Bu içeriği görüntülemek için JoVE aboneliğiniz gereklidir. Giriş yapın veya ücretsiz denemenizi bugün başlatın.

Yöntem makalesi

Yağları Özel Bileşenlere Dönüştürmek için Yenilikçi Yağ Dokusu Fraksiyonasyonu

1.5K görüntülenme

⸱

DOI:

10.3791/68152

⸱

11 Temmuz 2025

 ,  , 
1Department of Plastic and Cosmetic Surgery, Nanfang Hospital, Southern Medical University

Bu makalede

Özet

Burada, otolog yağ dokusunu farklı fizikokimyasal özelliklere ve fonksiyonlara sahip çeşitli yağ bileşeni maddelere dönüştürebilen bir protokol sunuyoruz.

Özet

Geleneksel otolog yağ dokusu grefti, hacim büyütme ve doku rejenerasyonu için yaygın olarak kullanılır. Bununla birlikte, yağ greftlerinin tek tip fiziksel ve biyolojik özellikleri, genellikle çeşitli hasta senaryolarında ve çok yönlü gereksinimlerde optimal olmayan performansa yol açar. Otolog yağ naklinin temelleri üzerine genişleyerek, otolog yağ bileşeni transplantasyonu olarak adlandırılan öncü bir yaklaşımı tanıtıyoruz. Bu yenilikçi konsept, otolog yağ dokusunu, her biri çeşitli klinik bağlamlarda belirli uygulamaları ele almak için uyarlanmış benzersiz fizikokimyasal özelliklerle karakterize edilen çok çeşitli yağ bileşenlerine dönüştürmeyi amaçlayan titizlikle tasarlanmış bir protokolü entegre eder. Bir dizi fiziksel yöntemle, yağ dokusu yeterli rijit destek sağlayan bir Yağ Matriks Kompleksine (AMC), daha fazla doldurma için Yüksek Yoğunluklu Yağa (HDF), küçük ve/veya hassas enjeksiyonlar için Stromal Vasküler Fraksiyon (SVF)-jeline ve ince kırışıklıklar ve/veya yüz gençleştirme ihtiyaçları için Yağ Kollajen Fragmanına (ACF) dönüştürülebilir. Bu farklı yağ bileşenleri, bireysel hasta ihtiyaçlarının incelikli taleplerini karşılayan, kesin ve hedefe yönelik transplantasyon stratejilerine uygun doğal özelliklere sahiptir. Yeni yağ dokusu fraksiyonlama protokolü, yağ dokusu greftlemesinde devrim yaratmada büyük potansiyel göstermektedir. Daha rafine ve özel transplantasyon için yeni bir bakış açısı ve metodoloji sunar.

Giriş

Otolog yağ dokusu grefti, donör bölge hazırlığı, yağ ekstraksiyonu, işleme ve implantasyondaki ilerlemeler tarafından yönlendirilen hacimsel büyütme ve doku rejenerasyonu için yaygın olarak kullanılan bir tekniktir 1,2,3,4. Bununla birlikte, geleneksel yağ greftlerinin tek tip fiziksel ve biyolojik özellikleri, genellikle çeşitli klinik ihtiyaçların karşılanmasındaki etkinliklerini sınırlar5. Bu sınırlamaların üstesinden gelmek için araştırma ekibimiz, otolog yağı farklı fizikokimyasal özelliklere ve işlevlere sahip özel bileşenlere dönüştüren yenilikçi bir yağ dokusu fraksiyonlama protokolü geliştirmiştir.

Protokolün birincil amacı, otolog yağ dokusunu, her biri belirli klinik zorlukları ele almak için tasarlanmış Adipoz Matriks Kompleksi (AMC), Stromal Vasküler Fraksiyon (SVF)-jel ve Adipoz Kollajen Fragmanı (ACF) gibi özel bileşenlere ayırmaktır. Protokol, gelişmiş sertlik, yüksek hücre yoğunluğu ve kollajen açısından zengin formülasyonlar gibi benzersiz özelliklere sahip bileşenler sağlayarak, kesin ve hedefli transplantasyon stratejilerisağlar 6,7,8,9,10,11.

