Yöntem makalesi

Rafine Hareket Sınıflandırması ile Sıçanlarda Minimum Alveolar Sevofluran Konsantrasyonunu Tahmin Etmek için Dixon'ın Yukarı-Aşağı Tasarımının Uygulanması

DOI:

10.3791/68520

⸱

25 Temmuz 2025

 ,  ,  , 
1Department of Anaesthesia, Intensive Care Medicine and Pain Medicine, Clinical Division of General Anaesthesia and Intensive Care Medicine, Medical University of Vienna

Bu makalede

Özet

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Burada sunulan protokol, standart bir ağrı uyaranına maruz kalan sedasyonlu sıçanlarda Dixon'ın Yukarı ve Aşağı Tasarımını kullanarak anestezi derinliğini değerlendirmeyi amaçlamaktadır. Ayrıca, gözlemlenen çeşitli hareket modellerinin bir sınıflandırmasını tanımlar.

Özet

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Uçucu anestezik ajanlar kullanılırken, standart etki ölçüsü, deneklerin %50'sinin ağrılı bir uyarana motor yanıt göstermediği alveolar konsantrasyon olarak tanımlanan minimum alveolar konsantrasyondur (MAC). Klinik ve deneysel çalışmalarda, mevcut fikir birliği, yalnızca "kaba amaçlı hareketlerin" pozitif bir motor yanıt olarak sayıldığını ve bu nedenle çok hafif sedasyonu gösterebileceğini belirtmektedir. Bununla birlikte, hem insanlarda hem de hayvanlarda uygun anestezi seviyesi, uygulanan diğer ilaçlar gibi çeşitli etkileyen faktörlere bağlı olarak bireysel olarak değişir. Tetrahidrokanabinol ve etanolün en sık kullanılan uçucu anesteziklerden biri olan sevofluran üzerindeki etkilerini incelemek için sıçanlarda iki hayvan çalışması yapılmıştır. MAC'i tahmin etmek için Dixon'ın Yukarı ve Aşağı Tasarımı kullanıldı. İlk hayvan için önceden belirlenmiş bir sevofluran dozu seçildi. 15 dakikalık bir dengeleme periyodundan sonra, cerrahi bir kelepçe kullanılarak sıçanın kuyruğunun distal üçte birine standart bir ağrı uyaranı uygulandı. Hayvanın uyarana tepkisi olumlu veya olumsuz olarak belgelenmiştir. Pozitif bir motor reaksiyon meydana gelirse, bir sonraki hayvan için doz arttırıldı. Tersine, sıçan bir motor tepki göstermediyse, bir sonraki hayvan için doz azaltıldı. MAC ve %95 güven aralıklarını tahmin etmek için izotonik regresyon ve bootstrap yöntemi kullanıldı. Bu makale, yukarı ve aşağı tasarımı kullanarak sıçanlarda anestezik derinliği değerlendirmek için ayrıntılı bir protokolü özetlemektedir. Ayrıca, gelecekteki çalışmalar için tekrarlanabilirliği artırmak için standart bir ağrılı uyaran uygulandığında, sedasyonlu sıçanlarda hareket paternlerinin yeni ve ayrıntılı bir tanımını ve kategorizasyonunu sağlar.

