Protokol, üç boyutlu (3D) baskılı bir iskele ile iki tür yapışık hücre hattının biyolojisini özetleyebilen yeni bir in vitro deneysel modeli göstermektedir. Bu modelin inşası ve hücre hazırlığı ve hücre kültüründen analiz ve değerlendirmeye kadar işletme prosedürleri açıklanmaktadır.
Yöntem makalesi
İki Tip Yapışık Hücre Hattı Kullanan Ko-Kültür Modeli
* These authors contributed equally
Bu makalede
Özet
Özet
Embriyo implantasyonu, anne-embriyo arayüzündeki farklı hücre tipleri arasındaki etkileşimlerden etkilenir. Desidua içindeki çeşitli hücre tipleri arasındaki doğrudan ve dolaylı iletişim, endometriyal alıcılığı düzenlemek için çok önemlidir; Bununla birlikte, bu etkileşime aracılık eden moleküler mekanizmalar hala belirsizdir. Bu bağlamda, endometriyal epitel-strom etkileşiminin biyolojisini özetleyebilecek kapsamlı bir in vitro model oluşturmak için implantasyon sürecini incelemek için bir modele ihtiyaç vardır. Bu model, normal hücre kültürü plakalarından ve düşük maliyetli malzemelerden üç boyutlu (3D) baskı ile oluşturulan eşleşen bir iskeleden oluşur. Burada, model oluşturma, hücre hazırlama, hücre tohumlama, hücre kültürü, gözlem ve değerlendirme için bir dizi protokolü detaylandırıyoruz. Ayrıca, mikroskop altında iyi büyüme koşulları sergileyen hücrelerle temsili sonuçları da dahil ettik. Bu çalışma, endometrial stromal hücreler ve epitel hücreleri arasındaki etkileşimin yanı sıra trofoblast hücreleri ile endometriyal hücreler arasındaki etkileşimi taklit edecek in vitro modeller geliştirmeyi amaçlamıştır.
Giriş
İnsan gebeliği ile ilgili kapsamlı araştırmalara rağmen, implantasyon ve erken gebelik sırasında maternal-fetal arayüzdeki moleküler mekanizmalar tam olarak anlaşılamamıştır1. İnsan endometriyumu esas olarak iki hücre tipinden oluşur: endometriyal epitel hücreleri (EEC'ler) ve endometriyal stromal hücreler (ESC'ler). İmplantasyon üç aşamada ilerler: yetkin bir embriyo ve alıcı endometriyum2'nin gelişmesine yol açan atama, bağlanma ve istila. İnsan denekler üzerinde yapılan in vivo çalışmaların etik kısıtlamaları ve hayvanlarda insan durumunu tamamen simüle etmenin zorlukları göz önüne alındığında, in vitro insan endometrium kültür modellerinin oluşturulması, implantasyon ve erken gebelik süreçlerini çoğaltmanın etkili bir yolu haline gelmiştir3. Bu modeller hem normal hem de patolojik gebeliklerin araştırılmasında değerlidir ve translasyonel tıpta terapötik müdahalelerin ön testi ve doğrulanması için temel bir platform sağlar.
Ticari odalar, hücresel biyolojik araştırmalarda yaygın olarak kullanılmaktadır. Bu odalar, hücre göçü ve farklı hücre türleri arasındaki karışma hakkında değerli bilgiler sunar. Bununla birlikte, ticari odalar tipik olarak tek kullanımlıktır ve maliyetli olabilir4.
İmplantasyonun ayrıntılı sürecini daha iyi anlamak için endometrium ve blastosist veya blastosist suretlerinden oluşan çok sayıda in vitro insan kültürü modeli geliştirilmiştir. Bununla birlikte, bu modeller, 3B yapının oldukça karmaşık bir deney düzeneği olması ve bazı spesifik farklılaşma ortamlarının pahalı olması nedeniyle hala ilk uygulama aşamasındadır 5,6,7.
Uygun fiyatlı 3D baskı donanımının kullanılması ve nispeten kısa bir üretim süresi, yapıların farklı deneysel amaçları hedefleyecek şekilde yerleştirilmesini mümkün kılar. 3D baskı teknikleri, zaman maliyetlerini düşürmeye yardımcı olur ve karmaşık, özelleştirilmiş yapıların oluşturulmasını sağlar. Bu teknoloji, prototip tasarımını ve yinelemeyi önemli ölçüde hızlandırarak, onu çeşitli alanlardaki araştırmacılar için değerli bir araç haline getirerek çalışmalarını daha verimli bir şekilde tamamlamalarına olanak tanır 8,9,10.
