Yöntem makalesi

Mikro Bilgisayarlı Tomografi Kullanılarak Küçük Hayvanlarda Non-İnvaziv İskelet Kası Miktar Tayini

DOI:

10.3791/67393

8 Kasım 2024

Bu makalede

Özet

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Bu protokol, küçük hayvanlarda iskelet kası ve iç organ dokusu, yağ dokusu ve iskelet dokusu dahil olmak üzere yağsız kütlenin uygun maliyetli bir şekilde ölçülmesini sağlamak için mikro bilgisayarlı tomografi kullanır. Biyomedikal araştırmalar için, özellikle küçük hayvanlarda yapılan translasyonel araştırmalarda önemli avantajlar sunan yağsız ve yağ dokusu arasında ayrım yapar.

Özet

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

İskelet kası boyutu, kütlesi ve bileşimi, hastalığın ilerlemesinin ve tedavi sonuçlarının anlaşılmasını doğrudan etkilediğinden, metabolik ve kaslarla ilgili hastalıkları incelemek için kritik özelliklerdir. Canlı bir hayvanın yağsız, yağ ve iskelet kütlesinin ölçülmesi metabolik, fizyolojik, farmakolojik ve gerobilim çalışmalarında önemlidir. Bununla birlikte, özellikle yağsız kütle olmak üzere doğru vücut kompozisyonu ölçümleri elde etmek, geleneksel değerlendirme tekniklerinin doğasında bulunan sınırlamalar nedeniyle zor olmaya devam etmektedir. Mikro bilgisayarlı tomografi (mikro-BT), küçük hayvan modellerinde iç yapıların yüksek çözünürlüklü görüntülenmesini sağlayan non-invaziv bir radyolojik tekniktir. Standartlaştırılmış bir mikro-BT yöntemi, özellikle yaşlanma çalışmaları sırasında veya aynı hayvan içindeki farklı zaman noktalarında daha güvenilir ve etkili sonuçlarla translasyonel araştırmayı önemli ölçüde artırabilir. Potansiyeline rağmen, görüntü elde etme ve analiz yöntemlerinde standardizasyon eksikliği, sonuçların farklı çalışmalarda karşılaştırılabilirliğini önemli ölçüde engellemektedir. Burada, bu zorlukları ele almak ve küçük hayvan modellerini içeren araştırmalarda tutarlılığı teşvik etmek için mikro-CT kullanarak yağsız kütle analizi için kapsamlı ve ayrıntılı, düşük maliyetli bir protokol sunuyoruz.

Giriş

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Boyut, kütle ve bileşim, kasla ilgili ve metabolik hastalık mekanizmalarını incelemek için çok önemli iskelet kası özellikleridir1. Sarkopeni, kaşeksi, atrofi ve miyopatiler ortak fenotipleri paylaşır: kütlede azalma, bileşimde değişiklik ve bozulmuş kas fonksiyonu 2,3,4,5. Bununla birlikte, canlı bir hayvanda vücut kompozisyonunun ölçülmesi oldukça karmaşık ve teknik olarak zorlayıcı olmaya devam etmektedir6.

İn vivo görüntüleme ve vücut kompozisyonu analizi için birincil metodolojiler, çift enerjili X-ışını absorbsiyometrisi (DXA), bilgisayarlı tomografi (BT) ve manyetik rezonans görüntülemedir (MRI). Bu yöntemler öncelikle yağsız kütle azalmasına yol açan hastalıkları taramak ve izlemek için kullanılır 7,8,9,10,11. DXA, düşük maliyeti nedeniyle vücut kompozisyonu analizi için altın standarttır. Bununla birlikte, DXA'nın MRI ve BT'ye kıyasla önemli bir dezavantajı vardır: kas ve yağ dokusunu uzamsal olarak çözememesi1.

MRG, vücudun iç yapılarının ayrıntılı görüntülerini oluşturmak için güçlü manyetik alanlar ve radyo dalgaları kullanır12. BT'ye göre en önemli avantajlarından biri, farklı yumuşak doku tipleriarasında mükemmel ayrım sağlayan üstün kontrast çözünürlüğüdür 1,13,14. BT'den farklı olarak, MRG iyonlaştırıcı radyasyon kullanmaz, bu da tekrarlanan kullanım için daha güvenli hale getirir15,16. Bununla birlikte, MRG, daha uzun tarama süreleri ve daha yüksek bakım maliyetleri ile daha pahalı ve daha az erişilebilirdir13,17. Bu nedenle, küçük hayvan analizi için uyarlanmış MRI cihazları genellikle mevcut değildir.

Mikro-BT, konvansiyonel BT'ye benzer, ancak küçük yapılar ve biyomedikal araştırmalar için uyarlanmıştır18. Mikro-BT, küçük hayvan modellerinde iç yapıların ayrıntılı olarak görüntülenmesini sağlayan gelişmiş, invaziv olmayan bir radyolojik değerlendirme tekniğidir. Mikro-BT, X-ışınlarının çeşitli doku tiplerine göre diferansiyel zayıflamasına dayanarak, vücudun iç yapılarının ayrıntılı görüntülerini oluşturmak için X-ışınlarını kullanır. Mikro-BT taraması sırasında, fare dairesel bir portal boyunca yavaşça hareket eden bir masanın üzerinde yatar. Portalın içinde, bir X-ışını tüpü farenin etrafında dönerek çeşitli açılardan X-ışınları yayar. Karşı taraftaki dedektörler bu X-ışınlarını vücuttan geçtikten sonra yakalar18.

