Method Article

SVF ile zenginleştirilmiş mikroyağın mekanik işlenmesi ve travmatik yumuşak doku kusurlarının yeniden inşası

DOI:

10.3791/69984

February 20th, 2026

In This Article

Summary

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Bu protokol, otolog yağ dokusundan mekanik olarak işlenmiş SVF ile zenginleştirilmiş mikroyağ hazırlayıp klinik rekonstrüksiyon için çüklü travmatik yumuşak doku kusurlarına enjekte edilmesi için tekrarlanabilir bir yöntemi tanımlar.

Abstract

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Travmatik yumuşak doku kusurları, doku kaybı, damarların bozulması ve kalıcı örtü sağlamadaki zorluklar nedeniyle rekonstrüksiyon için önemli zorluklar oluşturur. Yağ dokusu pratik bir otolog doku kaynağı sunar ve mekanik olarak işlenmiş stromal vasküler fraksiyon (SVF) ile zenginleştirilmiş mikroyağ, enzimatik sindirim olmadan ameliyat sırasında hazırlanabilir.
Bu çalışma, otolog yağ dokusunun hasat edilip SVF ile zenginleştirilmiş mikroyağa dönüştürülerek çürük tipi travmatik yumuşak doku kusurlarına enjeksiyon için standartlaştırılmış bir klinik protokol sunmaktadır. Yağ, düşük negatif basınç altında uyluk veya karın bölgesinden manuel olarak toplanır, kesim ve şırıngadan şırıngaya emülsifikasyon ile mekanik olarak parçalanır, mikro yağ kıvamı için filtrelenir ve SVF içeren fraksiyon izole edilir. İşlenen mikro yağ, yara boşluğuna çok katmanlı bir desen olarak enjekte edilir. Ameliyat sonrası değerlendirme, seri klinik değerlendirme, fotoğraf belgelenmesi ve epitelizasyona kadar yara alanının küçülmesinin ölçülmesini içerir.
Küçük bir kohortta, yöntem yaklaşık 4-8 hafta içinde ilerleyici yara kasılması ve tam epitelizasyon ile ilişkilendirildi ve ciddi komplikasyonlar olmadı. Hücresel bileşim ve yaşamlılık nicelendirilmemiş olsa da, bu teknik, enzimatik işlem veya laboratuvar tesislerine erişimi olmayan ortamlar için uygulanabilir bir intraoperatif yaklaşım sağladı. Bu protokol, travmatik çüklük tipi kusurların yönetiminde SVF ile zenginleştirilmiş mikroyağın uygulanması için pratik, minimal manipüle edilmiş bir yöntem sunar ve daha fazla kontrollü çalışmalar için temel oluşturabilir.

Introduction

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Travmatik çürük tipi yumuşak doku kusurları, doku kaybı, yerel perfüzyonun bozulması ve enfeksiyon ile ölü alan oluşumu riskinin yüksek bir şekilde oluşması nedeniyle büyük bir rekonstrüksiyon zorluğu olmaya devam etmektedir. Bölünmüş kalınlıkta deri greftleri veya flep transferleri gibi geleneksel kaplama teknikleri birçok durumda dayanıklı bir örtü sağlar. Ancak, özellikle kirlenmiş veya yaralı yataklarda 1,2,3 bağışçı bölge morbiditesi, teknik karmaşıklık ve değişken uzun vadeli sonuçlar nedeniyle sıklıkla sınırlıdırlar.

Yağ dokusu, stromal damar fraksiyonu (SVF) olarak adlandırılan heterojen hücre popülasyonunun bol ve kolay erişilebilen bir kaynağıdır. SVF, mezenkimal stromal hücreleri, endotel öncülerlerini, perisitleri ve destekleyici stromal elementleri içerir. Yağ dokusu parçacıkları içinde tutulduğunda, SVF'nin doğal ekstrasellüler yapısı işlem ve klinik doğum sırasındakorunur 4. Klinik olarak, SVF için zenginleştirilmiş yağ greftlerinin (SVF ile zenginleştirilmiş mikro yağ) greft tutumunu iyileştirdiği ve çeşitli endikasyonlarda hızlandırılmış yara epitelizasyonu ile ilişkilendirildiğibildirilmiştir 5,6,7.