Geleneksel yağ grefti, hacim artırma için etkili olsa da, genellikle karmaşık klinik senaryoların incelikli taleplerini karşılayamıyor. Öngörülemeyen yağ emilimi, kararsız hacim restorasyonuna yol açar. Ayrıca, geleneksel yağ greftlerinin tek tip fiziksel ve biyolojik özellikleri nedeniyle, yapısal destek, hassas küçük alanlı enjeksiyonlar gerçekleştirme ve hedeflenen kollajen stimülasyonuna ulaşma gibi özel nakil gereksinimleri olan alanlar için hedefli dolgu sağlayamazlar. Bu sorunlar sıklıkla birden fazla ameliyatı gerektirmekte, bu da hastaların ağrılarını ve maddi yüklerini artırmaktadır 1,2,5. Bu fraksiyonasyon protokolü, yağ dokusunu geleneksel yağ dokusundan belirli bir değere sahip içerikle spesifik olarak zenginleştirerek bu sınırlamaları ele alır. Bu süreç sayesinde, kişiye özel özelliklere sahip yağ dokusu bileşenleri oluşturuyoruz, böylece klinisyenlere kişiselleştirilmiş tedavi için çok yönlü bir araç seti sunuyoruz. Sentetik dolgu maddeleri veya geleneksel yağ grefti ile karşılaştırıldığında, yaklaşım otolog dokuyu kullanarak bağışıklık reddi riskini ortadan kaldırır ve biyouyumluluğu sağlar3. Ek olarak, fraksiyonlama işlemi, yapısal destek sağlayan ve düşük bir emilim oranına sahip AMC gibi benzersiz özelliklere sahip bileşenler oluşturur; Hassas enjeksiyonlar sağlayan ve yüksek yoğunluklu stromal vasküler fraksiyon hücreleri ile karakterize edilen SVF-jel; ve cilt gençleştirmede klinik uygulamalar için potansiyel gösteren, yağ faktörlerinin kontrollü salınımını yapabilen bir kollajen protein iskelesiolan ACF 7,9,11. Bu yaklaşım aynı zamanda greft retansiyonunu ve hasta memnuniyetini artırarak tekrarlanan prosedürlere olan ihtiyacı da azaltır10,12.

Terapötik sonuçları optimize etmek için biyolojik dokuların fraksiyonlanması kavramı, hedefe yönelik tıbbi uygulamalar için kanın plazmaya, kırmızı kan hücrelerine ve trombositlere ayrılmasında görüldüğü gibi iyi bilinmektedir. Son yıllarda yağ dokusu bileşenleri ile ilgili araştırma ve klinik uygulamalar da giderek ilerlemektedir 13,14,15,16,17,18. Bu yağ fraksiyonlama protokolü, özel klinik kullanım için farklı özelliklere sahip bileşenleri izole ederek bu prensip üzerine kuruludur. Klinisyenler, hastanın anatomik ihtiyaçlarını, istenen sonuçları (örn. hacim büyütme, yapısal destek veya cilt gençleştirme) ve mevcut ekipmanı göz önünde bulundurarak bu yöntemin uygunluğunu belirleyebilir. Bu protokol özellikle yüz gençleştirme, yara izi revizyonu veya karmaşık rekonstrüktif prosedürler gibi greft özellikleri üzerinde hassas kontrol gerektiren durumlar için etkilidir 7,10,12.

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Protokol

Bu araştırma, Çin'in Guangzhou kentindeki Nanfang Hastanesi'ndeki Etik İnceleme Kurulu tarafından onaylanmıştır. Çalışmaya katılmak için yazılı bilgilendirilmiş onam veren sağlıklı donörlerden yağ dokusu toplandı. Tüm hayvan deneyleri, Nanfang Hastanesi Kurumsal Hayvan Bakım ve Kullanım Komitesi tarafından onaylandı ve Ulusal Sağlık ve Tıbbi Araştırma Konseyi'nin (Çin) yönergelerine göre gerçekleştirildi.

