1. Sentetik cilt örneklerinin hazırlanması
Kolajen bazlı sentetik cilt modeli (VITRO-Skin) bir levha, aseptik koşullarda biyogüvenlik kabininde 5,0 cm × 2,5 cm ölçüsünde dikdörtgen parçalar halinde kesildi. Her örnek steril bir Petri kabına konur ve kullanılana kadar 4 °C sıcaklıkta saklanırdı. Aşılamadan önce, örnekler oda sıcaklığında dengelenerek üreticinin talimatlarına göre insan derisinin nemlendirme seviyesini taklit etmek için nem odasında nemlendirildi.
2. Mikrobiyal kültürlerin hazırlanması
Amerikan Tip Kültürü Koleksiyonu (ATCC) referans suşları; bunlar arasında Staphylococcus aureus (ATCC 25923), Escherichia coli (ATCC 25922), Enterobacter aerogenes (ATCC 13048), Pseudomonas aeruginosa (ATCC 27853), Acinetobacter baumannii (ATCC 19606), Klebsiella pneumoniae (ATCC 13883) ve Candida albicans bulunur (ATCC 10231) kullanıldı. Tek koloniler, aseptik koşullarda 5 mL Triptik Soya Suyu (TSB) içine aşılandı. Bakteriyel kültürler 35 °C'de 24 saat kuluçka, mantar kültürleri ise 5 gün boyunca 22 °C'de kuluçka edildi. İnkubasyon sonrası, antimikrobiyal testler için steril Fosfat Tamponlu Salin (PBS) kullanılarak bulanıklık 0,5 McFarland Standardı (yaklaşık 1,5 × 10⁸ CFU/mL) olarak ayarlandı.
3. Sentetik cilt modellerinin aşılanması
Her nemlendirilmiş sentetik cilt bölümü 100 μL mikrobiyal süspansiyon ile aşılandı ve steril tek kullanımlık yayıcı kullanılarak eşit şekilde yayıldı. Aşılanan yüzeyler, ortam laboratuvar koşullarında (22-24 °C, %60-70 RH) steril bir odada 15 dakika boyunca hava kurutuldu. Örnekler üç gruba ayrıldı: işlenmemiş kontrol (Grup A), ışık kaynağı (mavi ışık LED, 405 nm), radyasyon (Grup B) ve UV-C LED (265 nm) ışınlama (Grup C). Şekil 1, sentetik cilt modeli kullanılarak ışık kaynağının antimikrobiyal etkinliğinin değerlendirilmesiyle yapılan deneylerin şematik temsilini göstermektedir.
4. Işık kaynağı konfigürasyonu ve radyasyon
405 nm mavi ışık LED cihazı, ısı birikmesini önlemek ve sentetik cilt örneklerinin termal olarak güvenli ışınlanmasını sağlamak için alüminyum ısı alıcıya monte edilmiştir (Şekil 2). Aşınma, kalibre edilmiş optik güç ölçer kullanılarak tam işlem düzleminde ölçüldü ve prob yüksekliği sensör kalınlığına göre ayarlandı. Çalışma ışılma, LED'in fırlatma mesafesi ayarlanarak 30 mW/cm² olarak standartlaştırıldı.
Arıtma alanı boyunca aydınlatma düzeni, 16 eşit aralıklı noktada ışınlanma ölçülerek doğrulandı ve ortalama 30,14 ± 0,78 mW/cm² elde edildi (Şekil 3). Mikrobisit etkilerin temel karşılaştırması için, UV-C tedavileri 265 nm LED kaynağı kullanılarak 20 cm mesafede 2 dakika boyunca 3 mW/cm² sağladı.
Akıcılık, ışık × pozlama süresi olarak hesaplanmış ve mavi ışık için 27 J/cm² (30 mW/cm² × 900 s) ile UV-C için 3,6 J/cm² olarak karşılık gelmiştir.
Antimikrobiyal testler için, mikrobiyal süspansiyonlarla aşılanmış nemlendirilmiş sentetik cilt örnekleri, steril Petri kaplarına (kapakları çıkarılmış) aseptik olarak yerleştirilir ve doğrudan mavi ışık LED'inin altına yerleştirilirdi. Aşıtlama grubuna (Grup B) atanan örnekler, hedef akıcılığa ulaşılana kadar (15 dakika) sürekli maruz bırakıldı. 15 dakikalık maruziyet süresi (27 J/cm²), türler arasında tutarlı antimikrobiyal etkinlik gösteren ve potansiyel klinik veya bakım noktası uygulamaları için pratik bir maruziyet süresi temsil eden ön zaman öldürme deneylerine dayanarak seçildi. Her örnek numunesinin sıcaklığı, aydınlatma sırasında önemli bir ısınma olmadığı doğrulanmak için temassız bir kızılötesi termometre kullanılarak her 5 dakikada bir izlendi. Sıcaklık izleme, mavi ışık ışını sırasında yüzey sıcaklığında (>2 °C) ölçülebilir bir artış göstermemiştir ve gözlemlenen antimikrobiyal etkilerin termal olmadığını doğrulamıştır.