Lipoaspirattan SVF elde etmek için iki ana strateji vardır. Enzimatik sindirim genellikle birim hacim başına daha yüksek çekirdekli hücre sayısı sağlar ancak özel reaktifler, laboratuvar altyapısı, daha uzun işlem süreleri gerektirir ve birçok yargı bölgesinde düzenleyici kısıtlamalara tabiolur 4,8. Buna karşılık, mekanik işleme yöntemleri arasında kesme, şırıngadan şırıngaya emülsifikasyon, filtreleme ve kapalı sistemli mekanik cihazların kullanımı yer alır. Bu yaklaşımlar, SVF ile zenginleştirilmiş mikroyağın minimal manipülasyon ve daha kısa dönüş süreleriyle hızlı intraoperatifhazırlanmasını sağlar 6,9,10,11. Son mekanik sistemler, işlem süreleri <15 dakika ve bazı serilerde enzimatik yöntemlere yakın verimler vermiştir, ancak ölçülen hücre sayısı ve yaşama durumu cihaz veoperatöre göre değişebilir. 9.

Mekanik olarak işlenen SVF ve kronik ülserler ile diyabetik ayak hastalıkları için yağ grefti üzerine artan literatüre rağmen, çüklük tipi travmatik yumuşak doku kusurlarına özel olarak standartlaştırılmış, tekrarlanabilir protokollernadirdir 7,12. Yayınlanan klinik raporlar genellikle kronik ülserler, diyabetik yaralar veya estetik yağ naklimine konularını ele alır. Ancak, sadece birkaç cihaz, hasat parametrelerini, emülsifikasyon noktalarını, filtrasyon gözenek boyutlarını, santrifüj kuvvetini (× g), yara alanına göre dozlama ve travma ortamlarında enjeksiyon için yara hazırlık kriterlerini belirten intraoperatif aşamalı bir protokolsunar 7,13.

Bu nedenle, bu yaklaşımı değerlendiren cerrahi ekipler için pratik uygulama rehberliği önemlidir. Mevcut literatür ve ameliyat deneyimimize dayanarak, tek bir boşluğun tipik intraoperatif aspirat hacimleri ~20-40 mL arasındadır. Bu hacim genellikle küçük ve orta ölçülü boşlukları dolduracak kadar işlenmiş mikro yağ sağlar. Buna karşılık, büyük hacimli rekonstrüksiyonlar muhtemelen bakım noktasındaki mekanik işlemin kapsamının dışındadır ve aşamalı prosedürler veya alternatif stratejilergerektirebilir 9,12. Mekanik SVF yaklaşımları, enfeksiyon kontrol altına alınana kadar aşırı kontamine yaralar için daha az uygundur; Bu tür durumlarda, yardımcı debridman ve enfeksiyon yönetimi (hedefli antibiyotikler ve uygun olduğunda negatif basınçlı yara tedavisi dahil) greftlemeden önceolmalıdır 7.

Bu çalışma, SVF ile zenginleştirilmiş mikroyağın mekanik işlemle hazırlanması ve bu ürünün çürük tipi travmatik yumuşak doku kusurlarına enjekte edilmesi için ayrıntılı ve tekrarlanabilir bir ameliyat içi protokol sağlamayı amaçlamaktadır. Protokol, diğer cerrahi ekiplerin yöntemi kendi ayarlarında benimseyip doğrulaması için açık operasyonel parametreleri (hasat, mekanik parçalanma ve emülsiyon, filtreleme, × g olarak ifade edilen santrifüj, enjeksiyon tekniği ve nesnel yara alanı ölçümü) vurgular.

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Protocol

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Tüm prosedürler Kurumsal Etik Komitesi tarafından onaylandı (Onay No. KL-2025062) ve Helsinki Bildirgesi'ne uygun olarak yürütülmüştür. Katılımdan önce tüm hastalardan yazılı bilgilendirilmiş onay alındı.

