Bu içeriği görüntülemek için JoVE aboneliğiniz gereklidir. Giriş yapın veya ücretsiz denemenizi bugün başlatın.

Yöntem makalesi

İn vivo Kuru Göz Tanı ve Tedavisinde Konfokal Mikroskopi: Görüntüleme Protokolleri ve Yorumlamaya Odaklanma

1.4K görüntülenme

⸱

DOI:

10.3791/69156

⸱

11 Kasım 2025

 ,  , 
1Hankou Aier Eye Hospital, 2Aier Eye Hospital of Wuhan University, 3School of Stomatology and Ophthalmology, Xianning Medical College, Hubei University of Science and Technology

Bu makalede

Özet

Bu makale, kuru göz tanı ve tedavisinde in vivo konfokal mikroskopinin işleyişini ve etkisini göstermekte ve gelecekteki araştırmalara temel oluşturmak için in vivo konfokal mikroskopinin uygulama ve sonuçlarını araştırmaktadır.

Özet

İn vivo konfokal mikroskopi (İVKM), non-invaziv doğası ve yüksek çözünürlüğü nedeniyle büyük ilgi görmüştür. Kornea, konjonktiva, göz kapağı kenarı, meibomian bezleri ve Demodex gibi parazitler dahil olmak üzere kuru göz hastalığı (KGH) ile ilişkili çok sayıda oküler yüzey yapısının hücresel düzeyde in vivo olarak gözlemlenmesini ve objektif olarak ölçülmesini sağlar. Bu yetenek, oftalmologlara KGH'nin spesifik etiyolojilerini ve alt tiplerini belirlemede yardımcı olur, böylece kesin tanıyı, hedefe yönelik tedaviyi ve prognostik değerlendirmeyi kolaylaştırır. Bununla birlikte, İVKM operasyonu ve raporlaması için standartlaştırılmış protokoller eksik kalmaktadır. Bu cihazı etkili bir şekilde kullanmak ve yüksek kaliteli raporlar oluşturmak için hem oftalmik bilgi hem de teknik operasyonda yeterlilik şarttır. Bu makale, KGH hastaları için İVKM muayenesinin prosedür adımlarını ve nüanslarını detaylandırmaktadır. Bu, DED için ilk JoVE adım adım IVCM protokolüdür. Klinisyenler için bir referans görevi görmeyi, operasyonel verimsizliklerden kaçınmalarına ve klinik yönetime rehberlik etmek için sürekli olarak yüksek kaliteli kornea ve oküler yüzey görüntüleri elde etmelerine yardımcı olmayı amaçlamaktadır.

Giriş

Yerel tıbbi kaynaklardaki kısıtlamalar veya hastanın mali yükleri nedeniyle, KGH'nin klinik tanısı genellikle yalnızca temel bir hususa (örneğin, yarık lamba mikroskobu altında gözlem, gözlerde kuruluk ve kaşıntı şikayeti) veya hatta tek bir göstergeye (örneğin, invaziv gözyaşı filmi kırılma zamanı, gözyaşı sekresyon testi veya Demodex istilası) odaklanır. IVCM uygulaması, protokolleri standartlaştırmak şöyle dursun, yaygın olarak mevcut değildir. Bununla birlikte, IVCM ile donatılmış oftalmik kurumlar için yazar, kornea, konjonktiva ve palpebral kenar dahil olmak üzere eksiklikleri önlemek için ilk kez hastaların kapsamlı bir mikroskobik incelemeden geçmesini önermektedir. Belirsiz KGH vakaları veya Demodex'i tespit etmek için IVCM özellikle açık bir cevap için uygundur.

