Yöntem makalesi

Elektrokoagülasyon Yoluyla Oluşturulan Obstrüktif Kronik Pankreatit Modeli

DOI:

10.3791/67061

⸱

31 Ekim 2025

 ,  ,  ,  ,  ,  ,  ,  ,  ,  ,  ,  ,  , 
1Department of Gastroenterology, Changhai Hospital, Naval Medical University, 2National Key Laboratory of Immunity and Inflammation, Naval Medical University, 3College of Basic Medical Science, Naval Medical University, 4Department of Gastroenterology, Shanghai Pudong New Area Gongli Hospital Shanghai, 5Department of Gastroenterology. Affiliated Yueqing Hospital, Wenzhou Medical University

* These authors contributed equally

Bu makalede

Özet

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Bu protokol, pankreas kanalının görselleştirilmesini ve pankreas kanalı tıkanıklığına neden olmak için pankreas kanalının elektrokoagülasyonunu içeren kronik obstrüktif pankreatitin modellenmesine yönelik yeni bir yaklaşımı açıklamaktadır.

Özet

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Kronik pankreatit (SP), pankreası tahrip edebilen, diyabete yol açabilen ve pankreas kanseri riskini artırabilen, hastaların yaşam kalitesini ciddi şekilde etkileyebilen ciddi bir inflamatuar durumdur. SP'nin ele alınması gastroenterolojide kritik bir araştırma odağıdır. 8 haftalık C57BL/6 erkek fareleri kullanarak mevcut olanların sınırlamalarının üstesinden gelmek için yeni bir hayvan modeli geliştirdik.

Anestezi uygulanmış farelerde karın ameliyatı ile pankreası açığa çıkardıktan sonra, metilen mavisinin girmesini önlemek için karaciğerin yakınındaki ana safra kanalını klempledik. Boyayı enjekte etmek için safra kanalına bir kılcal damar yerleştirildi ve pankreas kanalı boyandıktan sonra. Pankreas kanalı görüntülendikten sonra, ana safra kanalı ile superior pankreatikoduodenal arter arasındaki pozisyonun orta ve alt 2/3'ünde elektrokoagülasyon için pankreas seçildi. Mavi boyama solüsyonu tanınamayınca elektrokoagülasyon sonlandırıldı. Daha sonra karın kapatıldı ve fareler normal şekilde büyütüldü. Ameliyattan 7, 14, 21 ve 28 gün sonra pankreas HE boyama, Masson boyama ve immünohistokimya kullanılarak incelendi ve kan serumu biyokimyasal parametreler açısından analiz edildi. 14 gün sonra patoloji, serum biyokimyasal parametreleri gibi kronik pankreatitin özellikleriyle yakından eşleşti.

Giriş

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Kronik pankreatit (SP), pankreasın tahrip olmasına yol açan, karın ağrısı ve sindirim bozuklukları olarak kendini gösteren ciddi, ilerleyici inflamatuar bir hastalıktır. Zamanla şeker hastalığına neden olabilir ve pankreas kanseri riskini artırabilir. SP'nin hayvan modelinin oluşturulması ve etkili terapötik stratejilerin geliştirilmesi bu nedenle çok önemlidir.

Pankreas ekzokrin asiner hücreleri çok sayıda sindirim enzimi üretir ve salgılar. Organeller ve protein homeostazı regülasyonu bozulduğunda, hücre içi tripsinojenin uygun olmayan aktivasyonuna yol açarak sonuçta asiner hücre hasarına ve pankreatit1 gelişimine yol açabilir.

Önceki çalışmalar, fare modellerinin, özellikle tekrarlayan serulein enjeksiyonları2 ve pankreas kanallarının cerrahi ligasyonu 3,4 ile indüklenenlerin, SP'nin incelenmesinde etkili olduğunu göstermiştir. Serulein, kronik bir duruma geçebilen akut pankreatiti indükleyebilir, ancak spesifik pankreas kanalı tıkanıklığının olmaması, obstrüktif pankreatitin simülasyonundaki klinik önemini sınırlar. Cerrahi ligasyon, insan SP'sinin obstrüktif doğasını daha iyi taklit etse de, oldukça invazivdir, gerçekleştirilmesi zordur ve sıklıkla ciddi sistemik etkilere yol açarak lokalize duktal patolojilerin incelenmesini engeller.

