Yöntem makalesi

Fare Arka Diz Altı Amputasyon Modeli ve Hemen Hedeflenmiş Kas Reinnervasyonu

DOI:

10.3791/69119

⸱

22 Mayıs 2026

 ,  ,  ,  , 
1Department of Plastic Surgery, Medical College of Wisconsin

Bu makalede

Özet

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Bu protokol, farelerde diz altı amputasyonun nasıl yapılacağını ve amputasyonla ilişkili ağrıyı tedavi etmek ve önlemek stratejilerini araştırmak ve amputasyonla ilişkili ağrı mekanizmalarını daha iyi anlamak için hemen hedefli kas reinnervasyonu (iTMR) yapılmasını gösterir.

Özet

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Amputasyonla ilgili ağrı, hasta yaşam kalitesini düşürür, opioid kullanımına katkıda bulunur ve fonksiyonel rehabilitasyon ile protez kullanımını azaltabilir. Amputasyon sonrası ağrıyı güvenilir şekilde üreten ve hareketliliği koruyan preklinik modeller, bu sonuçların altında yatan biyolojik mekanizmaların incelenmesi için gereklidir. Burada, Sprague-Dawley sıçanlarını arka diz altı amputasyonu modellemek için kullanan ayrıntılı, tekrarlanabilir kemirgen cerrahi protokolü sunuyoruz. Bu işlem, siyatik sinir dallarının, tibial, yaygın peroneal ve sural sinirlerin izole edilmesini ve kesmesini içerir; böylece amputasyon sonrası sinir patolojisi ve ağrıyla ilişkili davranışlar devam eder. Fareler bu işlemden iyi iyileşir ve ameliyattan hemen sonra yemek ya da içme konusunda zorluk yaşamadan, hareket edebilirler. Hayvanlar daha sonra refleksif ve spontan ağrı ölçümleriyle değerlendirilebilir. Bu işlemden kaynaklanan ağrı davranışları zamanla sağlamdır ve standart refleksif ağrı davranışları kütükten elde edilebilir. Önemli olarak, korunan hareketlilik motor bozukluğu karıştırmadan boylamasına davranışsal testler yapmayı sağlar. Bu protokol amputasyon üzerine odaklansa da, kesilmiş sinirlerin yakınlardaki motor dallara, oradan biceps femoris ve semimembranosus'a aktarılmasıyla, reinnervasyon müdahalelerinin ve amputasyon sonrası ağrı üzerindeki etkilerinin incelenmesini mümkün kılarak hedefli kas reinnervasyonu (TMR) kolayca entegre edilebilir. Bu modeli daha önce amputasyon sonrası ağrı davranışlarındaki cinsiyete özgü farklılıkları değerlendirmek ve TMR'nin etkilerini incelemek için başarıyla kullandık. Bu protokol, amputasyonla ilişkili ağrı, nöroma oluşumu ve fonksiyonel sonuçların araştırılması için sağlam ve esnek bir platform sağlar ve amputasyon sonrası ağrıyı iyileştirmeye yönelik translasyonel çalışmalara uygulanabilir.

Giriş

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Kronik ağrı, büyük uzuv amputasyonundan sonra en sakat edici komplikasyonlardan biridir ve hastaların %70'ine kadar etkilenir 1,2,3. Farmakolojik müdahaleler, fizyoterapi, sinir blokları ve psikolojik terapiler gibi geleneksel ağrı yönetimi stratejileri genellikle sınırlı veya geçici bir rahatlama sağlar4. Bu nedenle, etkili uzun vadeli ağrı yönetimi stratejilerine yönelik önemli klinik ihtiyaç devam etmektedir.

