$$\rightleftharpoonup{xx}$$
$$\longleftharp{xx}$$,
$$\longrightharp{xx}$$,
Çalışma, LOPUKHIN FRCC PCM Etik Kurulu tarafından gözden geçirilmiş ve onaylanmıştır (9 Nisan 2019 tarihli 2019/02 sayılı protokol). Tüm donör örnekleri Helsinki Bildirgesi ilkelerine uygun olarak elde edildi. Tüm katılımcılardan ve/veya yasal vasilerinden bilgilendirilmiş onam alındı.
NOT: Protokol boyunca steril tekniği koruyun. Tüm kültür ortamlarını ve çözeltilerini hücrelere veya sferoidlere uygulamadan önce 37 °C'ye ısıtın. Hücreleri bir CO2 inkübatöründe 37 ° C'de,% 5 CO2 % 80 nem ile yetiştirin. Protokol şeması Şekil 1'de gösterilmiştir.

Şekil 1: iPSC hattından kondrosfer üretme protokolü IPSRG4S. (A) Başlangıçta, iPSC'ler% 80 birleşmeye ulaşılana kadar pluripotent kök hücre ortamında kültürlenir. (B) Kondrositik çizgiye doğru farklılaşmayı indüklemek için, iPSC'ler daha sonra 2 gün boyunca ortam A'da kültürlenir. Ortam daha sonra Chir 99021 ve Rho kinaz inhibitörü içermeyen bir formülasyonla değiştirilir ve hücreler her 2 günde bir orta değişikliklerle 6 gün daha kültürlenir. (C) Hücreler daha sonra sonraki 10 gün boyunca kondrogenezi teşvik etmek için B ortamına aktarılır. (D) Yeterli hücre sayısı elde edildiğinde, süreç sferoidlerin üretim aşamasına ilerler. (E) Hücreler, yerçekimi altında düşük yapışkan koşullarda sferoidler halinde toplanır. (F) Elde edilen sferoidler, orta B ile mini biyoreaktörlerde kültürlenir. Bu rakamın daha büyük bir sürümünü görüntülemek için lütfen buraya tıklayın.
1. Petri kaplarının mini biyoreaktörlere dönüştürülmesi
NOT: Ayrıntılar bir önceki makaledeyer almaktadır 5.
- Steril otoklav makası kullanarak santrifüj tüplerini 7-8 mm yüksekliğinde halkalar halinde dilimleyin (otoklav ayarları: 15 psi'de 121 °C (250 °F), 30 dakika ve otoklav sonrası 20 dakika kurutma).
- Düşük yapışma özelliğine sahip, işlenmemiş veya mikrobiyolojik Petri kaplarını küçük parçalara ayırın. Sıvı bir plastik çözelti oluşturmak için yaklaşık 1 g plastik parçacığı gece boyunca 10 mL kloroformda çözün. Bu prosedürü bir çeker ocakta gerçekleştirin.
- Sıvı plastiğin pipetleme için yeterince viskoz olduğunu doğrulayın. Damlacıkların yüzeye yayılmak yerine küresel bir şekli koruduğundan emin olun. Çözelti çok inceyse, genellikle 1-3 g gerektiren daha fazla plastik parçacık ekleyin. Çok kalınsa, genellikle 5 mL'ye kadar gerektiren ek kloroform ekleyin.
- Aşağıda özetlenen iki etkili yöntemden birini kullanarak steril, ultra düşük yapışma özelliğine sahip 60 mm'lik bir Petri kabının ortasında plastik bir düğme oluşturun.
- Seçenek 1: Otoklavlanmış plastik halkayı Petri kabının ortasına yerleştirin, ardından halkanın içine sıvı plastik uygulayın; bir damla yaklaşık 100-200 μL damla sıvı plastik gerektirecektir.
- Seçenek 2: Plastik halkayı kullanmadan aynı sayıda sıvı plastik damlasını doğrudan Petri kabının ortasına uygulayın.
- Bulaşıkların laminer akış başlığında 2-3 saat üstü açık olarak kurumasına izin verin. Kuruduktan sonra bulaşıkları 20-30 dakika ultraviyole radyasyona maruz bırakın.