Bu sınırlamaları ele alarak, elektrokoagülasyon yoluyla yeni bir obstrüktif SP modeli önerilmiştir. Pankreas kanalı ligasyonu prensibine benzer şekilde, pankreas kanalını tıkar ancak gerçekleştirilmesi daha kolaydır ve başarı oranı daha yüksektir. Araştırmacılar, domuzların ana pankreas kanalındaki radyofrekans ablasyonunun pankreas atrofisini5 indüklemek için güvenli ve etkili bir yöntem olduğunu öne sürmüşlerdir, bu da ana pankreas kanalının yüksek frekanslı elektrokoagülasyonla kesilmesinin benzer etkiler yaratabileceğini düşündürmektedir. Bu teknik, retrograd pankreas kanalı ponksiyonu ve duktal boyama için metilen mavisi solüsyonu enjeksiyonunu ve ardından lokalize duktal obstrüksiyonu indüklemek için elektrokoagülasyon içerir (Şekil 1). Bu yaklaşım, yaygın inflamatuar yanıt ve sistemik komplikasyonlardan kaçınırken, insan obstrüktif SP'sini taklit eden inflamasyon ve fibrozu hızlandırır. Geleneksel modellerle karşılaştırıldığında, elektrokoagülasyon modeli çeşitli avantajlar sunar: özellikle pankreas kanalını hedef alır, değişkenliği azaltır ve sistemik komplikasyonları hafifletir. SP'de duktal tıkanıklığın altında yatan mekanizmaları ve hastalığın ilerlemesindeki rolünü anlamak için hastalığa daha özgü, tekrarlanabilir ve çok yönlü bir yaklaşım sağlar.

Protokol

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Açıklanan tüm hayvan deneyleri, Deniz Tıp Üniversitesi'nin Hayvanların Kullanımı ve Bakımı Komitesi tarafından onaylandı. Tüm cerrahi malzemelerin steril olduğundan emin olun.

1. Laparotomi

  1. Anestezi indüksiyonu için intraperitoneal enjeksiyon yoluyla ketamin (80 mg / kg) ve ksilazin (10 mg / kg) karışımı uygulayın. Pedal refleksi ve kornea refleksi kaybını değerlendirerek anestezi derinliğini izleyin. İşlem sırasında yeterli anesteziyi sürdürmek için gerektiğinde ek dozlar (başlangıç dozunun %20'si) sağlayın. Ayak parmaklarını sıkıştırarak yeterli anestezi derinliğini doğrulayın. Vücut ısısını korumak için hayvanı bir ısıtma yastığının üzerine yerleştirin.
  2. Göğüs ve alt karın arasındaki saçları (~2cm2) tıraş etmek için bir düzeltici kullanın. Cerrahi alanı dönüşümlü klorheksidin/iyot ve alkol turlarıyla 3 kez dezenfekte edin.
  3. Fareleri cerrahi bant kullanarak cerrahi plakaya sabitleyin ve steril örtüler uygulayın.
  4. Orta karın bölgesinde 2 cm uzunluğunda bir kesi yapmak için makas kullanın, ardından üst karın ile ksifoid çıkıntı arasında 1 cm'lik bir kesi yapın.

2. Pankreasın yerini tespit etmek ve açığa çıkarmak

  1. Bir karın genişletici yardımıyla, elektrokoagülasyonun yapılacağı pankreas bölgesini bulun.
  2. Steril bir pamuklu çubuk yardımıyla, sol üst karın bölgesinin arkasından duodenumu tanımlayın ve karaciğeri birbirine bağlayan şeffaf safra kanalını görselleştirmek için duodenumu çevirin.

