Veri edinimi ve ön işleme
Bu çalışmada analiz edilen tüm veriler, Materyaller Tablosu'nda listelenen halka açık TCGA veritabanından elde edilmiştir. Bu çalışma, Ulusal Sağlık Enstitüleri (NIH) Genomik Veri Paylaşım Politikası ve TCGA tarafından sağlanan yayın yönergelerine sıkı sıkıya bağlı kalmıştır. Veri setleri, kimliği silinmiş, kamuya açık klinik ve çoklu omik verilerden oluştuğu için, bu çalışma ek Kurumsal İnceleme Kurulu (IRB) onayı dışında tutuldu. LUSC için transkriptom verileri ve ilgili klinik bilgiler Kanser Genomu Atlası (TCGA) veritabanından indirildi. Başlangıçta kohort 551 örnekten oluşuyordu (502 tümör ve 49 normal). Bu prognostik modelin sağlamlığını sağlamak için, tam genel sağkalma (OS) verileri, sağlık durumu veya temel klinik özellikleri olmayan hastalar sonraki sağkalma analizinden dışlandı. Bu sıkı filtreleme sürecinin ardından, 470 LUSC hastasından oluşan son bir analitik kohort oluşturuldu. Bu 470 hasta, risk modeli oluşturma ve doğrulama için rastgele bir eğitim seti (n = 235) ve test seti (n = 235) olarak ayrıldı. GeneCards veritabanı üzerinden toplam 792 oksidatif stresle ilgili gen, Materyaller Tablosu'nda listelenen ve dahil etme kriteri ≥ 7 olan bir alaka puanı kullanılarak toplanmıştır. Limma paketi (sürüm 3.66.0), farklı ekspresyel oksidatif stres genlerini taramak için kullanıldı. Volkan haritaları ggplot2 paketi (sürüm 4.0.2) kullanılarak üretilmiştir. Eğitim grubu ile test grubu arasında klinik özelliklerde kayda değer bir farklılık yoktu (p > 0.05). Eğitim seti model yapımı için kullanıldı ve test seti iç doğrulama için kullanıldı.
Risk modelinin inşası ve doğrulanması
Oksidatif stresle ilişkili lncRNA'ları belirlemek için Pearson ortak ekspresyon analizi yapıldı. Yazarlar, TCGA-LUSC veri setindeki farklı olarak ifade edilen oksidatif stresle ilişkili genlerin ifade profilleri ile tüm notasyonlu lncRNA'lar arasındaki korelasyonu değerlendirdi. Birlikte eksprese edilen lncRNA'ların seçilmesi için korelasyon kriterleri, korelasyon katsayısı |R| > 0.4 ve p-değeri < 0.001. Bu eşiklere dayanarak, toplamda 6.088 aday oksidatif stresle ilgili lncRNA türetilip çıkarıldı. Daha sonra, bu 6.088 aday lncRNA LASSO regresyonu ve tamamlayıcı analitik yaklaşımlarla değerlendirilerek prognostik risk modeli oluşturuldu. İşlenen veriler kullanılarak hasta katılımcılar yüksek ve düşük riskli katmanlara ayrıldı.
Bağımsız faktörler ve ROC eğrileri
Bağımsız prognostik değişkenleri belirlemek için tek değişkenli ve çok değişkenli Cox regresyon modelleri kullanılmıştır. Özellikle, çoklu tek değişkenli Cox regresyon analizleri sırasında aile bazında hata oranını kontrol etmek için (n = 236 test) Bonferroni düzeltmesi uygulandı ve sıkı şekilde ayarlanmış anlamlılık eşiği p < 0.00021 (0.05 / 236 olarak hesaplandı) olarak belirlendi.
Hayatta kalma analizi ve ana bileşen analizi
Hayatta kalma paketi (sürüm 3.8-6) genel sağkalma (OS) oranlarını hesaplamak için kullanıldı ve risk modelinin dayanıklılığını değerlendirmek için ana bileşen analizi (PCA) kullanıldı.
Nomogram
Uyum indeksi, nomogramın güvenilirliğini değerlendirmek için R'deki rms paketi kullanılarak değerlendirildi. Tümör mutasyonel yükü (TMB), maftools paketi (sürüm 2.22.0) kullanılarak değerlendirildi ve görselleştirildi. Bağışıklık sızmasını tespit etmek için ssGSEA dahil algoritmalar kullanıldı. Ayrıca, risk grupları arasındaki bağışıklık kontrol noktalarını karşılaştırmak için ggpubr paketi (sürüm 0.6.3) kullanıldı. ESTIMATE algoritması tümör mikroçevresini (TME) karakterize etmek için kullanıldı.
Fonksiyonel analiz
R sürümdeki clusterProfiler paketi (sürüm 4.14.6) zenginleştirme analizi için kullanıldı. Fonksiyonel yolları daha fazla incelemek için GSEA analizi yapıldı. Cytoscape kullanılarak, gözlem için bir ortak ifade ağı oluşturuldu.
Deneysel yöntemler
Hücre kültürü koşulları ve gruplama
NCI-H520 insan akciğer skuamöz hücreli karsinom hücre hattı (RRID: CVCL_1566; Materyal Tablosu'nda listelenmiştir) %10 (v/v) fetal sığır serumu ve %1 penisillin-streptomisin ile takviye edilmiş RPMI-1640 ortamında kültürlenmiştir. Log-faz hücreler 6 kuyu kültür plakalarına tohumlanmıştır. Başarılı bir şekilde yapışma sağlandıktan sonra, hücreler rastgele olarak üç farklı deneysel gruba ayrıldı: standart kültür koşullarında tutulan boş kontrol grubu, hedefsiz siRNA ile transfekte edilen negatif kontrol grubu (si-NC) ve LINC01615-spesifik siRNA ile transfekte edilen deneysel knockdown grubu (si-LINC01615).