Hedefli kas reinnervasyonu (TMR), başlangıçta miyoelektrik protezlerin kontrolünü artırmak için geliştirilmiş, uzuv amputasyonu sonrası ağrıyı hafifletmek için umut vadeden bir yaklaşım olarak ortayaçıkmıştır 5. Cerrahi teknik, kesilmiş karışık motor-duyusal sinirlerin yakındaki motor dallara yönlendirilmesini içerir. Klinik olarak, TMR hayali uzuv ağrısı, kalıntı uzuv ağrısı ve nöroma ile ilişkili semptomlarda önemli azalmalar göstermiştir 6,7,8. Rejeneratif periferik sinir arayüzleri (RPNI), sinir yaralanması ve amputasyonla ilgili ağrı için kullanılan başka bir cerrahi müdahaledir. Amputasyon sinir uçları dikilir ve serbest (denervasyonlu, avasküler) bir kas greftinesarılır 9. Amputasyon edilmiş aksonlar, denervatlanmış nöromüsküler birleşimleri nörotikleştirerek greftte kas kasımı oluşturur ve bu kasım miyoprotez kontrolü için sinyal oluşturmak için kullanılır. TMR'nin aksine, RPNI bir kemirgen modelinde kapsamlı şekilde incelenmiştir. TMR'ye benzer şekilde, RPNI'nin sinir kesimiyle ilişkili nörom oluşumunu önlediği ve ağrıyı azalttığıgösterilmiştir 10,11. Klinik olarak, RPNI'nin ampütelerde hem fantom hem de kalıntı uzuv ağrısını azalttığıgösterilmiştir 12.

Klinik benimsenmesine rağmen, TMR ve RPNI'nin ağrı kesici etkilerinin altında yatan biyolojik mekanizmalar hâlâ yeterince anlaşılmamaktadır. Preklinik modeller, bu mekanizmaların aydınlanması için çok önemlidir. Önceki çalışmalar, siniri yüzeysel hale getirmek için sinir transeksiyon modelleri kullanılarak doğrudan nöroma ağrısınıtest etmek için kullanılmıştır 10,11. Bu modeller, ayakta kalan sağlam sinir dağılımındaki omurga refleks davranışlarını değerlendirerek doğrudan uyarı ile nöromatöz ağrıyı ve nöropatik ağrıyı niceleyebilir. Örneğin, korunan sinir yaralanması sural siniri korur ve tibial ile ortak peroneal sinirler kesilir. Ağrı davranışı testi yan ayak13 üzerinde yapılır. Arka uzuv amputasyon modeli, uzuvdaki en ciddi yaralanmayı temsil eder. Bu nedenle, yaygın bir nöronal kaybı ve bu tür bir yaralanmayla ilişkili önemli inflamatuar ve iyileşme gereksinimleri vardır. Bir sinir hasarı olduğunda, DRG'deki sağlıklı nöronlar yaralı nöronların korunmasına yardımcı olur. Amputasyon ile birlikte, mevcut sağlıklı nöron popülasyonu büyük ölçüde azalır ve her yaralı sinir için, sadece bir sinir yaralanmış olsaydı (14,15,16) daha fazla nöron kaybı yaşanır. Kemirgen arka uzuv amputasyonu sağlıklama ameliyatı ile ilgili önceki raporlarnadirdir 17,18. Ancak, üst uzuv amputasyonuna göre siyatik sinirle ilgili ağrı ve rejenerasyonu inceleyen bol tarihsel veriler ve çoklu ambulasyon davranış testleri gibi avantajlarda vardır (19,20).

Bu boşluğu gidermek için, yakın zamanda anında TMR içeren bir sıçan arka uzuv amputasyon modeli geliştirdik (Şekil 1). RPNI oluşturma tekniği daha önce yayımlanmış olup, arka uzuv amputasyonmodeli 21'e uyarlanabilir. Bu model, klinik prosedürleri yakından yansıtır ve çeşitli ağrı davranışlarını, nöroma oluşumunu ve nöron korumasını değerlendirmemize olanak tanır (Şekil 2)22. Çalışmalarımız, TMR'nin standart amputasyona göre önemli analjezik faydalarını, nöroma önlemesini ve soğuk hassasiyetinde cinsel dimorfik yanıtlargösterdiğini göstermiştir 22,23.

Burada sunulan protokol, cerrahi tekniğin ayrıntılı ve standart görsel gösterimini sunarak deneysel yaklaşımlarda tekrarlanabilirlik ve tutarlılık sağlar. Sinir izolasyonu, hassas transsepsiyon ve gerilimsiz sinir koaptasyonu gibi temel adımları açıkça göstererek, bu protokol araştırmacılara TMR aracılı analjezi ve nöroma önleme mekanizmalarını araştırmak için sağlam bir çerçeve sunar.