5. Mavi ışık LED ve UV-C'nin yara patojenlerine karşı antimikrobiyal etkinliği
Tedaviden sonra, her sentetik cilt örneği 9.0 mL PBS (pH 7.4) içeren steril 15 mL tüplere aktarıldı. Tüpler, yüzeye yapışan mikropları yerinden çıkarmak için 1 dakika boyunca nazikçe girdap tutuldu. Seri on katlı seyreltmeler hazırlandı ve bakteriler için Tryptic Soy Agar (TSA) ile mantar için Sabouraud Dextrose Agar (SDA) üzerine 100 μL aliquot kaplama yapıldı. Plakalar kuluçka (bakteriler 35 °C'de 24 saat; mantarlar 22 °C'de 5 gün) ve koloni oluşturan birimler (CFU) sayıldı. Mikrobiyal indirgeme aşağıdaki denklemlerle nicelendirilmiştir:
Log Indirgeme = log10(A) - log10(B)
Yüzde Azalma = ((A - B)/A) × 100
Burada A = kontrolden CFU sayımı; B = İşlenmiş örneklerden CFU sayısı.
Negatif kontroller, sterilliği doğrulamak için sadece medya plakaları ve PBS'den oluşurken, tedavi edilmemiş aşılanmış numuneler tedavi etkinliğini karşılaştırmak için kullanıldı. Pozitif kontrol plakaları, kültür uygulanabilirliğini doğrulamak için aşılanmış ATCC mikrobiyal süspansiyonlarından oluşuyordu. Tüm deneysel adımlar aseptik koşullarda gerçekleştirildi.
6. Mavi ışık ışınının zamana bağlı antimikrobiyal etkinliği
Akıcılığa bağlı etkiyi değerlendirmek için mavi ışığa maruz kalma süreleri 2 dakika, 5 dakika, 10 dakika, 15 dakika, 20 dakika ve 30 dakika olarak ayarlandı. Antimikrobiyal aktivite yukarıdaki gibi CFU sayımıyla değerlendirildi ve doz bağımlı ilişkilerin analizine olanak sağladı.
7. Aerosol bir odada mavi ışık LED etkinliği, nozokomial koşulları simüle ediyor
Kontrollü çevresel koşullarda, nozokomial hava maruziyetini simüle etmek için özelleştirilmiş akrilik aerosol odası kullanılmıştır (Şekil 4). Aerosol mikrobiyal süspansiyonlar (~1.5 x 106 CFU/mL) bir nebulizator kullanılarak tanıtıldı ve sentetik cilt örnekleri 30 dakika boyunca maruz kaldı. Mavi ışık, pozlama boyunca (10 μW/cm², 20 cm mesafe) swatche'lere yönlendirildi. Kontrol deneyinde aynı poz koşulları uygulandı, ancak BL-LED cihazı kapalı kaldı. Aerosol odasındaki mikrobiyal hücre yoğunlukları, agar plakalarının maruziyetten önce odanın içine yerleştirildiği fall-out aktivite ölçümleriyle izlendi. Sentetik cilt örneklerine (2 cm x 2 cm) yapışan canlı mikrobiyal hücreler, yukarıda açıklandığı gibi standart plaka sayısı analiziyle nicelendirilmiştir. Bu düşük ışıklandırma (10 μW/cm²), sürekli yüksek yoğunluklu radyasyonun mümkün olmadığı sağlık ortamlarındaki gerçek ortam aydınlatma koşullarını taklit etmek için seçilmiştir.
8. Optik iletim ve gömülü koloni testi
- Sentetik cilt alt tabakası üzerinden optik iletim
Sentetik deriden mavi ışığın nüfuzunu nicelikle ölçmek için, ışıklandırma, tedavi düzleminde konumlandırılmış kalibre edilmiş optik güç ölçer kullanılarak ölçüldü. BL yoğunluğu (405 nm, 30 mW/cm²), LED ile dedektör arasına yatay olarak yerleştirilmiş nemlendirilmiş sentetik cilt örnekleriyle ve bunsuz kaydedildi. Bulaşma (%) iletim ışıklandırma (cilt ile) ile gelen ışıklandırma (deri yok) oranı olarak hesaplandı.