1. Hasta seçimi ve ameliyat öncesi değerlendirme

  1. Yeterli cerrahi debridman tamamlandıktan sonra rekonstrükif müdahale gerektiren çürük tipi travmatik yumuşak doku kusurlarıyla başvuran yetişkin hastaları dahil edin.
    NOT: Kusurlar, çevresindeki canlı doku ile iyi tanımlanmış bir çükle ve rekonstrüksiyon sırasında devam eden nekroz olmamalıdır.
  2. Aktif sistemik enfeksiyon veya kontrolsüz lokal yara enfeksiyonu, kötü kontrol edilen diyabet hastalığı (tedaviye rağmen sürekli HbA1c >%8 olarak tanımlanır), ilgili uzuvu etkileyen önemli periferik damar hastalığı, güvenli bir şekilde kesintiye giremeyen bilinen pıhtılaşma bozuklukları veya mevcut antikoagülasyon, defekt bölgesinde malignite veya ameliyat öncesi değerlendirmede belirlenen liposuction veya anestezi karşıtmandikasyonu olan hastalar hariç tutulur.
  3. Temel veri toplama ve yara değerlendirmesi yapın
    1. Yaş, cinsiyet, yara konumu, yaralanma mekanizması ve yaralanmadan rekonstrüksiyona kadar olan zaman dahil olmak üzere başlangıç hasta özelliklerini kaydedin.
    2. Standart yara hazırlığından sonra yara değerlendirmesi yapın. En geniş noktalarda steril bir cetvel kullanarak yara uzunluğunu ve genişliğini ölç. Sabit mesafe ve yönümle standart dijital fotoğraflar edinin. Kalibre edilmiş fotoğraflara dayalı planimetrik analiz kullanarak yara alanını (cm²) hesaplayın (bkz. Adım 6.6).
  4. Ameliyat öncesi danışmanlık sağla. Hastaya prosedürel adımları, beklenen faydaları, olası riskleri (enfeksiyon, yağ rezorbsiyonu ve ek prosedür ihtiyacı dahil), ameliyat sonrası bakım gereksinimlerini ve takip programını açıklayın.
  5. Ameliyattan önce anlayışı doğrulamak ve yazılı bilgilendirilmiş onay almak

2. Ameliyat öncesi hazırlık

  1. Steril ekipmanın hazırlanması
    1. Gerekli steril ekipmanları hazırlayın; bunlar arasında liposuction kanülleri (çapı 2-3 mm, kör uçlu), Luer-lock şırıngaları (10-20 mL kapasiteli), şırıngadan şırıngaya geçiş için steril Luer-lock konnektörleri, cerrahi makaslar, küt uçlu enjeksiyon kanülleri (22G × 50 mm) yer alıyor.
    2. Kullanmadan önce tüm cihazların bütünlüğünü ve sterilliğini doğrulayın.
  2. Tümüsan çözeltinin hazırlanması ve sızması
    1. 1.000 ml %0,9 normal tuzlu sunu steril bir kaba çekin
    2. 1:500.000 nihai konsantrasyon elde etmek için 2 ml 1:1.000 epinefrin ekleyin. Steril koşullarda iyice karıştırın.
    3. Çözümü, 2-3m künt infiltrasyon kanülü olan bir Luer-lock şırıngasına bağlayın
      NOT: Lidokain kasıtlı olarak çıkarılmıştır ve ayrı doz kontrollü anestezi uygulamasına izin verilmiştir.
    4. Çözeltiyi deri altı donör bölgesine (örneğin, karın veya uyluk) yavaş, yelpaze şeklinde geçişler yaparak derinlerden yüzeye doğru aktarın.
    5. Toplam hacmi donör alan yüzey alanına ve beklenen lipoaspirat hacmine göre ayarlayın.
    6. Dokuda uniform şişme ve vazokonstriksiyon gösterene kadar infiltrasyon yapın.
    7. Infiltrasyondan sonra maksimum damar daralması için 10-15 dakika bekleyin, hasat öncesi. NOT: Epinefrin ameliyat sırasında kanamayı azaltır ve yağ toplamayı kolaylaştırır. Lidokainin çıkarılması, güvenli anestezi dozlarının aşılmasını engeller ve ayrı lokal veya bölgesel anestezi izni sağlar.
  3. Anestezi uygulaması
    NOT: Anestezi, kusur boyutu, donör bölgesi ve hasta toleransına göre seçilerek şişman çözelti ayrı uygulanır. Aşağıdaki anestezi yaklaşımlarından biri, kusur boyutu, donör bölgesi ve hasta toleransına göre seçilir.
    1. Yerel infiltrasyon (alan blok): %0,5-1 lidokain ile epinefrin ile 1:200.000 oranında bir küt uçlu (22G × 50 mm) kanül kullanılarak infiltrasyon yapın. Donör bölgesini besleyen duyusal sinirlerin etrafında radyal olarak yayılır. Donör bölgesi manipülasyonu veya şişme sızmadan önce tam anestezi etkisi için 5-10 dakika bekleyin.
      NOT: Maksimum doz: 7 mg/kg lidokain ve epinefrin ile, hasta kilosu ve eş hastalıklarına göre ayarlanmıştır.
    2. Bölgesel anestezi (isteğe bağlı): Donör bölgesine göre ultrason rehberliğinde periferik sinir blokları kullanın. Bupivakain (%0,25-0,5) veya ropivakain (%0,5) kullanın, doz olarak standart yönergeler doğrultusunda. Hasat öncesi blok başlangıcını (10-20 dakika) onaylayın.
    3. Genel anestezi: Büyük kusurlar veya birleşik işlemler için ayrılmıştır. Kurumsal protokollere göre standart izleme ile uygulanır.
      DIKKAT: Tüm infiltrasyon çözeltilerinden alınan toplam sistemik epinefrin dozunun kabul edilen klinik güvenlik sınırları içinde kaldığından emin olun.