Mikro-CT tarayıcının yazılımı, vücudun iki boyutlu kesit görüntülerini (dilimlerini) yeniden oluşturmak için bu çoklu açılardan gelen verileri işler. Rekonstrüksiyon yoluyla, bu dilimler iç anatomiyi kapsamlı bir şekilde temsil etmek için birleştirilebilir19. Mikro-BT taramaları tarafından üretilen görüntüler, vücuttaki farklı dokular tarafından değişen derecelerde X-ışını zayıflamasına dayanmaktadır. Bu zayıflama, radyo yoğunluğunu20,21'i standartlaştıran bir ölçek olan Hounsfield Birimleri (HU) kullanılarak ölçülür. HU ölçeği, her yapının biraz farklı bir değeri olduğu için segmentasyon için temeldir.

Bu makalede, kemik, yağsız doku ve yağ dokusu1'i doğru bir şekilde ayırt etmek için HU değerlerini kullandık. Yerleşik HU aralıklarına atıfta bulunarak, vücut kompozisyonunun hassas bir şekilde analiz edilmesini ve karşılaştırılmasını sağladık. Burada, mikro-CT ve yağsız, yağ ve iskelet kütlesinin görselleştirilmesi ve ölçülmesinde uygulanması kullanılarak görüntülerin nasıl elde edileceğini gösteriyoruz.

Protokol

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Tüm yöntemler, Universidade Federal do Rio de Janeiro (UFRJ), Rio de Janeiro (IACUC - UFRJ; A16/23-025-20). Taramalar, 6 ve 22 aylık erkek C57BL / 6 fareleri üzerinde gerçekleştirildi.

1. Hayvan hazırlama

  1. Buharlaştırma yoluyla verilen bir oksijen karışımında% 2 izofluran kullanarak fareleri uyuşturun. Hassas bir buharlaştırıcı kullanarak 0 oksijen karışımı ile hem indüksiyon hem de bakım için hassas bir buharlaştırıcı kullanın.
  2. Anestezi uygulanmış hayvanı bir fare yatağı kullanarak mikro-BT taramasına sırtüstü yatırın. Tarama sırasında hareketi en aza indirmek için fareyi bantla sabitleyin ve ardından portala yerleştirin.
  3. Yaklaşık 10 dakika süren deney boyunca, gerektiğinde idame dozunu alırken hayvanın anestezik düzlemin altında tutmak için bir maske taktığından emin olun.

2. Görüntü elde etme ve yeniden yapılandırma

  1. Yüksek çözünürlüklü bir klinik öncesi görüntüleme sistemi kullanarak vücut mikro-BT taramaları elde edin. 60 kV voltajda ve 480 μA akımda sinek modu dönüşü kullanarak her biri 470 ms pozlama süresiyle toplam 1.024 projeksiyon yakalayın. Sistemi 1,25 büyütmeye ayarlayarak 94,72 mm görüş alanı (FOV) elde ederek toplam 8,02 dakikalık çekim süresi elde edin. 2.368 x 2.240 piksel çözünürlükle sonuçlanan 1 x 1 gruplama ile görüntüler yakalayın.
    NOT: Bu yazıda mikro-BT görüntüleri için kullanılan ekipman, anestezik maske ile örtüşme nedeniyle kafa görüntülerinin elde edilmesinde sınırlamalar sunmaktadır. Ek olarak, tüm kuyruk uzunluğu yakalanmaz. Bu nedenle, baş ve kuyruk analizini hariç tuttuk (bkz. bölüm 3).
  2. Hava ve su için HU'yu belirlemek için yarı damıtılmış su ile doldurulmuş akrilik silindirik bir fantom (çap: 2,5 cm, uzunluk: 11,5 cm) üzerinde aynı parametrelerle bir tarama yapın. Alımların tamamlanmasının ardından, gürültü azaltma için optimize edilmiş ayarlara ve Filtreli Geri Projeksiyon (FBP) algoritmasına sahip edinme yazılımını kullanarak görüntüleri yeniden oluşturun. 147 μm izotropik voksel boyutu ve 640 matris kullanarak hem hayvan hem de hayalet görüntüleri toplu olarak yeniden oluşturun.
  3. Referans verilen yazılımı kullanarak fantomdan (ham veriler) hava ve su HU'sunu çıkarın. Görüntüleri DICOM dosyalarına dönüştürün ve HU değerlerini düzeltin.

