Yöntem makalesi

Subaraknoid Kanamanın Endovasküler Perforasyon Murin Modelinde Basitleştirilmiş Bir Operasyon

DOI:

10.3791/67783

⸱

13 Haziran 2025

 ,  ,  ,  ,  ,  , 
1Longhua Hospital, Shanghai University of Traditional Chinese Medicine, 2Spine Institute, Shanghai University of Traditional Chinese Medicine, 3Key Laboratory of Theory and Therapy of Muscles and Bones, Ministry of Education (Shanghai University of Traditional Chinese Medicine), 4School of Traditional Chinese Medicine, Shanghai University of Traditional Chinese Medicine

Bu makalede

Özet

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Burada, nörolojik skorlama ile birlikte subaraknoid kanamanın endovasküler perforasyon murin modeli için basitleştirilmiş bir operasyon sunuyoruz.

Özet

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Endovasküler perforasyon modeli, deneysel çalışmalarda subaraknoid kanamayı (SAK) simüle etmek için yaygın olarak bir yöntem olarak kullanılmaktadır. Kapsamlı ve güvenilir olduğu gibi, karmaşık teknikler gerektirir. Bu protokol, nörolojik puanlama ile birlikte modeli bazı ayrıntılarda basitleştirir. Geleneksel ligasyon dışında kan akışını geçici olarak engellemek için ortak karotis arteri (CCA) ilmek ve çekmek için naylon bir sütür kullanıyoruz, bu da net bir ameliyat alanı sunuyor. Kan damarlarını kaynaştırmak için elektrokoter kaleminin kullanılması kanama riskini azaltır. Ayrıca, delinme derinliğini belirlemeyi kolaylaştırmak için siyah işaretli bir filament kullanıyoruz.

Ana karotis arterin (CCA) internal karotis artere (ICA) ayrıldığı ve minimal dirençle birlikte karotis bifurkasyonunu geçen siyah markörün engelsiz ilerlemesi, filamentin anterior serebral arter (ACA) ve orta serebral arterin (MCA) intrakraniyal bileşkesine başarılı bir şekilde geçtiğini gösterir. Bu fenomen, filamentin kritik bir serebrovasküler yakınsama noktasında konumunu gösterir. Daha sonra, kan damarını delmek için filamenti hafifçe ileri doğru ilerletmek, farelerde endovasküler perforasyon için daha kolay operasyona izin verir, böylece genetiği değiştirilmiş farelerde endovasküler perforasyon modelinin uygulanmasını kolaylaştırır. Bu, moleküler araştırma ve farmasötik araştırma ve geliştirme için çok önemli olabilir.

Giriş

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

İnmenin ciddi bir alt tipi olan subaraknoid kanama (SAK), özellikle ellili yaşların ortasındaki insanları etkileyen yüksek morbidite ve mortalite oranlarıyla bağlantılıdır. Spontan SAK esas olarak ağırlıklı olarak Willis 1,2 çemberinde meydana gelen intrakraniyal anevrizmaların yırtılmasından kaynaklanır. Klinik olarak, hastalar sıklıkla gök gürültüsü baş ağrıları, nörolojik disfonksiyon ve bilinçte hızlı bir düşüş ile başvururlar3. Nörokritik bakımdaki gelişmelere rağmen, hastaların yaklaşık %40'ı kanamadan sonraki bir ay içinde ölmektedir4. Anevrizmal SAK'tan sonra ilerleyici nörolojik bozulmaya yol açan çeşitli ikincil komplikasyonlar ortaya çıkabilir. Bununla birlikte, SAK'ın patofizyolojisi ve klinik özellikleri hala tam olarak anlaşılamamıştır.