3. Yağ toplama

  1. Donör bölgeyi (karın ve/veya yan uyluk) aşağıdaki kriterlere göre seçin
    1. Kontur deformasyonu olmadan yeterli hasat yapılmasını sağlayacak yeterli deri altı yağ dokusunun bulunması
    2. Lokal skar, enfeksiyon veya doku kalitesini bozabilecek önceki ameliyatların olmaması.
    3. Hastanın ameliyat masasında steril infiltrasyon ve aspirasyona izin verecek şekilde erişilebilirliği ve konumlandırması.
      NOT: Yeterli dokuya sahip ve minimum önceki travmaya sahip bir alan seçmek, tutarlı yağ hasadını kolaylaştırır ve prosedürel komplikasyonları azaltır.
  2. Steril koşullarda No. 11 bistüri kullanarak 2-3 mm deri kesisi yapın. Epidermis ve dermis boyunca deri tabakasından deri altı tabakaya kadar kesin, daha derin fasya veya kas içinden geçmeden.
  3. Yara izini en aza indirmek için küçük, kontrollü bir kesi kalın.
  4. 10-20 mL Luer-lock enjektöre 2-3 mm liposuction kanülü takın.
  5. Kanülü, deri kesisinden deri altı yağ tabakasına yerleştirin, alttaki fasyaya yüzeysel kalarak.
  6. Kanülün hedef deri altı düzlemi boyunca eşit şekilde dağıtılması için nazik, çok yönlü hareketler kullanın.
  7. Şırınganın pistonunu nazikçe çekip yağ dokusunu aspire ederek manuel düşük negatif basınç uygulayın.
  8. Yağ kaynaklı hücrelere yönelik mekanik travmayı en aza indirmek için agresif emdirmekten kaçının.
  9. Küçük, kontrollü aliquotlarda aspirasyona devam edin; kanülü deri altı tabaka içinde yeniden konumlandırarak hasat verimliliğini en üst düzeye çıkarın.
    NOT: Hücre canlılığını korumak için şırıngayı oda sıcaklığında (20-25 °C) tutun.
  10. Yaklaşık 20-40 ml lipoaspirat alın, defekt boyutuna göre ayarlandı.
  11. Aspirasyondan sonra kanülü çıkarın ve deri kesisini tek bir 3-0 veya 4-0 naylon dikişle kapatın ya da daha küçük bıçak kesileri için steril yapışkan şeritler kullanın. Donör bölgesine steril bir pansuma uygulayın.
  12. Aspirasyonlu lipoaspirat başlangıçta hasat için kullanılan Luer-lock şırıngasında bulunur. Hasat kanülünü nazikçe ayırın ve lipoaspiratı daha fazla işlem için yeni steril 10-20 mL Luer-lock şırıngasına aktarın.
  13. Havaya, yüksek sıcaklıklara veya aşırı mekanik kuvvete maruz kalmaktan kaçının. Aspiratı işlem tamamlanana kadar oda sıcaklığında (20-25 °C) tutun (örneğin, arıtma, santrifüj veya enjeksiyon).
    NOT: Yeni steril bir şırınga kullanmak kontaminasyonu önler ve standart işleme imkanı sağlar. Nazik müdahale, adiposit ve stromal vasküler fraksiyonun canlılığını korur