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Protokol

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Tüm hayvan prosedürleri, Kurumsal Hayvan Bakımı ve Kullanım Komitesi (IACUC) tarafından onaylanmış olmalı ve Ulusal Sağlık Enstitüleri (NIH) Laboratuvar Hayvanlarının Bakımı ve Kullanımı Rehberi'ne uygun olmalıdır.

1. Ameliyat öncesi hazırlık

NOT: 8–10 haftalık ve 250–300 g ağırlığında erkek ve dişi Sprague-Dawley fareleri (Charles River Laboratories) kullanıldı.

  1. Isıtıcı pedi açın ve steril bir cerrahi alan hazırlayın. Optimal maruziyet için farenin vücuduna dik steril bir ped yerleştirin.
  2. Tüm cerrahi alet ve malzemeleri düzenleyin: steril tuzlu çözelti (%0,9 sodyum klorür), povidon-iyot antiseptik çözeltisi, meloksikam, koter, 10-0 mikro dikiş, 4-0 emilebilir örgülü dikişler, cetvel ve cilt yapıştırıcısı.
    NOT: Tüm cerrahi aletler otoklavlama veya sıcak boncuk sterilizasyonu ile sterilize edilmelidir.
  3. Anestezi için sıçan, %4 izofloran, 10 L/dakika oksijen ve %60 hava içeren bir indüksiyon odasına yerleştirilin. 4 dakika veya tepki vermedikten sonra, burun konisine geçin ve fare boyutuna bağlı olarak izofluranı %1,5–%2,0 olarak ayarlayın.
  4. Ameliyat bölgesini alt sırttan tüm arka uzuva kadar tıraş edin. Povidon-iyot antiseptik solüsyesi ve alkol sürüntleriyle dönüşümlü olarak üç kez hazırlık yapın, sonunda alkol ile bitirin.
  5. 1 mg/kg meloksikam verimini deri altına verin ve bir tüberkülin şırıngası ile (genellikle 200 g fare için 0,2 mL).

2. Diz altı amputasyon (Şekil 1)

  1. Diz eklem çizgisini işaretlemek için bir cetvel kullanın ve dizden 2 cm ve 3 cm distal iki ek işaret yapın.
  2. Bir skarpel kullanarak dizin 3 cm distali çevresinde bir deri kesisi yapın.
  3. Deriyi alttaki kaslardan çevresinden ayırmak için küt ve keskin bir diseksiyon kullanın, böylece cilt serbestçe geri çekilebilir.
  4. Bu zayıflatma sürecini alttaki kaslarla tekrarlayın, dikkatlice kemiğe kadar inceleyin ve doku düzlemlerini koruyun. Tibia/fibula, çevre kesisinin 1 cm proksimal konumunda steril bir koter veya işaretleyici ile işaretleyin.
  5. Küçük kemik makası kullanarak işaretlenmiş noktada tibia ve fibulayı kesin. Hemostazı sağlamak için koter kullanın. Kemik ucunu keskin kenarlar için inceleyin ve gerektiğinde küt veya kesin.
  6. 4-0 emilebilir örgülü dikiş kullanarak, ön ve arka kas bölümlerini kemik üzerinde birleştirerek kas pedi oluşturun. Ön kenarı birincil basınç noktası olan tibia üzerine dikerek başlayın. Genellikle 4–6 kesintili dikiş kullanılır.
  7. Deriyi yan tarafa kapatın, kesilen 4-0 emilebilir örgülü dikişlerle kapatın, doğrudan ağırlık taşıyan kütüğün üzerine yerleştirilmesin. Kesi çizgisi boyunca cilt yapıştırıcısı uygulayın.