Bu nedenle, altta yatan mekanizmaları daha iyi anlamak ve terapötik stratejileri geliştirmek için küçük hayvanlarda kapsamlı ve güvenilir modeller vazgeçilmezdir. Bugüne kadar, SAH modellerinin oluşturulması için çok sayıda protokol ortaya konmuştur. Örneğin, bir yaklaşım, cisterna magna'ya otolog kan enjekte etmeyi içerir. Başka bir modifiye edilmiş protokol, biri cisterna magna'ya ve diğeri optik kiazma sarnıcına olmak üzere iki ayrı enjeksiyonu gerektirir. Otolog kan enjeksiyonu, teknik basitliği ve uygun mortalite oranınedeniyle yaygın olarak benimsenmiştir 5,6. Daha küçük ve daha ucuz bir laboratuvar hayvanı kullanma olasılığını elde etmek için, Barry ve ark. 1979'da sıçanlar üzerinde, kafatasını çıkardıktan sonra baziler arteri tungsten mikroelektrotlarla delmeyi içeren ilk SAH modelini tanımladı7.

1995 yılında, serebral iskeminin Zea-Longa modelinin modifiye edilmiş bir versiyonu olan başka bir endovasküler perforasyon modeli sunuldu ve mevcut formun daha sonra SAK8'i incelemek için en yaygın kullanılan model olduğu kanıtlandı. Önceki araştırmalar, farelerin ve insanların, intrakraniyal anevrizmanın ağırlıklı olarak meydana geldiği Willis çemberi olarak adlandırılan benzer bir intrakraniyal vasküler yapıya sahip olduğunu göstermiştir9. Bu kraniyotomi olmayan yöntem, hassas ICA bifurkasyon perforasyonu10 yoluyla insan anevrizması yırtılma mekanizmalarını çoğaltır. Ayrıca, genetiği değiştirilmiş fare, moleküler mekanizmaların incelenmesinde sıklıkla kullanılmaktadır. Bununla birlikte, küçük hayvanlardaki karmaşık teknikleri nedeniyle, endovasküler perforasyon modeli ağırlıklı olarak sıçanlarda veya tavşanlarda kullanılırken, farelerde uygulaması nispeten daha az yaygındır. Bu nedenle endovasküler perforasyon murin modelinin sadeleştirilmesi ve yüksek mortalite oranının azaltılması büyük önem taşımaktadır.

Burada, Garcia nörolojik değerlendirme ölçeği11'in değiştirilmiş bir versiyonunu entegre ederek endovasküler perforasyon murin modelinin basitleştirilmiş bir modifikasyonunu sunuyoruz. Modifikasyonumuz, SAH'ın gelecekteki deneysel çalışmaları için kolay, kullanışlı ve güvenilir bir model sağlar.

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Protokol

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Spesifik patojenlerden arındırılmış C57BL / 6 erkek fareler (6-8 haftalık), 12 saatlik aydınlık / karanlık döngüsünde tutulan, düzenlenmiş sıcaklık ve iklimlendirme koşullarına sahip bir hayvan tesisinde tutuldu. Farelere standart bir kemirgen diyetine ve sterilize edilmiş musluk suyuna sınırsız erişim sağlandı. Deneylerin başlamasından önce 2 haftalık bir iklimlendirme süresine izin verildi. Hayvanları içeren tüm prosedürler, Longhua Hastanesi Hayvan Etik Komitesi tarafından onaylandı ve Çin Ulusal Bilim ve Teknoloji Komitesi'nin laboratuvar hayvanlarının bakımı ve kullanımına ilişkin yönergelerine uygun olarak yürütüldü.

1. Hayvan hazırlama

  1. Fareyi önceden 37 °C'ye ısıtılmış bir ısıtma yastığına yerleştirin ve ameliyat tamamlanana kadar bu sıcaklığı korumaya devam edin.
  2. % 2-2.5 izofluran soluyarak fareyi uyuşturun. İşlem sırasında 0.4-0.6 L / dk akış hızında% 1-1.5 izofluran ile koruyun.
  3. Fareyi ameliyat masasına yerleştirin, başını sabitleyin, sırtüstü pozisyonda tutun ve uzuvlarını bantla sabitleyin.