Giriş

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Sevofluran, en sık kullanılan uçucu inhale anesteziklerden biridir1. Potansiyeli, hastaların% 50'sinin ağrılı bir uyarana motor yanıt göstermediği alveolar konsantrasyon olarak tanımlanan minimum alveolar konsantrasyon (MAC) kullanılarak değerlendirilir 2,3,4. MAC'i oluşturmak için, sıçanlar, insanlara kıyasla daha fazla homojenlikleri nedeniyle hayvan modelleri olarak kullanılabilir. Ağrı uyaranı tipik olarak sıçanın kuyruğunundistal üçte birlik kısmına cerrahi bir kelepçe kullanılarak uygulanır 2. Ağrı testi için alternatif yöntemlerin kullanılması, daha önce yapılan çalışmalarla karşılaştırılabilirliği garanti etmez ve bu nedenle farklı sonuçlar üretebilir. Uyarana yanıt olarak çok çeşitli hareket kalıpları nedeniyle, mevcut fikir birliği, yalnızca "kaba amaçlı hareketlerin" pozitif motor reaksiyonlar olarak kabul edileceğini belirtmektedir3. Bununla birlikte, bu tanım, hangi belirli kategorilerin "kaba amaçlı" olarak nitelendirileceği ve bir hareketin bu kriteri ne ölçüde karşılaması gerektiği konusunda daha fazla ayrıntıdan yoksundur. Bu son derece önemlidir, çünkü bir uyarana verilen motor tepki, klinik bir ortamda yetersiz sedasyon derinliğini gösterebilir.

Yaş5, komorbiditeler6, bozulmuş karaciğer fonksiyonu7 veya hipotermi8 dahil olmak üzere çeşitli faktörler anestezi durumunu etkiler. Ayrıca, anesteziklerle birlikte uygulanan ilaçlar anestezi derinliğini önemli ölçüde etkiler. Örneğin, genellikle indüksiyon aşamasında kullanılan fentanil ve propofol, gerekli sevofluranmiktarını azaltır 9,10. Ek olarak, lidokain veya pregabalinin sevofluran 11,12'nin MAC'sini düşürebileceği gösterilmiştir. Ayrıca, son zamanlarda alkol veya tetrahidrokanabinol (THC) gibi maddelerin alımı da MAC'yi azaltabilir ve böylece anestezi derinliğini artırabilir13,14. Tersine, sempatomimetik ajanların merkezi sinir sistemini uyararak sedasyonu hafifletebileceği öne sürülmüştür15.

Gelecekteki çalışmalar için tekrarlanabilirliği artırmak için, Dixon'ın yukarı ve aşağı tasarımını16 kullanarak sıçanlarda MAC'i değerlendirmek için ayrıntılı bir protokol ve video açıklamaları sağlanmıştır. Önceki MAC çalışmalarının aksine, bu protokol laboratuvarlar arasında tekrarlanabilirliği desteklemek için ayrıntılı prosedür adımlarını ana hatlarıyla belirtir. Ayrıca, daha önce yayınlanmış iki çalışmadan elde edilen video görüntüleri yeniden analiz edildi ve motor tepkiler, kapsamlarına ve modellerine göre sınıflandırıldı (koordineli hareketler - yuvarlanma, germe, tuzlama ve koordinesiz hareket kıvrılması). Bu nedenle, bu çalışma aynı zamanda, gelecekteki araştırmalar için tekrarlanabilirliği iyileştirmeyi amaçlayan, standartlaştırılmış bir ağrılı uyarana yanıt olarak sedasyonlu sıçanlarda hareket paternlerinin yenilikçi ve kapsamlı bir tanımını ve sınıflandırmasını sunmaktadır.

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Protokol

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Tüm deneysel hayvan çalışmaları, Viyana Tıp Üniversitesi Hayvan Deneyleri için Okul İçi Komitesi ve yetkili düzenleyici otorite (Avusturya Federal Kadın, Bilim ve Araştırma Bakanlığı) tarafından onaylanmıştır. Deneyler sürekli sürdürülen anestezi altında yapıldı. Hayvanlar, bir hareket meydana gelse bile ağrıyı bilinçli olarak algılamazlar17. 81 ila 95 günlük yetişkin Wistar sıçanları kullanıldı.

