Bu içeriği görüntülemek için JoVE aboneliğiniz gereklidir. Giriş yapın veya ücretsiz denemenizi bugün başlatın.

Yöntem makalesi

Soğuğa Adapte Daurian Yer Sincaplarında Karaciğer Soğuk Hava Deposu ve Transplantasyonu

1.4K görüntüleme

⸱

DOI:

10.3791/68444

⸱

3 Temmuz 2025

 ,  ,  ,  ,  ,  ,  , 
1Institute of Organ Transplantation, Tongji Hospital, Tongji Medical College, Huazhong University of Science and Technology, 2Key Laboratory of Organ Transplantation, Ministry of Education, 3NHC Key Laboratory of Organ Transplantation, 4Key Laboratory of Organ Transplantation, Chinese Academy of Medical Sciences, 5Organ Transplantation Clinical Medical Research Center of Hubei Province, 6Department of Hepatic Surgery and Liver Transplantation Center of the Third Affiliated Hospital, Organ Transplantation Institute, Sun Yat-sen University, 7Guangdong Province engineering laboratory for transplantation medicine, Organ Transplantation Research Center of Guangdong Province, 8Guangdong Key Laboratory of Liver Disease Research, the Third Affiliated Hospital of Sun Yat-sen University, 9College of Life Science, Shenyang Normal University

* These authors contributed equally

Bu makalede

Özet

Burada, standart kemirgen modellerinde teknik olarak zorlayıcı olan Daurian yer sincabında (DGS) uzun süreli bir karaciğer soğuk hava deposu ve nakli modeli oluşturmak için bir protokol sunuyoruz.

Özet

Karaciğer transplantasyonunda, uzun süreli soğuk hava deposunu takiben donör greftlerin fonksiyonel olarak geri kazanılması büyük bir zorluktur. Aynı engel, iyi bilinen cerrahi protokollerine rağmen karaciğer nakli için standart kemirgen modelleri (örneğin fareler ve sıçanlar) için de geçerlidir, bu nedenle nakil sonrası fonksiyonel iyileşme ve konak-greft immüno-uyumluluğu gibi temel konulardaki araştırmaları kısıtlar. Burada, zorunlu bir kış uykusu olan Daurian yer sincabı (DGS; Spermophilus dauricus), ultra derin hipotermi yeniden ısınma ve iskemi-reperfüzyon geçişlerine içsel adaptasyon gösterir. Elimizde, 24 saatlik soğuk hava deposunu takiben karaciğer greftlerinin nakli, DGS alıcılarının 7 günlük gözlem süresi içinde %100 sağkalımı ile sonuçlanırken, Sprague-Dawley (SD) sıçanlarında aynı prosedür, ameliyattan 24 saat sonra %0 sağkalım sağladı. Bu nedenle, DGS ve diğer soğuğa uyarlanabilir memeli modelleri, organ soğuğuna adaptasyon ve transplantasyon toleransının altında yatan mekanizmaları araştırmak için benzersiz ve sağlam bir platform sağlar ve bu da transplantasyon tıbbı alanında yeni tedavi veya cerrahi stratejilerin geliştirilmesini destekleyebilir.

Giriş

Soğuk yeniden ısıtma ve iskemi-reperfüzyon, karaciğer greft hasarına önemli katkıda bulunur ve erken allogreft disfonksiyonu riskini artırır. Fareler ve sıçanlar gibi standart kemirgen organizmalarda karaciğer nakli başarılı bir şekilde kurulmuş olmasına rağmen 1,2, soğuğa toleranssız bu türler üzerinde yapılan çalışmalar, soğuğa adaptasyon mekanizmaları hakkında sınırlı bilgiler sağladığından, organ koruma ve transplantasyon tıbbındaki ilerlemeler engellenmiştir.