3. Görüntü analizi

  1. Dosya yükleme
    NOT: Mikro-CT, görüntüleri zamansal ve mekansal olarak yakalayan ve bir görüntü dizisi oluşturan bir tekniktir. Bu nedenle, tek bir görüntü yerine tüm klasörü açmak gerekir.
    1. Arayüzün sol üst kısmında, grimsi mavi renkle vurgulanan 3B Dilimleyici menüsünü bulun. Veri Ekle'ye (figure-protocol-1) tıklayın.
    2. İki seçenekli bir pencere göründüğünde, ilk seçeneği belirleyin: Eklenecek Dizini seçin.
    3. Hedef hayvan DICOM görüntüleri serisini içeren klasöre gidin ve üzerine tıklayın. Bu eylem, klasörü yazılım içinde açarak tüm görüntülerin aynı anda görüntülenmesine izin verecektir.
    4. Üç ekranda görüntülenen görüntüleri gözlemleyin. Her ekran farklı bir anatomik düzlemi temsil eder: sırasıyla yeşil, sarı ve kırmızı renklerle tanımlanan koronal, sagital ve enine.
  2. Segmentasyon
    1. Üst sekmede (Modüller) Segment Düzenleyici'yi (figure-protocol-2) bulun ve üzerine tıklayın.
    2. HU aralığını tanımlayan segmentler oluşturmak için yeşil + Ekle düğmesini tıklayın.
    3. Her birine 3 kez tıklayarak kemik, yağsız doku ve yağ dokusu için segmentler oluşturun.
    4. İstenen ayarlara göre adlandırmak ve renklendirmek için her segmente çift tıklayın.
    5. Pencerenin sol tarafında bulunan Eşik işlevini kullanarak her segment için HU aralığını ayarlayın. Bunu yapmak için, Eşik Aralığı işlevini figure-protocol-3 bulun ve her doku tipi için HU değerlerini girin: Yağsız doku (-29 ila 225 HU); yağ dokusu (-190 ila -30 HU); kemik (500 ila 5.000 HU). Uygula düğmesine tıklayın.
      NOT: HU değeri karşılaştırmaları için Ek Şekil S1'e bakın.
    6. Her doku tipi için segmentasyon işlemini tekrarlayın.
    7. Bir 3B görüntü oluşturma oluşturmak için 3B'yi Göster'i tıklatın.
      NOT: Görüntü oluşturma, ekranın mavi çeyreğinde görünecektir.
  3. Görüntüyü temizleme
    NOT: Segmentasyon ve 3D işlemeden sonra, yağsız doku, yağ dokusu ve kemiğin hacimsel ölçümlerine dahil edilmediklerinden emin olmak için yabancı öğeler hariç tutulmalıdır. Doğru analizi sağlamak için bu eserlerin kaldırılması çok önemlidir.
    1. Segmentasyon menüsünde "Makas" aracını (figure-protocol-4) bulun.
    2. Kaldırılacak nesnenin daha net bir görünümü için anatomik düzlemi veya 3B oluşturmayı seçin.
      1. Anatomik bir düzlem kullanıyorsanız, düzlemin renkli çubuğundaki görünümü büyüt düğmesine (figure-protocol-5) tıklayın. Anatomik düzlem penceresinin içinde, CT taramasında ileri veya geri gitmek için fare kaydırma düğmesini kullanın.
        NOT: Her pencere bağımsız olarak kaydırılabilir.
      2. 3D oluşturma için, herhangi bir eksen boyunca döndürmek için farenin sol düğmesini ve yakınlaştırmak için farenin sağ düğmesini kullanın.
        NOT: Klavyedeki ok tuşları da görüntüyü döndürebilir.
    3. Makas aracı seçiliyken, istenmeyen nesnenin etrafındaki segmentasyonu vurgulayın ve görüntüden kaldırmak için daire içine alın. Yazılım nesneyi otomatik olarak siler.
      NOT: İçini Sil işleminin seçili olduğundan emin olun. Kullanılan ekipman, boncuk, anestezik veya cerrahi ekipman gibi biyolojik olmayan herhangi bir görüntü için görüntü oluşturuyorsa, bunun çıkarılması önemlidir. Ek olarak, herhangi bir anatomik alan tamamen elde edilemezse, deneyler arasında tekrarlanabilirliği sağlamak için tam olarak elde edilemeyen bu alanları çıkarmak için anatomik bir referans oluşturmak esastır. İstenmeyen nesneler her düzlemde kaldırılmalıdır.
    4. Seçilen pencereden bağımsız olarak dört pencereli ekrana dönmek için görünüm düzenini geri yükle simgesini (figure-protocol-6) tıklatın.
    5. Nesnenin kaldırılması gereken tüm pencereler için işlemi tekrarlayın.
  4. Segmentasyon hacmi
    1. Segmentasyondan sonra, açılır menüde bulunan niceleme işlevini kullanarak segmentlerin hacimlerini ölçün.
      NOT: Bu eylem için tüm segmentasyonların görünür olması gerekir.
    2. Nicelemeye gidin | Segment İstatistikleri. Uygula'ya tıklayın ve yazılımın her segmentasyon için değerleri görüntüleyen bir tablo oluşturmasını bekleyin. Yazılım, her segmentasyon için iki hacim değeri sağlar: Labelmap (LM) ve Kapalı Yüzey (CS).
      NOT: LM Değeri genellikle tek bir vokselin hacmiyle çarpılan voksel sayısını kullanarak segment hacimlerini hesaplamak için uygundur. CS Value, düzleştirilmiş bir yüzey modeli kullanır ve üçgen yüzey elemanlarına dayalı hacmi entegre eder. CS, anatomik konturlarla daha yakından hizalanır ve doğru ölçümler için önerilir.
    3. Yeni bir hayvandan veri yüklemek için, dosya menüsünde sahneyi kaydedin ve kapatın.
  5. Kurumsal kompozisyon analizi
    1. Bu hacimleri doku kütlesine dönüştürmek için yazılımın sağladığı hacim ölçümlerini cm3 cinsinden kullanın ve her doku tipi için uygun yoğunluğu uygulayın. Uluslararası Radyasyon Birimleri ve Ölçümleri Komisyonu22 tarafından belirtilen aşağıdaki doku yoğunluklarını kullanın: 0,95 g/cm³ (yağ dokusu), 1,05 g/cm³ (yağsız doku) ve 1,92 g/cm³ (iskelet dokusu)2.
      1. Doku kütlesini hesaplamak için, yazılımdan elde edilen hacmi (cm³) ilgili doku yoğunluğu (g/cm³) ile çarpın:
        Yağ Dokusu Kütlesi: Hacimsegmentasyonu X 0.95 = Kütleyağ
        Yağsız Doku Kütlesi: Hacimsegmentasyonu X 1.05 = Kütleyağsız
        İskelet Dokusu Kütlesi: Hacimsegmentasyonu X 1.92 = Kütleiskeleti
        Toplam Kütle: Kütleyağ + Kütleyağsız + Kütleiskeleti = KütleToplamı
  6. Kemik uzunluğu ölçümü
    NOT: Belirli analizler için doku kütlesini kemik uzunluğuna göre düzeltmek için, belirli kemik uzunlukları elde etmek gerekir.
    1. Segment Düzenleyici menüsüne dönün. Her segmentin yanındaki göz simgesine (figure-protocol-7) tıklayarak yağ dokusu ve yağsız doku segmentasyonlarını gizleyin.
      NOT: Sadece iskelet dokusuna karşılık gelen segmentasyon görünür kalmalıdır.
    2. Ana menünün üst köşesindeki İşaretlemeleri/Araç Çubuğunu Değiştir (figure-protocol-8) seçeneğini seçin. Bu, ana menünün hemen altında ikincil bir menü açacaktır. Yeni satır oluştur düğmesini (figure-protocol-9) bulun.
    3. Yeni çizgi oluştur düğmesine tıkladıktan sonra, 3D rekonstrüksiyona gidin ve ölçülecek kemiği belirleyin.
      NOT: Önerilen kemikler tibia veya femur22'dir.
    4. Kemik tanımlandıktan sonra, kemiğin bir ucuna ve dokunun diğer ucuna tekrar sol tıklayın. Bu eylem, yazılımın kemik boyutunu hesaplamasına izin verir.
      NOT: Tutarlı ölçümler için, her hayvan için kemiğin aynı anatomik bölgesini seçin. Örneğin, femur başı uyluk kemiğinin bir ucu ve lateral kondil uyluk kemiğinin diğer ucu olarak kullanılır.
  7. Veri analizi ve normalleştirme
    NOT: Toplu veri, bölüm 3.5'te açıklandığı şekilde elde edilebilir ve olduğu gibi kullanılabilir. Alternatif olarak, yağsız, yağ ve kemik kütlesi iki şekilde normalleştirilebilir.
    1. Görüntülerin elde edildiği günkü doku kütlesi ile hayvanın ağırlığı arasındaki oranı hesaplayın.
      Kiloya normalleştirme: Kütleyağsız ÷ Vücut ağırlığı
    2. Kütle ve kemik boyutu arasındaki oranı hesaplayın (örneğin, femur veya tibia).
      Femura normalizasyon: Kütleyağsız ÷ Boyfemur
      Tibiaya normalizasyon: Kütleyağsız ÷ Boyuttibia
      NOT: Normalleştirme parametreleri deneysel soruya göre seçilmiştir. Kemik boyutunda değişiklikler bekleniyorsa (örneğin: kemik yeniden şekillenmesini karşılaştırırken) vücut ağırlığına göre normalizasyon önerilir (madde 3.7.1). Ek olarak, deneysel sorunuzda vücut ağırlığında değişiklikler bekleniyorsa, uzun kemik boyutu önerilen normalizasyon parametresidir (madde 3.7.2).

