Bu yöntemin, elektrotların hareketini ve üretebilecekleri müteakip artefaktları en aza indirmede etkili olduğu kanıtlanmıştır.

figure-results-1
Şekil 1: Elektromiyografi elektrotlarının yer değiştirmesi. Elektrotların (sarı yıldız) dış üretral kaslara (EUS; siyah oklar) bilateral olarak implantasyonu. Bu rakamın daha büyük bir sürümünü görüntülemek için lütfen buraya tıklayın.

figure-results-2
Şekil 2: Uyanık farenin kısıtlanması. Kateter ve elektrotların implantasyonundan sonra, ürodinamik kayıt sırasında stabilite için fare plaka üzerinde kısıtlandı. Bu rakamın daha büyük bir sürümünü görüntülemek için lütfen buraya tıklayın.

figure-results-3
Şekil 3: Ürodinamik kayıt sonrası abdominal ve meatus bölgeleri. (A) Karın ve genital bölgelerde geniş bir ıslak alan (kırmızı çizgi ile konturlanmış) görüldü. (B) Kayıttan sonra kuru, su geçirmez karın ve genital bölgeler siyanoakrilat yapıştırıcı (kırmızı çizgi ile konturlanmış) ile oluşturuldu. (C) Ürodinamik kayıt sırasında meatusta oluşan ve deri ve kürk tarafından emilmeden uzun süre damla olarak kalan bir idrar damlası (sarı ok). Bu rakamın daha büyük bir sürümünü görüntülemek için lütfen buraya tıklayın.

figure-results-4
Şekil 4: Uyanık ve kısıtlanmış bir dişi farede sistometri ve eksternal üretral sfinkter elektromiyografisinin (EUS-EMG) temsili izleri. (A) İz A: Sürekli sistometrogram (CMG) ve EUS-EMG'nin eş zamanlı kayıtları (sırasıyla üst ve alt izler). (B) B izi, farklı zaman ölçeklerine sahip dikdörtgen bir kutu ile gösterilen A izinin genişletilmiş kısmıdır. İşeme fazı sırasında, aralıklı işeme, düşük tonik ve EUS-EMG aktivitesinin azalma dönemlerinde (alt iz; oklar) meydana gelen CMG kaydındaki intravezikal basınçtaki azalmalarla (üst iz; oklar) çakıştı. Bu rakamın daha büyük bir sürümünü görüntülemek için lütfen buraya tıklayın.

Discussion

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Bu ürodinamik teknik, uyanık ve kısıtlanmış farelerde idrar hacmini ve EUS-EMG sinyalini ölçmek için geliştirilmiş bir prosedürü tanımlar. Üretral meatus ve abdominal bölge çevresinde kürk varlığı, idrarı emerek VV ölçümünün doğruluğunu etkileyebilir. Üretral meatus ve karın bölgesini çevreleyen kürk ameliyattan önce dikkatlice traş edilmiş olsa da, bu bölgelerdeki ve derideki kalan küçük tüyler hala idrarı emiyor ve genellikle kayıttan sonra karın bölgesinde ıslak bir alan bırakıyordu. Bu sorun, üretral meatus ile çevresindeki deri arasındaki son derece kısa mesafe nedeniyle dişi kemirgenlerde özellikle belirgindir18. Bu teknikte, su geçirmez bir cilt yüzeyi oluşturmak ve ürodinamik kayıt sırasında idrar hacminin hassas bir değerlendirmesini sağlamak için karın ve çevresindeki üretral cilde siyanoakrilat yapıştırıcı uygulandı ve mesane fonksiyonunun daha iyi anlaşılmasını sağladı. Yapıştırıcı hassas bir şekilde uygulandı ve meatusu çevreleyen ve yakınındaki cildi kapladığından emin olundu. Yapıştırıcının uygulanmasının amacı, kürklerin herhangi bir idrarı emmesini önleyecek su geçirmez bir bariyer oluşturmaktı. Yapıştırıcı, üretral meatusun herhangi bir topaklanmasını veya tıkanmasını önlemek için özen gösterilerek eşit şekilde yayıldı. Prosedürün kaydedilen sonuçları, VV ve RV'nin toplamı infüzyon hacminde sabit kaldığı ve daha fazla ıslak alan gözlenmediği için hedefimize tamamen ulaşıldığını doğruladı. Ölçümlerin doğruluğunu sağlamak için, deneyden sonra mesaneyi kontrol ettik ve boş olduğu tespit edildi. Mesaneyi kontrol etmenin bu ek adımı, idrar tutma olasılığını ortadan kaldırdığı ve bir şırıngadan çektiğimiz miktar ile gerçek RV miktarı arasında bir tutarsızlığa neden olduğu için çok önemlidir.

