Yöntem makalesi

Serbestçe Hareket Eden Farelerde Kronik Çok Bölgeli Elektroensefalografi Kaydı için Uygun Maliyetli ve Minimal İnvaziv Bir Protokol

DOI:

10.3791/69314

⸱

10 Ekim 2025

 ,  ,  ,  ,  , 
1Department of Cellular Biology and Anatomy, Medical College of Georgia at Augusta University, 2National Institute of Biotechnology, 3Department of Neuroscience and Regenerative Medicine, Medical College of Georgia at Augusta University, 4Department of Neurology, Medical College of Georgia at Augusta University

* These authors contributed equally

Bu makalede

Özet

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Bu protokol, serbestçe hareket eden kemirgen EEG'sini kaydetmek için güvenilir ve kolay erişilebilir bir sistem oluşturmak için geliştirilmiştir.

Özet

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Elektroensefalografi (EEG), beyindeki elektriksel aktiviteyi izlemek için temel bir araç olarak hizmet eder ve hem klinik teşhislerde hem de klinik öncesi hayvan araştırmalarında giderek daha önemli hale gelmiştir. Kemirgen EEG'si insan nörolojik bozukluklarını modellemek için güçlü bir platform sunarken, uzun vadeli kayıtlar genellikle mevcut sistemlerin yüksek maliyeti, invazivliği veya teknik karmaşıklığı nedeniyle sınırlıdır. Burada, serbestçe hareket eden farelerde kronik, çok bölgeli kortikal EEG çekimi için güvenilir, erişilebilir, ekonomik olarak uygulanabilir ve minimum müdahaleci bir protokol sunuyoruz. Teknik, kemik vidaları kullanılarak epidural olarak sabitlenen ve yapıştırıcı ve diş çimentosu ile sabitlenen evrensel seri veri yolu (USB) tipi bir arayüze bağlı vidalı elektrotlarla platin-iridyum tellerin üretilmesini içerir. Sistem, %85 ameliyat sonrası hayatta kalma oranına sahip vahşi tip C57BL/6J farelerde gösterildiği gibi, birkaç ay boyunca istikrarlı sinyal yakalamaya izin verir (n = 20). EEG 1.000 Hz'de örneklendi ve bir diferansiyel amplifikatör kurulumu kullanılarak 1 Hz ile 500 Hz arasında filtrelendi. Sistemi doğrulamak için, nöbet benzeri aktiviteyi indüklemek için pentilentetrazol (20 mg / kg) uygulandı ve bu da interiktal deşarjlarda belirgin bir artışa yol açtı - başlangıçta 2-5'ten enjeksiyon sonrası 20-51 olaya - artan sinyal genliği ile birlikte. Deşarjlar, dalga biçimi morfolojisine ve tanınmış elektrofizyolojik kriterlere uyan sinyal özelliklerine göre tanımlandı. Kurulum, davranışsal video izleme ve açık kaynaklı analiz boru hatlarıyla uyumludur ve farmakolojik, genetik veya nöromodülasyon çalışmalarıyla entegrasyonu destekler. Bu yöntem, epilepsi araştırmaları ve ötesindeki uygulamalarla kemirgen modellerinde beyin ağı dinamiklerini araştırmak için istikrarlı ve uyarlanabilir bir platform sağlar.

Giriş

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Elektroensefalografi (EEG), beyin elektriksel aktivitesinin doğrudan bir ölçümünü sağlar ve epilepsi1 teşhisinde yaygın olarak kullanılır. Son yıllarda, EEG teknikleri nörolojik bozuklukları, uyku fizyolojisini ve beyin ağı dinamiklerini incelemek için küçük hayvan modellerinde kullanılmak üzere giderek daha fazla uyarlanmıştır 2,3,4. Genetiği değiştirilmiş fare modellerinin ortaya çıkması ve kayıt teknolojilerindeki önemli ilerlemelerle birlikte, kemirgen EEG, klinik öncesi araştırmalar için önemli bir araç haline geldi ve insan beyni sağlığı ile ilgili translasyonel mekanizmalar hakkında değerli bilgiler sundu 5,6.