Sonuçlar

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Sedasyonlu hayvanın görüntüleme masasına uygun anatomik olarak konumlandırılması, tutarlı ve tekrarlanabilir tarama sonuçları sağlayarak güvenilir sonuçlar elde etmede veri toplama etkinliğini vurgular. Özel gaz dağıtım sistemleri ve buharlaştırıcılar dahil olmak üzere görüntüleme boyunca uygun hayvan sedasyonu, kesin anatomik değerlendirmeler için esastır (Şekil 1).

Şekil 2, koronal, sagital ve enine düzlemlerde sıralı görüntüler sunarak farklı anatomik düzlemlerde segmentasyon ve işlemeyi göstermektedir. Bu görüntüler, iskelet, yağ ve yağsız dokunun kademeli segmentasyonunu gösterir ve tüm doku tiplerini entegre eden, dokular arasında net bir ayrımı vurgulayan ve tanımlanan doku tiplerine dayalı olarak bölgeye özgü işaretleri gösteren kapsamlı bir şekilde segmentlere ayrılmış bir temsille sonuçlanır. Tüm vücut yakalamayı engelleyen ekipman sınırlamalarına rağmen, yöntem çeşitli anatomik düzlemlerde doku dağılımı ve bileşimi hakkında ayrıntılı bilgi sağlar.

Şekil 3, anatomik yapıların kapsamlı bir görselleştirmesini sunan kemik (mavi), yağ dokusu (sarı) ve yağsız doku (kırmızı) doku tiplerini vurgulayan 3B işlemeleri göstermektedir. Bu görselleştirme, protokolün anatomik çalışmalar için gerekli olan ayrıntılı 3D modeller oluşturmadaki etkinliğinin altını çizmektedir.