1. Yağ hazırlama

  1. Genel anestezi ve tümesan sıvı infiltrasyonu
    1. Hastayı genel anestezi altına alın. İntravenöz indüksiyon fazı sırasında, propofol (2 mg / kg), fentanil (1.5 μg / kg) ve roküronyum (0.6 mg / kg) kombinasyonunu uygulayın, ardından sevofluran (% 1.5) ve remifentanil (0.1 μg / kg / dak) kullanarak anestezi derinliğinin korunması takip edin. Prosedür boyunca, BIS monitörizasyonu (hedef değer 40-60), dolaşım parametreleri (MAP >65 mmHg) ve EtCO2'ye (35-45 mmHg) dayalı olarak anestezi planını dinamik olarak ayarlayın.
    2. Hastayı basınç noktalarında koruyucu dolgu ile sırtüstü pozisyona getirin ve cerrahi bölgeyi klorheksidin-alkol ile titizlikle dezenfekte edin. Enfeksiyon riskini en aza indirmek için aseptik protokollere uyun.
    3. 20 mL'lik bir şırınga kullanarak %0.06 lidokain ve %0.001 epinefrin içeren şişen sıvı ile liposuction bölgesinin (karın veya uyluk gibi) deri altı dokusuna sızın. Toplam enjeksiyon hacmini hastanın spesifik anatomik özelliklerine ve tedavi alanının boyutuna göre ayarlayarak, beklenen yağ çıkarma hacmine 2: 1 oranında bir sızma oranını koruyun.
    4. Tam şişen sıvı infiltrasyonunu doğrulamak için anestezik etkiyi kontrol edin. Bir sonraki adımdan önce, liposuction bölgesini delin veya çimdikleyin. Hasta sadece hafif bir baskı hissediyorsa, infiltrasyon yeterlidir ve daha az rahatsızlıkla yağ alınmasını sağlar.
  2. Yağ toplama
    1. Yağ toplama için 1 mm çapında keskin yan deliklere sahip 3 mm'lik çok portlu bir kanül kullanın. Yağ dokusuna verilen zararı en aza indirmek ve toplanan yağ hücrelerinin bütünlüğünü ve canlılığını sağlamak için işlemi -0.75 atm emme basıncında gerçekleştirin.
  3. Coleman yağ hazırlama
    1. 60 mL'lik bir şırıngaya yerleştirilen toplanan yağın, sıvı bileşenlerin kabın dibine çökmesini sağlamak için 10 dakika hareketsiz kalmasına izin verin.
    2. Alttaki sıvı kısmı dikkatlice atın ve kan ve şişen sıvı gibi yabancı maddeleri gidermek için üst, nispeten saf yağ tabakasını toplayın.
    3. Toplanan yağı 60 mililitrelik şırıngada tutun ve bileşenleri daha da katmanlaştırmak için oda sıcaklığında 3 dakika boyunca 1.200 x g'da santrifüjleyin.
    4. Santrifüjlemeden sonra, alttaki sıvı kısmı tekrar atın. Coleman yağı olarak tanımlanan üst yağ tabakasını 60-C'de tutun.
      mililitre şırınga.
  4. Yüksek ve Düşük yoğunluklu yağ örneği toplama
    1. Coleman yağının üst 2 / 3'ünü 20 mL'lik bir test tüpüne aktarın ve onu düşük yoğunluklu yağ (LDF) olarak tanımlayın.
    2. Coleman yağının kalan alt 1 / 3'ünü başka bir 20 mL test tüpüne aktarın ve bunu yüksek yoğunluklu yağ (HDF) olarak tanımlayın.

2. Bileşen çıkarma

  1. Yağ matris kompleksi (AMC) hazırlama
    1. HDF'yi manşonlu ve üç dahili elekli (1,5 mm filtre süzgeci aralığı) bir filtreleme cihazından geçirin.
    2. Bağlı dokuyu toplayın ve gazlı bezle çevrili 100 gözenekli bir filtre torbasında kurutun. Dokuyu forseps ile alınırken gözlemleyerek son noktayı belirleyin; Forseps alımına belirgin bir sıvı damlası düşmediğinde, dehidrasyonun istenen etkiyi elde ettiğini gösterir. Nihai ürün AMC olarak tanımlandı. Kalan HDF'yi ileride kullanmak üzere saklayın.
  2. Stromal vasküler fraksiyon (SVF)-jel ekstraksiyonu
    1. LDF'nin mekanik emülsifikasyonu: LDF'yi, 1 dakika boyunca 10 mL/s hızında 1,4 mm iç çapa sahip dişi-dişi Luer-Lok konektörü ile bağlanan iki şırınga arasından geçirerek mekanik olarak emülsifiye edin.
    2. Emülsifiye edilmiş LDF'yi 3 dakika boyunca 1.600 x g'da santrifüjleyin. Jel kıvamında bir maddeyi andıran orta tabakayı SVF-jel olarak toplayın.
  3. Adipoz kollajen fragmanı (ACF) üretimi
    1. LDF'nin Toz Haline Getirilmesi: Bir yağ süspansiyonu elde etmek için LDF'yi özel bir ACF ekstraktöründe 30.000 rpm'de 60 saniye boyunca toz haline getirin.
    2. Filtreleme: Yağ süspansiyonunu 20 mL'lik şırıngalara aktarın. 0,25 mm tek yönlü bir filtreye bağlayın, pistonu itin ve süzüntüyü başka bir 20 mL şırıngada toplayın. Ardından, bu şırıngayı 0,15 mm'lik tek yönlü bir filtreye bağlayın, pistonu tekrar itin ve son süzüntüyü üçüncü bir 20 mL şırıngada toplayın. Ardından, yağ süspansiyonunu 3.000 x g'da 3 dakika santrifüjleyin.
    3. Alttaki katı kısmı ACF olarak toplayın.