Kuru göz hastalığı (KGH), gözyaşı sıvısının kalitesi veya miktarındaki anormallikler ve gözyaşı filminin stabilitesinin azalmasından kaynaklanan kronik bir oküler yüzey durumu olarak tanımlanır. Kuru Göz Atölyesi II'DE (DEWS II), DED beş tipte sınıflandırılır: sulu yetersiz kuru göz (ADE), evaporatif kuru göz (EDE), karışık kuru göz (MDE), kuru göze yatkınlık ve klinik öncesi kuru göz durumu1. Ralene ve ark. 2017-2022 yılları arasında yayınlanan literatür de dahil olmak üzere farklı kuru göz tiplerinde İVKM'nin önemli klinik uygulamalarını özetlemiştir2. Son araştırmalar, inflamasyonun KGH 3,4'ün patogenezinde anahtar bir rol oynadığını göstermiştir. Özellikle, dendritik hücrelerin (DC'ler) yoğunluğu, sistemik immün aracılı bir süreçle ilişkili KGH'nin iyi bir göstergesi olabilir5.

IVCM, konfokal lazer tomografi teknolojisini kullanır. 1 μm yatay ve dikey çözünürlük sunar. Cihazın detaylı teknik özellikleri Jeremy ve ark.6 tarafından hazırlanan raporda belgelenmiştir. Oküler yüzey muayenesi sırasında İVKM önce korneaya7, ardından konjonktiva ve meibomian bezlere8 uygulanır. Demodex blefariti son yıllarda artan klinik ilgi görmüştür 9,10. İVKM, kornea, konjonktiva ve palpebral kenarın net görüntülerini sağlar. Bu görüntüler, klinisyenlerin hastalık durumunu değerlendirmesine ve inflamatuar ve bağışıklık hücrelerinin görüntülenmesini ve miktarının belirlenmesini kolaylaştırmasına olanak tanır.

KGH değerlendirmesinde odak noktamız şunları içerir: kornea epitel hücreleri (CEC); subepitelyal sinir lifleri (SNF); interepitelyal ve subepitelyal inflamatuar/immün hücreler; konjonktival kadeh hücreleri (CGC'ler); konjonktival inflamatuar/immün hücreler; meibomian bezi asini ve delikleri; Demodex folliculorum ve Demodex brevis; ve çevre dokulardaki inflamatuar hücreler. Bu vurgu patofizyolojiden kaynaklanmaktadır: Meibomian bezi disfonksiyonu, gözyaşı filminin lipid tabakasının salgılanmasının azalmasına veya bileşiminin değişmesine yol açarak gözyaşı buharlaşmasının hızlanmasına ve oküler yüzey hasarına neden olur. Demodex istilası oküler kaşıntı ve rahatsızlığa katkıda bulunur. CGC'ler, kritik bir gözyaşı filmi bileşeni olan müsin salgılar; bunların tükenmesi müsin eksikliği olan KGH'ye neden olabilir. Tersine, KGH'nin kendisi CEC ve SNF dahil olmak üzere oküler yüzey yapılarına zarar verir ve ardından kornea ve konjonktival dokularda inflamatuar/immün hücre yoğunluğunu yükseltir. İdeal resimleri elde ettikten sonra, bahsedilen çok sayıda hücreyi saymak için yazılımın yerleşik niceliksel araçlarını etkili bir şekilde kullanabiliriz (Şekil 1). Ancak SNF'nin morfolojik çeşitliliği için, nicelemeye yardımcı olması için analitik yazılıma güvenmemiz gerekiyor11,12.

İVKM, oküler yüzey dokularındaki kornea tabakalarının, sinir liflerinin ve inflamatuar/immün hücrelerin gerçek zamanlı değerlendirilmesi için vazgeçilmezdir. CGC'leri değerlendirmek için impresyon sitolojisi alternatif bir yöntem olarak hizmet eder. Bu teknik, goblet hücre yoğunluğunun zirve yaptığı forniks konjonktivasını hedefler ve tipik olarak IVCM ölçümlerinden13,14 daha yüksek değerler verir. Bununla birlikte, sonuçlar boyama değişkenliğine ve operatör uzmanlığına tabidir, zaman yoğun protokol ise rutin klinik uygulamayı sınırlar. Meibomian bezi delik tıkanıklığı yarık lamba mikroskobu ile doğrudan gözlemlenebilir, ancak bu yöntem İVKM'nin doğru bir şekilde tanımladığı Demodex brevis kaynaklı tıkanıklıkları tespit edemez. Demodex enfestasyonunun teşhisi için ışık mikroskobu incelemesi ile kirpik epilasyonu düşük maliyetli bir yöntem sağlar. Teknik olarak basit olsa da, bu yaklaşım önemli sınırlamalar taşır: hasta rahatsızlığı çoklu örneklemeyi kısıtlar, kirpik foliküllerinin derinliklerinde veya meibomian bezi deliklerinde bulunan akarlar tespit edilemez durumda kalır15. Buna karşılık IVCM, kirpik folikülleri ve meibomian bezi delikleri de dahil olmak üzere birden fazla kapak kenarı bölgesinin minimum hasta rahatsızlığıyla kapsamlı bir şekilde incelenmesine olanak tanır. Bu yaklaşım, parazitlerin mikro habitatları içindeki gerçek zamanlı in vivo görselleştirilmesi yoluyla önemli ölçüde daha yüksek tanısal pozitiflik oranları elde eder16,17.

