Tüm çalışmalar Xuzhou Tıp Üniversitesi Kurumsal Hayvan Bakımı ve Tedavi Komitesi tarafından onaylandı. Reaktifler ve kullanılan ekipmanlar Malzeme Tablosu'nda listelenmiştir.
1. Hayvan modeli
250–300 g ağırlığında yetişkin erkek ve dişi Sprague-Dawley (SD) fareleri Xuzhou Tıp Üniversitesi Deneysel Hayvan Merkezi'nden satın alındı. Fareler özel patojensiz bir odada yetiştirildi. Tedavi, bakım ve son nokta seçimi dahil olmak üzere hayvan deneysel prosedürleri, "Hayvan Araştırmaları: Canlı Deneylerin Raporlanması" yönergelerine uygun şekilde yürütülmüştür. Hayvan deneyleri rastgele yapıldı. SD fareleri dört gruba ayrıldı (n = her grup başına 8): Normal grup (ameliyatsız, normal beslenme) (Normal grup), Sham grubu (sahte cerrahi: ön çapraz bağ kesimi olmadan cilt ve kas kesisi [ACLT], ardından salin gavaja), KOA/NC grubu (ACLT ameliyatı+salin gavaja), KOA/OST grubu (ACLT ameliyatı+OST garaj). Fare dizinin KOA modeli, daha önce açıklandığı gibi ön çapraz bağ kesimi (ACLT) yöntemiyleoluşturulmuştur 29. Salin grubuna gavaj yoluyla tuzlu su verildi, OST grubuna ise 4 hafta boyunca gavaj yoluyla OST verildi. OST dozu vücut ağırlığı 50 mg/kg (PEG 400 içinde çözünür ve fizyolojik salinle seyreltir), Rats alt bölümünde ise 4 hafta boyunca günde bir kez uygulanır. Daha sonra, sıçanlar analiz için ötenazi edildi (kurumsal onaylı protokollere doğru). Dokular ya hemen sıvı azotta dondurulur ya da %4 paraformaldehit ile sabitlenirdi.
2. Hücre kültürü
İnsan kondrosit hücre hattı (C28/I2), Amerikan Tip Kültürü Koleksiyonu'ndan (ATCC, Manassas, VA) alınmıştır. Hücreler ATCC yönergelerine göre kültürlendi ve 6 ay içinde kullanıldı.
Kültür koşulları: %10 fetal sığır serumu ve %1 penisillin-streptomisin takviyeli DMEM/F-12 ortamı, %5CO2 nemlendirilmiş kuluçka içinde 37 °C'de inkübe edilmiş.
Tedaviler: Hücreler 1 ×10 6 hücre/kuyu aralığında 6 kuyu plakalarında tohumlanmıştı; 24 saat yapışma sonrası sadece LPS (1 μg/mL) veya OST (100 μM) ile 24 saat tedavi edildi.
3. Hücre yaşamlılığı için testler
Kondrosit hücreleri, 96 kuyu plakalarında farklı konsantrasyonlarda OST veya LPS ile birlikte kübe edildi. CCK8 testi, mikroplaka okuyucu kullanarak emilimi (OD450 nm) tespit ederek hücre canlılığını yansıtır; daha yüksek OD değerleri daha canlı hücreleri gösterir.
OST konsantrasyon gradyantı: 0, 25, 50, 100, 200, 400 μM (24 saat kuluçka içinde). CCK8 testi, tüm konsantrasyonlarda %>90 hücre canlılığı gösterdi ve bileşiğin toksik olmadığını doğruladı.
LPS konsantrasyon gradyantı: 0, 0.1, 0.5, 1, 2 μg/mL (24 saat kuluçka içinde). 1 μg/mL LPS grubu hücre canlılığı %%50'ye sahipti (Ctrl grubuna kıyasla), bu yüzden sonraki deneyler için bu konsantrasyon seçildi.
4. Hematoksilin ve eozin (H&E) boyama ile Safanin O boyama
Dokular parafinle gömülüp, mumdan arındırıldı, yeniden nemlendirildi ve üreticinin talimatlarına göre H&E ile Safranin O/Fast Green reaktifleriyle boyandı. Boyama koşulları: AO çalışma konsantrasyonu 1 μg/mL; hücreler 37 °C'de karanlıkta 5 dakika kuluçka altına alındı.
Nicel yöntem: AVO pozitiflik oranı, ImageJ yazılımı kullanılarak her örneklemde 5 rastgele alanda (×400 büyütme) turuncu nokta içeren hücreler sayılır hesaplandı. Daha sonra, bölümler BX43 mikroskobu altında (büyütme ×400) görüntülendi.
5. Akış sitometrisi
Hücreler apoptoz analizi için Annexin-V FITC/PI çözeltisinde toplanıp yeniden süspansiyon edildi. Kuluçka koşulları: Hücreler, Annexin-V FITC/PI çözeltisinde (KeyGEN) 1 ×10 6 hücre/mL olarak yeniden süspansiyona getirildi ve oda sıcaklığında karanlıkta 15 dakika kuluçka edildi.
Kapı stratejisi: İleri dağılma (FSC ) vs. yan saçılma (SSC) kapıları hücre kalıntısını dışlamak için kullanıldı; Annexin-V FITC⁺/PI⁻ hücreleri erken apoptotik olarak, Annexin-V FITC⁺/PI⁺ hücreleri ise geç apoptotik olarak tanımlanmıştır. Kapı grafiki, Ek Dosya 1'e (ham akış sitometri verileri) dahil edilmiştir. Hücreler bir akış sitometresi ile toplandı. Veriler Flow Jo yazılımı kullanılarak analiz edildi.