Burada, embriyo implantasyonu sırasında endometriyal alıcılığın araştırılması için endometriyal stromal ve epitel hücreleri arasındaki etkileşimi simüle edebilen 3D yapının inşası ve hücre kültürü sistemi olarak kullanımı için uygulanabilir ve ekonomik bir deneysel protokol sunuyoruz. Bu, ticari tek kullanımlık malzeme için özelleştirilebilir ve düşük maliyetli bir alternatif sağlar.
Protokol
NOT: Bu protokolde kullanılan tüm reaktifler Malzeme Tablosunda bulunabilir. Aksi belirtilmedikçe, tüm ortamlar kullanımdan önce 37 °C'ye önceden dengelenmiştir.
İskele baskısı ve model yapımı 1. 3D
NOT: Buradaki adımlar, ticari 3D metal baskı makinesinin kılavuz kitabına göre gerçekleştirilmiştir. Adımlar aşağıda kısaca açıklanmıştır (Ek Dosya 1).
- Baskı yatağı tesviye
- Kontrol panelindeki Menü simgesine dokunun ve Yardımcı Programlar'a gidin. Tesviye rutinini başlatmak için Yatak Seviyesi'ni seçin.
- Yazdırma sayfasını yazdırma yatağından çıkarın ve Bitti'yi seçin. Baskı yatağı, tesviye hazırlığı için maksimum yüksekliğine çıkacaktır. İlerleme çubuğu %100'e ulaştığında Başlat'a basın.
- Metal X yazıcı daha önce seviyelendirilmemişse, Sıfırla'yı seçin. Varsa, Atla'yı seçin ve doğrudan Adım 1.1.5'e (16 noktalı tarama) ilerleyin.
- Üç yataklı tesviye vidalarının tümünü sıkılaşana kadar saat yönünde çevirmek için 2.5 mm'lik bir altıgen anahtar kullanın. Ardından, orta nokta yüksekliğine ayarlamak için saat yönünün tersine iki tam tur çevirerek gevşetin. Devam etmek için Bitti'ye basın.
- Yazıcı, yatağı belirlenen 16 noktada tarar. Bu işlem sırasında yatağa veya çerçeveye dokunmaktan kaçının. İlerleme %100'e ulaştığında İleri'ye basın.
- Yaprak yazdırma uygulaması
- Kalan metalleri veya destek kalıntılarını temizleyin. Vakum kaydırıcısını Açık konumuna getirin.
- Yatağın alçalmasına ve ısınmasına izin verin, ardından İleri'ye basın. Yazdırma sayfasını vakum ızgarasının üzerine yerleştirin ve İleri'ye basın.
- Yaprak baskı makinesini, haznenin arkasındaki Z raylarıyla hizalayarak baskı kağıdının üzerine yerleştirin.
- Vakumun yerine oturmasını ve sabit bir sızdırmazlık oluşturmasını bekleyin. Vakum devreye girdiğinde, Bitti'ye basın.
- Metal filament yükleme
- Yazıcı kafasını manuel olarak yazdırma alanının ortasına yerleştirin. Yazıcı kafası kapağını yukarı kaydırarak ve montaj vidalarından çıkararak çıkarın.
- Seçenek panosundaki Menü simgesine dokunun. Seçeneklerden Malzemeler'i seçin.
- Yükleme yordamını başlatmak için Metal Yükle'yi seçin. Hızlı Yükle'yi seçin.
- Yüklenecek özel metal malzeme türünü seçin (örneğin, Alüminyum 6061-T6 | 3.3211 | 65028 | AlMg1SiCu).
- Makarayı tutucuya yerleştirin ve İleri'ye basın. Kapıyı kapatın ve makaraların ısınmasına izin verin, ardından İleri'ye basın.
- Malzemeyi, ekstrüder çekmeye başlayana kadar yazıcı kafasının ön girişine (M etiketli) yerleştirin.