Nöral aktiviteyi aynı anda yakalamak ve manipüle etmek, hem makro hem de mikro devre seviyelerinde beyin dinamiklerini incelemek için kritik öneme sahiptir. Bu ikili yaklaşım, nöbetin başlatılması ve ilerlemesinde rol oynayan sinir ağlarının gerçek zamanlı izlenmesini sağlar. Tekrarlayan ve genellikle öngörülemeyen nöbetlerle karakterize epilepsi, karmaşık beyin devrelerindeki bozulmalardan kaynaklanır4. Kapsamlı araştırmalara rağmen, nöbet yayılımını ve başlangıcını yöneten mekanizmalar, kısmen birden fazla beyin bölgesinde eşzamanlı kayıtlara izin veren teknolojilerin sınırlı kullanımı nedeniyle tam olarak anlaşılamamıştır7.

İnsan nörolojik bozukluklarını özetleyen hayvan modellerinden alınan EEG kaydı, insan hastalarda görülenleri yakından yansıtan interiktal sivri uçlar, ani ve dalga deşarjları ve nöbet başlangıç modellerini ortaya çıkardı 8,9, böylece insan beyninde meydana gelen elektrofizyolojik değişiklikler hakkındaki anlayışımızı ilerletti. Benzer şekilde, Alzheimer hastalığı, otizm spektrum bozukluğu ve şizofreni modellerinde tespit edilen EEG anormallikleri, bozulmuş nöral salınım aktivitesi hakkında kritik bilgiler sağlar ve potansiyel terapötik hedefleri vurgular10.

Beyin anatomisi ve ölçeğindeki farklılıklara rağmen, fare ve insan EEG'leri çarpıcı benzerlikler sergiler 2,11. Her ikisi de karakteristik salınım frekans bantları (delta, teta, alfa, beta ve gama) sergiler ve güç spektrumları genellikle 1/f dağılımınıtakip eder 2,11. Hızlı olmayan göz hareketi (NREM) uykusu sırasında delta aktivitesinin ortaya çıkması veya dikkat ve hafıza görevleri sırasında artan gama senkronizasyonu gibi beyin durumları arasındaki geçişler türler arasında korunur. Ayrıca, yüksek frekanslı salınımlar (HFO'lar) ve iktal paternler dahil olmak üzere epileptiform aktivite, hem farelerde hem de insanlarda karşılaştırılabilir zamansal ve spektral profiller gösterir7.

Kemirgen ve insan EEG'sinin korunmuş özellikleri, fare modellerini beyin bozukluklarını incelemek için oldukça translasyonel hale getirir. Fare EEG'si, ayrıntılı devre düzeyinde analiz sağlayan invaziv, yüksek çözünürlüklü kayıtlara izin verir12. Ayrıca, nöral disfonksiyonu hassas bir şekilde sorgulamak için davranışsal ve moleküler araçlarla birleştirilebilen farmakolojik ajanlar, optogenetik kontrol ve kapalı döngü stimülasyonu13,14 dahil olmak üzere nöromodülatör stratejilerin test edilmesini de destekler.

Bununla birlikte, bulguları tahmin ederken dikkatli olunmalıdır. Fare beyninin daha küçük boyutu ve daha basit kortikal yapısı, sinyal yayılımını etkileyebilir ve bilişsel olayla ilgili potansiyeller (ERP'ler) insanlara kıyasla daha az belirgin olabilir15. Elektrot yerleştirme, sinyal referanslama ve analitik boru hatlarında tutarlılığın sağlanması, tekrarlanabilirliği ve laboratuvarlar arası geçerliliği geliştirmek için kritik öneme sahiptir16.