4. SVF ile zenginleştirilmiş mikroyağın mekanik işlenmesi

  1. Toplanan lipoaspiratın, oda sıcaklığında (20-25 °C) steril 10-20 mL Luer-lock şırıngalarında dik durmasına izin verin, böylece yerçekimiyle ayrılma sağlanır.
  2. Ayakta durduktan sonra üç farklı tabaka (üst yağ tabakası [serbest lipid fraksiyonu], orta yağ tabakası, alt sulu/kan tabakası) görünür hale gelir.
  3. Steril teknikle, şırtingayı dikey olarak tutun, nozul yukarıya doğru bakacak şekilde ve pistonu nazikçe ilerleterek üst yağ tabakasını dışarı atarak sadece yağ fraksiyonu kalana kadar. Şırıngayı ters çevirin ve alt sulu/kan tabakasını dikkatlice yavaş piston ilerletme veya aspirasyon ile steril bir şırınga ile çıkarın. Daha fazla işlem için sadece orta yağ fraksiyonunu kalın.
    NOT: Serbest yağ ve sulu bileşenlerin çıkarılması iltihap yan ürünlerini azaltır ve greft tutarlılığını ve hücre canlılığını artırır.
  4. Biriken yağ fraksiyonunu steril paslanmaz çelik veya cam bir kaba içine aktarın. Steril cerrahi makas kullanarak, yağ dokusunu yaklaşık 1-2 mm boyutunda parçalara nazikçe doğrayarak aşırı sıkıştırma veya kesme kuvvetlerinden kaçının.
  5. Kıyılmış yağ dokusunu 10 mL Luer-lock şırıngasına yükleyin. Bu şırıngayı, steril dişi-dişi Luer-kilitli konnektör kullanarak ikinci 10 mL Luer-kilitli şırıngaya bağlayın.
  6. Yağ dokusunu mekanik olarak emülsasyon olarak iki şırınga arasında 20-30 geçiş boyunca sabit ve orta hızda aktarın. Eşit ve enjekte edilebilir mikro yağ kıvamı sağlanana kadar devam edin.
    NOT: İşlenen yağ, minimal görünür yağ ayrımı ile homojen bir şekilde emülsasyon edilmiş görünmelidir.
  7. Luer-lock konnektörünü ayırın ve emülsifiye mikroyağı şırıngadan santrifüj rotoruyla uyumlu steril bir santrifüj tüpüne aktarın. Santrifüjden önce tüplerin hacim açısından dengeli olduğundan emin olun.
  8. Emülsifikasyonlu yağı yaklaşık 400 × g sıcaklığında oda sıcaklığında 3 dakika santrifüjlendirin.
  9. Santrifüjlemeden sonra üç katman görülebilir: Üst yağ tabakası, Orta SVF ile zenginleştirilmiş mikro yağ fraksiyonu, Alt sulu/kan tabakası (Şekil 1).
  10. Steril bir şırınga kullanarak, sadece orta SVF ile zenginleştirilmiş mikro yağ tabakasını dikkatlice aspire ederek bitişik katmanlardan kontaminasyonu önleyin.
  11. Toplanan fraksiyonu, lifli kalıntıları ve büyük parçacıkları çıkarmak için 500-1.000 μm steril paslanmaz çelik örgü filtresinden geçirin. Bu adım, greft dağıtımı sırasında düzgün enjeksiyonu kolaylaştırır ve kanül tıkanmasını en aza indirir.
  12. Filtrelenmiş SVF ile zenginleştirilmiş mikroyağı 1-5 mL steril şırıngalara hemen enjeksiyon için yükleyin.