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Protokol

Muayene prosedürü Hankou Aier Göz Hastanesi Etik Kurulu tarafından onaylandı ve tüm hastalardan bilgilendirilmiş onam alındı.

NOT: Hasta seçimine dahil edilme kriterleri arasında kuru ve kaşıntılı göz şikayeti ile başvuran hastalar ve rutin göz muayenesi isteyen kişiler yer almaktadır. Hasta seçiminde dışlama kriterleri arasında kornea perforasyonu veya yaklaşan kornea perforasyonu olan hastalar, topikal oküler anesteziklere alerjisi olanlar, koopere olamayacak kadar genç (örn. 3 yaş altı) veya çok yaşlı bireyler, göz kapağı spekulumuna uyum sağlayamayan dar palpebral fissürleri olan hastalar, gebeler ve başka nedenlerle kooperasyon yapamayan bireyler yer almaktadır. Kısa bir iş akışı şeması Şekil 2'de bulunabilir. Ve detaylı işlem adımları aşağıdaki gibidir.

1. Ön inceleme

  1. Malzemelerin hazırlanması: İVKM cihazı, kornea kontakt başlığı, oftalmik topikal anestezik, birleştirme maddesi, tıbbi pamuklu çubuklar, göz kapağı spekulumu, alkol topları, alkol rezervuarı, antiinflamatuar göz damlaları (Şekil 3).
  2. IVKM ekipmanının (Heidelberg Retinal Tomografi Rostock Kornea Modülü (HRT-RCM)), odaklama düğmesinin, izleme kamerasının, bakış yönlendirme ışığının, çene desteğinin, alın desteğinin, sol/sağ gözler arasında geçiş yapmak için düğmenin, HRT-RCM'yi üç eksenli olarak hareket ettirmek için döner düğmelerin, görüntü yakalama düğmesinin ve ayak pedalının, özel IVCM yazılımına sahip bilgisayarın temel bileşenlerini anlayın ve IVCM cihazını birleştirme jeli ile hazırlayın.
  3. Muayene görevlisinin hazırlığı: Maske takın ve ellerinizi alkol bazlı jel ile dezenfekte edin veya tek kullanımlık eldivenler giyin.
  4. Cihaz dezenfeksiyonu: Ekipmanın alın ve çene dayanaklarını alkollü bezlerle silin.
  5. Prosedür açıklaması: Kaygıyı azaltmak için hastaya muayenenin ağrısız olduğunu kısaca açıklayın.