1. Hayvanları ve barınakları inceleyin

  1. Hayvanları kilo ve cinsiyete göre barındırın. Erkekleri ve dişileri ayırın ve iklimlendirmeye izin vermek için deneye başlamadan önce en az 14 gün boyunca barındırın. Kafes başına 400 g'ın üzerinde en fazla üç sıçan veya 400 g'ın altında dört sıçan yerleştirin.
  2. 12 saatlik aydınlık/karanlık döngüsü, 22 °C ortam sıcaklığı ve %45 ile %65 arasındaki nem seviyeleri ile çevre koşullarını koruyun.
  3. Her hayvanı düzenli olarak tartın ve her işlemden önce vücut ağırlığını kaydedin.
  4. Hayvanları barınma alanından test tesisine tek tek taşıyın. Görsel stresi azaltmak için her kafesi bir bezle örtün ve deneysel prosedürlere maruz kalmamak için test edilmemiş hayvanları ayrı bir odada barındırın.

2. Ekipman kurulumu

  1. Deneye başlamadan önce gerekli tüm ekipmanın çalışır durumda ve kullanılabilir olduğunu doğrulayın. Sızıntı testi, kalibrasyon ve uygun olduğunda güç işlevi testleri dahil olmak üzere kurumsal yönergelere veya standart işletim prosedürlerine göre ekipman kontrolleri yapın.
  2. Fareyi yerleştirmek için hava geçirmez, şeffaf bir hazne (15 cm × 20 cm × 9 cm) kullanın. Gaz sızıntısını en aza indirirken kuyruğu dışarıdan yönlendirmek için haznenin 15 mm'lik bir açıklıkla donatıldığından emin olun.
  3. Giriş hattını bir sevofluran buharlaştırıcıya ve bir oksijen kaynağına bağlayın.
  4. Sevofluran konsantrasyonlarını kaydetmek için odanın karşı tarafındaki çıkış hattını hem bir gaz ekstraksiyon sistemine hem de bir anestezi monitörüne bağlayın.
  5. Rektal termometrenin, ısıtma battaniyesinin ve kızılötesi ısıtma lambasının çalışır durumda olduğunu onaylayın. Termometreyi bir referans cihazla test edin, ısıtma battaniyesinin hedef sıcaklık aralıklarına ulaştığını kontrol edin ve kızılötesi lambanın yandığını ve sabit çıkışı koruduğunu doğrulayın. Lambayı, yerel güvenlik prosedürlerine uygun olarak güvenli bir mesafede doğrudan test odasının üzerine yerleştirin.
  6. Standardize ağrı uyaranı için kullanılmak üzere 25 cm'lik bir arteriyel klemp hazırlayın.

3. İlaç hazırlama

  1. THC hazırlığı (isteğe bağlı)
    1. 25 mg / mL konsantrasyonlu bir THC formülasyonu kullanın. Vücut ağırlığını kilogram cinsinden (10 mg/kg/25 mg/mL) ile çarparak her hayvan için gerekli hacmi hesaplayın, bu da vücut ağırlığının kg'ı başına 0,4 mL ile sonuçlanır.
    2. Her hayvan için tam olarak hesaplanan hacmi belirlemek için pozitif yer değiştirmeli bir pipet kullanın. Bu aşamada uygulamayın. Pipeti hazırlayın ve ilaç uygulama adımı sırasında daha sonra uygulamak üzere bir kenara koyun (bkz. adım 4.6).
    3. 0,3 mL'ye kadar sıvıyı güvenli bir şekilde tutabilen bir pipet ucu gibi gavaj için uygun bir pipet ucu kullanın. Oral gavajı doğrudan yüklü pipeti kullanarak gerçekleştirin. Çapraz kontaminasyonu önlemek için her kullanımdan sonra pipet ucunu atın.
  2. Etanol hazırlama (isteğe bağlı):
    1. Etanolü 1 g / kg veya 2 g / kg'lık gerekli dozaj konsantrasyonunda hazırlayın. Baz olarak yüksek konsantrasyonlu bir etanol formülasyonu (örneğin, %96-100) kullanın ve her bir hayvan için toplam 10 mL / kg vücut ağırlığı hacmine kadar% 0.9 salin içinde çözün. Karşılık gelen plasebo ile aynı hacimde salin kullanın. Özellikle yanıcı maddelerin taşınması ve depolanması ile ilgili olanlar olmak üzere tüm kurumsal güvenlik yönergelerine uyun.
    2. Her bir hayvan için tam olarak hesaplanan hacmi belirlemek için yeterli bir şırınga (hayvanın ağırlığına bağlı olarak 5 mL veya 10 mL) kullanın. Maddeyi bu aşamada uygulamayın. Şırıngayı hazırlayın ve ilaç uygulama adımı sırasında intraperitoneal enjeksiyon için bir kenara koyun (bkz. adım 4.6). Uygulama için 23 G'lik bir iğne takın ve kullanana kadar yaralanmayı önlemek için karşılık gelen bir kapakla kapatın.