6. Plazmidlerin transfeksiyonu ve taklit
MiR-34a taklitleri (34a-taklit), spesifik olmayan kontrol-taklit (NC) ticari bir kaynaktan elde edilmiştir. Hücreler, üreticinin talimatlarına göre LipofectamineTM 3000 kullanılarak plazmidlerle transfekte edildi.
7. Keskin turuncu lekelenme
Otofaji genellikle hücrelerde Acridine turuncu boyama ile değerlendirilirdi. Hücreler 24 saat boyunca belirli konsantrasyonlarda LPS veya OST ile tedavi edildikten sonra, 37 °C'de AO (1 μg/mL) ile karanlıkta 5 dakika boyunca kuluçka altına alındılar. Görüntüler lazer konfokal mikroskop kullanılarak çekildi. AVO pozitiflik oranı, ImageJ yazılımı kullanılarak her örneklemde 5 rastgele alanda (×400 büyütme) turuncu nokta içeren hücreler sayılırken hesaplandı. Veriler, üç bağımsız deneyden ortalama ± SD olarak rapor edilmiştir.
8. Geçirim elektron mikroskobu gözlemi
Örnekler %2,5 glutaraldehit ve %1 osmiyum tetrooksit ile sabitlendi, ardından kurutuldu, durulandı ve emdirildi. Polimerizasyondan sonra, örnekler ultramikrotom kullanılarak 70 nm kalınlığında kesimlere ayrıldı. Hücrelerin ultrayapısı iletim elektron mikroskopisiyle gözlemlendi.
9. İmmunoblotasyon
Bcl-2'ye karşı fare monoklonal antikor (Abs) (#68103), LC3'e karşı tavşan poliklonal antikor (#14600-1-AP), IL-6 (21865-1-AP) ve β-Aktine karşı fare monoklonal antikoru (#66009-1-lg) Proteintech'ten satın alındı. IRDye 800CW Keçi (poliklonal) anti-Tavşan IgG (H+L) veya IRDye 800CW Keçi (poliklonal) anti-Fare IgG (H+L) ile konjuge edilmiş ikincil abs'lar ticari olarak elde edilmiştir. Hücreler, SDS-poliakrilamid jel elektroforezi üzerinde elektroforez ile ayrılan tam hücre liz testinde lizize edildi. Proteinler birincil Abs ve karşılık gelen ikincil Abs kullanılarak tespit edildi. Protein yükü şerit başına 30 μg idi; birincil antikor sulandırmaları: Bcl-2 (1:1000), LC3 (1:1500), β-tubulin (1:5000); ikincil antikorlar (IRDye 800CW) 1:10.000 oranında, IL-6 (1:800) olarak kullanıldı. Daha sonra, protein bantları geliştirilmiş kemilyüminesans lazer görüntüleme tarama sistemi ile yakalanmıştır. Protein bantları ImageJ yazılımı tarafından nicelendirildi.
10. Nicel Gerçek Zamanlı Polimeraz Zincir Reaksiyonu (qRT-PCR)
Hücrelerden toplam RNA'lar Trizol reaktifi kullanılarak izole edildi. Toplam RNA'lardan türetilen cDNA'lar, cDNA regent kiti kullanılarak sentezlendi ve SYBR Green yöntemleriyle analiz edildi. miRNA'lardan türetilen cDNA'lar, miRcute ve miRNA birinci zincirli cDNA kiti kullanılarak sentezlendi ve miRcute plus miRNA qPCR kiti ile analiz edildi. Tüm prosedürler üreticinin protokolüne göre gerçekleştirildi. Hedef transkriptin ifadesi 2-△△CT yöntemiyle hesaplandı. GADPH ve U6, sırasıyla mRNA ve miRNA için yükleme kontrolü olarak kullanıldı. Primer dizisi Tablo 1'de listelenmiştir.
11. Luciferase muhabir testleri
Vahşi tip psiCHECK2-Bcl-2-3′UTR raporlayıcı plazmidi (WT) ve psiCHECK2- Bcl-2-3′UTR raporlayıcı plazmidi miR-34a bağlanma bölgesinde mutantla birlikte (Mut). Raporörler ve miR-34a taklitçisi, LipofectamineTM 3000 kullanılarak kondrosit hücrelerine birlikte transfekte edildi. Hücreler 24 saatlik transfeksiyondan sonra toplanıp lizediliyordu. Luciferase yoğunluğu, üreticinin talimatlarına göre Dual-LumiTM Luciferase Reporter Gen Assay kiti kullanılarak ölçüldü.
12. Yürüyüş analizi testleri
MGT-PR sistemi, her gruptaki farelerin koşan uzuv hareketlerini gözlemlemek için kullanıldı. Testlerden önce, farelerin pist ortamına uyum sağlamalarına izin verildi. Serbest yürüyüş sırasında yürüyüş verileri kaydedildi ve her sıçan için ardışık üç geçerli yürüme denemesi kaydedildi. Analiz edilen parametreler arasında adım uzunluğu, sallanma süresi ve sağ ile sol arka uzuvlar arasındaki koordinasyon yer alıyordu.
13. İstatistiksel analiz
Deneyler üçlü olarak yapıldı ve bağımsız olarak en az üç kez tekrarlandı. İstatistiksel analizler GraphPad Prism 9 yazılımı kullanılarak gerçekleştirilmiştir. Veriler ortalama ± SD olarak gösterildi. İstatistiksel farklılıklar, çoklu karşılaştırmalar için tek yönlü ANOVA (Tukey's post hoc testi) ile veya iki deneysel grup karşılaştırması için iki kuyruklu Student's t testi ile değerlendirildi. Farklar p 0.05