Soğuğa adapte olmuş uygun türlerde transplantasyon araştırma modellerinin geliştirilmesi böyle bir boşluğu doldurabilir. Örneğin, memeli kış uykusuna yarayanlar, uzun süreli düşük ortam sıcaklığı ve/veya gıda kıtlığıdönemlerinde hayatta kalmak için evrimleşmiştir 3,4. Hazırda bekletme sırasında, fizyolojileri, düşük çekirdek vücut sıcaklığını korumaya ve hızlı yeniden ısınmaya ve kan reperfüzyonuna dayanmaya iyi adapte olmaları için torpid ve interbout uyarılma durumlarında geçiş yapar. Dikkat çekici bir şekilde, kış uykusuna yatabilen yer sincapları, aktif, ötermik durumlarında bile iskemi-reperfüzyon yaralanmalarına karşı sıçanlardan daha fazla direnç gösterir 5,6. Son yıllarda, kış uykusundan ilham alan çalışmalar, soğuk hava deposunun neden olduğu yaralanmaları önemli ölçüde hafifletmek ve kış uykusuna yatmayan türlerden izole doku ve organların fonksiyonel iyileşmesini iyileştirmek için modüle edilebilen bazı soğuğa uyum sağlayan mekanizmaları ve ilaçlanabilir hedefleri ortaya çıkarmıştır 7,8,9,10,11.

Sıçanlarda karaciğer nakli için geliştirilen protokollerdenuyarlanan 12,13,14, burada Daurian yer sincabında karaciğer alımı, statik soğuk hava deposu ve transplantasyon için bir protokol sunuyoruz (DGS; Spermophilus dauricus), Kuzey Çin'de yaşayan kış uykusuna yatan bir kemirgen türü. Ellerimizde, DGS greft alıcıları, Wisconsin Üniversitesi (UW) solüsyonunda 4 ° C'de 24 saat boyunca saklanan ötermik (aktif) veya hipotermik (torpid) donörlerden alınan greftlerle transplantasyon sonrası %100 sağkalım elde etti. Tam tersine, aynı iş akışına maruz kalan Sprague-Dawley (SD) sıçanlarında hayatta kalma oranı %0 idi ve bu da DGS karaciğer nakli modelinin avantajını açıkça gösteriyordu. DGS'de veya 13 çizgili yer sincabı (Ictidomys tridecemlineatus) ve Suriye hamsterı (Mesocricetus auratus) gibi laboratuvarda yetiştirilen diğer soğuğa adapte türlerde uzun süreli soğuk depolama ve transplantasyonun da başarılabileceğini umuyoruz, böylece araştırmacılara uzun vadeli greft fonksiyonel geri kazanımı ve konakçı-greft uyumluluğunu incelemek ve yeni ilaçları test etmek için benzersiz fırsatlar sunuyor.

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Protokol

Tüm hayvan deneyleri, Pekin Üniversitesi Hayvan Bakımı ve Kullanımı Kurumsal Komitesi (LSC-WangSQ-2) tarafından onaylandı. Çalışma için kullanılan uygun araçlar Malzeme Tablosunda listelenmiştir ve Şekil 1'de gösterilmiştir.

NOT: 13 çizgili yer sincabı gibi doğada yakalanan kış uykusuna yatan kemirgen türlerinin laboratuvar ortamında ele alınması ve üremesi tarif edilmiştir15,16. Bu çalışmada kullanılan DGS'ler, Zhangjiakou şehrinin otlaklarında yakalanan kadın gebe DGS'ler tarafından laboratuvarda üretilmiştir. Deney sırasında yaklaşık 1-2 yaşındaydılar. Orijinal hamile kadın DGS'lere gelince, hayvanlar laboratuvara gelmeden önce parazitler dışarı atılmıştı. Hayvanların gelişinde yaygın virüsler için karantina ve inceleme yapıldı ve negatif test sonuçları olanlar tesiste yetiştirildi.