3. Yağ bileşenlerinin test edilmesi

  1. Sertlik testi
    1. 0 N ila 225 N aralığına sahip bir kuvvet ölçüm sensörüne ve 6 mm eksenel harekete izin veren bir elektromanyetik aktüatöre sahip bir cihaz kullanın.
    2. Her doku örneğini (AMC ve Coleman yağı) sıkıştırın ve gevşekliği gidermek ve uzamaya neden olmak için 25 - 30 N'luk bir ön yük uygulayın. Rampa yüklemesini 8 mm/sn'ye ayarlayın ve numune elektronik olarak yırtılmadan önce elde edilen en yüksek kuvveti kaydedin. Cihaz daha sonra doku sertliğini hesaplar.
  2. Hematoksilen ve eozin (HE) ve Masson boyama
    1. Yapılarını korumak için numuneleri %4 paraformaldehit içinde sabitleyin. Sonraki gömme işlemi için gerekli olan suyu çıkarmak için etanol gradyanında dehidrat.
    2. Numuneleri, numunelerin ince kesitler halinde kesilmesini kolaylaştıran bir işlem olan parafine gömün. Ardından, parafine gömülü örnekleri bölümlere ayırın.
    3. Bölümleri HE ve Masson'un trikrom boyalarıyla boyayın. Taramalı elektron mikroskobu (SEM) kullanarak örnekleri inceleyin.
  3. Transplantasyon çalışmaları
    1. 15 - 18 g ağırlığında ve 4 - 6 haftalık (cinsiyetten bağımsız olarak) Sağlık SPF seviyesine sahip 70 çıplak fare seçin. Fareleri kurumsal yönergelere uygun olarak tutun, 12 saatlik aydınlık / karanlık döngüsüne sahip bireysel kafeslerde barındırın ve standart yiyecek ve su ad libitum ile sağlayın.
    2. Pentobarbital sodyumun (50 mg / kg) intraperitoneal enjeksiyonu ile fareleri uyuşturun. Ayak parmağını sıkıştırma refleksini kullanarak anestezi derinliğini kontrol edin. Kuruluğu önlemek için göz merhemi sürün.
    3. Her farenin deri altı dokularına 0.3 mL hazırlanmış AMC veya yağ dokusu (kontrol grubunda Coleman yağı) enjekte edin ve yağ grefti taban çizgisi olarak hizmet edin. Hayvanları bilinçlerini geri kazanana kadar izleyin ve ardından onları kafeslerine aktarın.
    4. Greftlemeden sonraki 7, 14, 30, 60 ve 90. günlerde, greftleri çevre dokudan dikkatlice ayırarak hasat edin. Hacimlerini ölçün. Greftlerin tutma oranı şu şekilde tanımlandı:
      tutma oranı (%) = hasat zamanındaki greft hacmi/enjeksiyon yağ hacmi (burada 0.3 mL) x %100.

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Sonuçlar

Cerrahi işlem sırasında gerçekleştirilen çeşitli mekanik işlemlerle yağ dokusunu başarılı bir şekilde farklı özelliklere sahip farklı yağ bileşenlerine dönüştürdük. Bunlar, sırasıyla, bol miktarda sağlam destek sağlayan AMC (Şekil 1A), daha fazla doldurma için HDF (Şekil 1B), küçük alanlarda hassas enjeksiyonlar için SVF jeli (Şekil 1C) ve ince kırışıklıkları veya yüz restorasyon ihtiyaçlarını ele almak için ACF'dir (

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Tartışma

Bu yağ dokusu fraksiyonlama protokolü, özel bileşenlerin başarılı bir şekilde izole edilmesini sağlayan birkaç kritik adımı içerir. İlk olarak, hasat edilen yağ dokusunun santrifüjlenmesi, onu her biri farklı hücresel ve hücre dışı matris (ECM) bileşimlerine sahip yüksek yoğunluklu yağ (HDF) ve düşük yoğunluklu yağ (LDF) olarak ayırır23,24. Canlı adipositler ve stromal vasküler fraksiyon (SVF) hücreleri açısından zengin olan HDF,...