4. İlaç uygulaması

  1. Sıçanı hazneye yerleştirerek ve 3 L / dk'da% 100 oksijen içinde 3.5 hacimce% sevofluran ile doldurarak ilaç uygulaması için anesteziyi indükleyin.
  2. Hayvan görsel olarak bilinçsiz olana kadar yaklaşık 3-5 dakika bekleyin.
  3. Hayvanı sırt üstü yuvarlamak için hazneyi hafifçe eğerek doğrultma refleks testini gerçekleştirin. 10 saniye içinde kendini düzeltmeye çalışmazsa, yeterli anestezi derinliğinde olduğunu varsayın.
  4. Sevofluran konsantrasyonunu geçici olarak 0'a düşürün ve deneycinin anestezik gaz maruziyetini en aza indirmek için odayı 15 saniye boyunca %100 oksijenle yıkayın.
  5. Hayvanı odadan çıkarın ve uygulama sırasında anesteziyi korumak için aynı sevofluran konsantrasyonunu sağlayan bir gaz dağıtım tüpünün önüne yerleştirin. Test maddesinin uygulanması anesteziden iyileşmeyi önleyecek kadar kısaysa bu adımı atlayın.
  6. Deney tasarımına göre maddeleri uygulayın: Gastrik gavaj yoluyla 10 mg / kg THC verin veya intraperitoneal olarak 1 g / kg veya 2 g / kg etanol uygulayın. Hazırlık ayrıntıları için Bölüm 3'e bakın ve hem gavaj hem de intraperitoneal uygulama prosedürlerini gerçekleştirmek için kurumsal yönergeleri izleyin.
  7. İyileşmesi için hayvanı kafesine geri koyun.
  8. Prosedüre devam etmeden önce etanol için 1 saat ve THC için 2 saat bekleyin.

5. MAC testi için anestezi indüksiyonu

  1. Bekleme süresinden sonra, fareyi hava geçirmez test odasına geri koyun ve belirlenen sevofluran ve oksijen karışımı ile doldurun. 3 L/dk'lık sabit bir oksijen akışı sağlayın. Her gruptaki ilk hayvan için hacimce %2,6 (veya istatistiksel planlamaya dayalı önceden belirlenmiş başka bir başlangıç noktası) ile başlayarak, her hayvan için bireysel sevofluran konsantrasyonunu (adım 9.1) belirleyin. Yukarı ve Aşağı Tasarımın ayrıntılı bir açıklaması aşağıda verilmiştir.
  2. Kızılötesi ısıtma lambasını açın.
  3. Hayvan görsel olarak bilinçsiz olana kadar yaklaşık 3-5 dakika bekleyin.
  4. Hayvanı sırt üstü yuvarlamak için hazneyi hafifçe eğerek doğrultma refleks testini gerçekleştirin. 10 saniye içinde kendini düzeltmeye çalışmazsa, yeterli anestezi derinliğinde olduğunu varsayın.
  5. Sevofluran konsantrasyonunu geçici olarak 0'a düşürün ve deneycinin anestezik gaz maruziyetini en aza indirmek için odayı 15 saniye boyunca %100 oksijenle yıkayın.
  6. Odayı hızlıca açın ve rektal termometreyi yerleştirin. Prosedür boyunca çekirdek gövde sıcaklığını izleyin ve kızılötesi ısıtma lambasının ve ısıtma battaniyesinin yoğunluğunu buna göre ayarlayın.
  7. Kuyruğu haznedeki küçük açıklıktan dışarı çıkarın.
  8. Hazneyi hızlı bir şekilde kapatın.
  9. Devam etmeden önce istenen sevofluran konsantrasyonunu hemen yeniden oluşturun.