1. Ameliyat öncesi hazırlık

  1. Deney hayvanları
    1. Bağışçı ve alıcı olarak 180 g ile 400 g arasında ağırlıkta, hem erkek hem de kadın, 1-2 yaş arası yetişkin DGS'yi kullanın. Alıcının ağırlığı, 50 g'dan daha az bir farkla donörünkinden biraz daha büyüktü.
    2. Kontrol grubunda donör ve alıcı olarak 200-300 g ağırlığında, hem erkek hem de dişi, 8-10 haftalık yetişkin SD sıçanları kullanın. Tüm deneysel prosedür boyunca, DGS hayvanlarının taşınması ve transferi sırasında cerrahi maskeler, laboratuvar önlükleri ve nitril eldivenlerin yanı sıra ekstra ağır deri eldivenler giyin.
  2. Sırasıyla 6 F ve 8 F tanıtıcı kılıflar kullanarak portal ven (PV) ve infrahepatik inferior vena kava (IHIVC) için manşetler yapın. Her manşet bir ana gövde ve 2 mm uzunluğunda uzantılardan oluşuyordu. Sivrisinek forseps ile hafifçe sıkıştırarak manşetin çevresinde birden fazla oluk oluşturun (Şekil 2).
    NOT: PV ve IHIVC'nin çapları, DGS'nin boyutuna ve cinsiyetine bağlı olarak önemli ölçüde değişir. Bu nedenle, uygun seçim için 5-F, 6-F, 7-F ve 8-F manşetlerinin ameliyat öncesi hazırlanması tavsiye edilir. Tipik olarak, PV için 5-F veya 6-F manşet uygunken, IHIVC için 7-F veya 8-F manşet uygundur.
  3. Safra kanalı (3 mm) ve hepatik arter (2 mm) için 22 G ve 24 G intravenöz kateterleri neşter kullanarak çift taraflı eğimli tüplere keserek stent yapın.
    NOT: Stentlere aşırı basınç uygulamaktan kaçının, çünkü bu, lümenin daralmasına veya tıkanmasına yol açarak alıcının hayatta kalmasını tehlikeye atabilir.