3. Ameliyat bölgesinin izlenmesi

  1. Proksimal koledok kanalını geçici olarak tıkamak ve retrograd infüzyonun karaciğere sızmasını önlemek için mikrovasküler bir klips kullanın.
  2. İç çapı 0,25 mm ve dış çapı 0,35 mm olan polietilen boruyu dış çapı 0,25 mm olan iğneye bağlayın. Ampullanın etrafına yerleştirmek için bu cihazı kullanın. Duodenumun ana papillasını hedefleyin ve tüpü içine yerleştirin. Kateteri safra kanalına yarıya kadar yerleştirin ve yerleştirmeyi durdurun.
  3. İnfüzyon pompasını başlatın ve 50 μL/dak hızında 2 dakika boyunca 50 μL/10 g dozunda %0.2 metilen mavisi çözeltisini (%0.9 salin içinde seyreltilmiş) mikro pompalayın. Pankreas kanalı yavaş yavaş maviye dönecektir.
  4. Seansın sonunda polietilen tüpü dışarı çekin ve mikrovasküler klipsi çıkarın.

4. Elektrokoagülasyon prosedürünün indüksiyonu

  1. Steril pamuklu çubuklar yardımıyla pankreası sabitleyin ve elektrokoagülasyon bıçağını elektrokoagülasyon için mavi kısma yönlendirin. Elektrokoagülasyon bölgesi, ana safra kanalı ile superior pankreatikoduodenal arter arasındaki orta ve alt 2/3'tedir.
    1. Bu çalışmayı takip etmek için, aşağıdaki elektrokoagülasyon çalışma parametrelerini kullanın: voltaj: 220 V; Elektrot malzemesi: saf bakır; Tedavi süresi: elektrokoagülasyondan sonra metilen mavisi işaretli pozisyonun yerini sarı veya kahverengi alana kadar 2-3 saniye boyunca kan damarlarından kaçınan pankreas pozisyonunda tedavi; Operasyon Alanı Büyüklüğü: Farelere bağlı olarak elektrokoagülasyon alanı pankreasın arka kısmında yer alır. Koledok kanalı ile anterior superior pankreatikoduodenal arter arasındaki pozisyonu seçin; sıcaklık: 300 °C.
  2. Mavi boyama çözeltisi görülmediğinde elektrokoagülasyon işlemini sonlandırın.
  3. Karnı 4-0 emilebilir dikişlerle, cildi ise 4-0 emici olmayan monofilament polipropilen dikişlerle kapatın. Laparotomi ile dikiş arasında 20 dakikadan fazla zaman geçmemelidir.
  4. Kontrol grubuna deney fareleriyle aynı şekilde davranın, ancak infüzyon bileşenlerinin yalnızca metilen mavisinden oluştuğundan emin olun. Kontrol grubunda (Sham), metilen mavisi enjeksiyonunu uygulayın, ancak elektrokoagülasyon ameliyatı yapmayın.

5. Hayvanları hayatta tutmak

  1. Karın ameliyatından sonra farenin ameliyat sonrası yara bakımı için, kesiği kanama veya kızarıklık açısından günlük olarak inceleyin: kanama meydana gelirse, durdurmak için steril gazlı bezle hafif baskı uygulayın ve ardından pansumanı değiştirin ve kızarıklık varsa, günde bir kez eritromisin merhem uygulayın ve aynı zamanda farenin yarayı kemirmesini önlemek için önlemler alın. Analjezi ile ilgili olarak, ameliyattan hemen sonra intraperitoneal enjeksiyon yoluyla karprofen (5 mg / kg) uygulayın, ardından art arda 3 gün boyunca her 24 saatte bir uygulayın.