Tablo 1 , hayvanın görüntüleme günündeki ağırlığına göre normalleştirilmiş doku kütlelerini (yağsız kütle, vücut yağı ve iskelet kütlesi) detaylandırmaktadır. Sunulan değerler, metodolojinin 3.5.1.1 adımında ayrıntılı olarak açıklandığı gibi, doku hacminin (cm³ cinsinden) karşılık gelen doku yoğunluğu ile çarpılmasından elde edilir.

Tablo 2 , her bir hayvanın kütle dağılımını ve yağsız, vücut yağı ve iskelet dokusu yüzdesini gösteren mutlak vücut kompozisyonu değerlerini sağlar. Her bir doku tipinin toplam miktarını ve her bir örneğin genel vücut kompozisyonuna nasıl katkıda bulunduğunu değerlendirmemize olanak tanır.

Ek Tablo S1 , her bir analistin her bir hayvan için vücut kompozisyonu analizini tamamlamak için harcadığı süreyi ve analistler arasındaki sonuçlardaki değişkenliği gösterir. Yağsız kütle, vücut yağ kütlesi ve iskelet kütlesi gibi vücut kompozisyonu ölçümlerinin ölçülmesinde deneyimli (Analist 1, 2 ve 5) ve deneyimsiz operatörler (Analist 3 ve 4) arasında önemli bir değişkenlik olup olmadığını değerlendirir.

Şekil 4, yetişkin ve yaşlı denekler arasında karşılaştırmalı bir vücut kompozisyonu analizi sunmaktadır. Yağsız kütle yüzdesinde bir azalma ve tipik yaşlanma modelleriyle uyumlu olan artan vücut yağını ortaya çıkarır. Bu bulgular toplu olarak, klinik öncesi araştırma metodolojilerini ilerletmek için gerekli olan kritik anatomik verileri sağlamada görüntüleme protokolünün sağlamlığını ve hassasiyetini vurgulamaktadır.

figure-results-1
Şekil 1: Hayvanların hazırlanması. (A) Gaz dağıtım sistemleri ve buharlaştırıcılar gibi görüntüleme işlemi boyunca hayvan sedasyonu için kullanılan aparatlar; (B) mikro-CT tarama sistemi. (C) Anestezi uygulanmış hayvan bir fare yatağında sırtüstü yatmaktadır. Tutarlı ve tekrarlanabilir sonuçlar elde etmek için doğru konumlandırma çok önemlidir. Bu rakamın daha büyük bir sürümünü görüntülemek için lütfen buraya tıklayın.

figure-results-2
Şekil 2: Farklı anatomik düzlemlerde dilimlerin segmentasyonu ve görselleştirilmesi. (A) Koronal düzlem, (B) sagital düzlem ve (C) enine düzlem. Soldan sağa, görüntüler segmentsiz bir tarama (gri), kemik segmentasyonu (mavi), vücut yağ segmentasyonu (sarı), yağsız doku segmentasyonu (kırmızı) ve son olarak tüm segmentasyonlar dahil olmak üzere tam segmentasyon gösterir. Bu rakamın daha büyük bir sürümünü görüntülemek için lütfen buraya tıklayın.

figure-results-3
Şekil 3: 3D görüntüler. Soldan sağa, görüntüler konunun 3B görüntüsünü görüntüler ve farklı doku tiplerini vurgular: mavi kemik, sarı vücut yağı, kırmızı yağsız doku ve son görüntü kemik, yağ dokusu ve yağsız dokuyu birleştiren kapsamlı bir görünüm gösterir. Bu rakamın daha büyük bir sürümünü görüntülemek için lütfen buraya tıklayın.

figure-results-4
Şekil 4: Yetişkin ve yaşlı fareler arasındaki vücut kompozisyonunun karşılaştırılması. Çubuk grafik, iskelet dokusunun (yetişkin: .5 ± %0.5; yaşlı: 9.9 ± %1.0, p = 0.19), vücut yağının (yetişkin: 17.2 ± %5.7; yaşlı: 27.9 ± %4.4, p = 0.03) ve yağsız kütlenin (yetişkin: 72.3 ± %5.7; yaşlı: 62.3 ± %3.6, p = 0.03) vücut kompozisyonu yüzdelerini göstermektedir. Veriler hayvanlardan MEAN ± SD olarak sunulmuştur (yetişkin: n = 3; yaşlı: n = 3). İstatistikler, tek kuyruklu p değeri (* p < 0.05) ile eşleşmemiş bir t-testi kullanılarak hesaplandı. Bu rakamın daha büyük bir sürümünü görüntülemek için lütfen buraya tıklayın.

ZAYIF
Hayvan KimliğiYağsız kütle (g)Ağırlık (gr)Normalizasyon (Ağırlık)
Yaşlı 115.137.40.4
Yaşlı 214.444.40.3
Yaşlı 314.337.70.4
Yetişkin 112.329.10.4
Yetişkin 216.530.40.5
Yetişkin 316.131.70.5
VÜCUT YAĞI
Hayvan KimliğiVücut yağ kütlesi (g)Ağırlık (gr)Normalizasyon (Ağırlık)
Yaşlı 16.437.40.2
Yaşlı 28.244.40.2
Yaşlı 35.337.70.1
Yetişkin 14.429.10.2
Yetişkin 22.730.40.1
Yetişkin 33.431.70.1
ISKELET
Hayvan Kimliğiİskelet kütlesi (g)Ağırlık (gr)Normalizasyon (Ağırlık)
Yaşlı 12.337.40.06
Yaşlı 22.344.40.05
Yaşlı 32.437.70.06
Yetişkin 12.029.10.07
Yetişkin 22.330.40.08
Yetişkin 32.231.70.07

Tablo 1: Görüntüleme gününde hayvan ağırlığına göre kitlelerin normalleşmesi. Bölüm 3.7'de açıklandığı gibi, dokunun kütlesi hayvanın muayene günündeki ağırlığına göre normalleştirilebilir. Bu normalizasyon, hayvanın ağırlığına bağlı olarak yağsız, yağ ve kemik dokusuna uygulanmıştır.