2. Muayene sırasında

  1. Bilgisayardaki eşlik eden yazılımla yeni bir hasta kaydını doğrulayın ve oluşturun.
  2. Topikal anestezik uygulayın: İşlemden önce 3 dakika arayla alt fornikse iki damla uygulayın.
  3. IVCM cihazının rostock kornea modülünü (RCM) hazırlayın: RCM'nin lazer yayan alanını birleştirme jeli ile kaplayın (hava kabarcığı olmadığından emin olun) (Şekil 4 ve Şekil 5) ve yalnızca yeterli miktarda birleştirme maddesi (genellikle bir veya iki damla, çok fazla değil) kornea temas başlığı ile tam teması sağlayabilir ve sonuçta ideal sıfırlama arayüzünü elde edebilir. Tek kullanımlık bir kornea temas başlığı takın.
  4. Cihazı konumlandırın: RCM'yi tamamen geri çekin. Alın desteğini yatay olarak sabitleyin. İzleme kamerasını konunun zamansal tarafına ayarlayın. RCM'nin optik eksenine dik olan kameranın durma noktasının konumunu bulun.
  5. Odağı kalibre et: Yazılım, görüntü kalitesi değeri tam olarak 100 olan büyütülmüş beyaz bir fakula görüntüleyene kadar odak düğmesini çevirin. Derinlik değerini sıfıra sıfırlayın (sıfırlama).
  6. Tarama modunu seçin: Aksi belirtilmedikçe varsayılan olarak Bölüm Modu'dur . Demodex akarlarının aktivitesini gözlemlemek için, dinamik görüntülerin sürekli kaydı için Sıra Modu kullanılabilir.
  7. Hastaları konumlandırın: Çenelerini çene desteğine sıkıca yaslayın. Alnını alın desteğine doğru bastırın. Muayene masasını ve çene desteğini hastanın boyuna göre ayarlayın.
  8. Göz kapağı spekulumunu yerleştirin: Yerleştirme için üst kapağı kaldırmak için pamuklu çubuk kullanırken hastadan aşağı bakmasını isteyin ve yerleştirme için alt kapağı pamuklu çubukla hafifçe aşağı çekerken hastadan yukarı bakmasını isteyin.
  9. Son talimatlar: Kafanın doğru konumlandırıldığını yeniden onaylayın. Hastaya rahat kalmasını ve hareket etmekten kaçınmasını hatırlatın. Herhangi bir rahatsızlığı derhal bildirin.
  10. Kornea muayene protokolü
    1. Makroskopik hizalama ile başlayın: Kornea apeksine yaklaşmak için RCM'yi görsel olarak ayarlayın (Şekil 6). RCM korneaya yaklaşırken ince ayar için cihazın izleme kamerasına geçin. Hastayı, lezyonu RCM altında ortalayarak lezyonel kornealar için bakışlarını döndürmesi için yönlendirin. Kornea hasarını önlemek için nazik teması sürdürün.
    2. Anahtar teknik: Kornea temas başlığı büyük bir fiziksel boyuta sahiptir, ancak son derece küçük bir optik bölgeye sahiptir (lazer yayan merkezi alanla sınırlıdır). Kritik gereksinim: Kapak ile hedef doku arasında yüksek hassasiyetli temas sağlayın, çünkü zayıf yapışma görüntüleme artefaktlarına (örn. kabarcıklar, yağ girişimi veya tam sinyal kaybı) neden olur.
      NOT: Sürekli görüntüleme için, sıralı derinlik görüntüleri yakalamak ve kritik verileri kaçırmamak için uzun süreli tarama için ayak pedalına basın.
  11. Katmanlı kornea değerlendirmesi: Yüzeyel katmanlardan derin katmanlara doğru şu sırayla tarayın: CEC, SNF, Subepitelyal inflamatuar hücreler.
    1. Önerilen dönüm noktası olan alt sarmala ve bitişik üst/alt bölgelere18 odaklanın.
  12. Nazal konjonktival muayene
    1. Odak düzlemini sıfır derinlik değerine sıfırlayın. Kapağa birleştirme jeli uygulayın. Hastaya geçici veya alt zamanlı olarak bakmasını söyleyin. RCM'yi nazikçe konjonktival yüzeye ilerletin. Eşzamanlı manevralar: Sağ elle optimum görüş alanı için RCM konumunu ayarlayın. Sol elinizle en dıştaki konjonktival tabakadaki kadeh hücrelerini tanımlamak için odak düğmesini çevirin.
  13. Göz kapağı spekulumunun çıkarılması: Hastaya aşağıya bakmasını söyleyin ve pamuklu çubuk kullanarak üst kapağı çıkarmak üzere kaldırın. Ve hastaya yukarı bakmasını söyleyin ve alt göz kapağını çıkarmak için bir çubukla hafifçe bastırın.
  14. Cihaz sıfırlama: Alın desteğini serbest bırakın ve yükseltin. Odak düğmesini sıfırlayın. Bağlantı jelini RCM yüzeyine yeniden uygulayın.
  15. Meibomian bezi ve kirpik foliküllerinin değerlendirilmesi
    1. Hasta konumlandırma: Aşağıya doğru bakmayı öğretin. Muayene eden kişinin manevrası: Kapak kenarını kornea kapağı düzlemine paralel hizalamak için üst göz kapağı derisini yavaşça kaldırın ve içe doğru bastırın. Aynı tür yapıya sahip daha fazla görüntü görüntülemek için RCM'yi yatay olarak hareket ettirin; meibomian bezi deliklerini incelemekten asini bezine ve ardından kirpik köklerine geçmek için RCM'yi dikey olarak (aşağıdan yukarıya) hareket ettirin.
      NOT: Yeni başlayanlar, meibomian bezi deliklerini incelerken daha iyi pozlama için göz kapağını ters çevirebilirler. Bu kısım için muayenenin üst göz kapağının orta 1/3'ündeki yerini öneriyoruz.
    2. Kantitatif standartlar (kurumsal protokol): Bitişik asini15 ile ardışık 8 folikülü değerlendirin ve 4-8 ardışık bez deliğini inceleyin. Derinlik Kalibrasyonu: Foliküllerin net görüntülerini elde etmek için, Demodex akarları keskin sınırlar (varsa) gösterene kadar odaklanın. Acinis'in net görüntülerini elde etmek için önerilen değer yaklaşık 30-50 μm derinliktir. Ve delikler için yaklaşık 30 μm'dir (istila edilirse Demodex brevis görünürlüğüne göre ayarlayın)19.