Bu yöntemin sınırlamaları vardır: 1) boylamsal ve çoklu zaman noktası etütleri için uygun değildir. 2) Serbestçe hareket eden bir fareye uygulanamaz. 3) elektrotların EUS'den ayrılması meydana gelirse, karnı açmak ve yeniden takmak zordur. 4) Siyanoakrilat yapıştırıcılar, kullanım kolaylığı ve etkinliği nedeniyle birçok cerrahi ortamda değerli bir araç olsa da, olası riskleri en aza indirmek için bunları dikkatli kullanmak ve uygun güvenlik protokollerini takip etmek önemlidir. Siyanoakrilat genellikle cilt için güvenlidir, ancak onunla sık temastan kaçınılmalı ve araştırmacılar uygun kişisel koruyucu önlemleri almalıdır. Siyanoakrilat yapıştırıcılar solunduğunda toksik buharlar açığa çıkarabilir. Bu buharları soluma riskini en aza indirmek için, araştırmacılar çalışma ortamında daha yüksek nem seviyelerini korumalı ve oda havalandırmasını optimize etmelidir19. Buharların toksisitesini daha da azaltmak için özel klima filtreleri de kullanılabilir.

Genel olarak, bu deney, ürodinamik kayıt sırasında işeme idrarının ölçülmesinin doğruluğu hakkında önemli bilgiler sağladı ve infüzyondan sonra toplam VV ve RV miktarında tutarsızlıklara yol açabilecek potansiyel hata kaynaklarının belirlenmesine yardımcı oldu.

Disclosures

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Yazarların ifşa edecek hiçbir şeyi yok.

Acknowledgements

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Bu çalışma NIH-NINDS (R21NS130241), IND DEPT HLTH (55051, 74247, 74244) ve US ARMY (HT94252310700) tarafından desteklenmiştir.

Materials

List of materials used in this article
NameCompanyCatalog NumberComments
HızlandırıcıBOB SMITH INDUSTRIESBSI-152
Siyanoakrilat TED PELLA, Inc14478
Tek kullanımlık taban kalıbıTED PELLA, Inc27147-4
İnfüzyon pompasıHarvard Aparatı PHD ULTRA70-3006
İzofluranHenry Schein Inc1182097
PINDünyası Hassas Aletler5482
Polietilen Boru 30Braintree Scientific IncPE30
Steril Tartı TeknesiHEATHROW SCIENTIFIC797CK2
Windaq/Lite DATAQ INSTRUMENTS249022