2. SAH indüksiyonu

  1. Cildi ön boynun ortası boyunca bir makasla kesin (Şekil 1A).
  2. Bağ dokusunu inceleyin ve sol ortak karotis arteri (CCA) ve çatallarını ortaya çıkarın.
    NOT: Vagus sinirini ve komşu bezleri dikkatli bir şekilde koruyun (Şekil 1B).
  3. CCA'yı 6-0 naylon sütür ile sarın ve iki ucunu ligasyon olmadan serbest bırakın (Şekil 1C).
  4. Sütürün her iki ucunu banda bağlayın ve dikişi yatay düzleme 45°'lik bir açıyla yavaşça aşağı ve sağa doğru çekin. CCA'yı geçici olarak bloke etmek için bandı ameliyat masasına sabitleyin (Şekil 1D).
    NOT: Tıkalı damar içindeki kan akımının iplik benzeri hale gelmesi tıkanıklığın başarılı olduğunu gösterir.
  5. Eksternal karotis arteri (ECA) naylon sütür ile bağlayın (Şekil 1E).
    NOT: Koterizasyon bölgesi, karotis bifurkasyonundan yaklaşık 2 mm uzunluğunda olacak şekilde mümkün olduğunca üst uca yakın olmalıdır.
  6. ECA'nın distalini bir elektrokoter kalemi kullanarak ligasyon bölgesine sigortalayın (Şekil 1F).
  7. İç karotis arter (ICA) açığa çıkana kadar ECA'yı yavaşça aşağı doğru çekin. ECA ve ICA'yı düz bir çizgide hizalayın ve bir sonraki prosedür için uygun konumu sağlayın (Şekil 1G).
  8. Filamentin üst kısmını keskinleştirin. Filament üzerindeki bir işaret noktası, üstten 8 mm uzakta bulunur.
  9. Filamentin ECA'ya yerleştirilmesi için makasla küçük bir kesi yapın. Filamenti bir çift forseps kullanarak yerleştirin (Şekil 1H).
  10. Siyah işaret CCA ve ICA'nın çatallanmasından tamamen geçene kadar filamenti forseps ile dikkatlice ilerletin. Kan damarını delmek için 2 mm hafifçe ilerleyin (Şekil 1I).
    NOT: Anterior serebral arter (ACA)-orta serebral arter (MCA) bifurkasyonuna ulaşıldığını gösteren önemli bir direnç hissedilir.
  11. Perforasyondan hemen sonra filamenti geri çekin.
  12. ECA'yı bir elektrokoter kalemi kullanarak sigortalayın (Şekil 1J).
  13. Bandı çıkarın ve kan akışını eski haline getirmek için CCA'nın naylon süttürünü geri çekin. CCA'nın bariz nabzını gözlemleyin (Şekil 1K).
  14. Boyun kesisini 5-0 emilebilir dikişlerle kapatın.

3. Sahte grup

  1. Sahte grupta, filamentin ICA'da kısmen ilerletilmesi vedelinmeden geri çekilmesi dışında aynı cerrahi operasyonu uygulayın 12.

4. Deneyin sonu

  1. Ameliyattan yirmi dört saat sonra, Sugawara ve ark.11 (orijinal Garcia ve ark.13'ten) tarafından bildirilen skorlama sisteminin değiştirilmiş versiyonuna göre nörolojik performansı değerlendirin. Aşağıdaki altı değerlendirmeyi kör bir şekilde gerçekleştirin: spontan aktivite, tüm uzuvların hareketi, ön ayak hareketi, tel kafes duvarına tırmanma, gövdenin her iki tarafındaki dokunmaya tepki ve vibrissae stimülasyonuna tepki. Davranış puanlama tablosunu kullanarak nörolojik fonksiyonu değerlendirin (Tablo 1).
  2. Fareyi inhale izofluran ile uyuşturun. Fareyi sırtüstü pozisyona getirin ve uzuvlarını sabitleyerek bantla ameliyat masasına sabitleyin. Ardından, karnın orta hattı boyunca bir kesi yapmak, karın duvarını kesmek ve göğüs boşluğunu ortaya çıkarmak için makas kullanın. Kalbi ortaya çıkarmak için sternumu dikkatlice kesin.
  3. Sol ventriküle dikkatlice bir infüzyon iğnesi yerleştirin, iğnenin stabil olduğundan ve kalbe nüfuz etmediğinden emin olun.
  4. Önceden soğutulmuş 1x PBS (4 °C) ile uygun bir akış hızında (yaklaşık 10 mL/dk) dışarı akan sıvı berrak ve şeffaf hale gelene kadar perfüze etmeye başlayın, bu da kanın tamamen değiştirildiğini gösterir.
  5. Perfüzyon tamamlandıktan sonra infüzyon iğnesini çıkarın ve sıvı infüzyonunu durdurun. Beyin dokusu toplamaya devam edin.