6. Dengeleme süresi

  1. Dengeleme için 15 dakikalık bir süre tanıyın.
  2. Hayvanın çekirdek sıcaklığını (37,2 °C ± 0,3 °C) sürekli olarak izleyin ve normotermiyi korumak için ısıtma cihazlarını buna göre ayarlayın.

7. Ağrı uyaranı

  1. Kuyruğun distal üçte birini tanımlayın.
  2. Kelepçeyi üçüncü pozisyonunda (yaklaşık 50 N kuvvet) kilitleyerek ağrı uyaranını uygulayın.
  3. Sıçan pozitif bir hareket tepkisi gösterene kadar kelepçeyi üçüncü konumunda kilitli bırakın, ancak en fazla 1 dakika.
  4. Protokolde bir motor reaksiyonun varlığını veya yokluğunu kaydedin. Gözlemlenen hareketin modeli ve kapsamı açısından kısa bir açıklamasını sağlayın. Hareket modellerinin sınıflandırılması için 11. maddeye bakın.

8. Kurtarma

  1. Buharlaştırıcıyı ve ısıtma lambasını kapatın ve fareyi tekrar kafese yerleştirin.

9. Yukarı ve aşağı tasarım

  1. Dixon'ın Yukarı ve Aşağı Tasarımını kullanarak bir sonraki deney için sevofluran konsantrasyonunu belirleyin. Önceki hayvan uyarana motor bir tepki gösterdiyse, bir sonraki hayvan için konsantrasyonu% 0.2 pt arttırın. Tersine, önceki hayvan herhangi bir motor tepki göstermediyse, konsantrasyonu% 0.2 pt azaltın.

10. Ötenazi (varsa)

NOT: Ötenazi, doğası gereği deneylerin gerekli bir parçası değildir. Hayvan Deneyleri için yetkili Intramural Komitesine danışılmalıdır. Atıfta bulunulan iki çalışma için, intrakardiyak kan alımı yapılmasına ve daha sonra hayvanlara ötenazi yapılmasına karar verildi. Hayvanlar adım 8.1'de tarif edildiği gibi kafese geri gönderilmedi, bunun yerine prosedür doğrudan adım 9.1 ile devam etti.

  1. 300 mg pentobarbitali 1 mL salin içinde çözerek ötenazi solüsyonunu hazırlayın. Solüsyonu bir şırıngaya çekin ve kan alımını takiben hemen kullanıma hazır tutun.
  2. Fareyi kutudan çıkarın ve sürekli anesteziyi sürdürmek için% 100 oksijen içinde% 3.5 hacimce sevofluran veren bir solunum tüpünün önüne yerleştirin. Torasik bölgeye engelsiz erişim sağlamak için hayvanı sırt üstü yatırın.
  3. 23 G iğne ve 5 mL'lik bir şırınga kullanarak intrakardiyak kan alımını gerçekleştirin. Kalbi bulmak için kalp atışını parmağınızla hafifçe palpe edin. İğneyi ksidoid işlemine sadece kaudal, orta hattın biraz solunda ve sığ bir açıyla yerleştirin.
  4. Kan akışı gözlenene kadar iğne pozisyonunu ayarlarken nazikçe aspire edin. Gerekli hacmi toplayın.
  5. Kan alımını tamamladıktan sonra, şırıngayı iğneden dikkatlice çıkarın ve pentobarbital çözeltiyi içeren önceden yüklenmiş şırıngayı takın. Kurumsal etik yönergelere uygun olarak ötenaziyi sağlamak için çözeltinin 1 mL'sinin tamamını intrakardiyal olarak uygulayın.