2. Donör operasyonu

  1. İlk adımlar
    1. Anesteziyi indüklemek için 1 L / dk hava akış hızında% 5 izofluran konsantrasyonu ve bakım için 1 L / dk'da% 2 kullanın.
    2. DGS'yi bir tahta üzerinde sırtüstü pozisyonda konumlandırın. Kürkü karın bölgesinden tıraş edin ve cildi povidon-iyot ve% 70 etanol kullanarak sterilize edin.
  2. Perfüzyon öncesi karaciğer izolasyonu
    1. Ksifoid süreçten kasık simfizine ve lateral olarak orta aksiller çizgilere uzanan çapraz bir kesi yapın. Sivrisinek forseps kullanarak ksifoid sürecini geri çekin ve destek olarak sırtının altına 5 mL'lik bir şırınga yerleştirin.
    2. Falsiform ligamenti kesin. Sol diyafragmatik veni suprahepatik inferior vena kava'dan (SHIVC) izole edin ve 7-0 sütür ile bağlayın. Hepato splenik ligamenti koterize edin.
    3. Pamuklu çubuklar kullanarak sağ böbrek damarının üzerindeki IHIVC'yi çevre dokulardan dikkatlice serbest bırakın. Karaciğer yakınındaki IHIVC'ye boşalan sağ adrenal ve lomber venleri 7-0 sütürlerle bağlayın.
    4. Ortak safra kanalının (CBD) ön duvarında küçük bir kesi yapın. Safra kanalı stentini yerleştirin ve 7-0 ipek sütür ile sabitleyin. Alıcının CBD'si ile daha sonra anastomozu kolaylaştırmak için sütürün bir ucunu yaklaşık 5 mm uzunluğunda bırakın.
    5. Uygun hepatik arteri (PHA), gastroduodenal arteri (GDA) ve ortak hepatik arteri (CHA) çevre dokulardan izole edin.
    6. 1.5 mL heparinize salin (300 IU / mL) penil ven (erkek donörler) veya IHIVC (kadın donörler) içine uygulayın.
  3. Karaciğer perfüzyonu
    1. Abdominal aortu sol renal venin altında izole edin. Aort içine 7 G'lik bir intravenöz iğne yerleştirin ve bir kelepçe ile sabitleyin.
    2. Diyaframı kesin ve torasik aort üzerine vasküler bir kelepçe yerleştirin.
    3. Bir infüzyon pompası kullanarak 180-210 mL / s hızında 20-30 mL soğuk UW çözeltisi ile karaciğeri aort kanülü yoluyla perfüze edin. Perfüzatın dışarı akmasına izin vermek için intratorasik vena kava ve IHIVC'yi sağ renal venin üzerinde kesin.
      NOT: Orta ve sağ loblara özellikle dikkat ederek, düzgün perfüzyonu sağlamak için pamuklu çubuklar kullanarak karaciğer loblarının konumunu ayarlayın. Tüm karaciğer düzgün bir solgunluk gösterdiğinde perfüzyon tamamlanır.
    4. Perfüzyon sırasında safra kesesini eksize edin.
      NOT: Sıçanların aksine, DGS safra kesesine sahiptir. Safra kesesinin çıkarılması ve safra kanallarının UW solüsyonu ile yıkanması, safra pıhtılaşmasına bağlı ameliyat sonrası safra tıkanıklığını önlemek için çok önemlidir.
  4. Perfüzyon sonrası karaciğer grefti hasadı
    1. Mikro forseps kullanarak, PV'yi çevredeki bağ dokusundan izole edin. Pilor venini 7-0 sütürle bağlayın ve kesin. PV gövdesini splenik ven seviyesinde kesin.
    2. GDA'yı distal olarak bağlayın ve geçirin. CHA'nın ön duvarında küçük bir kesi oluşturun. Hepatik arter stentini CHA'ya yerleştirin ve alıcının CHA ile daha sonra anastomozu kolaylaştırmak için bir ucunu yaklaşık 5 mm uzunluğunda bırakarak 7-0 ipek sütürle sabitleyin.
    3. SHIVC'yi diyaframa mümkün olduğunca yakın bir şekilde inceleyin.
    4. Kaudat lob ve mide arasındaki ekleri inceleyin. Sırt bağlarını kestikten sonra, karaciğeri tamamen harekete geçirin.
    5. Karaciğeri soğuk UW solüsyonu içeren 7 cm'lik çelik bir kaseye yerleştirin. Kaseyi muhafaza için 4 °C'lik bir buzdolabına aktarın.
      NOT: 24 saati aşan karaciğer soğuk algınlığı koruması için, enfeksiyon riskini azaltmak için UW solüsyonuna antibiyotik ekleyin; UW çözümünü her 24 saatte bir değiştirmeyi düşünün.

3. Ex vivo greft hazırlığı

NOT: Açık bir buz kabı hazırlayın. Tüm arka masa hazırlığı buz üzerinde yapıldı.

  1. PV manşetinin sapını vasküler bir kelepçe ile sabitleyin ve sivrisinek forseps kullanarak stabilize edin. PV'yi manşetten nazikçe geçirin ve bükülme olmadığından emin olun. PV'yi manşetin üzerine katlayın ve 7-0 dikişle sabitleyin (Şekil 3).
  2. IHIVC manşeti için yukarıdaki prosedürü (adım 3.1) tekrarlayın.
  3. Safra kanalını kistik kanal yoluyla 2 mL UW solüsyonu ile perfüze edin. Daha sonra, kistik kanalı bağlayın.
  4. Soğuk depolamadan sonra kalan UW solüsyonunu çıkarmak için karaciğer greftini 8-10 mL soğuk salin ile PV manşetinden yıkayın.
  5. IHIVC'nin etrafına, takılı manşet ile karaciğerin sağ alt lobu arasına tek bir 7-0 ipek sütür yerleştirin.
  6. Üstün yönünü ortaya çıkarmak için karaciğeri döndürün. Sıra 8-0 dikişleri SHIVC'nin her iki yan köşesinde tutun ve dıştan içe doğru yerleştirin.