5. Kusur bölgesine enjeksiyon

  1. Son yara debridmanı yapıldıktan sonra steril salinle kapsamlı bir sulama uygulanır ve tüm nekrotik dokular çıkarılır.
  2. Yara hazır oluşunu, sağlıklı granülasyon dokusu ve/veya noktalı kanama ile doğrulayın; bu yeterli perfüzyon ve doku canlılığını gösterir.
  3. Steril teknikle, kusura yara kenarı veya bitişik sağlam deri üzerinden 1,2-2,0 mm çapında bir küt uçlu kanül sokulan, mümkün olduğunda doğrudan yara tabanından girişi önleyin.
    1. Derinlik ve doku düzlemi: Kanülü, yara yatağının hemen yüzeyinde deri altı doku düzlemine doğru ilerletilir; Kas içi yerleştirme, kusur derinliğiyle özel olarak belirtilmedikçe kaçınılır.
    2. Yerleştirme açısı: Kanülü, yara yüzeyine göre yaklaşık 10-30° düşük eğik bir açıda yerleştirerek kontrollü ve katmanlı biriktirmeyi kolaylaştırın.
    3. Kanül konumlandırması: Kanül ucunu iyi damarlanmış doku düzlemlerinde tutarak greftin hayatta kalmasını optimize edin ve ekstrüzyonu en aza indirin.
  4. SVF ile zenginleştirilmiş mikroyağı, çok katmanlı, retrograd yelpazeleme tekniği ile enjekte edin; yavaş kanül çekilmesi sırasında küçük alikotlar biriktirilsin.
  5. Greft, yara tabanı, kenarları ve çevresindeki deri altı dokusu boyunca eşit şekilde dağıtarak uniform dolgu sağlanır ve damarlanmış alıcı dokuyla teması maksimize eder.
  6. Enjeksiyon hacmini çölün boyutuna ve derinliğine göre ayarlayın, genellikle 5-12 mL arasında değişir.
  7. Kusur yeterince doldurulup doku konturları geri getirildikten sonra enjeksiyon durdurulur; böylece aşırı düzeltme veya aşırı doku gerilimi yaşanmaz.
    NOT: Yağ nekrozu, bozulmuş perfüzyon veya greft ekstrüzyonu riskini azaltmak için aşırı doldurmaktan kaçının.
  8. Yarayı vazelin (petrolatum) gazlı beziyle örtün ve yara yüzeyine sıkıştırıcı olmayan bir temas halinde yerleştirin.
  9. Bölgeyi korumak için ikincil pansuman uygulayın, böylece pasif drenaj sağlanır ve enjekte edilen mikroyağ üzerindeki kesme kuvvetlerini en aza indirin.