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Açıklamalar

Yazarlar herhangi bir çıkar çatışması olmadığını beyan ederler.

Teşekkürler

Bu çalışma, Çin Ulusal Doğa Bilimleri Vakfı tarafından desteklenmiştir (hibeler 81801932, 81901976, 81971852, 81772101 ve 81901975).

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Malzemeler

Bu makalede kullanılan malzemelerin listesi
AdŞirketKatalog numarasıYorumlar
% 0.001 EpinefrinSigma-AldrichE4375
0.06% LidokainSigma-AldrichL5647
3 mm Çok Noktalı KanülLale Tıbbi Ürünler, San Diego, CA, ABD/
50 ml Santrifüj TüpleriCorning430829
BOSE ElectroForce Yük Test CihazıBose Corporation/
KollajenazWorthington BiyokimyasalLS004176
Dişiden Kadına Luer-Lok KonektörüBD Biosciences309628
Kılıflı ve ElekliÖzel Yapım Filtreleme Cihazı (Shanghai Tiangong Instruments Co., Ltd.)/
Gazlı BezMedline IndustriesMDS093944
Hematoksilen/Eozin Boyama KitiSigma-AldrichHT110116
Masson'un Trikrom Boyama KitiSigma-AldrichHT15
Çıplak farelerGüney Mdical Üniversitesi/
Fosfat Tamponlu Salin (PBS)Thermo Fisher Scientific
Yuvarlak Paslanmaz Çelik Filtre Süzgeci (0,15 mm)Shanghai Tiangong Instruments Co., Ltd./
Yuvarlak Paslanmaz Çelik Filtre Süzgeci (0,25 mm)Shanghai Tiangong Instruments Co., Ltd./
Sterilize 100 Mesh Filtre TorbasıShanghai Tiangong Instruments Co., Ltd./
Stromal Vasküler Fraksiyon (SVF)-Jel ÇıkarıcıŞangay Tiangong Instruments Co., Ltd./
TripsinThermo Fisher Scientific25200056
Western Blot Analiz KitiBio-Rad1705061
10010023