4. Alıcı işlemi

  1. İlk adımlar için donör operasyon protokolüne bakın ve adım 2.1'i tekrarlayın.
  2. Alıcı karaciğer izolasyonu
    1. Ksifoid sürecinden kasık simfizine kadar orta hat insizyonu yapın. Sivrisinek forseps kullanarak ksifoid sürecini kraniyal olarak geri çekin ve SHIVC'yi yükseltmek için altına 5 mL'lik bir şırınga yerleştirin. Bilateral kostal kemerleri yanal olarak geri çekin.
    2. Adım 2.2.2'de açıklandığı gibi bağ ve damar yönetimini gerçekleştirin.
    3. IHIVC'yi adım 2.2.3'te açıklandığı gibi izole edin.
    4. Karaciğer ve retroperiton arasındaki bağ bağlarını kesin. SHIVC'nin arkasına dikkatlice künt bir forseps geçirin ve etrafına 7-0 ipek bir dikiş yerleştirin.
    5. CBD'yi proksimal olarak 7-0 ipek sütür ile bağlayın ve bağın üzerine geçirin. Safra kanalını PV'den nazikçe ayırmak için pamuklu bir uç kullanın.
    6. Ligasyonlar arasında GDA ve PHA'yı transekt edin. CHA'nın sonunda Y şeklinde bir çatallanma oluşturun. Daha sonra kullanmak üzere PHA ligatürü üzerinde 2 cm uzunluğunda bir dikiş bırakın.
    7. PV'nin sağ ve sol dallarını serbest bırakın. Daha sonraki manipülasyon için her dala 5 cm, 7-0 kalma dikişleri yerleştirin.
  3. Alıcı karaciğerin çıkarılması
    1. 0,5 L / dak hava akışı ile izofluran konsantrasyonunu% 0,5'e düşürün.
      NOT: İzofluran buharlaştırıcıyı ayarlayarak saniyede yaklaşık bir nefeslik bir solunum hızını koruyun. Solunum depresyonuna yol açan intraoperatif farkındalığı veya aşırı anesteziyi önlemek için anhepatik faz boyunca anestezi derinliğini sürekli olarak değerlendirin.
    2. IHIVC'yi sağ renal venin üzerine sıkıştırın, ardından PV'yi pilorik venin üzerine klempleyin. Karaciğerdeki kanı temizlemek için 2 mL'lik bir şırınga kullanarak 10 saniye içinde sağ PV'ye 1.5 mL salin enjekte edin.
    3. SHIVC'nin etrafına yerleştirilen 7-0 ipek dikişi çekerek diyaframı nazikçe geri çekin, ardından diyaframın bir kısmı da dahil olmak üzere SHIVC'ye bir bulldog kelepçesi uygulayın.
    4. SHIVC'yi karaciğerin hemen üzerinden geçirin. 7-0 kalma sütürlerini her iki PV dalına sabitleyin ve PV'yi bu ligatürlerin üzerinden geçirin. IHIVC'yi karaciğer parankimine yakın bir yere nakledin. Kalan ligamentöz ekleri keserek karaciğeri derhal çıkarın.
  4. SHIVC rekonstrüksiyonu
    1. Karaciğer greftini karın boşluğu içinde ortopedik olarak konumlandırın. Ekteki 8-0'ı kullanın yerleştirmek için dikişler Alıcının SHIVC'sinin her iki köşesine dikişler kalır, içten dışa doğru yerleştirilir ve düğümlerle sabitlenir.
    2. SHIVC'yi hizalamak için vasküler bir klips kullanarak sağ sütürün gevşek ucunu yanal olarak hafifçe çekin.
    3. Sol köşeden başlayarak 8-10 sürekli dikişle arka duvarı dikin. Aynı dikişi kullanarak sağdan sola hareket ederek ön duvarı 10-12 dikişle kapatmaya devam edin. Ön duvar kapanışını tamamlamadan önce, havayı dışarı atmak ve hava embolisini önlemek için SHIVC boşluğunu yıkayın (Şekil 4).
  5. PV rekonstrüksiyonu
    1. Her iki çatallanmaya yerleştirilen 5 cm'lik sabit sütürleri kullanarak PV'yi yükseltin ve damar klempleri ile yukarı doğru hafif çekiş uygulayın. PV dallarının orta noktasında bir kesi yapın.
    2. PV lümenini heparinize salin (300 IU / mL) ile yıkayın ve ardından manşeti PV'ye yerleştirin ve 7-0 ipek sütür ile sabitleyin.
    3. Greft perfüzyonunu yeniden oluşturmak ve anhepatik fazı sonlandırmak için PV ve SHIVC üzerindeki kelepçeleri sırayla serbest bırakın (Şekil 5).
  6. IHIVC anastomozunu PV prosedürüne benzer şekilde gerçekleştirin. Önce donör tarafındaki 7-0 dikişi serbest bırakın, ardından alıcı taraftaki kelepçeyi çıkarın.
  7. Hepatik arter rekonstrüksiyonu
    1. Alıcının CHA'sındaki kan akışını engellemek için bir mikrovasküler klips uygulayın.
    2. Alıcının CHA'sının terminalinde Y konfigürasyonunun çatallanmasında küçük bir kesi oluşturun. CHA lümenini heparinize salin (300 IU / mL) ile yıkayın ve ardından stenti CHA'ya yerleştirin ve 7-0 ipek sütür ile sabitleyin.
    3. Stent yer değiştirmesini önlemek için kalan dikişleri hem verici hem de alıcı tarafa bağlayın. Arteriyel akışı eski haline getirmek için mikrovasküler klipsi serbest bırakın (Şekil 6).
  8. Safra kanalı rekonstrüksiyonu:
    1. Alıcının CBD'sinin ön duvarında küçük bir kesi yapın. Safra kanalı stentini alıcının CBD'sinin lümenine yerleştirin ve 7-0 ipek sütür ile sabitleyin.
    2. Stent yer değiştirmesini önlemek için kalan dikişleri hem donör hem de alıcı tarafa bağlayın (Şekil 7).
  9. Rekonstrüksiyon işlemleri tamamlandıktan sonra abdominal insizyonu sürekli çalışan 3-0 sütürler kullanarak iki kat halinde kapatın (Şekil 8).