5. Ameliyat sonrası yönetim

  1. Cildi kapatırken, farelerin ağrısını hafifletmek için kas içi bir lornoksikam enjeksiyonu uygulayın.
  2. Ameliyat sırasında, gözlerin kuruluğunu iyileştirmek için her iki göze de eritromisin göz merhemi sürün.
  3. Ameliyattan sonra, cerrahi işlem sırasındaki kan kaybı miktarına bağlı olarak, sıvı replasmanı için fareye intraperitoneal olarak 0.2-0.4 mL salin enjekte edin.
  4. Enfeksiyonu önlemek için art arda 3 gün boyunca günde 40.000 ünite dozunda intramüsküler olarak penisilin enjekte edin.
  5. Ameliyattan sonraki ilk saatlerde hayvanları spontan solunum açısından düzenli olarak kontrol edin ve önceden tanımlanmış insani uç noktalar için günde iki kez izleyin. Ameliyatın neden olduğu solunum problemleri olduğu veya başlangıçtan %>20 kilo kaybı, yiyecek / suya erişememe veya ciddi nörolojik eksiklikler dahil olmak üzere herhangi bir son noktayı karşıladıkları tespit edilirse, fareleri CO2 ile hemen ötenazi yapın.
    NOT: Hayvan, sternal yaslanmayı sürdürmek için yeterli bilinci yeniden kazanana kadar gözetimsiz bırakılmaz ve tamamen iyileşene kadar diğer hayvanların şirketine geri gönderilmez.

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Sonuçlar

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Nörolojik skorlar
Her grubun dokuz faresi, SAK'ı değerlendirmek için Sugawara ve ark.11 tarafından bildirilen skorlama sisteminin bir modifikasyonu kullanılarak ameliyat sonrası 24 saat değerlendirildi. Elde edilebilecek maksimum puan 18'dir. Bunlar arasında, sahte gruptaki n = 9 hayvanın tümü 18 puan aldı. SAH grubunda ortalama skor 11 (p < 0.0001) idi (Şekil 2).

Beyindeki patolojik değişiklikler
...

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Tartışma

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Sonuç olarak, bu çalışma, endovasküler filament yerleştirilmesinin neden olduğu subaraknoid kanamanın (SAK) basitleştirilmiş ve güvenilir bir murin modelini sunarak uygun ve etkili bir yaklaşım sunmaktadır. Mevcut endovasküler perforasyon modeli ile karşılaştırıldığında, bu protokol perforasyon basamağında aynıdır: Filament dış karotis artere (ECA) sokulur, ortak karotis arter (CCA) boyunca ilerletilir ve daha sonra iç karotis artere yönlendirilir (ICA), burada anterior serebral arteri (...

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Açıklamalar

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Yazarların beyan edebilecekleri herhangi bir çıkar çatışması yoktur.

Teşekkürler

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Bu çalışma, Ulusal Doğa Bilimleri Vakfı (CJM'ye 82305281), Şangay'daki Bilim ve Teknoloji İnovasyon Eylem Planı (23YF1447900'den CJM'ye), Şanghay Eğitim Geliştirme Vakfı'nın Chenguang Programı ve Şanghay Belediye Eğitim Komisyonu (23CGA53'ten CJM'ye) tarafından finanse edilmiştir.