11. Deneylere devam etmek

  1. Her çalışma hayvanı için ayrı ayrı 3. adımdan başlayarak deneyi tekrarlayın.

12. Hareket modellerinin sınıflandırılması (isteğe bağlı)

  1. Davranışsal yanıtları aşağıdaki kategorilere ayırın:
    1. Yuvarlanma: Davranışsal tepki, tipik olarak uzunlamasına eksen boyunca vücudun eksenel bir dönüşünü içerdiğinde yuvarlanma olarak sınıflandırın.
    2. Germe: Davranışsal tepki, uzuvların ve vücudun iki taraflı, simetrik dışa doğru uzaması ile karakterize edildiğinde germe olarak sınıflandırın.
    3. Tuzlanma hareketi: Davranışsal tepki, tüm vücudun kısa, atlama benzeri patlamalarına benzeyen ani, arka bacak odaklı tekmeler veya sarsıntılardan oluştuğunda tuzlanma hareketi olarak sınıflandırın.
    4. Kıvrılma: Davranışsal tepki, vücudun merkezine doğru bükülmesine neden olan, değişen yoğunlukta koordineli olmayan, içe dönük hareketi içerdiğinde kıvrılma olarak sınıflandırın.

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Tartışma

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Bu çalışma, anestezik derinliği değerlendirmek için daha standart ve tekrarlanabilir bir yaklaşıma katkıda bulunmak için kritik metodolojik adımları detaylandırarak ve ortak zorlukları ele alarak sıçanlarda sevofluranın MAC'sini belirleme protokolünü rafine eder.

Doğru MAC tayini hem deneysel hem de klinik anestezik uygulamalar için esastır. Bu çalışma, hayvan modellerinde sevofluran potensini değerlendirmek için açık ve tekrarlanabilir bir yöntem sağlayarak m...

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Açıklamalar

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Tüm yazarlar herhangi bir çıkar çatışması olmadığını beyan eder.

Teşekkürler

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Bu çalışma Viyana Tıp Üniversitesi tarafından finanse edilmiştir. Yazarlar, bilimsel tavsiyeleri için Dr. Thomas Hamp'a ve çalışmaların yürütülmesindeki destekleri için Viyana Tıp Üniversitesi Biyomedikal Araştırma Merkezi'ndeki ekibe teşekkür eder.

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Malzemeler

Bu makalede kullanılan malzemelerin listesi
AdŞirketKatalog numarasıYorumlar
Hava geçirmez şeffaf hazneYOKYOKJenerik
Arteriyel klemp KLS Martin13-410-22-0725 cm
Drä ger PrimusDrä ger Avusturya GmbHPrimus
Drä ger Buhar 2000Drä ger Avusturya GmbHBuhar 2000
Homeotermik Battaniye Kontrol ÜnitesiHarvard Aparatı, Holliston, Massachusetts, ABD50-7137230 V
Manuel Mobil Bebek IsıtıcıFisher/Paykle, Auckland, Yeni ZelandaIW9210/920