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Sonuçlar

Cerrahi işlemlerin ortalama süreleri şöyleydi: donör cerrahisi ortalama 24.8 ± 2.3 dk, arka masa operasyonu 15.4 ± 1.3 dk, alıcı cerrahisi 52.7 ± 5.1 dk ve anhepatik faz 14.2 ± 1.5 dk.

24 saat boyunca soğuk UW solüsyonunda korunan karaciğer greftlerinin alıcıları, transplantasyondan önce hazırda bekletme durumunda olup olmadıklarına bakılmaksızın transplantasyondan 7 gün sonra% 100 sağkalım oran...

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Tartışma

Kamada'nın çift manşet tekniği2 üzerine inşa ederek, DGS'de ilk ortotopik karaciğer nakli modelini başarıyla kurduk. DGS ve geleneksel sıçan modelleri arasındaki anatomik farklılıklar nedeniyle, materyal hazırlama, cerrahi prosedürler ve postoperatif yönetimde özel hususlar esastır.

Hazırda bekletme ve yağ rezervleri gibi faktörler, yetişkin DGS'de 150 g ila 400 g arasında değişen ve erkekler ve kadınlar arasında belirgin farklılıklar o...

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Açıklamalar

Yazarların beyan edebilecekleri herhangi bir çıkar çatışması yoktur.