Vücut Kompozisyonu (g)
Segmentasyon hacmi x 1.05Segmentasyon hacmi x 0.95Segmentasyon hacmi x 1.92Yağsız + Yağ + İskelet
Hayvan KimliğiYağsız kütle (g)Vücut yağ kütlesi (g)İskelet kütlesi (g)Toplam kütle (g)
Yaşlı 115.16.42.323.8
Yaşlı 214.38.22.324.9
Yaşlı 314.35.32.422.0
Yetişkin 112.34.42.018.6
Yetişkin 216.52.72.321.5
Yetişkin 316.13.42.221.7
Vücut Kompozisyonu (%)
Hayvan KimliğiYağsız kütle (%)Vücut yağ kütlesi (%)İskelet kütlesi (%)Toplam kütle (%)
Yaşlı 163.626.89.6100
Yaşlı 258.132.89.0100
Yaşlı 364.924.111.0100
Yetişkin 165.923.510.6100
Yetişkin 276.812.410.9100
Yetişkin 374.315.79.9100

Tablo 2: Vücut kompozisyonu. (A) Hayvanların gram cinsinden vücut kompozisyonu; (B) vücut kompozisyonunun yüzdesi.

Ek Tablo S1: Farklı operatörler tarafından değerlendirilen vücut kompozisyonu. Her değerlendirme için yağsız kütle, vücut yağ kütlesi, iskelet kütlesi ve analiz için geçen süre (dakika olarak) kaydedildi. Analist 1, 2 ve 5 deneyimli operatörlerdi, Analist 3 ve 4 ise deneyimsizdi ve yalnızca çalışmada açıklanan protokolü takip ediyordu. Bu dosyayı indirmek için lütfen buraya tıklayın.

Ek Şekil S1: Farklı biyolojik ve biyolojik olmayan malzemelerin yoğunluk aralığı. Şekil, çeşitli biyolojik dokuların ve biyolojik olmayan maddelerin yoğunluk aralıklarını göstermektedir. Değerler literatürden elde edildi ve optimal doku farklılaşmasını sağlamak için ayarlandı. Kemikler en yüksek yoğunluğu sergiler, bunu yağsız doku izlerken, vücut yağı önemli ölçüde daha düşük bir yoğunluk gösterir. Cihaz, 0 yoğunlukta referans olarak su ile kalibre edildi. Bu dosyayı indirmek için lütfen buraya tıklayın.

Tartışma

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Tomografi ile değerlendirme, ayrıntılı vücut kompozisyonu bilgisi elde etmek için etkili ve non-invaziv bir yöntemdir. Özellikle mikro-BT, klinik öncesi çalışmalar için değerli sonuç ölçümleri sunar. Kemik alanında, mikro-BT'nin farklı kullanımları vardır, çünkü mikro-mimariyi23 ve kemik yeniden modellemesini24 analiz etmek özellikle ilginçtir. İç biyolojik yapının morfolojisinin değerlendirilmesi biyomedikal araştırmalarla da ilgilidir, çünkü belirli bir dokudaki vaskülatür yoğunluğunu analiz etmek, işlevini değerlendirebilir ve metabolizma hakkında çıkarımda bulunabilir25. Yağ kütlesinin endokrin ve metabolik çalışmaları için, mikro-BT kullanımı canlı küçük hayvanlarda temel bilgiler sağlar26,27. Ek olarak, mikro-BT, küçük böceklerin ve bitkilerin yapılarını değerlendirmek için kullanıldığı zooloji ve botanik gibi diğer alanlarda da uygulanabilir28,29.

Mikro-BT'nin önemli bir sınırlaması, yüksek maliyet ve görüntü analiz yazılımına sınırlı erişimdir. Ek olarak, doğru ölçümler için özellikle hayvan anatomisi olmak üzere önceki anatomik bilgi şarttır. Bu el yazması, ticari alternatiflerle karşılaştırılabilir sonuçlar üretebilen 3B dilimleyici yazılımını tanıtmaktadır. Bu sistem aynı zamanda yarı otomatik30 olduğu için kapsamlı anatomik bilgi gereksinimini de azaltır.

Mikro-BT yoluyla elde edilen ve yazılım tarafından analiz edilen görüntüler, farelerin vücut kompozisyonunun, toplam yağ dokusunda bir artış ve buna bağlı olarak yağsız kütlede bir azalma ile karakterize edilen, yaşlanma sırasında insanlarınkine benzer bir yörünge izlediğini gösterdi31. Bu bulgular yetişkin fareler (6 ay) ile yaşlı fareler (22 ay) karşılaştırıldığında belirgindi.

