$$\rightleftharpoonup{xx}$$
$$\longleftharp{xx}$$,
$$\longrightharp{xx}$$,
Bu deneysel araştırma, Kurumsal Hayvan Bakım ve Kullanım Komitesi'nin onayı ile yapılmıştır (Onay Numarası: LL-240077).
Hücre kültürü ve ilaç müdahalesi
Sıçan Schwann hücreleri (SC'ler), bazal ortam, %5 fetal sığır serumu, %1 Schwann hücre büyüme takviyesi, %1 penisilin ve %1 streptomisin içeren Schwann Hücre Ortamında kültürlendi. Tüm hücreler 37 °C'de% 5 CO2 atmosferinde tutuldu. %70-80 yoğunluğa kadar büyümelerine izin verildiğinde, SC'ler dört gruba ayrıldı (n = grup başına 5): (1) NC grubu; (2) NC+CoCl2 grubu; (3) NC+CoCl2+Mus grubu; (4) NC+CoCl2+siIL-1R1+Mus grubu.
Hipoksiyi taklit etmek için sıklıkla kullanılan bir ajan olan kobalt klorürün (CoCl2), hipoksi ile indüklenebilir faktörlerin bozunmasını ve stabilizasyonunu engellemesi ve HIF-1α proteini15'in birikmesi gibi hipoksiye benzer tepkileri tetiklediği bilinmektedir. Osuru ve ark.17'ye dayanan modifiye yönteme göre, NC+CoCl2 grubunda ve NC+CoCl2+Mus grubunda, SC'ler 8 saat boyunca 240 μM CoCl2 ile desteklenmiş Schwann Hücre Ortamında kültürlendi, nemlendirilmiş bir inkübatörde (%21 O2) 37 °C'de %95 hava ve %5 CO2 atmosferik koşullarda. Daha sonra Mus gruplarında 24 saat daha 1,25 μg/mL Mus müdahalesi uygulandı. Bu arada, NC+CoCl2+siIL-1R1+Mus grubunda, SC'ler önce 24 saatlik siRNA enfeksiyonu ile tedavi edildi, ardından 8 saat boyunca 240 μM CoCl2 ile sürekli olarak kültürlendi, ardından önceki gruplarda olduğu gibi 24 saat daha 1.25 μg/mL Mus müdahalesi yapıldı. Deneysel sürecin akış şeması Şekil 1'de gösterilmektedir.
Hücre canlılığı testi
SC'lerin canlılığı, üreticinin talimatlarına göre hücre sayma kiti-8 (CCK-8) tahlil reaktifi kullanılarak belirlendi. 5 × 105 hücre/kuyu yoğunluğunda kültürlenmiş SC'ler, %5CO2 nemlendirilmiş atmosferde 37 °C'de 100 μL tam büyüme ortamına sahip 96 oyuklu bir hücre kültürü plakasına ekildi. Birleşme %70-80'e ulaştığında, her bir oyuğa 10 μL CCK-8 çözeltisi ilave edildi ve plakalar 37 °C'de 1 saat inkübe edildi. 96 oyuklu plakaların optik yoğunluğu (OD), bir mikroplaka okuyucu kullanılarak 450 nm'de ölçüldü ve hücre canlılığı hesaplandı. Hücreler dört gruba ayrıldı: NC grubu, NC+CoCl2 grubu, NC+CoCl2+Mus grubu ve NC+CoCl2+siIL-1R1+Mus grubu. Deneysel sonuçlar boş bir kuyucuk (orta+CCK8 çözeltisi) kullanılarak düzeltildi. Hücre hayatta kalma oranı = [(deney grubu - boş kuyu)/(NC grubu - boş kuyu)] × %100.
siRNA transfeksiyonu
Transfeksiyon, üreticinin ticari bir in vitro siRNA/miRNA transfeksiyon reaktifinin talimatlarına göre, 24 saat boyunca 100 ng/μL konsantrasyonda siIL-1R1'in (AUAGUCUUGGAUUUUCCCAA, GGAGAAAAUCCAAGACUAUGA) sentetik siRNA dupleksleri kullanılarak gerçekleştirildi. siIL-1R1 transfeksiyonundan sonra, siIL-1R1 ekspresyonları, 24 saatlik transfeksiyon18'den sonra RT-qPCR analizi yapılarak değerlendirildi ve verimliliğin %80'den yüksek olması sağlanmalıdır
Enzime bağlı immünosorbent testi (ELISA)
Kültür sonrası süpernatanlar toplandı ve gruba özgü koşullar altında (2950 g, 20 dakika, 25 °C) santrifüjlendi. Hücre dışı IL-1β, TNF-α, ROS ve SOD seviyeleri, kit talimatları izlenerek ELISA ile test edildi. 450 nm'de nihai absorbans okumaları bir mikroplaka okuyucu kullanılarak elde edildi.
RNA izolasyonu ve kantitatif gerçek zamanlı PCR (RT-qPCR)
Üretici talimatlarını takiben, TRizol reaktifi kullanılarak kültürlenmiş hücrelerden toplam RNA ekstrakte edildi. Hedef genler (IL-1β, TNF-α, S-100b, IL-1R1), bir PCR cihazında 40 döngü boyunca 20 μL SYBR qPCR karışım reaksiyonlarında amplifiye edildi. Aktin β kullanılan veri normalizasyonu, erime eğrisi analizi ile doğrulanan PCR özgüllüğü. 2−ΔΔCt yöntemi, üç kopya halinde test edilen beş bağımsız numuneden nispi ekspresyonu ölçtü. Primerler Tablo 1'de listelenmiştir.