- Metal parça baskısı
- Yazdırma Ayarları panelinde, Kağıdı Dışa Aktard'yi tıklatın. Dosyayı FAT32 olarak biçimlendirilmiş bir USB sürücüsüne kaydedin ve yazıcıya takın.
- Panodaki Menü simgesini seçin. Depolama Alanı'na gidin ve Depolama Alanından Yazdır'ı seçin. Yazdırmaya başlamak için parça dosyasını seçin.
- Metal parça çıkarma
- Yazdırma sayfasını ve yazdırılan parçaları baskı yatağından dikkatlice kaydırın. Parçaları baskı sayfasından yavaşça ayırın. Esnek tabaka kolaylıkla soyulmalıdır.
2. 3D modelde hücre ko-kültürü için hazırlık
NOT: Hücre kültürü deneylerinde her kullanımdan önce otoklav sterilizasyonunu kolaylaştırmak için 3D baskı hücre lamel iskele destekleri için sarf malzemesi olarak yüksek sıcaklığa dayanıklı malzemelerin kullanılması önerilir. Bu çalışmada ölümsüzleştirilmiş İnsan Endometriyal Stromal Hücreleri (HESC) ve insan endometriyal epitel hücreleri (Ishikawa) kullanıldı. Bu hücre hatlarının karakterizasyonu daha önce bildirilmiştir 5,6.
- Hücre kültürü ve pasajı
- DMEM / F12 ortamı + 2 mM L-Glutamin +% 10 kömürle sıyrılmış Fetal Sığır Serumu (FBS) +% 1 Penisilin / Streptomisin Çözeltisi ekleyerek hESC için 50 mL tamamlayıcı ortam hazırlayın.
- Dulbecco'nun Modifiye Eagle Medium +% 10 FBS +% 1 Penisilin / Streptomisin Çözeltisi ekleyerek Ishikawa için 50 mL tamamlayıcı ortam hazırlayın.
- Hücre çözülmesi
NOT: Satın alınan hücre hattı, donmuş halde kuru buz üzerinde sevk edilmiştir. Sıvı nitrojenin buhar fazında veya -130 °C'nin altında saklanmalıdır.- Gerekli tüm sterilize edilmiş ekipmanı ve ayrışma enzimini hazırlayın ve tamamlayıcı ortamı 37 °C'ye ısıtın.
- Hücreleri 37 ° C'lik bir su banyosunda ara sıra hafifçe sallanarak hızla çözün. Hücre süspansiyonunu 5 mL bazal kültür ortamı içeren bir tüpe aktarın ve 5 dakika boyunca 200 x g'da santrifüjleyin.
- Süpernatanı dikkatlice çıkarın. Hücre peletini 5 mL hazırlanmış tam kültür ortamında yeniden süspanse edin ve iki T25 kültür şişesine dağıtın. Hücreleri bir inkübatörde 37 ° C ve% 5 CO2'de kültürleyin.
- Bir lamel ile hücrelerin hazırlanması
- Hücre kültürünün yüzeyi olarak 18 mm'lik kare bir lamel kullanın; Lamelin temiz ve steril olduğundan emin olun.
- Lameli 12 oyuklu bir plakanın dibine 200-300 μg/mL konsantrasyonda 200 μL hücre dışı matris (ECM) ile kaplayın. Plakayı 1 saat boyunca 37 °C'de tutun.
- ECM'yi plakadan çıkarın. Hücreleri uygun birleşme açısından inceleyin ve her iki hücre hattının yoğunluğunun %70-80 civarında olduğundan emin olun
- Harcanan ortamı çıkarın ve hücreleri 3 mL fosfat tamponlu salin (PBS) 2x ile yıkayın.
- 2 mL ayrışma enzimi ekleyin ve hücreleri ayırmak için 37 ° C'de 2 dakika kültürleyin.
- Tam kültür ortamı ile nötralize edin ve yukarı ve aşağı pipetleyerek tek hücreli bir süspansiyon oluşturun.
- 100 μL hücre süspansiyonu alın ve tripan mavisi (seyreltme faktörü = 2) ile karıştırın.
- Lameli hemositometrenin haznesinin üzerine kaydırın. Her iki yan bölmeyi tripan mavisi içeren hücre süspansiyonu ile doldurun.
- 20x mikroskop altında her iki taraftaki karelerdeki hücre sayısını sayın ve hücrelerin yoğunluğunu hesaplayın.