3. TMR müdahale cerrahisi (Şekil 1)

  1. Femurun yaklaşık 5 mm gerisinde 1,5–2 cm uzunluğunda gluteal bölünme kesisi yapın.
  2. Gluteal ve hamstring kaslarını ayırmak için küt diseksiyon kullanın; siyatik siniri tibial, common peroneal (CP) ve sural sinirlere trifurkasyonuna hemen yakın konumda açıklayabilir.
  3. Proksimal motor dalları tanımlayın: bir büyük dal caudofemoralis (CFM) altından geçer ve CFM'ye dalan, semimembranosus (SM) ve biceps femoris (BF) oluşur.
  4. CFM'yi pamuk çubukla yükseltin ve bölün. SM ve BF dallarını dikkatlice nörolize edin; mikrocerrahi ince Dumont pensleri kullanarak cerrahi mikroskop altında küt diseksiyon ile nörolize edin.
    1. Epineuryumu almak için forseps kullanın ve ince kavisli yaylı makasla epineuryumu açıp boylamasına bölerek farklı dalları birbirinden ayırın.
    2. CFM dalı korun ve diğerlerini siyatik gövde yakınında ayırın. Curve motor dalları alt tarafa dallanarak koaptasyonu kolaylaştırır.
  5. Siyatik trifurkasyonu epineuryumu açıp ince kavisli yaylı makasla bölerek nörolize edin. Sinir dallarını ince forsepsle nazikçe ayırın. Üç dalı (CP, tibial, sural) trifurkasyonun 5–10 mm distal kısmında penseps ile tutun.
  6. Gerginliği yerleştirin ve her siniri mümkün olduğunca distal olarak kesin. Kesilmiş distal ucu tutarak, en az 5–10 mm keserek proksimal uca temiz bir kesim yapın.
  7. Koaptasyonları 10-0 naylon dikişle yapın: CP'den SM'ye bir dikiş kullanarak, tibial ile büyük BF dalı bir ila iki dikiş ile ve sural ile küçük BF dalı tek dikiş ile yapılabilir. Her dikiş başına en az 3 knot kullanın, gerilimsiz yerleştirme sağlayın, siniri kırışacak kadar sıkıştırmadan kaçının ve keskin açılış olmadan koaptasyonları yerleştirin.

4. Sadece amputasyon için grup

  1. Ligate CP, tibial ve sural sinirleri 5-0 ipek dikiş kullanarak kullanabilirsiniz. İpeği Dumont dikiş bağlama pensleriyle tutun. Bağın siniri kırıştırdığından ve 4 kare düğümle sabitlendiğinden emin olun.
  2. Her siniri düğüm ile proksimali nazikçe çekin ve ligatüre 1–2 mm distal kesin. Distal sinir segmentinden 10 mm çıkarılın.
  3. Bölüm 2'de detaylandırıldığı şekilde amputasyona devam edin.

5. Ameliyat sonrası bakım

  1. Fareyi ısıtılmış kafese geri götürün ve ambulatör hale gelin. İkinci meloksikam dozunu (0.2 mL) deri altı olarak 24 saat sonra verin.
  2. Yara bütünlüğünü, enfeksiyon belirtilerini, ağrı veya sıkıntı için 7 gün boyunca günlük olarak izleyin ve IACUC yönergelerine göre gerektiğinde müdahale edin.

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Sonuçlar

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Bu arka uzuv amputasyon modeli, sıçanlarda ambulasyon ve keşif kapasitesini korurken, nöropatik ağrı ile ilgili davranışları güvenilir şekilde indüklemiştir. Şekil 2'de gösterildiği gibi, amputasyon sırasında periferik sinirin distal hedef olmadan kesilmesi nedeniyle ligasyon bölgesinde düzensiz aksonal büyüme ve nöroma oluşumu ile sonuçlanır; bu durum B-tubulin ve kalsitonin genine bağlı peptid (CGRP) immünboyaması ile görselleştirilir. Buna karşılık, TMR i...

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Tartışma

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Bu protokol, arka uzuv amputasyon modelinin tekrarlanabilirliğini sağlamak için temel cerrahi adımları detaylandırır ve amputasyon sonrası testlerde ambulasyon ve davranışsal katılımın korunduğunu gösterir. Cerrahlar arasında tutarlılık ve tekrarlanabilirlik sağlamak için dikkatli anatomik tanımlama, minimal sinir manipülasyonu ve kesilmiş sinirlerin gerilimsiz yönetimi gibi temel cerrahi ilkeler vurgulanmaktadır. Bu teknik hususlar, amputasyon sonrası sinir patolojisini güvenilir şekild...