Küçük hayvanlarda EEG'nin kaydedilmesi hem fırsatlar hem de zorluklar sunar. Fare EEG'si tipik olarak ya kafatası yüzeyine epidural olarak yerleştirilmiş kronik olarak implante edilmiş elektrotlar ya da subkortikal yapılara yerleştirilen derinlik elektrotları kullanılarak elde edilir17,18. Dura mater üzerine yerleştirilen vidalı veya tel elektrotlar gibi yüzey elektrotları minimal invazivdir ve uzun süreli, uzunlamasına kayıtlar için uygundur. Bu tür elektrotlar kemiğin altındadır ve bu da kayıt için yüksek empedanslı bir bariyer sağlar. Buna göre, kemirgenlerdeki dural elektrotların EEG'den çok elektrokortikografi (eCoG) ile karşılaştırılabilir olduğu düşünülebilir. Derinlik elektrotları, aksine, daha yüksek uzamsal çözünürlük sunar ve hipokampus, talamus veya amigdala gibi derin beyin bölgelerine erişim sağlayarak, bölgeler dağılımı 2,11 arasında nöbet ağları ve salınımlı eşleşme üzerine çalışmaları kolaylaştırır.

Kemirgenler için modern EEG sistemleri, yüksek zamansal çözünürlükle çok kanallı kaydı destekler ve genellikle davranışsal korelasyon için video izleme ile birleştirilir18. Ek olarak, kablosuz EEG sistemleri, serbestçe davranan hayvanlarda bağlı, gerçek zamanlı edinime izin vererek hareket kısıtlamalarını ve stresi en aza indirir19. Zamanla bu modernizasyonlar ticari olarak kullanılabilir hale getirilmiş olsa da, ya çok pahalıdırlar ya da kemirgen modelini uzun bir süre boyunca incelemek için çok istilacıdırlar.

Bu boşluğu gidermek için, kemirgen modellerinde çok bölgeli EEG çekimi için minimal invazivlik ile uzun vadeli çalışmalara uygun, çok yönlü ve uygun maliyetli bir protokol sunuyoruz. Bu EEG kayıt yaklaşımı, kontrollü deneysel koşullar altında farelerde kortikal aktivitenin yüksek çözünürlüklü değerlendirmesini gerektiren çalışmalar için özellikle uygundur. En iyi şekilde (i) hayvan elektrot implantasyonu sırasında kısa anesteziyi tolere edebildiğinde ve tamamen iyileşebildiğinde, (ii) kayıtlar sırasında sabit kafa pozisyonu veya minimum hareket sağlandığında, (iii) nöral aktivitenin uzun süreli veya tekrarlanan izlenmesi istendiğinde ve (iv) deneysel tasarım, amplifikatör kapasitesine bağlı olarak tek veya sınırlı çoklu hayvan kaydını barındırabilir. Araştırmacılar, bu yöntemin deneysel hedefleriyle uyumlu olup olmadığını belirlemek için bu kısıtlamaları dikkate almalıdır.

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Protokol

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Bu protokol, Augusta Üniversitesi Hayvan Bakım ve Kullanım Komitesi'nden onay aldı. Deneyin her adımında Ulusal Sağlık Enstitüleri Laboratuvar Hayvanlarının Bakımı ve Kullanımı Rehberi takip edildi. Bu çalışmada kullanılan hayvan sayısını en aza indirmek için mümkün olan tüm önlemler uygulandı. Bu çalışma için kullanılan fareler 2 aylık vahşi tip C57Bl6J'dir. Her adımı gerçekleştirmek için gereken süre ilgili adımlara dahildir.