- Hücreleri taze besiyeri ile hazırlanan plakaya aktarın ve% 5 CO2 ile 37 ° C'de inkübe edin. hESC'yi 24 saat boyunca 1 x 105 hücre / mL'de kuyuya tohumlayın.
- Ishikawa hücre hattı için, ertesi gün hücreyi lamel olmadan kuyuya tohumlayın.
3. Ko-kültür modelinin montajı
- İskeleleri etil alkol ve çift damıtılmış su (ddw) ile 2 gün boyunca iyice ıslatın. İskeleleri otoklav ile 121 °C'de sterilize edin ve kurutun.
- Ishikawa hücre hattı için iyi kültür yapan Ishikawa'ya yaklaşık 2 mL tamamlayıcı ortam ekleyin ve sıvı seviyesinin lamel kaplamasını sağladığından emin olun.
- hESC ile lamel kapağını iskeleye aktarın ve hücrenin aşağı baktığı tarafı aşağıda tutun. İskeleyi iyi işleyen Ishikawa'ya takın. İkinci set için, lamel kapağını Ishikawa ile iskeleye aktararak ve iskeleyi iyi işleyen hESC'ye takarak bu düzenlemeyi ters çevirin. Bağımsız olarak büyüyen hücre büyümesi analizi için hücreleri iskele kurulumu olmadan kullanın.
- Ko-kültür sistemini 37 ° C,% 5 CO2'de inkübe edin. Ko-kültür periyodu, deneysel tasarıma bağlı olarak değişebilir, ancak tipik olarak 24-72 saat arasında değişir.
4. Görüntü edinme
- Kültür ortamını dikkatlice çıkarın ve hücreleri steril fosfat tamponlu salin (PBS) ile nazikçe durulayın.
- İnce forseps veya cımbız kullanarak kültür kaplarından ekli hücrelere sahip lamelleri çıkarın. İsteğe bağlı olarak, transfer sırasında kurumasını önlemek için lamelleri PBS ile yeni bir kaba yerleştirin.
- Temiz bir mikroskop lamı alın ve bir damla PBS yerleştirin. Lameli içeren hücreleri yavaşça montaj ortamının üzerine aktarın ve hücrelerin slayta bakacak şekilde olduğundan emin olun.
- Hazırlanan slaytı ters çevrilmiş mikroskobun tablasına yerleştirin. Uygun objektif lensi (örn. 10x, 20x) seçin ve kaba ve ince odak düğmelerini kullanarak odağı ayarlayın.
- Aydınlatma yoğunluğu ve kamera ayarları gibi mikroskop parametrelerini ayarlayın. Mikroskop yazılımını kullanarak, hücrelerin istenen büyütme ve görüş alanlarındaki görüntülerini yakalayın. Görüntü kalitesini optimize etmek için pozlama süresini ve diğer görüntüleme ayarlarını yapın.
5. Görüntü işleme
- Görüntüyü açmak için Aç'a tıklayın, Yerel Eşitlemeyi Seç'> İşlem'> Filtreler > Geliştirme'ye tıklayın ve Uygula'ya tıklayın.
- Düzenle > Gri Tonlamaya Dönüştür 8'> tıklayın. Geliştir'i tıklayın, Kontrast Uygula'yı seçin.
- Konuları sayma ve ölçme'ye tıklayın. Manuel'i tıklatın, bir aralık seçin ve tüm hücrelerin kapsandığından emin olmak için histogramı ayarlayın.
- Maskeyi Uygula'ya tıklayın, geçerli pencereyi kapatın, Ölç'> Otomatik Parlak Nesneler'e tıklayın, Ölçüm'ü seçin ve Aera, Dendric, Yoğunluk ve Boyut'u seçin.
- Otomatik Parlak Nesneler'i tıklayın, sonra Sayım'ı tıklayın. Ölçüm verilerini bir e-tabloya aktarmak için Verileri Dışa Aktar'a tıklayın.
6. Hücre toplama
- Lamelleri mikroskop lamından çıkarın ve temiz ve kuru bir kuyuya aktarın.
- Ishikawa hücresini transkriptomik için RNA izolasyon reaktifi veya proteomik araştırma için Ripa lizis reaktifi ile hasat edin.