References

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
  1. Neurogenic bladder and neurogenic lower urinary tract dysfunction. Statpearls. , (2024).">Leslie, S. W., Tadi, P., Tayyeb, M. Neurogenic bladder and neurogenic lower urinary tract dysfunction. Statpearls. , (2024).
  2. Assessing neurogenic lower urinary tract dysfunction after spinal cord injury: Animal models in preclinical neuro-urology research. Biomedicines. 11 (6), 1539(2023).">Doelman, A. W., Streijger, F., Majerus, S. J., Damaser, M. S., Kwon, B. K. Assessing neurogenic lower urinary tract dysfunction after spinal cord injury: Animal models in preclinical neuro-urology research. Biomedicines. 11 (6), 1539(2023).
  3. Best practices for cystometric evaluation of lower urinary tract function in muriform rodents. Neurourol Urodyn. 39 (6), 1868-1884 (2020).">Fraser, M. O., et al. Best practices for cystometric evaluation of lower urinary tract function in muriform rodents. Neurourol Urodyn. 39 (6), 1868-1884 (2020).
  4. Sex differences in lower urinary tract function in mice with or without spinal cord injury. Neurourol Urodyn. 43 (1), 267-275 (2024).">Hashimoto, M., et al. Sex differences in lower urinary tract function in mice with or without spinal cord injury. Neurourol Urodyn. 43 (1), 267-275 (2024).
  5. Characterization of bladder and external urethral activity in mice with or without spinal cord injury-a comparison study with rats. Am J Physiol Regul Integr Comp Physiol. 310 (8), R752-R758 (2016).">Kadekawa, K., et al. Characterization of bladder and external urethral activity in mice with or without spinal cord injury-a comparison study with rats. Am J Physiol Regul Integr Comp Physiol. 310 (8), R752-R758 (2016).
  6. The effects of periurethral muscle-derived stem cell injection on leak point pressure in a rat model of stress urinary incontinence. Int Urogynecol J. 14, 31-37 (2003).">Lee, J., et al. The effects of periurethral muscle-derived stem cell injection on leak point pressure in a rat model of stress urinary incontinence. Int Urogynecol J. 14, 31-37 (2003).
  7. Evaluating the procedure for performing awake cystometry in a mouse model. J Vis Exp. (123), e55588(2017).">Mann-Gow, T. K., et al. Evaluating the procedure for performing awake cystometry in a mouse model. J Vis Exp. (123), e55588(2017).
  8. Time-dependent progression of neurogenic lower urinary tract dysfunction after pinal cord injury in the mouse model. Am J Physiol Renal Physioly. 321 (1), F26-F32 (2021).">Saito, T., et al. Time-dependent progression of neurogenic lower urinary tract dysfunction after pinal cord injury in the mouse model. Am J Physiol Renal Physioly. 321 (1), F26-F32 (2021).
  9. A novel urodynamic model for lower urinary tract assessment in awake rats. BJU Int. 115, 8-15 (2015).">Schneider, M. P., et al. A novel urodynamic model for lower urinary tract assessment in awake rats. BJU Int. 115, 8-15 (2015).
  10. Cyanoacrylate: A handy tissue glue in maxillofacial surgery: Our experience in alexandria, egypt. J Maxillofac Oral Surg. 12, 243-247 (2013).">Habib, A., Mehanna, A., Medra, A. Cyanoacrylate: A handy tissue glue in maxillofacial surgery: Our experience in alexandria, egypt. J Maxillofac Oral Surg. 12, 243-247 (2013).
  11. The influence of wound closure techniques after surgical decompression in patients with carpal tunnel syndrome on sleep disturbance and life quality: A prospective comparison of surgical techniques. Clin Pract. 14 (2), 546-555 (2024).">Sunjic Roguljic, V., Roguljic, L., Jukic, I., Kovacic, V. The influence of wound closure techniques after surgical decompression in patients with carpal tunnel syndrome on sleep disturbance and life quality: A prospective comparison of surgical techniques. Clin Pract. 14 (2), 546-555 (2024).
  12. Comparison of 2-ethyl-cyanoacrylate and 2-butyl-cyanoacrylate for use on the calvaria of cd1 mice. J Am Assoc Lab Anim Sci. 55 (2), 199-203 (2016).">Sohn, J. J., Gruber, T. M., Zahorsky-Reeves, J. L., Lawson, G. W. Comparison of 2-ethyl-cyanoacrylate and 2-butyl-cyanoacrylate for use on the calvaria of cd1 mice. J Am Assoc Lab Anim Sci. 55 (2), 199-203 (2016).
  13. Injectable, self-healing hydrogel adhesives with firm tissue adhesion and on-demand biodegradation for sutureless wound closure. Sci Adv. 9 (33), 4327(2023).">Ren, H., et al. Injectable, self-healing hydrogel adhesives with firm tissue adhesion and on-demand biodegradation for sutureless wound closure. Sci Adv. 9 (33), 4327(2023).
  14. Muro-neuro-urodynamics; a review of the functional assessment of mouse lower urinary tract function. Front Physiol. 8, 240395(2017).">Ito, H., Pickering, A. E., Kanai, A., Fry, C. H., Drake, M. J. Muro-neuro-urodynamics; a review of the functional assessment of mouse lower urinary tract function. Front Physiol. 8, 240395(2017).
  15. Anesthetic protocols for urodynamic studies of the lower urinary tract in small rodents-a systematic review. PloS One. 16 (6), e0253192(2021).">Abdelkhalek, A. S., Youssef, H. A., Saleh, A. S., Bollen, P., Zvara, P. Anesthetic protocols for urodynamic studies of the lower urinary tract in small rodents-a systematic review. PloS One. 16 (6), e0253192(2021).
  16. Short-term memory impairment after isoflurane in mice is prevented by the α5 γ-aminobutyric acid type a receptor inverse agonist l-655,708. J Am Soc Anesthesiol. 113 (5), 1061-1071 (2010).">Saab, B. J., et al. Short-term memory impairment after isoflurane in mice is prevented by the α5 γ-aminobutyric acid type a receptor inverse agonist l-655,708. J Am Soc Anesthesiol. 113 (5), 1061-1071 (2010).
  17. Effects of anesthesia on cystometry and leak point pressure of the female rat. Life Sci. 69 (10), 1193-1202 (2001).">Cannon, T. W., Damaser, M. S. Effects of anesthesia on cystometry and leak point pressure of the female rat. Life Sci. 69 (10), 1193-1202 (2001).
  18. Morphology of the external genitalia of the adult male and female mice as an endpoint of sex differentiation. Mol Cell Endocrinol. 354 (1-2), 94-102 (2012).">Weiss, D. A., et al. Morphology of the external genitalia of the adult male and female mice as an endpoint of sex differentiation. Mol Cell Endocrinol. 354 (1-2), 94-102 (2012).
  19. Toxicity of cyanoacrylate adhesives and their occupational impacts for dental staff. Ind Health. 42 (2), 207-211 (2004).">Leggat, P. A., Kedjarune, U., Smith, D. R. Toxicity of cyanoacrylate adhesives and their occupational impacts for dental staff. Ind Health. 42 (2), 207-211 (2004).

Reprints and Permissions

Request permission to reuse the text or figures of this JoVE article

Request Permission

Tags

Mouse UrodynamicsCystometry RecordingExternal Urethral SphincterElectromyography SignalsUrine MeasurementSpinal Cord InjuryWaterproof Skin BarrierBladder CatheterizationPressure TransducerNeurogenic Bladder

Related Articles