Teşekkürler

Bu çalışma, Bulaşıcı Olmayan Kronik Hastalıklar-Ulusal Bilim ve Teknoloji Büyük Projesi (2023ZD0507600) ve Çin Ulusal Doğa Bilimleri Vakfı (82371794 ve 82170671) tarafından desteklenmiştir. Çalışma ayrıca Zhejiang Üniversitesi Eğitim Vakfı, Akademisyen Shusen Lanjuan Yetenek Vakfı tarafından da desteklendi. Ayrıca, Wisconsin Üniversitesi, Oshkosh'tan Profesör Dana K. Merriman'a, 13 çizgili yer sincaplarını yetiştirme konusundaki çalışmaları ve laboratuvarda kış uykusuna yatan kemirgen modellerini yetiştirme konusundaki yararlı içgörüleri ve deneyimleri cömertçe paylaştığı için teşekkür ederiz.

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Malzemeler

Bu makalede kullanılan malzemelerin listesi
AdŞirketKatalog numarasıYorumlar
3-0 iğneli dikişlerJinhuan Tıbbi Ürünler A., LtdR315Deri kapanması için
7-0 ipek dikişBraintree, bilim, incSUT-S103
7F Tanıtıcı Kılıf Pekin Demax Tıbbi Teknoloji Şirketi, Ltd.DQ07083818SIHIVC için kelepçe
8-0 İğneli dikişlerJinhuan Tıbbi Ürünler Şirketi, Ltd.H821SHIVC anastomisi için
8F Tanıtıcı Kılıf Pekin Demax Tıbbi Teknoloji Şirketi, Ltd.DQ08083818SIHIVC için kelepçe
Anestezi MakinesiRWD yaşam Bilimleri Şirketi.R500
Kan Temizlemeyi DurdururNingbo Shunye Tıp Şirketi, Ltd.BDD-YE-DT-1
Bulldog kelepçesi (hafifçe kavisli)Jinzhong Tıbbi Ürünler A.Ş., Ltd.XEC120SHIVC
BuprenorfinTianjin İlaç Araştırma Enstitüsü İlaç A.Ş., LtdH12020275Ağrı kesici
Cefuroxim sodyumEsseti FarmaceuticiS.r.lH20160013Antibiyotik
Pamuk çubuklarıFuqing Sağlık & Integral Medical20230R
Eğimli mikro forsepsRWD yaşam Bilimleri Şirketi.F11031-11Cerrahi alet
Kavisli mikro makas66 Vision Tech Co., Ltd.54108BCerrahi alet
Gazlı bez sürüntüleriYubei Tıbbi Malzemeler Şirketi, Ltd.21080274
Heparin sodyum enjeksiyonuKuzey Çin İlaç Şirketi, Ltd2101131-2
İnfüzyon PompasıHowkmed Co., Ltd.HK-400
İzofluranRWD yaşam Bilimleri Şirketi.21070201
Mikro iğne tutucuDünya Hassas Aletler Şirketi, Ltd.555408NTCerrahi alet
Mikro kap klipsiRWD yaşam Bilimleri Şirketi.R31005-06PV ve IHIVC
Mikro Kap klipsi aplikatörüRWD yaşam Bilimleri Şirketi.R34001-14Cerrahi alet
İğne tutacağıRWD yaşam Bilimleri Şirketi.F31025-13Karın kapanması
SalinZhejiang Tianrui İlaç A., Ltd716092103
Düz mikro forsepsRWD yaşam Bilimleri Şirketi.F11029-11Cerrahi alet
Cerrahi mikroskopLeicaM650
Cerrahi platformYokYokKişisel, manyetik
Doku forsepsiRWD yaşam Bilimleri Şirketi.F12002-12Cerrahi alet
Doku makasıRWD yaşam Bilimleri Şirketi.S12003-09Cerrahi alet
UW çözümüOrgan Kurtarma SistemleriSPS-1Organ perfüzyonu ve depolaması 