NOT: ESC için, lamel kültürü yöntemi, immün boyamadan sonra görüntü yakalama için daha etkiliydi. Alternatif olarak, hESC, RNA izolasyon reaktifi veya Ripa lizis reaktifi ile hasat edilebilir. Lamel veya plakanın yüzeyi üzerinde kültürlenen hücre hatları değiştirilebilir; Bununla birlikte, görüntüleme analizi için hazırlanan hücrelerin lamel üzerine tohumlanmasını öneririz.
Sonuçlar
Şekil 1, dört L şeklinde çubuk benzeri yapıya sahip bir bazal hücre sürgü tutucusu ile tamamlanan, standart 12 oyuklu hücre kültürü plakalarına bağlanmak üzere uyarlanmış bir üst destek halkası içeren, bu işlemde kullanılan hücre kızakları için ev yapımı iskeleyi göstermektedir.
Şekil 2'ye göre, ko-kültür koşulundaki her iki hücre tipinin yoğunluğu (Şekil 2A,B) 72 saatlik ko-kültürden sonra düşük kalmıştır; bununla birlikte, bağımsız olarak kültürlenen her iki hücre tipinin yoğunluğu önemli ölçüde artmıştır (Şekil 2C, D). Ayrıca, birlikte kültürlenmiş hESC'nin uzunluğu, bağımsız olarak kültürlenmiş hESC ile karşılaştırıldığında daha kısaydı (Şekil 2E-G).
Ishikawa hücrelerinin ve hESC hücrelerinin profili, iki hücre türü arasındaki etkileşimlerin varlığını gösterir. Aynı zamanda, sistem, immünokimya boyama ve western blot dahil olmak üzere ayrı hücre hatları üzerinde takip deneyleri yapmaya devam etmemizi sağlıyor.
Şekil 1: Deney protokolünde kullanılan 3D baskılı lamel iskele. (A) Tek formda iskele. (B) İkili formda iskele. (C) Lamelin iskele üzerine yerleştirilmesini gösteren resim. (D) İskelenin standart 12 oyuklu bir plakaya yerleştirilmesini gösteren resim. Bu rakamın daha büyük bir sürümünü görüntülemek için lütfen buraya tıklayın.
Şekil 2: Farklı koşullarla 3 gün boyunca tedavi edilen hESC ve Ishikawa hücre hatlarının profili. (A) Lamel üzerindeki Ishikawa tohumu, iskele ile hESC ile birlikte kültürlenmiştir (Bar = 200 μm). (B) Lamel üzerindeki hESC tohumu, bir iskele kullanılarak Ishikawa ile birlikte kültürlenmiştir. (C) Ishikawa hücreleri,% 10 FBS ile tamamlayıcı bir ortamda kültürlendi. (D) hESC hücreleri, FBS içeren tamamlayıcı bir ortamda kültürlendi. (E) Ko-kültür koşulları altında hESC'lerin hücre yoğunluğu, bağımsız kültür koşulları altındakinden önemli ölçüde daha düşüktür. (F) Ko-kültür koşulları altında ISHIKAWA hücrelerinin hücre yoğunluğu, bağımsız kültür koşulları altındakinden önemli ölçüde daha düşüktür. (G) Ko-kültür koşulları altında hESC'nin uzunluğu önemli ölçüde daha kısadır. N=3; , P<0.05, hata çubuğu standart hatayı gösterir. Bu rakamın daha büyük bir sürümünü görüntülemek için lütfen buraya tıklayın.
Ek Dosya 1: 3D baskı kodlama dosyası. Bu dosyayı indirmek için lütfen buraya tıklayın.