3. Muayene sonrası

  1. İşlem sonrası bakım: El hijyeni sağlayın ve ellerinizi iyice dezenfekte edin. Pamuklu çubuk kullanarak oküler yüzeydeki kalıntı bağlantı jelini, yırtıkları veya kalıntıları nazikçe silin. Enfeksiyonu önlemek için antibiyotikli göz damlası uygulayın.
  2. Hasta talimatları: Hastaya muayene günü gözlerini ovuşturmaktan kaçınmasını tavsiye edin.
  3. Raporlama: Elde edilen tüm görüntüleri kapsamlı bir şekilde analiz edin ve bir teşhis raporu oluşturun. Raporlama gereksinimleri: Doku yapısı başına en az bir görüntü ekleyin ve gerektiğinde anormal bulgular için daha fazlasını ekleyin. Seçilen tüm görüntüler, inceleme sırası ve derinlik değerine göre düzenlenmeli, ardından kesin açıklamalar ve ölçümler yapılmalıdır.
  4. Atık imha talimatları: Tek kullanımlık malzemeler (kontak kapakları, swablar, anestezik kaplar) için, daha fazla profesyonel imha için lütfen bunları tıbbi atık kutusuna atın.

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Sonuçlar

Tüm İVKM mikroskobik görüntüleri 384 piksel × 384 piksel çözünürlükte, 400 μm × 400 μm gözlem alanında elde edildi. Düzgün bir şekilde "sıfırlandığında", bu inceleme görüntü çerçevesinde yalnızca üç olası sonucu gösterecektir: i) Hiç görüntü yok (başarısız deney): Merkezi optik bölge hedef doku ile temas etmedi. ii) Sadece kısmi bir görüntü (Şekil 7) veya diğer anormal durumlar (Şekil 8) (başarısız deney): Merkezi optik bölge, h...

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Tartışma

"İn vivo konfokal mikroskopi" ve "kuru göz hastalığı" anahtar kelimelerinin kullanıldığı bir PubMed literatür taraması (erişim tarihi: Haziran 2025) 300'> yayın ortaya çıkardı. Özellikle, yıllık yayın oranları 2021'den bu yana yılda yaklaşık 40 makalede sabitlendi. Oküler yüzey bozukluklarında İVKM'nin daha geniş uygulamaları, son yirmi yılda (2004-2024) > 2.000 çalışma üretmiştir. Klinik olarak İVKM, oküler yüzey patolojilerinin hücresel düzeyde değerlendirilmesinde devrim yara...