6. Analiz yöntemleri

  1. Serum biyokimyasal indekslerini ölçün ve elektrokoagülasyonun 7., 14., 21. ve 28. günlerinde pankreas dokusundaki patolojik değişiklikleri gözlemleyin.
  2. Hayvanı intraperitoneal enjeksiyon yoluyla ketamin (80 mg/kg) ve ksilazin (10 mg/kg) karışımı ile uyuşturun ve orbital pleksus yoluyla yaklaşık 500 μL kan toplayın.
  3. Göz küresinin hafif bir çıkıntısını kolaylaştırmak için cildi nazikçe arkadan tutun.
  4. Kılcal damarın ucunu gözün köşesine yerleştirin ve yaklaşık 30°-45°'lik bir açıyla göz küresinin altına nazikçe yerleştirin. Kan akmaya başlayana kadar kılcal damarı döndürün.
  5. Toplama işleminin sonunda gazlı bezle hafif baskı uygulayarak göz kapaklarını kapalı tutun.
  6. Serumu santrifüjleyin (1.200 × g, 15 dakika) ve amilaz, bilirubin ve hyaluronik asit tayini için süpernatanı çıkarın (adım 6.10).
  7. Fareleri ketamin-ksilazin ile uyuşturun, derin anestezi durumunda olduklarını doğrulayın (pedal refleksi veya kornea refleksi yok), ardından ötenazi için servikal çıkık yapın.
  8. Ötenazi yapılan fareleri 4 °C'de ameliyat masasına yerleştirin ve karın boşluğunu ortaya çıkarmak için karın duvarında bir "V" kesisi yapmak için makas ve forseps kullanın. Farelerin pankreasını çıkarın ve organı boyama için üç parçaya bölün.
  9. Pankreası %4 poliformaldehit çözeltisine sabitleyerek işleyin ve parafine gömün. Pankreasın parafin bloklarını 0,5 mm kalınlığında kesitler halinde kesin ve bunları hematoksilen ve eozin (HE) ile boyayarak ışık mikroskobu altında görselleştirme için Masson boyasını kullanın. İmmünohistokimyasal analiz için parafine gömülü pankreas dokusunu kullanın.
  10. Üreticilerin tavsiyelerine göre piyasada bulunan kitleri kullanarak amilaz (U/dL), bilirubin (mmol/L) ve hyaluronik asidi (μg/L) ölçün.

Sonuçlar

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Hayvanlar, her grupta toplam 20 fare olmak üzere bir kontrol grubuna (sadece elektrikli pıhtılaşma için metilen mavisi enjeksiyonu) ve elektrikli pıhtılaşma grubuna ayrıldı. Mortalite oranı kontrol grubunda %0 ve elektrik pıhtılaşma grubunda ; Modeli oluşturmanın başarı oranı (canlı model fare sayısı) q idi. Her grupta patolojik değerlendirme için bir düzine hayvan seçildi. Her gruptaki üç fare,HE, Masson ve immünohistokimyasal boyama için 7., 14., 21. ve 28. günlerde rastgele seçildi. Modelleme süreci Şekil 1'de gösterilmektedir. Metilen mavisi ile izledikten sonra, farelerin pankreasında koledok kanalı ile anterior superior pankreatikoduodenal arter arasındaki yeri elektrokoagüle ettik. Elektrokoagülasyon alanı, pozisyonun orta ve alt kısmında üçte birden daha az bir alana sahip olarak seçilirse, etkinin beklentileri karşılamaması muhtemeldir. Bununla birlikte, 2/3'ü aşarsa, farelerin elektrokoagülasyondan sonraki 72 saat içinde ölmesi muhtemeldir, bu da muhtemelen pankreas kanalı tamamen tıkandıktan sonra ortaya çıkan şiddetli akut pankreatit nedeniyledir.

Bundan, elektrokoagülasyondan sonraki 14. günde, farelerin pankreasında ( Şekil 1'de gösterildiği gibi) kronik pankreatitin histolojik bir görüntüsünün gözlemlenebileceği sonucuna vardık, bu tamamen bloke olmamış, ancak pankreas kanalının kısmi tıkanmasından sonra oluşmuştur. 7. günde dokuda hafif doku ödemi görüldü ve dokuda kronik pankreatit belirtisi görülmedi. 14. günde, pankreas dokusunun HE boyaması, pankreas asiner hücrelerinin dağıldığını gösterdi. 21. günde pankreas dokusundaki asiner hücrelerin iltihaplanma derecesi yavaş yavaş düzeldi. 28. günde dokudaki patolojik değişikliklerin tersine döndüğüne dair belirtiler vardı (Şekil 2). Bunun nedeni, elektrokoagülasyon işlemi sırasında yetersiz pankreas kanalı elektrokoagülasyonunun yanı sıra kısmi pankreas kanalı tıkanıklığından sonra kalan pankreas kanalının telafi edici etkisi olabilir.