Tartışma
Endometriyal, stromal ve epitel hücrelerinin dolaylı ko-kültürü için basitleştirilmiş ve uygun maliyetli bir protokol tanımlanmıştır. Bu yöntem, dört L şeklinde çubuk benzeri yapıya sahip bir bazal hücre sürgü tutucusu ile tamamlanan, standart 12 oyuklu hücre kültürü plakalarına bağlanmak üzere uyarlanmış bir üst destek halkası içeren hücre kızakları için ev yapımı bir iskele kullanır. Bu kurulum, endometriyal stromal ve epitel hücrelerinin ayrılmasını kolaylaştırırken, kültür ortamında sinyal moleküllerinin değişimi yoluyla etkileşimlerine izin verir. Bu yaklaşımın en önemli avantajlarından biri, ticari olarak temin edilebilen ko-kültür sistemlerine kıyasla hem zaman hem de harcamada önemli bir azalma sağlamasıdır11. Ev yapımı iskele, kolayca bulunabilen malzemelerden yapılmıştır ve kurulum maliyetini önemli ölçüde düşürür. Ek olarak, tasarımı basittir ve araştırmacıların iskeleyi kolaylıkla monte etmelerini ve sökmelerini sağlar, böylece laboratuvarda zamandan ve emekten tasarruf sağlar. Ayrıca, ev yapımı iskele birden fazla kullanım için temizlenebilir ve sterilize edilebilir, bu da onu devam eden araştırmalar için sürdürülebilir ve ekonomik bir seçenek haline getirir. Bu özellik, tutarlı ve güvenilir sonuçların çok önemli olduğu uzun vadeli çalışmalar için özellikle faydalıdır.
Endometrial stromal hücreler ve epitel hücreleri, başarılı embriyo implantasyonunu kolaylaştırmada çok önemli roller oynar. Fizyolojik koşullar altında, endometriyal epitel hücreleri ve endometriyumdaki stromal hücreler tipik olarak doğrudan temas halinde değildir. İnsan endometriyal stromal hücre desidualizasyonu üzerine yapılan araştırmalar, epitel hücrelerinin parakrin tarafından desidual süreci etkilediğini kanıtlamıştır. Epitel ve stromal hücrelerin yakınlığı, parakrin sinyalleme12 yoluyla etkili iletişime izin verir. Bu etkileşim, implantasyon hazırlığı ve implantasyon gerçekleşmezse müteakip doku dökülmesi dahil olmak üzere endometriyumdaki döngüsel değişiklikleri koordine etmek için hayati önem taşır11. Hem epitelyal hem de stromal hücreler, proliferasyonlarını, farklılaşmalarını ve salgı aktivitelerini düzenleyen östrojen ve progesteron reseptörlerini eksprese eder. Epitelyal-stromal karışma, bu yanıtların iyi koordine edilmesini sağlar13. Bu nedenle, bu hücreler arasındaki karmaşık karışma, endometriyal alıcılığın ve embriyonunimplantasyonunun altında yatan karmaşık süreçleri anlamak için gerekli olduğundan, kritik bir araştırma alanı olmaya devam etmektedir 14. Üreme biyolojisindeki önemli ilerlemelere rağmen, implantasyon sırasında bu hücre tipleri arasındaki ayrıntılı iletişim mekanizmaları hala tam olarak aydınlatılamamıştır15.
İskele, iki tür yapışık hücrenin ko-kültürünü elde etmek için uygun bir yol sağlar. Bununla birlikte, uzun süreli ko-kültür sürecinde, lamel hücreleri zamanla büyümeye ve yenilenmeye devam eder ve ölü hücreler düşer ve alt katman hücreleriyle temas eder, bu da alt katman hücrelerini etkileyebilir. Ek olarak, lamel üzerindeki hücreler tohum, iskele üzerine yüzü aşağı bakacak şekilde yerleştirilir. Yerçekiminin hücrelerin durumu üzerinde herhangi bir etkisi olup olmadığı bilinmemektedir. Bu araştırmada, gösterim için hESC ve Ishikawa olmak üzere iki hücre hattı kullanıldı. İskele, iki farklı türde yapışık hücre hattının ortak kültüründe yaygın olarak kullanılabilir. Ek olarak, iskele, diğer bileşikler veya ilaç salım ortamları için bir platform olarak ve lüminesans, ısıtma ve elektrot cihazları gibi çeşitli cihazlar için bir montaj platformu olarak da kullanılabilir.
Burada, embriyo-maternal uterus hücre etkileşimlerinin moleküler mekanizmasını daha fazla incelemek için yararlı ve kullanışlı bir araç olan spesifik iskeleyi kullanan güvenilir ve sağlam bir in vitro hücre kültürü sistemi sunuyoruz. Ek olarak, kurulan iskelenin fizibilitesini blastosist/trofoblast çalışmaları için bir model olarak nitelendirdik. Bu protokol, 3D baskı ile uygun iskelelerin inşasına ve bunların küçük hacimlerde (12 kuyulu plakalar) göç veya istila platformları için 3D yapı olarak işlev görmesine izin verir, burada görüntüleme niceleme sistemleri kullanılarak farklı faktörler değerlendirilebilir.