Sulu koşullarda iletim UV-Viz spektrofotometre kullanılarak değerlendirildi. Nemlendirilmiş sentetik bir cilt şeridi, deionize su ile doldurulmuş standart polistiren küvete dikey olarak yerleştirildi. Sadece suyla dolu küvet bile boşluk olarak kullanılıyordu. 405 nm'de absorbans kaydedildi ve %T = 10(-A) × 100 kullanılarak yüzde iletim hesaplandı.
- Gömülü koloni testi kullanarak fonksiyonel doğrulama
Yüzey ve gömülü koloni mikrobiyal indirgeme testleri, iletimin fonksiyonel korelatı olarak yapıldı; burada örnekler bir yüzeye aşılandı, ancak karşı (alt) taraftan ışınlanarak deri yüzeyinin altında bulunan mikropları simüle etti. CFU'lar, yukarıda antimikrobiyal etkinlik bölümünde tanımlandığı şekilde nicele edilmiştir.
9. Mavi ışık ve UV-C maruziyeti sonrası sentetik cilt bozulması için FT-IR spektroskopisi
Işığa maruz kalma nedeniyle kolajen bazlı sentetik cilt matriksinde olası kimyasal ve yapısal değişiklikleri değerlendirmek için Fourier Dönüşümü Kızılötesi (FT-IR) spektroskopisi gerçekleştirildi. Sentetik cilt örnekleri (2 cm × 2 cm), üretici talimatlarına uygun olarak nemlendirilmiş, mikrobiyal indirgeme testlerinde kullanılan numunelerle aynı. Hidratlı örnekler, ya 405 nm mavi ışığa (30 mW/cm²) ya da 265 nm UV-C (3 mW/cm²) 15 dakika (standart maruziyet, 27 J/cm²) veya 60 dakika (en kötü durum stres durumu) maruz bırakıldı. Aşıtmadan sonra, örnekler yüzey nemini gidermek için nazikçe silindi ve hemen FT-IR ile analiz edildi.
10. ATR-FTIR ölçümü
Spektrumlar, uyumlu bir analiz yazılımıyla donatılmış bir IR spektrofotometre kullanılarak elde edildi. Tüm örnekler, Zayıflatılmış Toplam Yansıtma (ATR) iD7 modülü kullanılarak analiz edildi. Işlanmaya bağlı spektral değişiklikleri izole etmek için (1) Tedavi edilmemiş kontroller ile radyasyonlu örnekler arasında doğrudan spektral karşılaştırma yapıldı. (2) Temelden çıkarılan karşılaştırmalar, işlenmemiş kontrol örnek örnek olarak arka plan referansı olarak kullanılarak radyasyonlu örnekler taranmadan önce yapıldı ve yalnızca yeni veya değiştirilmiş zirvelerin görselleştirilmesine izin verildi.
Bu çift yaklaşım, topografik gürültüyü azaltır ve amid ile parmak izi bölgelerindeki ince değişikliklerin algılanmasını iyileştirir. Tüm örneklerde hidrasyon seviyesi, örnek kalınlığı ve yönelim, spektral değişkenliği azaltmak için standartlaştırıldı. Her pozlama durumu (kontrol, BL-15 dakika, BL-60 dakika, UV-15 dakika, UV-60 dakika) üç kez tarandı.
11. İstatistiksel analiz
Tüm deneyler, aksi belirtilmedikçe bağımsız biyolojik üçlükler kullanılarak gerçekleştirilmiştir. Veriler, şekil açıklamalarında belirtildiği gibi ortalama ± standart sapma (SD) veya %95 güven aralıkları (CI) ile ortalama olarak sunulur. Veri dağılımının normalliği Shapiro-Wilk testi kullanılarak değerlendirildi. İki grup arasında çift karşılaştırmalar (örneğin, mavi ışık ile UV-C, yüzey ve gömülü koloniler) eşleşmemiş iki kuyruklu Öğrenci t-testleri kullanılarak yapıldı. İkiden fazla koşul veya zaman noktası içeren karşılaştırmalar için, tek yönlü varyans analizi (ANOVA) ve ardından uygun sonradan test uygulandı. Her karşılaştırma için kullanılan özel istatistiksel test, ilgili şekil efsanesinde belirtilmiştir. P-değeri <0.05 istatistiksel olarak anlamlı olarak kabul edildi.