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Malzemeler

Bu makalede kullanılan malzemelerin listesi
AdŞirketKatalog numarasıYorumlar
C57BL/6 fare   Şangay Jiesjie Laboratuvar Hayvanları A.Ş., LTD &
nbsp; elektrokoter kalemiZhuoyu Angel Medical Equipment Co., LtdGermanV50Yüzeysel küçük ameliyatlarda, doku pıhtılaşmasında ve bitki örtüsünün koterizasyonunda kullanıma uygundur.
İzoflümans RWD R650-IEIsoflurane, solunan bir genel anesteziktir. Küçük bir kan/gaz bölme katsayısına sahiptir. Hayvan anestezisi için kullanıldığında, hızlı bir iyileşme, iyi kas gevşemesi ve sempatik sinir sistemi üzerinde uyarıcı bir etki olmadan anesteziyi sorunsuz, hızlı ve rahat bir şekilde indükleyebilir. Karaciğerdeki izofluranın metabolik hızı düşüktür, bu nedenle karaciğer için çok az toksisitesi vardır ve tekrarlanan kullanımda bile belirgin bir yan etkisi yoktur. Anestezik atık gazın çevre ve laboratuvar personeli üzerindeki olumsuz etkilerini önlemek için, gaz geri kazanım sistemi ile birlikte kullanılması tavsiye edilir.
MACO filamentBeijing Cinontech Co.LTD1620-A2Çoğunlukla 20-25 g ağırlığındaki fareler için kullanılan sütür ucu, polilisin veya silikon kaplama olmadan yarım küre şeklinde eritilir, uçtan 9-10 mm uzakta işaretlenir, dezenfekte edilir ve doğrudan kullanılabilir. Bu modelin üç ambalaj özelliği vardır. Uygun modeli belirlemek için resmi deneyden önce bir ön deney yapılması önerilir.
mikroskopOlympusBX61VSYüksek çözünürlüklü ve yüksek hassasiyetli görüntüleme için tasarlanmış, UIS2 optik sistemi ile donatılmış tam motorlu dik mikroskop. Özellikler arasında motorlu burunluk, sahne ve odaklamanın yanı sıra numunelerin büyük, yüksek çözünürlüklü dijital görüntülerini oluşturmak için sanal slayt yetenekleri bulunur. Patoloji, hücre biyolojisi, sinirbilim ve malzeme bilimindeki ileri araştırma uygulamaları için uygundur.
naylon sütürHuawei Tıbbi Malzemeler Co, Ltd& nbsp; J1110Yüksek mukavemetli, biyouyumlu malzemelerden üretilmiş, emilmeyen bir cerrahi iplik.