1. Elektrotlu fiş pimlerinin hazırlanması (5 dk)

  1. 5" platin-iridyum tel ile lehimlemek için 0.003 pinli USB tip B dişi fiş pinleri kullanın. Pim ile lehimlemeden önce kaplamayı telden çıkarın. Beş pimden dördüncü pim topraklama pimidir; elektrotlara bağlamak için kullanmayın (Şekil 1A). Elektrotları bağlamak için diğer 4 pimi kullanın.
  2. Pimleri yaklaşık 45° bükün ve kabloların düzgün şekilde bağlı kaldığından ve çıkmadığından emin olmak için kabloları her bir pimin etrafına iki kez sarın (Şekil 1A).
  3. Etkili bir şekilde lehimlenebilmesi için pimin yüzeyini temizlemek için her pime biraz lehim reçine akı macunu ekleyin.
  4. Her pime küçük bir parça lehim teli ekleyin, lehim telini eritmek için bir havya kullanın ve pimi platin-iridyum tele kalıcı olarak takın (Şekil 1B-D).
    NOT: Teli tutmak için 45°'lik bir forseps kullanın ve pimin etrafına sarmak için başka bir tane kullanın. Tüm prosedürü parlak alan mikroskobu altında yapın. Sardıktan ve lehimledikten sonra kalan teli kesin ve diğer ucunu elektrotlara bağlı tutun.

2. Elektrotların implante edilmesi (30 dk)

  1. Fareyi kapalı bir odada 0,5 mL izofluranla ıslatılmış pamuk yünü ile uyuşturun ve fareyi stereotaksik sahneye monte edin. Fareyi sahneye monte etmeden önce arka bacağını sıkıştırarak ve sıkışmaya yanıt vermeyi bırakana kadar bekleyerek farenin dozunun düşük olmadığından emin olun. İzofluran/oksijen ventilatörünü burunda %1,5 v/v oranında hızlı bir şekilde başlatın.
  2. Enflamatuar yanıtları ve ağrıyı azaltmak için fareye karprofen (5 mg/kg) ve iltihabı ve beyin şişmesini azaltmak için deksametazon (0.1 mg/kg IM) enjekte edin. Anesteziklere uzun süre maruz kalmak gözleri kurutabileceğinden ve onlara zarar verebileceğinden, gözleri nemli tutmak için göz merhemi kullanın.
  3. Cildi ortaya çıkarmak için bir tüy dökücü kullanın veya kafatasının üst kısmını tıraş edin. %70 etanol ve iyot pedleri kullanarak kesi alanını temizlemek için aseptik tekniği izleyin.
  4. Bir neşter ile başın ortasında net bir tek vuruşlu kesi yapın. Elektrot implantasyon bölgesini ortaya çıkarmak için kesiğin etrafını kesin. Kasların açıkta olmadığından emin olun (Şekil 2A).
  5. %0,9 NaCl solüsyonu ile yıkayın ve yüzeyi kurulayın. Yüzeyi hidrojen peroksite batırılmış veya batırılmış pamuklu çubuklarla fırçalayın. Kemik üzerindeki kalıcı bağ dokusu bir neşter ile çıkarılabilir. Fırçaladıktan sonra en az 1 dakika bekleyin.
  6. Delmeye başlamadan önce %0,9 NaCl solüsyonu ile yıkayın ve yüzeyi kurulayın.
  7. Akrilik yapışmayı desteklemek için kafatasının yüzeyini pürüzlü hale getirmek için bir diş matkabı kullanın.
  8. Elektrot implantasyonunun yerlerini ölçün ve işaretleyin (AP: +2, -4, ML: ±1.5)20 (Şekil 2B).
  9. 1,4 mm'lik matkaplar kullanarak yüzeyi delin ve hassas tornavidalar kullanarak deliğe 4 kemik vidası (1,5 mm) yerleştirin. Delme işleminin kemikte delik açmadığından emin olun. Vidalar beyinde delik açmamalı, yüzeye temas etmelidir (Şekil 2C).
  10. Kan varsa %0,9'luk NaCl solüsyonu ile yıkayın ve kurumasını bekleyin. Gerekirse vakum kullanın.
  11. USB konektörüne bağlı kabloları vidaların her birinin etrafına 2-4 kez sarın ve kalan kabloları kesin (Şekil 2D).
  12. Her vidanın üstüne küçük bir damla süper yapıştırıcı (Loctite) damlatın ve bağlantıyı güçlendirmek için kurumasını bekleyin. Konektörün kafatasının ortasına yerleştirildiğinden ve kafatasına veya elektrotlardan herhangi birine dokunmadığından emin olun (Şekil 2E).
  13. Kafa kapağını her seferinde biraz yavaşça oluşturmak için siyanoakrilat kullanın. Kemiği ısıtabileceğinden çok kalın bir tabaka uygulamaktan kaçının. USB kablosunun takılmasına yardımcı olması için diş çimentosu kullanarak konektörün kemiğe veya hayvana temas etmeyen düz yüzeyine büyük bir vida takın (Şekil 2F).
  14. Fareyi stereotaksik aşamadan çıkarmadan önce kafa kapağının en az 2 dakika kurumasını bekleyin. Fareyi sonraki 24 saat boyunca bir ısı yastığı üzerinde gözlemleyin.
  15. Fareyi sonraki 7 gün boyunca her 12 saatte bir 5 mg/kg dozunda karprofen ile tedavi edin. Fare, akrilik arayüzde kemik büyümesini desteklemek için 2 hafta bekledikten sonra EEG kaydı için hazır olacaktır.
    NOT: Konektörü kafatasına mümkün olduğunca yakın tutmaya çalışın. Kafatasına veya kemik vidalarına temas etmediğinden emin olun. Kabloların her iki ucunun da birbirine bağlı olmadığından emin olun. Siyanoakrilatın USB konektörüne ve gözlere girmesine karşı dikkatli olun.