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Açıklamalar

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Yazarlar çıkar çatışması belirtmemektedir.

Teşekkürler

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Bu araştırma, Wisconsin Tıp Fakültesi Sinirbilim Araştırma Merkezi, Rita Allen Vakfı ve Plastik Cerrahi Vakfı tarafından desteklenmiştir. Yazarlar, hayvan bakımı ve desteği için Karşılaştırmalı Tıp Birimi'ne teşekkür ediyor.

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Malzemeler

Bu makalede kullanılan malzemelerin listesi
AdŞirketKatalog numarasıYorumlar
10-0 nylon microsuture (Arosurgical)AROSurgicalT04A10N07-13İnce sinir koaptasyon sütürü. 10-0 mikro sütür. 
4-0 poliglikolik asit sütürEthiconAQ1268Kası ve deri için kapatma sütürü. Emilebilir 4-0 sütür. 
5-0 ipek cerrahi sütürGenericGenericSinir ligasyon sütürü
Yetişkin Sprague-Dawley sıçanlarıCharles River LaboratoriesGenericDeney hayvanı
Alkol hazırlık pedleriDukal CorporationGenericDeri antiseptiği
Betadine 10%Avrio Health LPGenericAntiseptik
Kemiğe özel makasFST16030Kemik kesme aleti
Kavter cihazıFST18010-00Kanamayı durdurma cihazı
Pamuk uçlu aplikatör (ProAdvantage)ProAdvantageRef 76100Dokuya müdahale
Eğri mikrodiseksiyon makasıFST15019-10Nerolizin için ince makas
Forseps (ince Dumont)FST11254-20Sinir taşıma aleti
Forseps (düğüm bağlama Dumont)FST11063-07Sütür taşıma aleti
Gaoz USP tip VII (Cardinal Health)Cardinal HealthRef 2146Steril alanın korunması
Isıtmalı yastık (TC1000 sıcaklık kontrol cihazı)GenericTC1000Sıcaklık kontrol cihazı
İndüksiyon odası (Braintree Scientific)Braintree Scientific Inc.GenericAnestezi indüksiyonu için
Izofluran (Isospire)PhoenixGenericAnestezik ajan
Meloksikam (Ostilox)VetONE5 mg/mLAğrı kesici ajan
ÖlçüGenericGenericAnatomik noktalar için ölçü aracı
Steril salinBaxter0.9 Sodyum Lot Y425131Sulama çözeltisi
Cerrahi bıçak 15 FST10015-00Deri kesimi aracı
Tüberkülin şırıngaGenericGenericİlaç uygulama
Buharlaştırıcı (Surgivet model 100)SurgivetModel 100 S/N W2211123Anestezi sürdürme için
Vetbond doku yapıştırıcıWorld Precision InstrumentsGenericDeri yapıştırıcı