Hücre hatlarının kullanılması, modelin farklı koşulları karşılaştırmak için standardizasyonuna izin verir, bu da taze birincil villus dokuları kullanılarak uygulanamayan bir şeydir. Bununla birlikte, hücre hattı bileşenlerinden herhangi biri, doğrulama için birincil kültür ile değiştirilebilir. Önerilen model, ilgilenilen hastalardan elde edilen hücre ve dokuları birleştirerek, kısırlığa ve gebelik başarısızlığına katkıda bulunduğu bilinen farklı hastalıkların gösterilmesini ve modellenmesini kolaylaştırabilir.
Kritik adımlar
İlk olarak, ko-kültür için Ishikawa hücrelerinin yoğunluğu, yaklaşık% 60 -% 70 birleşme ile sınırlı olmalıdır. İkinci olarak, hücrelerin bulunduğu lamel kapağı aşağıda tutulmalıdır. Üçüncüsü, bir jel oluşumunu önlemek için ECM konsantrasyonu 3 mg/mL'den az olmalıdır. Dördüncüsü, ko-kültür sistemindeki ortamın sıvı seviyesi lamel kaplamasını kapsamalıdır.
Sınırlama
Yukarıda bahsedilen model, endometriyal epitel hücrelerini ve stromal hücreleri içerir; Çalışmanın bir sınırlaması, adenokarsinom Ishikawa hücrelerinin birincil hücreler yerine epitel hücre vekilleri olarak kullanılmasıydı. Aynı hastadan alınan primer epitel ve stromal hücrelerin entegre edilmesi, insan endometriyumunun fizyolojik koşullarını çoğaltacaktır. Bazı deneysel uygulamalar için, olası bir sınırlama, endotel hücreleri ve bağışıklık hücreleri gibi diğer hücre tiplerinin eksikliği ile ilgilidir ve bu modelde endometriyal bezlerin diğer endometriyal hücre tipleri üzerindeki etkileşimli etkisini değerlendirmek için glandüler yapının karakterizasyonu yoktur. Bununla birlikte, fizyolojik koşullar altında, epitel hücreleri polariteyi ortaya çıkarır ve bu karakter, uterus luminal ortamı olmadan in vitro koşulları neredeyse hiç simüle etmez. Endometrial stromal hücreler adet döngüsünde desidual süreç altındadır16,17. Bununla birlikte, desidualizasyonun moleküler mekanizması belirsizliğini korumaktadır. İmmünositler ve endotel hücreleri dahil olmak üzere çeşitli faktörler desidualizasyonda rol oynayabilir. Bu model, yaprak döken süreç sırasında stromal ve epitel hücreleri arasındaki dolaylı karışmayı incelemek için sınırlı bir yol sağlar. Ayrıca, desidualizasyon sırasında biyolojik belirteçlerin seviyeleri ve rolleri hala belirsizdir ve bu da daha fazla araştırmayı garanti eder
Açıklamalar
Yazarlar herhangi bir çıkar çatışması olmadığını beyan ederler.
Teşekkürler
Bu çalışmada yer alan tüm deneklere teşekkür etmek istiyoruz. Ayrıca Light Innovation Technology Ltd, Shenzhen'in görüntüleme yardımını da takdir ediyoruz. Bu çalışma, Çin Doğa Bilimleri Fonu (Hibe No. 82201851), Shenzhen Bilim ve Teknoloji Programı (Hibe No. JCYJ20210324141403009, RCYX20210609104608036), Shenzhen Anahtar Tıbbi Disiplin İnşaat Fonu (Hibe No. SZXK028) ve Shenzhen Baoan Kadın ve Çocuk Hastanesi (Hibe No. BAFY 2023003).