Kaynaklar

  1. Zeng, Q., et al. Successful orthotopic liver transplantation in mice utilizing microcomputed tomography angiography. J Vis Exp. (199), e65537(2023).
  2. Kamada, N., Calne, R. Y. Orthotopic liver transplantation in the rat: technique using cuff for portal vein anastomosis and biliary drainage. Transplantation. 28 (1), 47-50 (1979).
  3. Dausmann, K. H., Glos, J., Ganzhorn, J. U., Heldmaier, G. Hibernation in a tropical primate. Nature. 429 (6994), 825-826 (2004).
  4. Arnold, C. Hibernation science harnessed to treat obesity and modify metabolism. Nat Med. 30 (10), 2700-2703 (2024).
  5. Lindell, S. L., et al. Natural resistance to liver cold ischemia-reperfusion injury associated with the hibernation phenotype. Am J Physiol Gastrointest Liver Physiol. 288 (3), G473-G480 (2005).
  6. Dave, K. R., Prado, R., Raval, A. P., Drew, K. L., Perez-Pinzon, M. A. The arctic ground squirrel brain is resistant to injury from cardiac arrest during euthermia. Stroke. 37 (5), 1261-1265 (2006).
  7. Zhang, L., et al. Cross-species metabolomic profiling reveals phosphocholine-mediated liver protection from cold and ischemia/reperfusion. Am J Transplant. 24 (11), 1979-1993 (2024).
  8. Zhang, X., et al. Cold-induced FOXO1 nuclear transport aids cold survival and tissue storage. Nat Commun. 15 (1), 2859(2024).
  9. Zhang, X., et al. 5-aminolevulinate improves metabolic recovery and cell survival of the liver following cold preservation. Theranostics. 12 (6), 2908-2927 (2022).
  10. Ou, J., et al. iPSCs from a hibernator provide a platform for studying cold adaptation and its potential medical applications. Cell. 173 (4), 851-863.e16 (2018).
  11. Ratigan, E. D., McKay, D. B. Exploring principles of hibernation for organ preservation. Transplant Rev (Orlando). 30 (1), 13-19 (2016).
  12. Chen, X. C., et al. Reduced complications after arterial reconnection in a rat model of orthotopic liver transplantation. J Vis Exp. (165), (2020).
  13. Oldani, G., Lacotte, S., Morel, P., Mentha, G., Toso, C. Orthotopic liver transplantation in rats. J Vis Exp. (65), (2012).
  14. Nagai, K., Yagi, S., Uemoto, S., Tolba, R. H. Surgical procedures for a rat model of partial orthotopic liver transplantation with hepatic arterial reconstruction. J Vis Exp. (73), (2013).
  15. Vaughan, D. K., Gruber, A. R., Michalski, M. L., Seidling, J., Schlink, S. Capture, care, and captive breeding of 13-lined ground squirrels, Spermophilus tridecemlineatus. Lab Anim (NY). 35 (4), 33-40 (2006).
  16. Merriman, D. K., Lahvis, G., Jooss, M., Gesicki, J. A., Schill, K. Current practices in a captive breeding colony of 13-lined ground squirrels (Ictidomys tridecemlineatus). Lab Anim (NY). 41 (11), 315-325 (2012).
  17. Lehmann, T. G., Bunzendahl, H., Langrehr, J. M., Neuhaus, P. Arterial reconstruction in rat liver transplantation-a new tubing technique of the common hepatic artery. Transpl Int. 18 (1), 56-64 (2005).

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Yeniden basım ve izinler

Etiketler

Karaci er NakliDaurian Yer SincabOrgan KorumaSo u a Adaptasyonskemi Reperf zyonHibernasyon ModeliPortal Ven Rekonstr ksiyonuVena Cava InferiorSafra Kanal Stenti
Soğuğa Adapte Daurian Yer Sincaplarında Karaciğer Soğuk Hava Deposu ve Transplantasyonu
Bize ulaşın
Kütüphaneye tavsiye et

Gizlilik

Kullanım Şartları

İlkeler

Telif hakkı © 2026 MyJoVE Corporation. Tüm hakları saklıdır.