Ekipmanın sınırlamaları nedeniyle, anestezi maskesi kafa edinimini engeller. Bu nedenle, tüm kafayı yakalayamadık ve doğru bir şekilde segmentlere ayıramadık. Sonuç olarak, atlas kemiğini (C1) anatomik bir referans noktası olarak kullanmak için bir konvansiyon oluşturduk ve analizimizi burada kullanılan ekipmanda bu noktanın altındaki bölgeye odakladık. Bu nedenle, C1'in üzerindeki tüm görüntüler kaldırılmak üzere seçilmiştir. Ekipman tam kuyruk uzunluğunu elde edemedi. Böylece tüm analizlerde kuyruk bazal bölgeden uzaklaştırıldı. Kullanıcıya, deneyler arasında tekrarlanabilirliği korumak için hariç tutulan belirli alanlar için anatomik noktalar oluşturmasını öneririz.

Bu makale, erişilebilir ve uygun maliyetli bir protokol kullanarak tomografik görüntüleri analiz etmek için bir yöntem sunmaktadır. Yazılım, üç doku tipi arasında başarılı bir şekilde ayrım yaptı: yağsız kütle, yağ dokusu ve iskelet dokusu. Bununla birlikte, iskelet kasını viseral organlardan ayırt edemedi, bu da murin vücut kompozisyonu analizinde yaygın bir zorluktu.

Mikro-BT, viseral doku ve iskelet kası kütlesini ayırt etme yeteneğinden yoksundur. Bu sınırlamaya rağmen, sonuçlarımız, yazılımın vücut kompozisyonunu etkileyen hastalıkları, özellikle de hipertrofi veya atrofi gibi iskelet kasını etkileyen hastalıkları incelemek için değerini göstermektedir. Non-invaziv bir test olarak tekrarlanabilir ve uzunlamasına vücut kompozisyonunun izlenmesini sağlar. Bu yetenek, koruyucu tedavilerin değerlendirilmesine ve birçok metabolik hastalığın modellenmesi için protokollerin geliştirilmesine yardımcı olur.

Açıklamalar

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Yazarlar hiçbir rekabet çıkarı beyan etmezler.

Teşekkürler

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Bu araştırma, Rio de Janeiro Eyaleti Araştırma Destek Vakfı Carlos Chagas Filho tarafından finanse edilmiştir (FAPERJ; E-26/010.002643/2019 ve E-26/201.335/2022), Coordenação de Aperfeiçoamento de Pessoal de Nível Superior -Brezilya (CAPES)-001 Finans Kodu. Programa Institucional de bolsas de iniciação científica da Universidade Federal do Rio de Janeiro. Ulusal Bilimsel ve Teknolojik Kalkınma Konseyi (CNPq; FFB: 001. 306236/2022-2 TMO-C: 309339/2023-5). Yazarlar, Ulusal Yapısal Biyoloji ve Biyogörüntüleme Merkezi (CENABIO) / Universidade Federal do Rio de Janeiro'ya tesislerinin, özellikle de Küçük Hayvan Görüntüleme Ünitesi'ndeki (UIPA) microPET / SPECT / CT platformunun kullanımı için teşekkür eder. Ek Şekil S1 , BioRender.com ile oluşturulmuştur.

Malzemeler

Bu makalede kullanılan malzemelerin listesi
AdŞirketKatalog numarasıYorumlar
3DSlicer, sürüm 5.6.23D Slicer platformuGörüntü analizi ve bilimsel görselleştirme için ücretsiz ve açık kaynaklı bir yazılım.
Amide, version 1.0.1Amide platform- İşlenmiş DICOM görüntülerindeki Hounsfield Unit değerlerini düzeltmek için kullanılan ücretsiz ve açık kaynaklı bir yazılım.
Amira, sürüm 4.1Thermo Fisher ScientificFantomun ham verilerinden hava ve su Hounsfield Birim değerlerini çıkarmak ve görüntüleri DICOM dosyalarına dönüştürmek için kullanılır.
İzoforinCristá liaIsoflurane, buharlaştırma yoluyla genel inhalasyon anestezisinde kullanım için yanıcı olmayan bir sıvı anestezik ajandır.
Triumph XO alt sistemiGamma Medica-Ideas FlexKlinik öncesi küçük hayvan görüntülemesi için tasarlanmış gelişmiş görüntüleme alt sistemi, kantitatif ve kalitatif analiz için yüksek çözünürlüklü CT ve PET yetenekleri sunar.