Hücre transfeksiyonu
Si-LINC01615 ve si-NC reaktifleri buz üzerinde çözüldü. Transfeksiyon kompleksi hazırlığı için, 95 μL serumsuz RPMI-1640 ortamı steril santrifüj tüplerine pipet edildi, ardından ilgili siRNA'dan 3 μg ve Lipo3000 transfeksiyon reaktifinden 5 μL ardışık olarak eklendi. Aynı prosedür hemsi LINC01615 hem de siNC grupları için uygulandı. Çözeltiler nazikçe karıştırıldı ve oda sıcaklığında 5 dakika kuluçka hale getirilerek karmaşık oluşumu kolaylaştırdı; böylece tüp başına toplam hacim yaklaşık 200 μL elde edildi. Daha sonra, bu karışım 800 μL RPMI-1640 bazal ortamı içeren belirlenmiş kültür kuyularına eşit şekilde dağıtıldı. 37 °C'de 6 saatlik kuluçka döneminin ardından, transfeksiyon ortamı dikkatlice aspirasyon edilip taze, tam kültür ortamı ile değiştirildi.
Yara iyileştirme (çizik) testi
Yara iyileşme testi için, logaritmik olarak büyüyen NCI-H520 hücreleri (RRID: CVCL_1566) 5.6 × 105 hücre/kuyu yoğunluğunda 6 delikli kültür plakalarına tohumlanmıştır. %95–100 birleşime ulaşıldığında, steril 200 μL pipet ucu kullanılarak hücre monotabakası kuyunun ortasında dikey olarak çizilerek yapay olarak doğrusal bir yara oluşturuldu. Kuyular daha sonra ayrılmış hücreler ve hücresel kalıntılar çıkarılması için PBS ile üç kez yıkanmış ve ardından serumsuz RPMI-1640 ortamında kuluçka yapılmıştır. Aynı yaralı bölgelerin görüntüleri 0, 24 ve 48 saatte ters mikroskop kullanılarak çekildi. Yara iyileşme alanı, ImageJ (RRID: SCR_003070; Materyal Tablosu'nda listelenmiştir) kullanılarak boşluk mesafesi ölçülerek nicelendirildi ve göç oranı 0 saat içindeki başlangıç yara alanına göre hesaplandı.
Transwell göçü ve işgal testleri
Hücresel göç ve istila kapasiteleri, Materyaller Tablosu'nda listelenen 8,0 μm gözenek boyutunda polikarbonat membran insertleriyle donatılmış 24 kuyruklu Transwell odaları kullanılarak değerlendirildi. İstila testi için, apikal odalar 50 μL Matrigel ile önceden kaplanmış (serumsuz ortamda 1:8 seyreltilmiş; Malzemeler Tablosu'nda listelenmiştir) ve polimerize hale için 37 °C'de 2 saat kuluçka hale getirilmişti; göç testinde ise kaplamasız insertler kullanılmıştır. Hücre transfeksiyonu ve 24 saatlik serum açlık döneminin ardından, NCI-H520 hücreleri hasat edildi, serumsuz RPMI-1640 ortamında yeniden süspansiyona getirildi ve 200 μL'de 1.8 × 10.5 hücre/kuyu yoğunluğunda apikal odalara tohumlandı. Bazal odalar, kemoatçekan olarak %10 FBS takviyesi olan 600 μL RPMI-1640 ortamı ile dolduruldu. %5 CO₂ ile 37 °C'de 48 saatlik kuluçkadan sonra, insertler çıkarıldı ve PBS ile üç kez yıkandı. Membranın apikal yüzeyinde kalan hücreler ıslak pamuk çubukla nazikçe temizlendi. Basolateral yüzeye göç eden veya işgal eden hücreler, %4 paraformaldehit ile 20 dakika sabitlendi ve oda sıcaklığında Malzeme Tablosu'nda listelenen Giemsa çözeltisi ile 30 dakika boyandı. Göç edilen ve istila edilen hücreler, her bir girişte rastgele seçilmiş üç optik alan boyunca 40x büyütme ile ters seçilmiş bir mikroskop kullanılarak görselleştirildi ve sayıldı.
İstatistiksel analiz
Tüm istatistiksel analizler ve veri görselleştirmeleri R yazılımı kullanılarak gerçekleştirildi (sürüm 4.1.2; RRID: SCR_001905; Materyaller Tablosu'nda listelenmiştir). Bu çalışmada kullanılan tüm R paketlerinin özel versiyon numaraları, ilgili metodolojik alt bölümlerinde açıkça belirtilmiştir. Anlamlı bir değer, aksi bildirilmedikçe geleneksel olarak p < 0.05 olarak tanımlanırdı. Birden fazla karşılaştırma yapıldığında (örneğin, çoklu tek değişkenli Cox regresyonları), Bonferroni yöntemi aile bazında hata oranını (FWER) korumak için sıkı bir şekilde uygulandı ve tam ayarlanmış eşik (örneğin, p < 0.00021) ilgili metodolojik alt bölümde detaylandırıldı. Kantitatif in vitro veriler ortalama ± standart sapma olarak ifade edildi ve uygun olduğunda Student's t-testi veya tek yönlü ANOVA kullanılarak analiz edildi.