2. Kültür yemeklerinin jelatin ile işlenmesi
- Toz jelatini 95 °C'de damıtılmış suda çözerek %0.1'lik bir jelatin çözeltisi hazırlayın. Çözeltiyi sırayla 0.45 μm ve 0.25 μm membran filtrelerden geçirin, ardından süzüntüyü 4 °C'de saklayın.
- Kondrosit yeniden tohumlamadan hemen önce, 3 mL jelatin solüsyonunu 25 cm2'lik şişeye uygulayın (T25 şişesi başına 15 g'a kadar kıkırdak dokusu önerilir). Oda sıcaklığında (RT) 30 dakika inkübe edin, jelatini çıkarın, PBS ile iki kez durulayın ve hücre tohumlamaya devam edin.
3. Kondrositlerin izolasyonu ve yetiştirilmesi
NOT: Kondrositler, total diz protezi yapılan hastalardan ağırlık taşımayan kıkırdak bölgelerinden izole edilir. Tüm örnekleri steril koşullar altında hasat edin ve 200 U / mL penisilin / streptomisin çözeltisi içeren DMEM ile doldurulmuş steril tüplerde saklayın. Kıkırdak dokusunu buzdolabında 2-8 °C'de saklayın.
- Kıkırdak alımından sonraki 2 gün içinde enzimatik tedaviye başlayın. 60 mm Petri kapları kullanarak Hankıç parçalarını Hanks solüsyonunda yıkayın, ardından kıkırdağı otoklavlanmış makas kullanarak yaklaşık 1-2 mm çapında parçalar halinde kesin.
- Kıkırdak parçalarını 15 mL'lik tüplere aktarın ve DMEM'de% 0.01 kollajenaz tip II çözeltisinde, 1 g kıkırdak başına yaklaşık 1 mL, 8-12 saat içinde% 5 CO2,% 100 nem ile 37 ° C'ye ayarlanmış bir CO2 inkübatörinde, 150-200 rpm'de bir orbital çalkalayıcı üzerinde sürekli çalkalama altında sindirin.
- Sindirimden sonra, kıkırdak parçalarını 15 mL'lik bir tüpe DMEM ekleyerek yıkayın, ardından 300 × g'da 10 dakika santrifüjleyin. Parçaları bir kondrosit kültür ortamında (Ek Tablo 1) yeniden süspanse edin ve bunları% 0.1 jelatin çözeltisi ile önceden kaplanmış yapışkan bir T25 şişesi üzerine tohumlayın.
- % 80'lik bir birleşik yoğunluk elde edildiğinde geçiş kondrositleri.
- Geçiş için, kondrositleri Hanks solüsyonu ile yıkayın, daha sonra hücreleri% 0.25 tripsin solüsyonu ile 37 ° C'de 5 dakika inkübe edin.
- Tripsini etkisiz hale getirmek için eşit miktarda DMEM +% 10 FBS ekleyin. Kondrositleri taze kültür ortamında yeniden süspanse edin, daha sonra 1cm2'de 20.000-30.000 hücre tohumlayarak 1: 3 oranında dağıtın.
- Kültür şişesini 37 °C'de, %5 CO2 ve 0 nem oranına sahip bir inkübatöre yerleştirin.
4. Pluripotent kök hücrelerin yetiştirilmesi
NOT: Moleküler Beyin Araştırma Grubu, Nörobiyoloji Anabilim Dalı Kök Hücre Laboratuvarı ile işbirliği içinde, A.I. Virtanen Enstitüsü, Doğu Finlandiya Üniversitesi, Kuopio, Finlandiya, bir iPSC hattı IPSRG4S, önceki bir çalışmada başarıyla oluşturulmuştur8.
- iPSC'leri, hücre dışı proteinler içeren bir matris ile önceden kaplanmış 6 oyuklu plakalarda yetiştirin ( Şekil 1A). Pluripotent kök hücreler için bir ortam kullanın (Ek Tablo 1).
- 1:4 oranını koruyarak (1cm2