Kaynaklar

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
  1. Sury, M. R. J., Palmer, J. H. M. G., Cook, T. M., Pandit, J. J. The state of UK anaesthesia: a survey of National Health Service activity in 2013. Br J Anaesth. 113 (4), 575-584 (2014).
  2. Quasha, A. L., Eger, E. I., Tinker, J. H. Determination and applications of MAC. Anesthesiology. 53 (4), 315-334 (1980).
  3. Eger, E. I., Saidman, L. J., Brandstater, B. Minimum alveolar anesthetic concentration: a standard of anesthetic potency. Anesthesiology. 26 (6), 756-763 (1965).
  4. Merkel, G., Eger, E. I. A comparative study of halothane and halopropane anesthesia including method for determining equipotency. Anesthesiology. 24 (3), 346-357 (1963).
  5. Eger, E. I. Age, minimum alveolar anesthetic concentration, and minimum alveolar anesthetic concentration-awake. Anesth Analg. 93 (4), 947-953 (2001).
  6. Hardt, K., Wappler, F. Anesthesia for morbidly obese patients. Dtsch Arztebl Int. 120 (46), 779-779 (2023).
  7. Toprak, H. I., et al. Bispectral index monitoring to guide end-tidal isoflurane concentration at three phases of operation in patients with end-stage liver disease undergoing orthotopic liver transplantation. Transplant Proc. 43 (3), 892-895 (2011).
  8. Liu, M., Hu, X., Liu, J. The effect of hypothermia on isoflurane MAC in children. Anesthesiology. 94 (3), 429-432 (2001).
  9. SingsankCoats, J., Seddighi, R., Rohrbach, B. W., Cox, S. K., Egger, C. M., Doherty, T. J. The anesthetic interaction of propofol and sevoflurane on the minimum alveolar concentration preventing motor movement (MACNM) in dogs. Can J Vet Res. 79 (2), 95-95 (2015).
  10. Katoh, T., Ikeda, K. The effects of fentanyl on sevoflurane requirements for loss of consciousness and skin incision. Anesthesiology. 88 (1), 18-24 (1998).
  11. Hamp, T., et al. The effect of a bolus dose of intravenous lidocaine on the minimum alveolar concentration of sevoflurane. Anesth Analg. 117 (2), 323-328 (2013).
  12. Müller, J., et al. The effect of pregabalin on the minimum alveolar concentration of sevoflurane: a randomized, placebo-controlled, double-blind clinical trial. Front Med. 9, 883181(2022).
  13. Müller, J., et al. The effect of oral Δ-9-tetrahydrocannabinol on the minimal alveolar concentration of sevoflurane. Eur J Anaesthesiol. 38 (1), 58-63 (2021).
  14. Müller, J., et al. Ethanol reduces the minimum alveolar concentration of sevoflurane in rats. Sci Rep. 12 (1), 280(2022).
  15. Ishiyama, T., Oguchi, T., Iijima, T., Matsukawa, T., Kashimoto, S., Kumazawa, T. Ephedrine, but not phenylephrine, increases bispectral index values during combined general and epidural anesthesia. Anesth Analg. 97 (3), 980-984 (2003).
  16. Dixon, W. J. Staircase bioassay: the up-and-down method. Neurosci Biobehav Rev. 15 (1), 47-50 (1991).
  17. Stoelting, R. K., Longnecker, D. E., Eger, E. I. Minimum alveolar concentrations in man on awakening from methoxyflurane, halothane, ether and fluroxene anesthesia. Anesthesiology. 33 (1), 5-9 (1970).
  18. D'Amour, F. E., Smith, D. L. A method for determining loss of pain sensation. J Pharmacol Exp Ther. 72 (1), 74-79 (1941).
  19. Dixon, W. J. The up-and-down method for small samples. J Am Stat Assoc. 60 (312), 967-967 (1965).
  20. Kashimoto, S., Furuya, A., Nonaka, A., Oguchi, T., Koshimizu, M., Kumazawa, T. The minimum alveolar concentration of sevoflurane in rats. Eur J Anaesthesiol. 14 (4), 359-361 (1997).
  21. Olofsen, E., Dahan, A. The dynamic relationship between end-tidal sevoflurane and isoflurane concentrations and bispectral index and spectral edge frequency of the electroencephalogram. Anesthesiology. 90 (5), 1345-1353 (1999).

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Yeniden basım ve izinler

Bu JoVE makalesinin metnini veya şekillerini yeniden kullanmak için izin iste

İzin iste

Etiketler

Sevofluran Uygulanan S anlarDixon Yukar A a Tasar mVolatil AnesteziklerA r Stimul s Yan tAnestezi Derinli i De erlendirmesizotonik RegresyonBootstrap Y ntemila Anestezik Etkile imleri

İlgili makaleler