3. EEG kaydı (65 dk)

  1. Her farenin EEG'sini 1 saat, Pentilentetrazol (PTZ) tedavisinden 30 dakika önce ve 20 mg / Kg PTZ tedavisinden 30 dakika sonra kaydedin.
  2. USB kablosunu konektöre takın. USB kablosunu bir diferansiyel alternatif akıma bağlayın (AC) ampKazanç 10k'ye ayarlanmış ve 0.1 Hz ile 250 Hz arasında filtrelenmiş timsah klipsleri kullanarakyükseltici 21. 1000 Hz'de örnek EEG sinyali (Şekil 3).
  3. Amplifikatörden gelen çıkışları aynı anda bilgisayara kaydedin ve gerçek zamanlı izleme için bunları bir osiloskopta görüntüleyin. Amplifikatör çıkışlarını bilgisayara bağlı bir veri toplama ve sinyal koşullandırma (örn. NIDAQ) USB cihazına bağlayın (Şekil 3).
  4. EEG sinyalini kaydetmek için Python kodunu kullanın (https://github.com/schrodi159/blakelabeeg'da mevcuttur). Kod, sinyali 0,1 Hz ve 250 Hz'de dijital olarak filtreler.
    NOT: EEG'nin elektriksel parazit olmayan bir odada kaydedilmesi, veri ve kayıt kalitesini artırır.

4. Verilerin yorumlanması

  1. Verileri görselleştirmek için Python kodunu kullanın (https://github.com/schrodi159/blakelabeeg'da mevcuttur). Her kayıttan interiktal deşarjları tanımlayın (Şekil 4A).
    NOT: Dalga formu taban çizgisinin iki katıysa ve 200 ms'den daha kısa bir süreye sahipse22 ve aşağıdaki 5 kriterden en az 4'ünü takip ediyorsa interiktal deşarj düşünülmüştür - sivri uçlu di- veya trifazik dalga, arka plandan farklı süre, dalga formunun asimetrisi, arka plan aktivitesi mevcudiyet tarafından bozulur ve ardından yavaş dalga8 geldikten sonra, 20,22.

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Sonuçlar

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Elektrotlar, 5 vahşi tip C57Bl6J faresi de dahil olmak üzere C57Bl6J arka planında 20 fareye implante edildi ve ameliyat sonrası sağkalım oranı ameliyattan 6 aya kadar %85'lik bir oranla korundu (Şekil 4B). 6 ay sonra başlıklar ayrılmaya başladı ve tüm farelere 8 aylıkken ötenazi yapıldı. Konektör ve vidalar dahil olmak üzere başlık tertibatının ortalama ağırlığı 1,13 g (n = 20) idi. Fareler ameliyattan sonraki 30 dakika içinde bilinçlerini geri kazandılar v...

