Tüm hayvan prosedürleri kurumsal yönergelere uygun olarak yürütüldü ve Nanjing Çin Tıp Üniversitesi Hayvan Etik Komitesi tarafından onaylandı (Etik Onay No. 202108A006). Hücre kültürü ve boyama işlemleri sırasında oluşan tüm atıklar, kapalı kaplar ve biyolojik tehlike torbalarında toplanıp lisanslı bir tıbbi atık yönetim servisi tarafından bertaraf edilmiştir.
Hayvan modeli ve terapötik müdahaleler
Bireyler arası varyasyonu en aza indirmek için, 40 fare rastgele olarak beş gruba (n = 8 grup başına yerleştirildi) ve aşağıdaki müdahalelere tabi tutuldu: (1) Kontrol grubu: Fare başına 0,2 mL salin intragastrik verildi; (2) Model grubu: Günlük deri altı D-galaktoz (250 mg/kg) enjeksiyonları alındı, fare başına 0,2 mL 25 mg/mL çözelti olarak verildi; (3) Düşük dozlu CCP grubu: D-galaktoz enjeksiyonları ve CCP'nin intragastrik uygulaması ile 50 mg/kg (fare başına 0,2 mL 5 mg/mL çözelti olarak) alındı; (4) Yüksek dozlu CCP grubu: D-galaktoz enjeksiyonları ve CCP'nin intragastrik uygulaması ile birlikte 100 mg/kg (fare başına 0,2 mL 10 mg/mL çözelti olarak) alındı; (5) E vitamini grubu: D-galaktoz enjeksiyonları ve 100 mg/kg (fare başına 0,2 mL 10 mg/mL çözelti olarak 10 mg/mL çözeltisi) intragastrik E verilmesiyle birleştirildi. 8 haftalık tedavinin ardından fareler ötenazi edildi ve sonraki analizler için serum, idrar ve böbrek dokusu örnekleri alındı.
Böbrek fonksiyonu analizi
Böbrek fonksiyonu, üreticilerin talimatlarına göre kreatinin (ürik asit) ve idrar proteini ölçmek için ticari test kitleri kullanılarak değerlendirildi. Absorbans değerleri kreatinin için 505 nm, ürik asit için 510 nm ve idrar protein için 585 nm olarak çok fonksiyonlu mikroplaka okuyucu kullanılarak ölçüldü.
Doku kesitleri boyama
Parafinle gömülü böbrek dokuları 4 μm kalınlıkta kesitlenmiştir. Bölümler deparafinize edildi, hematoksilin ile 5 dakika kuluçka içinde kullanıldı, akan suyla durulandı, %1 asit alkol ile 5 saniye boyunca farklılaştırıldı ve bir kez daha durulandı. 1 dakikalık fosfat-tamponlu tuzlu (PBS) yıkamadan sonra, bölümler 3 dakika boyunca eosin ile karşı boyandı, kurutuldu ve monte edildi. Masson'ın trikrom boyamasında, bölümler yukarıda tarif edildiği gibi deparafinize edilip hematoksilin ile boyandı, ardından 5 dakika Ponceau S ve 5 dakika anilin mavisi uygulandı. Bölümler daha sonra susuz bırakıldı ve monte edildi.
Hücre canlılık testi
HK-2 hücreleri, her kuyu başına 1 × 10⁵ hücre bulunan 12 delikli plakalara tohumlanmıştır. D-galaktoz ve Cordyceps polisakkaritlerine 24 saat maruz kaldıktan sonra, her14 kuyuya %10 CCK-8 çözeltisi eklendi. 37 °C'de 30 dakika kuluçkadan sonra, mikroplaka okuyucu kullanılarak 450 nm'de soğukkanlık kaydedildi. Cordyceps polisakkaridleri için kalite kontrol dokümantasyonu ve HK-2 hücrelerinin STR doğrulaması Ek Dosya 1'de sağlanmıştır.
Ters transkripsiyon niceliksel polimeraz zincir reaksiyonu
24 saat hücre kültüründen sonra kültür ortamı çıkarıldı ve toplam RNA ekstraksiyon reaktifiyle çıkarıldı. RNA konsantrasyonu mikroplaka spektrofotometresi kullanılarak belirlendi ve RNA bütünlüğü %2 agaroz jel elektroforezi ile doğrulandı. Genomik DNA çıkarıldı ve cDNA ters transkripsiyonla sentezlendi. Astar dizileri, Materyaller Tablosu'nda listelenmiştir.
Hücre içi ROS seviyelerinin ölçümü
HK-2 hücreleri, her kuyu başına 1 × 10⁵ hücre bulunan 12 delikli plakalara tohumlanmıştır. %60-70 birleşime ulaşıldığında, hücreler 12 saat boyunca D-galaktoz ile ön tedavi gördü. 24 saat ilaç maruziyetinden sonra, ortam atıldı ve hücreler bir kez PBS ile durulandı. Hücre içi ROS, 37 °C'de 20 dakika boyunca ROS'a duyarlı floresan probla inkubasyon yoluyla tespit edildi ve floresan görüntüleri 488/525 nm15 uyarılma/emisyon dalga boylarında çekildi.
Western Blot
Hücresel proteinler RIPA tamponu kullanılarak lizize edildi ve 13.000 × g sıcaklıkta 4 °C'de 15 dakika boyunca santrifüjle aranşaldı. Proteinler 10 dakika kaynatarak denatüre edildi ve eşit miktarda protein (örnek başına 20 μg) elektroforetik ayrıma ile geçirilerek PVDF membranlarına aktarıldı. 1 saat bloklamadan sonra, membranlar primer antikorlarla gece boyunca kuluçka edildi. Sonraki PBST yıkamalarının ardından HRP ile konjuge ikincil antikorlarla kuluçka yapıldı ve tespit artırılmış kemilyüminsans (ECL)substratı 16 kullanılarak gerçekleştirildi. Antikor detayları ve reaktif tanımlayıcıları Malzeme Tablosu'nda listelenmiştir.
SA-β-gal yaşlanma boyama
HK-2 hücreleri, 12 delikli plakalarda 1 × 10⁵ hücre yoğunluğunda kaplanmıştır. Hücreler %60-70 birleşime ulaştığında, 12 saat boyunca D-galaktoz ile önceden işlendiler. Üretici protokolüne göre SA-β-gal boyama yapıldı ve boyalı hücreler optik mikroskop17 kullanılarak gözlemlendi.
Mitokondriyal zar potansiyelinin ölçümü
Mitokondriyal zar potansiyeli, tedarikçinin talimatlarına uygun olarak JC-1 floresan prob kullanılarak değerlendirildi. JC-1 monomerleri 490/530 nm uyarılma/emisyon dalga boylarında tespit edilirken, JC-1 agregaları 525/590 nm aralığında tespit edildi. Görüntüler, net kırmızı veya yeşil floresan sinyalleri gözlemlendiğinde alındı.
İstatistiksel analiz
Veriler çubuk veya nokta grafikleri olarak sunulmuş ve referans edilen yazılım kullanılarak analiz edilmiştir. Western blot bandı yoğunlukları ImageJ kullanılarak nicele edildi. Veriler, gruplar arası karşılaştırmalar için varyans analizi (ANOVA) ve ardından t-testleriyle analiz edildi. İstatistiksel anlamlılık, P değeri < 0.05 olarak tanımlandı. Semboller, kontrol grubu (*) veya D-gal grubu (#) ile karşılaştırmaları gösterir (*P < 0.05, **P < 0.01, ***P < 0.001).