Masson boyama, operasyon grubundaki fibrozis derecesinin sahte operasyon grubuna göre önemli ölçüde daha şiddetli olduğunu gösterdi. Kol-1 ve (alfa-düz kas aktini) SMA'nın boyanması için immünohistokimyasal skorlar daha yüksekti (Şekil 3). Pankreas dokusunda kronik pankreatit varlığı 14. günde patolojik analiz ile gözlendi ve öncesi ve sonrası değişiklikler sadece daha sonraki patolojik analizde HE boyama ile karşılaştırıldı. Serum biyokimyasal göstergelerinin analizi sonucunda, serum amilaz, bilirubin ve hyaluronik asit konsantrasyonlarının elektrik pıhtılaşma grubunda kontrol grubuna göre daha yüksek olduğu ve kronik pankreatitin başladığını gösterdiği bulundu (Şekil 4).

figure-results-1
Şekil 1: Farelerde elektrokoagülasyon yoluyla indüklenen obstrüktif kronik pankreatitin şematik gösterimi. Bu rakamın daha büyük bir sürümünü görüntülemek için lütfen buraya tıklayın.

figure-results-2
Şekil 2: Pankreas dokularının zaman içinde hematoksilen-eozin boyaması. Bu rakamın daha büyük bir sürümünü görüntülemek için lütfen buraya tıklayın.

figure-results-3
Şekil 3: Hematoksilin-eozin ve Masson boyaması ve pankreasın immünohistokimyası. Kısaltmalar: Col-1 = alfa-1 tip 1 kolajen; SMA = alfa-düz kas aktini. Bu rakamın daha büyük bir sürümünü görüntülemek için lütfen buraya tıklayın.

figure-results-4
Şekil 4: Farklı periyotlarda farelerin serum biyokimyasal indekslerinin temsili sonuçları. (A) Serum hyaluronik asit konsantrasyonu (μg/L). (B) Serum bilirubin konsantrasyonu (mmol/L). (C) Serum amilaz konsantrasyonu (U/dL). Bu rakamın daha büyük bir sürümünü görüntülemek için lütfen buraya tıklayın.

Tartışma

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Pankreatit riski ve şiddeti hem genetik hem de çevresel faktörler tarafından belirlenir6. Klinik pankreatitin tamamen iyileşmesi gastroenterolojide bir hedeftir ve hayvan modellerinin oluşturulması ilk adımdır. Bu modelleri oluşturmak için her birinin avantajları ve dezavantajları olan çeşitli yöntemler mevcuttur 7,8,9,10,11.

Cerrahlar, pankreas ekzokrin sekresyonunu azaltmak için ana pankreas kanalında endoluminal termal ablasyon (ETHA) yapmak için yüksek frekanslı elektrokoagülasyon kullanmış, böylece pankreatikoduodenektomi (PD) sonrası postoperatif pankreas fistül (POPF) insidansını azaltmıştır12. Bu, pankreas atrofisine neden olan termal ablasyon yönteminin klinik uygulamada uygulandığını göstermektedir. Pankreas kanalını görselleştirmek ve hassas bir şekilde elektrokoagüle etmek için metilen mavisi kullanarak yeni bir obstrüktif pankreatit modeli geliştirdik.

Bu deney için C57BL/6 8 haftalık erkek fareler seçildi. Dişi farelerin bir üreme döngüsü vardır ve vücuttaki hormon seviyeleri deneysel veriler üzerinde etkili olabilir. 8 haftalıkken, fareler olgun vücut organları ve iyi yaşam sağlığı indeksi ile yaşamlarının baharındaydı ve aynı yaştaki erkek fareler boyut olarak daha güçlüydü. Postoperatif 1 aylık gözlemde 7, 14, 21 ve 28. günlerde fare pankreasından örnek aldık; 14 günde elde edilen sonuçlar en çok pankreatitin patolojik özelliklerine uygundur.