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Tartışma

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Bu çalışmada, serbestçe hareket eden farelerde kronik, çok bölgeli EEG kaydı için sağlam, uygun maliyetli ve minimal invaziv bir protokol geliştirdik ve doğruladık. Bir USB konektörüne lehimlenmiş vidalı elektrotların ve özel olarak üretilmiş platin-iridyum elektrotların başarılı bir şekilde implantasyonu, gözlemlenen hayatta kalma oranı ve kayıt kalitesiyle birlikte, tekniğin kronik kayıtlarda uygulanabilirliğini ve güvenilirliğini göstermektedir. Özellikle bu protokol, kapsamlı cerrahi...

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Açıklamalar

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

DTB, Alfred Mann Vakfı'nın ücretli danışmanıdır. Yazarların bu çalışma uyarınca herhangi bir rakip mali çıkarı veya başka çıkar çatışması yoktur.

Teşekkürler

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

DTB, NEI hibe R01EY036089 ve NIA hibe RF1AG060754 tarafından desteklenmektedir. XF, James Fickel Alzheimer Hastalığı Araştırma Fonu, EY028158 ve EY032488'den gelen hibelerle desteklendi.

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Malzemeler

Bu makalede kullanılan malzemelerin listesi
AdŞirketKatalog numarasıYorumlar
0.003" platin iridyum telsistemleri777000
1,5 mm Kemik vidalarAntrin Minyatür Spesiateliyeleri000-120X1/16 SL BIND MS SST
AC amplifikatör & nbsp;Sistemleri
KarprofenCovetrus11695-6935-1
Coldpac protez akrilik tabanYates Motloid Şirketihttps://www.yates-motloid.com/collections/coldpac/denture-base
Diş matkapı 1,4 mmVolvere GXYok
DeksametazonVEDCO50989-437-12
Göz kayganlaştırıcısıOptix Bakımıhttps://theoptixcare.com/
Hidrojen peroksitSigma Aldrich7722-84-1
NIDAQ USB Ulusal Enstrümanlarhttps://www.ni.com/en/shop/data-acquisition/entry-level-usb-daq.htmlVeri toplama ve sinyal koşullandırma USB 
PentilentetrazolCaymen Chemicals18682
Lehim reçine akısı macunu Wellerhttps://www.weller-tools.com/us/en/consumer/products/soldering-accessories/
Lehim teli 0.32"Radio ShackYok
Süper yapıştırıcıLoctiteYok
USB tip B dişi fişlerQM SatıcısıX00292ABU9