Kaynaklar

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
  1. Balakhanlou, E., Webster, J., Borgia, M., Resnik, L. Frequency and severity of phantom limb pain in veterans with major upper limb amputation: results of a national survey. PM R. 13 (8), 827-835 (2021).
  2. Resnik, L., Ekerholm, S., Borgia, M., Clark, M. A national study of veterans with major upper limb amputation: survey methods, participants, and summary findings. PLoS One. 14 (3), e0213578(2019).
  3. Ephraim, P. L., Wegener, S. T., MacKenzie, E. J., Dillingham, T. R., Pezzin, L. E. Phantom pain, residual limb pain, and back pain in amputees: results of a national survey. Arch Phys Med Rehabil. 86 (10), 1910-1919 (2005).
  4. R, L., et al. Prosthesis satisfaction in a national sample of veterans with upper limb amputation. Prosthet Orthot Int. 44 (2), 81-91 (2020).
  5. Kuiken, T. A., et al. Targeted muscle reinnervation for real-time myoelectric control of multifunction artificial arms. JAMA. 301 (6), 619-628 (2009).
  6. Valerio, I. L., et al. Preemptive treatment of phantom and residual limb pain with targeted muscle reinnervation at the time of major limb amputation. J Am Coll Surg. 228 (3), 217-226 (2019).
  7. Chang, B., Mondshine, J., Attinger, C., Kleiber, G. Targeted muscle reinnervation improves pain and ambulation outcomes in highly comorbid amputees. Plast Reconstr Surg. 148 (2), 376-386 (2021).
  8. Dumanian, G. A., et al. Targeted muscle reinnervation treats neuroma and phantom pain in major limb amputees: a randomized clinical trial. Ann Surg. 270 (2), 238-246 (2019).
  9. Woo, S. L., et al. Regenerative peripheral nerve interfaces for the treatment of postamputation neuroma pain: a pilot study. Plast Reconstr Surg Glob Open. 4 (12), e1038(2016).
  10. Dehdashtian, A., et al. Sexually dimorphic pattern of pain mitigation following prophylactic regenerative peripheral nerve interface (RPNI) in a rat neuroma model. Neurosurgery. 93 (5), 1192-1201 (2023).
  11. Senger, J., et al. A direct comparison of targeted muscle reinnervation and regenerative peripheral nerve interfaces to prevent neuroma pain. Neurosurgery. 93 (5), 1180-1191 (2023).
  12. Kuniak, C. A., et al. Prophylactic regenerative peripheral nerve interfaces to prevent postamputation pain. Plast Reconstr Surg. 144 (3), 421e-430e (2019).
  13. Decosterd, I., Woolf, C. J. Spared nerve injury: an animal model of persistent peripheral neuropathic pain. Pain. 87 (2), 149-158 (2000).
  14. Hu, P., McLachlan, E. M. Selective reactions of cutaneous and muscle afferent neurons to peripheral nerve transection in rats. J Neurosci. 23 (33), 10559-10567 (2003).
  15. Welin, D., et al. Survival and regeneration of cutaneous and muscular afferent neurons after peripheral nerve injury in adult rats. Exp Brain Res. 186 (2), 315-323 (2008).
  16. Jivan, S., Novikova, L. N., Wiberg, M., Novikov, L. N. The effects of delayed nerve repair on neuronal survival and axonal regeneration after seventh cervical spinal nerve axotomy in adult rats. Exp Brain Res. 170 (2), 245-254 (2006).
  17. Garg, R., Uygur, S., Cwykiel, J., Siemionow, M. Development of targeted muscle reinnervation model in hind limb amputated rats. J Reconstr Microsurg. 34 (7), 509-513 (2018).
  18. Lago, N., Navarro, X. Evaluation of the long-term regenerative potential in an experimental nerve amputee model. J Peripher Nerv Syst. 12 (2), 108-120 (2007).
  19. Hogan, Q. Animal pain models. Reg Anesth Pain Med. 27 (4), 385-401 (2002).
  20. Sadler, K. E., Mogil, J. S., Stucky, C. L. Innovations and advances in modelling and measuring pain in animals. Nat Rev Neurosci. 23 (2), 70-85 (2022).
  21. Svientek, S. R., Ursu, D. C., Cederna, P. S., Kemp, S. W. P. Fabrication of the composite regenerative peripheral nerve interface (C-RPNI) in the adult rat. J Vis Exp. (156), e60841(2020).
  22. Zepeda, J. L., Mraz, G., Roth, E., Weihrauch, D., Hoben, G. Rat hindlimb amputation model shows analgesia and sexually dimorphic cold hypersensitivity with immediate targeted muscle reinnervation. J Pain. 33, 105460(2025).
  23. Roth, E., et al. Targeted muscle reinnervation prevents and reverses rat pain behaviors after nerve transection. Pain. 164 (2), 316-324 (2023).

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Yeniden basım ve izinler

Bu JoVE makalesinin metnini veya şekillerini yeniden kullanmak için izin iste

İzin iste

Etiketler

S an Amputasyon ModeliArka Uzuv AmputasyonuAmputasyon Sonras A rSiyatik Sinir TranseksiyonuA r Davran larN roma Olu umuFonksiyonel Sonu larKemirgen Cerrahi ProtokolMobilite Korunumu
Video yakında

İlgili makaleler