Batı lekesi
Tedaviyi takiben, tüm deney gruplarından SC'ler 24 saat inkübe edildi ve hasat edildi. Toplam protein, bir toplam protein ekstraksiyon kiti kullanılarak ekstrakte edildi. Protein lizatları, 98 °C'de 5 dakika denatüre edilmiş sodyum dodesil-sülfat poliakrilamid jel elektroforezi (SDS-PAGE) yükleme tamponu ile birleştirildi ve %10-12 SDS-poliakrilamid jeller üzerinde ayrıldı (şerit başına 20 μg). Çözünmüş proteinler elektroforetik olarak poliviniliden florür (PVDF) membranlarına aktarıldı. Membranlar, oda sıcaklığında 60 dakika boyunca %5 yağsız kuru sütle bloke edildi, daha sonra aşağıdaki birincil antikorlarla 6 mL'lik bir hacimde 4 °C'de gece boyunca inkübe edildi: anti-HIF-1α antikoru (1:1000), anti-GAPDH antikoru (1:1000), anti-IL-1R1 antikoru (1:1000), anti-C-JUN antikoru (1:1000), anti-GDNF antikoru (1:1000), anti-IRAK1 antikoru (1:1000), anti-IKK antikoru (1:1000), anti-p65 antikoru (1:800), anti-p50 antikoru (1:900), anti-IκB-α antikoru (1:900) ve anti-β-aktin antikoru (1:1000). Yıkamadan sonra, membranlar 25 ° C'de 60 dakika boyunca yaban turpu peroksidaz (HRP) konjuge ikincil antikorlarla incelendi. Protein sinyalleri, Image Studio Digits Ver 4.0 kullanılarak tespit edildi. Bant yoğunlukları ImageJ yazılımı ile ölçüldü ve β-aktin ve GAPDH ekspresyonuna normalleştirildi. Üç bağımsız deney yapıldı.
İmmünofloresan
SK'lerde IL-1R1 lokalizasyonu Zhao ve ark.19'u takiben değerlendirildi. Logaritmik büyüme fazı sırasında tripsinizasyon yoluyla hücreleri hasat edin, taze tam ortamda yeniden süspanse edin ve tek tip bir tek hücreli süspansiyon elde etmek için iyice öğütün. Hücreleri, steril lameller içeren kültür plakalarına tohumlayın. Hücreler tam birleşmeye ulaştığında, fosfat tamponlu salin (PBS) ile 1-2 kez durulayın, lameller dikkatlice çıkarın ve yapışık hücreleri PBS'de %4 paraformaldehit ile 10 dakika sabitleyin, %0.05 Triton X-100 (10 dakika) ile geçirgenleştirin ve %5 keçi serumu (1 saat) ile bloke edin. Birincil inkübasyonda tavşan anti-sıçan IL-1R1 mAb kullanıldı. PBS yıkamalarından sonra numuneler, oda sıcaklığında 2 saat boyunca FITC konjuge keçi anti-tavşan IgG ile inkübe edildi. Montaj için lamel üzerine suda çözünür montaj maddeleri ekleyin. İmmün etiketli hücreler, uyarma dalga boyu 492 nm ve emisyon dalga boyu 520 nm olan bir floresan mikroskobu kullanılarak görselleştirildi ve ölçüldü.
Üst yapı analizi
Zhao ve arkadaşlarının protokol19'unu takiben, SC'ler %2.5 glutaraldehit içinde sabitlendi ve gece boyunca 4°C'de %1 osmiyum tetroksit içinde sabitlendi. Numuneler bir etanol/aseton dehidrasyon serisine tabi tutuldu. Ultra ince kesitler (80 nm), transmisyon elektron mikroskobu kullanılarak ultrastrüktürel incelemeden önce uranil asetat ve kurşun sitrat ile boyandı.
Tehlikeli kimyasal reaktiflerin imhası
CoCl2 içeren ortam ve çözeltiler, belirlenmiş bir ağır metal atık kabında toplanır. Pipet uçları, santrifüj tüpleri ve eldivenler de dahil olmak üzere yukarıda belirtilen sıvılarla temas eden tüm tek kullanımlık malzemeler, ağır metal tehlikeli atık olarak sınıflandırılır ve uygun şekilde bertaraf edilmek üzere ilgili makamlar tarafından onaylanmış lisanslı bir tehlikeli atık yönetim şirketine aktarılır. Atık paraformaldehit çözeltisini özel bir aldehit atık kabına atın. Kullanılmış sarf malzemeleri aldehit atığı olarak toplanmalı ve aynı lisanslı tehlikeli atık yönetim şirketi tarafından işlenmelidir.
İstatistiksel analiz
Çoklu grup karşılaştırmaları, GraphPad Prism 8.0'da Tukey'in post-hoc testi ile tek yönlü ANOVA ile analiz edildi. İstatistiksel anlamlılık P < 0.05 olarak tanımlandı. Veriler ortalama ±± standart sapma (SD) olarak sunulmuştur.