Kaynaklar

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
  1. Smith, S. J. EEG in the diagnosis, classification, and management of patients with epilepsy. J Neurol Neurosurg Psychiatry. 76 (Suppl 2), ii2-ii7 (2005).
  2. Buzsaki, G., Draguhn, A. Neuronal oscillations in cortical networks. Science. 304 (5679), 1926-1929 (2004).
  3. Fisher, R. S., et al. ILAE official report: A practical clinical definition of epilepsy. Epilepsia. 55 (4), 475-482 (2014).
  4. Fisher, R. S., Scharfman, H. E., deCurtis, M. How can we identify ictal and interictal abnormal activity. Adv Exp Med Biol. 813, 3-23 (2014).
  5. Vyazovskiy, V. V., Harris, K. D. Sleep and the single neuron: The role of global slow oscillations in individual cell rest. Nat Rev Neurosci. 14 (6), 443-451 (2013).
  6. Wykes, R. C., et al. Optogenetic and potassium channel gene therapy in a rodent model of focal neocortical epilepsy. Sci Transl Med. 4 (161), 161ra152(2012).
  7. Lundt, A., et al. EEG radiotelemetry in small laboratory rodents: A powerful state-of-the-art approach in neuropsychiatric, neurodegenerative, and epilepsy research. Neural Plast. 2016, 8213878(2016).
  8. Kyle, J. J., Sharma, S., Tiarks, G., Rodriguez, S., Bassuk, A. G. Fast detection and quantification of interictal spikes and seizures in a rodent model of epilepsy using an automated algorithm. Bio Protoc. 13 (6), e4632(2023).
  9. Petrucci, A. N., et al. Post-ictal generalized EEG suppression is reduced by enhancing dorsal raphe serotonergic neurotransmission. Neuroscience. 453, 206-221 (2021).
  10. Colgin, L. L. Oscillations and hippocampal-prefrontal synchrony. Curr Opin Neurobiol. 21 (3), 467-474 (2011).
  11. Amat-Foraster, M., et al. Temporally dissociable effects of ketamine on neuronal discharge and gamma oscillations in rat thalamo-cortical networks. Neuropharmacology. 137, 13-23 (2018).
  12. Sun, G., et al. Closed-loop stimulation using a multiregion brain-machine interface has analgesic effects in rodents. Sci Transl Med. 14 (651), eabm5868(2022).
  13. Kang, W., et al. Closed-loop direct control of seizure focus in a rodent model of temporal lobe epilepsy via localized electric fields applied sequentially. Nat Commun. 13 (1), 7805(2022).
  14. Armstrong, C., Krook-Magnuson, E., Oijala, M., Soltesz, I. Closed-loop optogenetic intervention in mice. Nat Protoc. 8 (8), 1475-1493 (2013).
  15. Maheshwari, A. Rodent EEG: Expanding the spectrum of analysis. Epilepsy Curr. 20 (3), 149-153 (2020).
  16. Ahuis, T. P., et al. Evaluation of variation in preclinical electroencephalographic spectral power across multiple laboratories and experiments: An EQIPD study. PLoS One. 19 (10), e0309521(2024).
  17. Papazoglou, A., et al. Non-restraining EEG radiotelemetry: Epidural and deep intracerebral stereotaxic EEG electrode placement. J Vis Exp. (112), e54216(2016).
  18. Kadam, S. D., et al. Methodological standards and interpretation of video-electroencephalography in adult control rodents: A TASK1-WG1 report of the AES/ILAE Translational Task Force of the ILAE. Epilepsia. 58 (Suppl 4), 10-27 (2017).
  19. Zayachkivsky, A., Lehmkuhle, M. J., Dudek, F. E. Long-term continuous EEG monitoring in small rodent models of human disease using the Epoch wireless transmitter system. J Vis Exp. (101), e52554(2015).
  20. Kent, B. A., Strittmatter, S. M., Nygaard, H. B. Sleep and EEG power spectral analysis in three transgenic mouse models of Alzheimer's disease APP/PS1, 3xTgAD, and Tg2576. J Alzheimers Dis. 64 (4), 1325-1336 (2018).
  21. Luttjohann, A., Schoffelen, J. M., van Luijtelaar, G. Peri-ictal network dynamics of spike-wave discharges: Phase and spectral characteristics. Exp Neurol. 239, 235-247 (2013).
  22. Oblak, A. L., et al. Comprehensive evaluation of the 5XFAD mouse model for preclinical testing applications: A MODEL-AD study. Front Aging Neurosci. 13, 713726(2021).
  23. Osanai, H., Kitamura, T., Yamamoto, J. Hybrid microdrive system with recoverable opto-silicon probe and tetrode for dual-site high density recording in freely moving mice. J Vis Exp. (150), e60028(2019).
  24. Schroder, T., et al. The DREAM implant: A lightweight, modular, and cost-effective implant system for chronic electrophysiology in head-fixed and freely behaving mice. J Vis Exp. (209), e66867(2024).

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Yeniden basım ve izinler

Bu JoVE makalesinin metnini veya şekillerini yeniden kullanmak için izin iste

İzin iste

Etiketler

Fare EEG KaydKronik EEGok Noktal EEGElektrot mplantasyonuPlatin ridyum ElektrotlarKemik Vida ElektrotlarDiferansiyel Amplifikat rPentilentetrazol N bet ModeliUzun S reli N ral zleme

İlgili makaleler