Bu yaklaşımın birkaç uyarısı vardır. İlk olarak, boyanın pankreas kanalına enjeksiyonunu kolaylaştırmak için ana safra kanalı hepatik hilusa mümkün olduğunca yakın klemplenmelidir. İkinci olarak, metilen mavisi boyanın pankreas kanalına enjeksiyon hızına ve süresine dikkat edilmelidir. Pankreas kanalı çok az boya solüsyonu ile görülemez ve çok fazla boya solüsyonu cerrahi alanda ana pankreas kanalının yerinin belirlenmesini engelleyecektir. Üçüncüsü, mavi boyama solüsyonu görülemediğinde elektrokoagülasyon sonlandırıldı. Bu deneylerde, metilen mavisi lekesi ile gösterilen bölgede ameliyat yapılır, çünkü fare pankreasının elektrokoagüle edilen alanı farklı olacaktır, bu nedenle metilen mavisi lekesi pankreas kanalını izlemek için kullanılır. Dördüncüsü, ameliyat sırasında pankreasta meydana gelen herhangi bir kanama derhal durdurulmalıdır. Aynı zamanda pankreası kesmek için elektrokoagülasyon bıçağı kullanılmalıdır. Elektrokoagülasyon bıçağı herhangi bir nedenle pankreasa yapışırsa elektrokoagülasyon süresi uzatılmalıdır. Bu, pankreas kaçağının neden olduğu ciddi postoperatif komplikasyonların ortaya çıkmasını önlemenin en yaygın yoludur.

Ancak, bu yöntemin dezavantajları vardır. Operatörün yeterliliği deneyin sonucunu doğrudan etkiler ve ameliyatın farklı fareler arasındaki tekdüzeliği modelin başarı oranını etkiler. Bu model, safra kesesi taşlarının veya pankreas kanalı tıkanıklığının etkilerini simüle ederek, sonunda kronik pankreatite neden olan tekrarlayan akut pankreatit nöbetlerine yol açar. Bu, yüksek bilirubin seviyelerini açıklayabilir. Bu nedenle, bu model elektrokoagülasyon derecesine dayalı bir akut pankreatit modeli olarak da geliştirilebilir. Elektrokoagülasyondan 3 gün sonra farelerin pankreası üzerinde yapılan ilk deneyler, akut pankreatitin özelliklerini gösterdi, ancak postoperatif komplikasyonlar, modelin akut pankreatit için başarı oranını düşürdü. Bununla birlikte, elektrokoagülasyon işlemi sırasında elektrokoter tarafından üretilen ısının ana safra kanalına yayılmış olabileceği göz ardı edilemez. Elektrokoagülasyon yoluyla akut pankreatitin nasıl stabil bir şekilde indükleneceği sorusu araştırmaya değer.

Birkaç hafta boyunca tekrarlanan enjeksiyonlar gerektiren geleneksel serulein enjeksiyon yöntemiyle karşılaştırıldığında, elektrokoagülasyon yöntemi zamandan tasarruf sağlar ve daha uygundur. Serulein enjeksiyonu mükemmel stabilite ve kullanım kolaylığı gösterirken, elektrokoagülasyon ~20 dakika sürer ve sonraki deney süresinden tasarruf sağlar.

Yeni modellerin geliştirilmesi, hastalığın doğal seyrini incelemeyi ve hedefe yönelik tedaviler geliştirmeyi amaçlamaktadır. Yeni hayvan modelimiz, endoskopik retrograd kolanjiyopankreatografi pankreatit (ERCP)13 dahil olmak üzere farelerde pankreas kanalı tıkanıklığının neden olduğu kronik pankreatitin simüle edilmesine yardımcı olur.

Açıklamalar

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Yazarlar herhangi bir çıkar çatışması olmadığını beyan ederler.

Teşekkürler

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Bu çalışma, Çin Ulusal Doğa Bilimleri Vakfı'nın Genel programı (Hibe No. 81770642), Çin Ulusal Doğa Bilimleri Vakfı'nın Genel programı (Hibe No. 82170657), Şanghay Pudong Sağlık Komitesi Projesi (Hibe No. PWYgf2021-08) ve Zhejiang Eyaleti Doğa Bilimleri Vakfı (LGF22H030014). Renkler BioRender.com yardımıyla dolduruldu.