Kaynaklar

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
  1. Engelke, K., Museyko, O., Wang, L., Laredo, J. D. Quantitative analysis of skeletal muscle by computed tomography imaging-State of the art. J Orthop Translat. 15, 91(2018).
  2. Peixoto da Silva, S., Santos, J. M. O., Costa e Silva, M. P., Gil da Costa, R. M., Medeiros, R. Cancer cachexia and its pathophysiology: links with sarcopenia, anorexia and asthenia. J Cachexia Sarcopenia Muscle. 11 (3), 619(2020).
  3. Lan, X. Q., et al. The role of TGF-β signaling in muscle atrophy, sarcopenia and cancer cachexia. Gen Comp Endocrinol. 353, 1-10 (2024).
  4. Bloise, F. F., Oliveira, T. S., Cordeiro, A., Ortiga-Carvalho, T. M. Thyroid hormones play role in sarcopenia and myopathies. Front Physiol. 9, 560(2018).
  5. Yin, L., et al. Skeletal muscle atrophy: From mechanisms to treatments. Pharmacol Res. 172, 1-12 (2021).
  6. Heymsfield, S. B., Adamek, M., Gonzalez, M. C., Jia, G., Thomas, D. M. Assessing skeletal muscle mass: historical overview and state of the art. J Cachexia Sarcopenia Muscle. 5 (1), 9-18 (2014).
  7. Cruz-Jentoft, A. J., et al. Sarcopenia: revised European consensus on definition and diagnosis. Age Ageing. 48 (1), 16-31 (2019).
  8. Faron, A., et al. Quantification of fat and skeletal muscle tissue at abdominal computed tomography: associations between single-slice measurements and total compartment volumes. Abdom Radiol (NY). 44 (5), 1907-1916 (2019).
  9. Marra, M., et al. Assessment of body composition in health and disease using bioelectrical impedance analysis (BIA) and dual energy X-ray absorptiometry (DXA): A critical overview. Contrast Media Mol Imaging. 2019, 3548284(2019).
  10. Martin, L., et al. Cancer cachexia in the age of obesity: skeletal muscle depletion is a powerful prognostic factor, independent of body mass index. J Clin Oncol. 31 (12), 1539-1547 (2013).
  11. Schlaeger, S., et al. Association of paraspinal muscle water-fat MRI-based measurements with isometric strength measurements. Eur Radiol. 29 (2), 599-608 (2019).
  12. Kose, K. Physical and technical aspects of human magnetic resonance imaging: present status and 50 years historical review. Adv Phys: X. 6 (1), (2021).
  13. Arnold, T. C., Freeman, C. W., Litt, B., Stein, J. M. Low-field MRI: Clinical promise and challenges. J Magn Reson Imaging. 57 (1), 25-44 (2023).
  14. Wang, H., et al. Preoperative MRI-based radiomic machine-learning nomogram may accurately distinguish between benign and malignant soft-tissue lesions: A two-center study. J Magn Reson Imaging. 52 (3), 873-882 (2020).
  15. Brower, C., Rehani, M. M. Radiation risk issues in recurrent imaging. Br J Radiol. 94 (1126), (2021).
  16. Mainprize, J. G., Yaffe, M. J., Chawla, T., Glanc, P. Effects of ionizing radiation exposure during pregnancy. Abdom Radiol (NY). 48 (5), 1564(2023).
  17. Geethanath, S., Vaughan, J. T. Accessible magnetic resonance imaging: A review. J Magn Reson Imaging. 49 (7), e65-e77 (2019).
  18. Ritman, E. L. Current status of developments and applications of micro-CT. Annu Rev Biomed Eng. 13, 531-552 (2011).
  19. Khoury, B. M., et al. The use of nano-computed tomography to enhance musculoskeletal research. Connect Tissue Res. 56 (2), 106(2015).
  20. DenOtter, T. D., Schubert, J. Hounsfield Unit. StatPearls [Internet]. , StatPearls Publishing. Treasure Island (FL). (2024).
  21. Pinto, E. M., et al. Efficacy of Hounsfield units measured by lumbar computer tomography on bone density assessment: A systematic review. Spine (Phila Pa 1976). 47 (9), 702-710 (2022).
  22. Beaucage, K. L., Pollmann, S. I., Sims, S. M., Dixon, S. J., Holdsworth, D. W. Quantitative in vivo micro-computed tomography for assessment of age-dependent changes in murine whole-body composition. Bone Rep. 5, 70-80 (2016).
  23. Faot, F., Chatterjee, M., de Camargos, G. V., Duyck, J., Vandamme, K. Micro-CT analysis of the rodent jaw bone micro-architecture: A systematic review. Bone Rep. 2, 14-24 (2015).
  24. Cooper, D., Turinsky, A., Sensen, C., Hallgrimsson, B. Effect of voxel size on 3D micro-CT analysis of cortical bone porosity. Calcif Tissue Int. 80 (3), 211-219 (2007).
  25. Mrzilkova, J., et al. Morphology of the vasculature and blood supply of the brown adipose tissue examined in an animal model by micro-CT. Biomed Res Int. 2020 (1), 7502578(2020).
  26. Li, F. W., et al. Optimal use ratio of the stromal vascular fraction (SVF): An animal experiment based on micro-CT dynamic detection after large-volume fat grafting. Aesthet Surg J. 39 (6), NP213-NP224 (2019).
  27. Berndt, S., et al. Microcomputed tomography technique for in vivo three-dimensional fat tissue volume evaluation after polymer injection. Tissue Eng Part C Methods. 23 (12), 964-970 (2017).
  28. Rother, L., et al. A micro-CT-based standard brain atlas of the bumblebee. Cell Tissue Res. 386 (1), 29-45 (2021).
  29. Ijiri, T., Todo, H., Hirabayashi, A., Kohiyama, K., Dobashi, Y. Digitization of natural objects with micro CT and photographs. PLoS One. 13 (4), e0195852(2018).
  30. Fedorov, A., et al. 3D Slicer as an image computing platform for the Quantitative Imaging Network. Magn Reson Imaging. 30 (9), 1323-1341 (2012).
  31. Ponti, F., et al. Aging and imaging assessment of body composition: From fat to facts. Front Endocrinol (Lausanne). 10, 861(2020).

Yeniden basım ve izinler

Bu JoVE makalesinin metnini veya şekillerini yeniden kullanmak için izin iste

İzin iste

Etiketler

Micro Computed TomographySkeletal Muscle QuantificationBody Composition AnalysisSmall Animal ImagingLean Mass MeasurementAdipose Tissue Segmentation3D RenderingHounsfield Unit ThresholdBone Length MeasurementPreclinical Imaging

İlgili makaleler