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Açıklamalar

Yazarlar herhangi bir çıkar çatışması beyan etmemektedir.

Teşekkürler

Yazarlar, Hankou Aier Göz Hastanesi'nden Lina Jin'e ve Wuhan Asya Kalp Hastanesi Oftalmoloji Bölümü'nden Min Chen'e bazı resimlere yardımcı oldukları için ve ameliyat prosedürü için çalışan tüm katılımcılara ve personele teşekkür eder. Bu araştırma, Wuhan Belediye Sağlık Komisyonu'ndan (WX23A20) Bilimsel Araştırma Projeleri'nden alınan bir hibe ile desteklenmiştir.

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Malzemeler

Bu makalede kullanılan malzemelerin listesi
AdŞirketKatalog numarasıYorumlar
Emici pamuk toplarıJIAN QI, Çinhttp://www.hnjianqi.comAlkol topları yapmak için, küçük
Alkol bazlı jelLi Kang, Şanghay, Çin31107904El antiseptik durulama içermeyen jel, 500ml
Karbomer Göz DamlalarıVidisic, Almanya8187195Steril oftalmik jel for coupling agent, 10g
Kornea temas başlığı (TomoCap)Heidelberg, Almanya18829Optik ortam ve korneaya aseptik temas
Göz kapağı spekulumuAsicon, Çin6102AGözleri açtığın için
Heidelberg Eye Explorer yazılımıHeidelberg, AlmanyaSürüm 1.5.2.0IVCM cihazıyla birlikte gelen yazılım
IVCM cihazıHeidelberg, AlmanyaHRT-?,08398Sınavın ana ekipmanları
Tıbbi pamuk çubuklarıEsound Med, Çinwww.e-soundmed.comHastaların gözlerini temizlemek ve gözlerin açılmasına yardımcı olmak için, 10cm
%75 Tıbbi alkolHUICHANG, Çinwww.huichang888.cnAlkol topları yapmak için, %75± %5 500ml
%0,4 oksibuprokain hidroklorür göz damlalarıSanten, Japonyahttp://www.santen.co.jpOftalmik topikal anestezik, %0,4 (0,5ml: 2mg)
Tobramisin Göz DamlalarıTOBREX, Belçika8453824Anti-inflamatuar göz damlası, %0,3 (5ml: 15mg)