Malzemeler

Bu makalede kullanılan malzemelerin listesi
AdŞirketKatalog numarasıYorumlar
16 mm mikrovasküler klipsStronger, Ningbo, Çin
Emilebilir DikişYangzhou Jinhuan Tıbbi Cihaz Fabrikası4-0-
KarprofenShanghai Macklin Biyokimyasal Şirketi, Ltd.C830557-5g-
Kapiler tüpTygon, ABD  AAQ(AAD)040910,25 x 0,3 mm
Elektrokoagülasyon bıçağıShun Ye TIBBI Ekipman Şirketi, Ltd, Ningbo, ÇinShun Ye BDD-YE-DF-1
Göz makası
Ketamin Hidroklorür İjekte (Ketaset CIII)Zoetis Inc.S5564-
Metilen mavisi boyama çözeltisiSolarbio, Şanghay, Çin  G1303
Emici olmayan 4-0 monofilament polipropilen dikişJinhuan, Şanghay, Çin
Çalışma mikroskobuMurzider, Guangdong, ÇinMSD203
Oftalmik forseps
Yuvarlak başlı sörbünOlga Sherer, Huaximedical, Çin
Şırınga iğnesiMinank, Zhejiang, Çin0,25 mm
Doku forsepsi
Doku makasıŞanghay Puxin Enstrüman Teknolojisi Şirketi
Ksilazin Hidroklorür EnjeksiyonuBayer Hayvan SağlığıXYL-50-20-

Kaynaklar

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
  1. Ding, W. -X., Ma, X., Kim, S., Wang, S., Ni, H. -M. Recent insights about autophagy in pancreatitis. eGastroenterology. 2 (2), e100057(2024).
  2. Van Laethem, J. L., Robberecht, P., Resibois, A., Deviere, J. Transforming growth factor beta promotes development of fibrosis after repeated courses of acute pancreatitis in mice. Gastroenterology. 110 (2), 576-582 (1996).
  3. Watanabe, S., Abe, K., Anbo, Y., Katoh, H. Changes in the mouse exocrine pancreas after pancreatic duct ligation: a qualitative and quantitative histological study. Arch Histol Cytol. 58 (3), 365-374 (1995).
  4. Cáceres, M., et al. Pancreatic duct ligation reduces premalignant pancreatic lesions in a Kras model of pancreatic adenocarcinoma in mice. Sci. Rep. 10 (1), 18344(2020).
  5. Andaluz, A., et al. Endoluminal radiofrequency ablation of the main pancreatic duct is a secure and effective method to produce pancreatic atrophy and to achieve stump closure. Sci Rep. 9 (1), 5928(2019).
  6. Lerch, M. M., Gorelick, F. S. Models of Acute and Chronic Pancreatitis. Gastroenterology. 144 (6), 1180-1193 (2013).
  7. Zhang, D. Y., et al. Methods of a new chronic pancreatitis and spontaneous pancreatic cancer mouse model using retrograde pancreatic duct injection of dibutyltin dichloride. Front Oncol. 12, 947133(2022).
  8. Tian, C. Y., Zhao, J., Xiong, Q. Q., Yu, H., Du, H. H. Secondary iron overload induces chronic pancreatitis and ferroptosis of acinar cells in mice. Int J Mol Med. 51 (1), 9(2023).
  9. Samuel, I., et al. A novel model of severe gallstone pancreatitis: Murine pancreatic duct ligation results in systemic inflammation and substantial mortality. Pancreatology. 10 (5), 536-544 (2010).
  10. Peng, C., et al. Murine chronic pancreatitis model induced by partial ligation of the pancreatic duct encapsulates the profile of macrophage in human chronic pancreatitis. Front Immunol. 13, 840887(2022).
  11. Chetty, U., Gilmour, H. M., Taylor, T. V. Experimental acute pancreatitis in the rat--a new model. Gut. 21 (2), 115-117 (1980).
  12. Ielpo, B., et al. Clinical case report: endoluminal thermal ablation of main pancreatic duct for patients at high risk of postoperative pancreatic fistula after pancreaticoduodenectomy. International Journal of Hyperthermia. 38 (1), 755-759 (2021).
  13. Gorelick, F. S., Lerch, M. M. Do animal models of acute pancreatitis reproduce human disease. Cell Mol Gastroenterol Hepatol. 4 (2), 251-262 (2017).

Yeniden basım ve izinler

Bu JoVE makalesinin metnini veya şekillerini yeniden kullanmak için izin iste

İzin iste

Etiketler

Chronic PancreatitisElectrocoagulation ModelPancreatic DuctAnimal ModelC57BL 6 MiceAbdominal SurgeryBile Duct ClampingMasson StainingImmunohistochemistryPancreatic Fibrosis

İlgili makaleler