Kaynaklar

  1. Simonacci, F., Bertozzi, N., Grieco, M. P., Grignaffini, E., Raposio, E. Procedure, applications, and outcomes of autologous fat grafting. Ann Med Surg. 20, 49-60 (2017).
  2. Strong, A. L., Cederna, P. S., Rubin, J. P., Coleman, S. R., Levi, B. The Current State of Fat Grafting: A Review of Harvesting, Processing, and Injection Techniques. Plast Reconstr Surg. 136 (4), 897-912 (2015).
  3. Evans, B. G. A., Gronet, E. M., Saint-Cyr, M. H. How Fat Grafting Works. Plast Reconstr Surg Glob Open. 8 (7), e2705(2020).
  4. Costanzo, D., Romeo, A., Marena, F. Autologous Fat Grafting in Plastic and Reconstructive Surgery: An Historical Perspective. Eplasty. 22, e4(2022).
  5. Suszynski, T. M., Sieber, D. A., Van Beek, A. L., Cunningham, B. L. Characterization of adipose tissue for autologous fat grafting. Aesthetic Surg J. 35 (2), 194-203 (2015).
  6. He, Y., et al. Human adipose liquid extract induces angiogenesis and adipogenesis: a novel cell-free therapeutic agent. Stem Cell Res Ther. 10 (1), 252(2019).
  7. Li, Y., et al. Adipose matrix complex: a high-rigidity collagen-rich adipose-derived material for fat grafting. Aging. 13 (11), 14910-14923 (2021).
  8. Zhu, H., et al. Improving Low-Density Fat by Condensing Cellular and Collagen Content through a Mechanical Process: Basic Research and Clinical Applications. Plast Reconstr Surg. 148 (5), 1029-1039 (2021).
  9. Yao, Y., et al. Adipose Extracellular Matrix/Stromal Vascular Fraction Gel: A Novel Adipose Tissue-Derived Injectable for Stem Cell Therapy. Plast Reconstr Surg. 139 (4), 867-879 (2017).
  10. Yao, Y., et al. Adipose Stromal Vascular Fraction Gel Grafting: A New Method for Tissue Volumization and Rejuvenation. Dermatol Durg. 44 (10), 1278-1286 (2018).
  11. Jin, X., et al. An Adipose-Derived Injectable Sustained-Release Collagen Scaffold of Adipokines Prepared Through a Fast Mechanical Processing Technique for Preventing Skin Photoaging in Mice. Front Cell Dev Biol. 9, 722427(2021).
  12. Cai, J., et al. Adipose Component Transplantation: An Advanced Fat-Grafting Strategy for Facial Rejuvenation. Plast Reconstr Surg. 153 (3), 549e-554e (2024).
  13. Demirel, O., Aköz Saydam, F. Assessment of the Causes of Differences in Centrifugation Protocols as a Fat-Processing Technique: A Systematic Literature Review. Aesthetic Plast Surg. 45 (3), 1242-1265 (2021).
  14. Neal, M. D., et al. Early Cold Stored Platelet Transfusion Following Traumatic Brain Injury: A Randomized Clinical Trial. Ann Surgery. , (2025).
  15. Czako, S., Prochaska, M. Red blood cell transfusion clinical decision support: A scoping review of guideline adherence and clinical impact. Transfusion. 65 (2), 410-419 (2025).
  16. Warner, D., Duncan, H., Gudsoorkar, P., Anand, M. Indications and complications associated with centrifuge-based therapeutic plasma exchange - a retrospective review. BMC Nephrol. 26 (1), 87(2025).
  17. Yang, R., Song, Z., Li, S., Wang, J., Liang, H. Analysis of the Volume of the Liposuction-Derived Adipose Tissue in Clinical Application. J Craniofacial Surg. , (2025).
  18. Baniameri, S., et al. Tissue Engineering 3D-Printed Scaffold Using Allograft/Alginate/Gelatin Hydrogels Coated With Platelet-Rich Fibrin or Adipose Stromal Vascular Fraction Induces Osteogenesis In Vitro. J Cell Physiol. 240 (1), e31497(2025).
  19. Karna, E., Szoka, L., Huynh, T. Y. L., Palka, J. A. Proline-dependent regulation of collagen metabolism. Cell Mol Life Sci. 77 (10), 1911-1918 (2020).
  20. Ricard-Blum, S. The collagen family. Cold Spring Harb Perspect Biol. 3 (1), a004978(2011).
  21. Ferrara, N. VEGF and the quest for tumour angiogenesis factors. Nat Rev Cancer. 2 (10), 795-803 (2002).
  22. Harraz, M. M., et al. SOD1 mutations disrupt redox-sensitive Rac regulation of NADPH oxidase in a familial ALS model. J Clin Invest. 118 (2), 659-670 (2008).
  23. Guan, J., et al. Identification of High-Quality Fat Based on Precision Centrifugation in Lipoaspirates Using Marker Floats. Plast Reconstr Surg. 146 (3), 541-550 (2020).
  24. Qiu, L., et al. Identification of the Centrifuged Lipoaspirate Fractions Suitable for Postgrafting Survival. Plast Reconstr Surg. 137 (1), 67e-76e (2016).
  25. Feng, J., et al. Mechanical process prior to cryopreservation of lipoaspirates maintains extracellular matrix integrity and cell viability: evaluation of the retention and regenerative potential of cryopreserved fat-derived product after fat grafting. Stem Cell Res Ther. 10 (1), 283(2019).
  26. Comerci, A. J., et al. Risks and Complications Rate in Liposuction: A Systematic Review and Meta-Analysis. Aesth Surg J. 44 (7), Np454-Np463 (2024).
  27. Crisan, M., et al. A perivascular origin for mesenchymal stem cells in multiple human organs. Cell stem cell. 3 (3), 301-313 (2008).
  28. Pan, Z., et al. CD90 serves as differential modulator of subcutaneous and visceral adipose-derived stem cells by regulating AKT activation that influences adipose tissue and metabolic homeostasis. Stem Cell Res Ther. 10 (1), 355(2019).

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Yeniden basım ve izinler

Etiketler

Adipoz Bile en TransplantasyonuAdipoz Matris KompleksiY ksek Yo unluklu YaD k Yo unluklu YaStromal Vask ler FraksiyonAdipoz Kollajen FragmanYa GreftlemeSantrif jleme ProtokolEkstrasel ler Matris
Yağları Özel Bileşenlere Dönüştürmek için Yenilikçi Yağ Dokusu Fraksiyonasyonu
Bize Ulaşın
Kütüphaneye Öner

Gizlilik

Kullanım Koşulları

Politikalar

Telif Hakkı © 2026 MyJoVE Corporation. Tüm hakları saklıdır.