Kaynaklar

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
  1. Macdonald, R. L., Schweizer, T. A. Spontaneous subarachnoid haemorrhage. Lancet. 389 (10069), 655-666 (2017).
  2. Van Gijn, J., Kerr, R. S., Rinkel, G. J. Subarachnoid haemorrhage. Lancet. 369 (9558), 306-318 (2007).
  3. Yonekawa, Y., Marugg, R., Imhof, H. J., Ogata, N. Current treatment concepts in patients in the acute stage of subarachnoid hemorrhage due to rupture of an intracranial aneurysm. Praxis. 84 (22), 667-674 (1995).
  4. Abraham, M. K., Chang, W. -T. W. Subarachnoid hemorrhage. Emerg Med Clin of North Am. 34 (4), 901-916 (2016).
  5. Delgado, T. J., Brismar, J., Svendgaard, N. A. Subarachnoid haemorrhage in the rat: angiography and fluorescence microscopy of the major cerebral arteries. Stroke. 16 (4), 595-602 (1985).
  6. Piepgras, A., Thoḿe, C., Schmiedek, P. Characterization of an anterior circulation rat subarachnoid hemorrhage model. Stroke. 26 (12), 2347-2352 (1995).
  7. Barry, K. J., Gogjian, M. A., Stein, B. M. Small animal model for investigation of subarachnoid hemorrhage and cerebral vasospasm. Stroke. 10 (5), 538-541 (1979).
  8. Bederson, J. B., Germano, I. M., Guarino, L. Cortical blood flow and cerebral perfusion pressure in a new noncraniotomy model of subarachnoid hemorrhage in the rat. Stroke. 26 (6), 1086-1092 (1995).
  9. Xu, Z., Rui, Y. N., Hagan, J. P., Kim, D. H. Intracranial aneurysms: Pathology, genetics, and molecular mechanisms. Neuromolecular Med. 21 (4), 325-343 (2019).
  10. Veelken, J. A., Laing, R. J. C., Jakubowski, J. The Sheffield model of subarachnoid hemorrhage in rats. Stroke. 26 (7), 1279-1284 (1995).
  11. Sugawara, T., Ayer, R., Jadhav, V., Zhang, J. H. A new grading system evaluating bleeding scale in filament perforation subarachnoid hemorrhage rat model. J Neurosci Methods. 167 (2), 327-334 (2008).
  12. Kumagai, K., et al. New endovascular perforation subarachnoid hemorrhage model for investigating the mechanisms of delayed brain injury. J Neurosurg. 134 (1), 84-94 (2019).
  13. Garcia, J. H., Wagner, S., Liu, K. F., Hu, X. J. Neurological deficit and extent of neuronal necrosis attributable to middle cerebral artery occlusion in rats. Statistical validation. Stroke. 26 (4), 627-635 (1995).
  14. Liu, S., et al. Endovascular perforation model for subarachnoid hemorrhage combined with magnetic resonance imaging (MRI). J Vis Exp. (178), e63150(2021).
  15. He, H. Y., Ren, L., Guo, T., Deng, Y. H. Neuronal autophagy aggravates microglial inflammatory injury by downregulating CX3CL1/fractalkine after ischemic stroke. Neural Regen Res. 14 (2), 280-288 (2019).
  16. Ran, Y., et al. Splenectomy fails to provide long-term protection against ischemic stroke. Aging Dis. 9 (3), 467-479 (2018).
  17. Park, I. S., et al. Subarachnoid hemorrhage model in the rat: modification of the endovascular filament model. J Neurosci Methods. 172 (2), 195-200 (2008).
  18. Egashira, Y., Shishido, H., Hua, Y., Keep, R. F., Xi, G. New grading system based on magnetic resonance imaging in a mouse model of subarachnoid hemorrhage. Stroke. 46 (2), 582-584 (2015).
  19. Mutoh, T., et al. Value of three-dimensional maximum intensity projection display to assist in magnetic resonance imaging (MRI)-based grading in a mouse model of subarachnoid hemorrhage. Med Sci Monit. 22, 2050-2055 (2016).
  20. Fujimoto, M., et al. Deficiency of tenascin-C and attenuation of blood-brain barrier disruption following experimental subarachnoid hemorrhage in mice. J Neurosurg. 124 (6), 1693-1702 (2016).
  21. Liu, L., et al. Deficiency of tenascin-C alleviates neuronal apoptosis and neuroinflammation after experimental subarachnoid hemorrhage in mice. Mol Neurobiol. 55 (11), 8346-8354 (2018).
  22. Marbacher, S., et al. Systematic review of in vivo animal models of subarachnoid hemorrhage: Species, standard parameters, and outcomes. Transl Stroke Res. 10 (3), 250-258 (2019).
  23. Jackowski, A., Crockard, A., Burnstock, G., Russell, R. R., Kristek, F. The time course of intracranial pathophysiological changes following experimental subarachnoid haemorrhage in the rat. J Cereb Blood Flow Metab. 10 (6), 835-849 (1990).
  24. Solomon, R. A., Antunes, J. L., Chen, R. Y., Bland, L., Chien, S. Decrease in cerebral blood flow in rats after experimental subarachnoid hemorrhage: a new animal model. Stroke. 16 (1), 58-64 (1985).
  25. Titova, E., Ostrowski, R. P., Zhang, J. H., Tang, J. Experimental models of subarachnoid hemorrhage for studies of cerebral vasospasm. Neurol Res. 31 (6), 568-581 (2009).
  26. Suzuki, H., et al. Heme oxygenase-1 gene induction as an intrinsic regulation against delayed cerebral vasospasm in rats. J Clin Invest. 104 (1), 59-66 (1999).
  27. Marbacher, S., Fandino, J., Kitchen, N. D. Standard intracranial in vivo animal models of delayed cerebral vasospasm. Br J Neurosurg. 24 (4), 415-434 (2010).

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Yeniden basım ve izinler

Bu JoVE makalesinin metnini veya şekillerini yeniden kullanmak için izin iste

İzin iste

Etiketler

N rolojik SkorlamaOrtak Karotis ArterElektrokoter KalemiFilament Yerle tirmeKarotis BifurkasyonuGeneti i De i tirilmi FarelerSerebrovask ler Konverjans
Video yakında

İlgili makaleler