Kaynaklar

  1. Craig, J. P., et al. TFOS DEWS II definition and classification report. Ocul Surf. 15 (3), 276-283 (2017).
  2. Ralene, S., Kenneth, Y., Yu-Chi, L., Louis, T. In vivo confocal microscopy in different types of dry eye and meibomian gland dysfunction. J Clin Med. 11, 2349(2022).
  3. Bron, A. J., et al. TFOS DEWS II pathophysiology report. Ocul Surf. 15, 438-510 (2017).
  4. Kheirkhah, A., Rahimi, D. R., Cruzat, A. Corneal epithelial immune dendritic cell alterations in subtypes of dry eye disease: a pilot in vivo confocal microscopic study. Invest Ophthalmol Vis Sci. 56, 7179-7185 (2015).
  5. Jodi, H., Harrison, D., Anat, G. Can in vivo confocal microscopy differentiate between subtypes of dry eye disease? A review. Clin Exp Ophthalmol. 49 (4), 373-387 (2021).
  6. Jeremy, C. B. C., et al. In vivo corneal confocal microscopy: imaging analysis, biological insights and future directions. Commun Biol. 6 (1), 652(2023).
  7. Lemp, M. A., Dilly, P. N., Boyde, A. Tandem-scanning (confocal) microscopy of the full-thickness cornea. Cornea. 4 (4), 205-209 (1985).
  8. Kobayashi, A., Yoshita, T., Sugiyama, K. In vivo findings of the bulbar/palpebral conjunctiva and presumed meibomian glands by laser scanning confocal microscopy. Cornea. 24 (8), 985-988 (2005).
  9. Yiran, H., et al. Demodex folliculorum infestation in meibomian gland dysfunction-related dry eye patients. Front Med (Lausanne). 24 (9), 833778(2022).
  10. Orla, M., Veronica, O. D., Aoife, L. M. Ocular Demodex folliculorum: prevalence and associated symptoms in an Irish population. Int Ophthalmol. 39 (2), 405-417 (2019).
  11. Al-Aqaba, M. A., et al. Corneal nerves in health and disease. Prog Retin Eye Res. 73, 100762(2019).
  12. Liu, Y. C., Lin, M. T. Y., Mehta, J. S. Analysis of corneal nerve plexus in corneal confocal microscopy images. Neural Regen Res. 16, 690-691 (2021).
  13. Zhixin, W., Xuguang, S. Progress in the study of conjunctival goblet cell. Int Rev Ophthalmol. 4 (3), 1673-5803 (2005).
  14. Bilian, K., et al. Quantitative study of goblet cells in human conjunctiva. Chin J Anat. 3 (10), 1001-1633 (2001).
  15. Yan, T., Dai, Q., Yu, G. In vivo confocal microscopy: a standard operating procedure for the detection of Demodex mites at the eyelid margin. J Vis Exp. (221), e68534(2025).
  16. Matthieu, R., et al. In vivo confocal microscopy as a novel and reliable tool for the diagnosis of Demodex eyelid infestation. Br J Ophthalmol. 99 (3), 336-341 (2015).
  17. Jalbert, I., Rejab, S. Increased numbers of Demodex in contact lens wearers. Optom Vis Sci. 92 (6), 671-678 (2015).
  18. Patel, D. V., McGhee, C. N. J. Mapping of the normal human corneal sub-basal nerve plexus by in vivo laser scanning confocal microscopy. Invest Ophthalmol Vis Sci. 46, 4485-4488 (2005).
  19. Nanyu, Z., et al. Lid margin score is the strongest predictor of meibomian area loss. Cornea. 41 (6), 699-708 (2022).
  20. Cañadas, P., Alberquilla, G. V. M., Hernández, V. J. L., Teus, M. A. Update on corneal confocal microscopy imaging. Diagnostics. 13, 46(2023).
  21. Xu, J., et al. In vivo confocal microscopic evaluation of corneal dendritic cell density and subbasal nerve parameters in dry eye patients: a systematic review and meta-analysis. Front Med. 8, 578233(2021).
  22. Baikai, M., et al. Quantification of increased corneal subbasal nerve tortuosity in dry eye disease and its correlation with clinical parameters. Transl Vis Sci Technol. 10, 26(2021).
  23. Michael, J. D. On the in vivo assessment of goblet cells of the human bulbar conjunctiva by confocal microscopy: a review. Cont Lens Anterior Eye. 43 (4), 315-321 (2020).
  24. Allgeier, S., et al. A novel approach to analyze the progression of measured corneal sub-basal nerve fiber length in continuously expanding mosaic images. Curr Eye Res. 42, 549-556 (2017).
  25. Matuszewska-Iwanicka, A., et al. Mosaic vs single image analysis with confocal microscopy of the corneal nerve plexus for diagnosis of early diabetic peripheral neuropathy. Ophthalmol Ther. 11 (6), 2211-2223 (2022).
  26. Kryszan, K., et al. Artificial-intelligence-enhanced analysis of in vivo confocal microscopy in corneal diseases: a review. Diagnostics. 14, 694(2024).

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Yeniden basım ve izinler

Daha fazla makale keşfet

Kuru Göz HastalığıOküler Yüzey GörüntülemeKornea DeğerlendirmesiMeibomian Bezi GörüntülemeGoblet Hücre YoğunluğuSub-bazal Sinir LifleriDemodex TespitiHücresel Düzeyde Tanı
İn vivo Kuru Göz Tanı ve Tedavisinde Konfokal Mikroskopi: Görüntüleme Protokolleri ve Yorumlamaya Odaklanma
Bize Ulaşın
Kütüphaneye Öner

Gizlilik

Kullanım Koşulları

Politikalar

Telif Hakkı © 2026 MyJoVE Corporation. Tüm hakları saklıdır.