Malzemeler
| Ad | Şirket | Katalog numarası | Yorumlar |
|---|---|---|---|
| 10x Hanks ve başbakan; Dengeli Tuz çözeltisi | Solarbio | H1046 | 1/10 |
| 12 oyuklu Şeffaf TC ile muamele edilmiş Plakalar | Corning | 3513-25 | |
| cm² Hücre Kültürü Şişesi | Corning | 430639-Alüminyum | |
| Markforged | 6061-T6-DMEM | ||
| /F12 | Sigma-aldrich | D2906-Dulbecco | |
| ' s Modifiye Eagle Medium | Gibco | C11995500BT | |
| FBS | Gibco | 10099141C | 1/10 |
| Fetal sığır serumu | Gibco | 10099141C | |
| ITS Premiks | Biocoat | 354350 | 1/100 |
| Matrigel Matris | Corning | 354248 | ECM |
| Metal X | Markforged | M F-PR-5000-Penisilin-Streptomisin | |
| Gibco | 15140122 | 1/100 | |
| Yuvarlak Lamel | Biosharp | BS-18-RC-TrypLE | |
| Select (10X) | Gibco | A1217701 | ayrışma enzimi |
Kaynaklar
- Iske, J., Elkhal, A., Tullius, S. G. The fetal-maternal immune interface in uterus transplantation. Trend Immunol. 41 (3), 213-224 (2020).
- Dey, S. K., et al. Molecular cues to implantation. Endocrine Rev. 25 (3), 341-373 (2004).
- Li, X., et al. Three-dimensional culture models of human endometrium for studying trophoblast-endometrium interaction during implantation. Reprod Biol Endocrinol. 20 (1), 120(2022).
- Goss, S., et al. Mod3d: A low-cost, flexible modular system of live-cell microscopy chambers and holders. PLoS One. 17 (6), e0269345(2021).
- Zheng, J., Liu, L., Wang, S., Huang, X. Sumo-1 promotes Ishikawa cell proliferation and apoptosis in endometrial cancer by increasing sumoylation of histone h4. Int J Gynecol Cancer. 25 (8), 1364-1368 (2015).
- Damdimopoulou, P., et al. Human embryonic stem cells. Best Pract Res Clin Obst Gynaecol. 31, 2-12 (2016).
- Gargett, C. E., Schwab, K. E., Deane, J. A. Endometrial stem/progenitor cells: The first 10 years. Hum Reprod Update. 22 (2), 137-163 (2015).
- Lerman, M. J., Lembong, J., Gillen, G., Fisher, J. P. 3d printing in cell culture systems and medical applications. Appl Phys Rev. 5 (4), 041109(2018).
- Palmara, G., Frascella, F., Roppolo, I., Chiappone, A., Chiadò, A. Functional 3d printing: Approaches and bioapplications. Biosens Bioelectron. 175, 112849(2021).
- Li, S., et al. Multiscale architecture design of 3d printed biodegradable zn-based porous scaffolds for immunomodulatory osteogenesis. Nat Comm. 15 (1), 3131(2024).
- Arnold, J. T., Lessey, B. A., Seppälä, M., Kaufman, D. G. Effect of normal endometrial stroma on growth and differentiation in Ishikawa endometrial adenocarcinoma cells1. Cancer Res. 62 (1), 79-88 (2002).
- Casper, R. F., Yanushpolsky, E. H. Optimal endometrial preparation for frozen embryo transfer cycles: Window of implantation and progesterone support. Fertil Steril. 105 (4), 867-872 (2016).
- Cooke, P. S., et al. Stromal estrogen receptors mediate mitogenic effects of estradiol on uterine epithelium. Proc Natl Acad Sci U S Am. 94 (12), 6535-6540 (1997).
- Owusu-Akyaw, A., Krishnamoorthy, K., Goldsmith, L. T., Morelli, S. S. The role of mesenchymal-epithelial transition in endometrial function. Hum Reprod Update. 25 (1), 114-133 (2019).
- Evans, J., Hutchison, J., Salamonsen, L. A., Azlan, A. Endometrial inflammasome activation accompanies menstruation and may have implications for systemic inflammatory events of the menstrual cycle. Hum Reprod. 35 (6), 1363-1376 (2020).
- Gołąbek-Grenda, A., Olejnik, A. In vitro modeling of endometriosis and endometriotic microenvironment - challenges and recent advances. Cellular Signal. 97, 110375(2022).
- Berger, C., Boggavarapu, N. R., Menezes, J., Lalitkumar, P. G. L., Gemzell-Danielsson, K. Effects of ulipristal acetate on human embryo attachment and endometrial cell gene expression in an in vitro co-culture system. Hum Reprod. 30 (4), 800-811 (2015).
Yeniden basım ve izinler