6. Ameliyat sonrası bakım ve takip

  1. Kurumsal protokole uygun olarak profilaktik antibiyotikler uygulanır; yara boyutu, kontaminasyon durumu ve hastaya özgü risk faktörleri dikkate alınır.
  2. Hastalara, greft yerinden gitmeyi en aza indirmek ve entegrasyonu optimize etmek için ameliyat sonrası 1-2 hafta boyunca hem donor hem de greft bölgelerinde basınç, kesme veya sürtünmeden kaçınmalarını öğretin.
  3. Her takip ziyaretinde yara sarğını kontrol edin ve gerektiğinde vazelin (petrolatum) gazlı bezi değiştirin. Yapışkan gazlı bezi zorla çıkarmayın; Epitelizasyon sırasında spontan ayrılmaya izin vererek yenilenen dokunun bozulmasını önler.
  4. Takip ziyaretlerini işlemden 1, 2, 4 ve 12. hafta sonra planlayın.
  5. Her ziyarette yara mesafesinde sabit bir kamera, tutarlı ışık koşulları ve yara ile aynı düzlemde yerleştirilmiş bir ölçek referansı (örneğin, steril cetvel) kullanılarak standart dijital fotoğraflar alın. Bu, uzunlamasına değerlendirme için tutarlılık sağlar.
  6. ImageJ yazılımı (National Institutes of Health (NIH), ABD) ile planimetrik analiz ile yara alanını ölçün.
    1. Standartlaştırılmış yara fotoğraflarını ImageJ'ye aktarın
    2. Referans cetvel kullanarak görüntü ölçeğini kalibre edin
    3. Çoklu gon seçim aracıyla yara kenarını manuel olarak takip edin.
    4. Yazılımın ölçüm fonksiyonunu kullanarak yara alanını otomatik hesaplayın.
  7. Sonuç değerlendirmesi için, tam epitelizasyonu, eksüdat, pansuma gereksinimi veya ikincil müdahale ihtiyacı olmadan tam yara yüzeyi örtüsü olarak tanımlayın.
  8. Enfeksiyon, yağ nekrozu, hematom, seroma veya gecikmeli yara iyileşmesi dahil tüm ameliyat sonrası komplikasyonları kaydedin.
    DIKKAT: Tüm biyolojik atıkları kurumsal biyo-güvenlik düzenlemelerine uygun olarak bertaraf edin.

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Results

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Toplam sekiz hasta, kaurük tipi travmatik yumuşak doku defektleri olan hasta tarif edilen protokolle tedavi edildi.

Kohort özellikleri

Kohortta beş erkek ve üç kadın vardı; ortalama yaşları 51,5 ± 11,7 yıl (38-74 yaş aralığı) idi. Kusurlar alt uzuvda (n = 5), üst uzuvda (n = 2) ve gövdede (n = 1) bulunuyordu. Ortalama ...

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Discussion

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Bu çalışma, SVF ile zenginleştirilmiş mikroyağın mekanik işlenmesi ve nakli, travmatik çüklük tipi yumuşak doku kusurlarının yönetiminde klinik olarak uygulanabilir ve tekrarlanabilir bir protokolü tanımlar. Protokol, standart bir ameliyathane ortamında bakım noktası uygulaması için tasarlanmıştır ve biyolojik karakterizasyondan çok prosedürel sadelik, güvenlik ve fizibilite önceliklerini verir. Bu küçük klinik seride, tedavi edilen tüm kusurlar ilerleyici yara kapanışı gösterdi ve 12 ha...

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Disclosures

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Yazarların beyan edecek çıkar çatışmaları yoktur.

Acknowledgements

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Bu çalışma, Hubei Eyaleti Bölgesel Bilim ve Teknoloji İnovasyonu Uluslararası Bilim ve Teknoloji İşbirliği Özel Programı (Hibe No. 2023EHA043) ve Wuhan Üniversitesi Zhongnan Hastanesi Travma ve Mikro Ortopedi Bölümü tarafından desteklendi; 2025 Ulusal Klinik Araştırma Anahtar Projesi (Proje No.: 2025LCYJZX-ZD003) tarafından desteklendi. Yazarlar, bu çalışmayı ilham veren önceki çalışmaları ve klinik metodoloji konusunda değerli rehberlik sağladığı için Dr. Qi Baiwen'e içtenlikle teşekkür etmektedir. Ayrıca Zhongnan Hastanesi'nin hemşire ve cerrahi ekiplerine hasta bakımı ve takibi konusundaki yardımlarını takdir ediyoruz.

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Materials

List of materials used in this article
NameCompanyCatalog NumberComments
%0,9 Normal salinBaxter Healthcare (veya eşdeğeri)ÇeşitliŞişmen çözelti için temel çözelti olarak kullanılır
Küt uçlu enjeksiyon kanülü (22G & Times; 50 mm)CONPUVON (figure-materials-1;), ÇinDZ 22× 50-C5SVF ile zenginleştirilmiş mikroyağın çok katmanlı enjeksiyonu için kullanılır
Santrifüj Uzun Süredir Biyoteknoloji (figure-materials-2), ÇinLTA-1600Yaklaşık 400 ve kez üretebilen klinik santrifüj; g
Dijital kamera / Akıllı TelefonHerhangi birYokTakip sırasında standartlaştırılmış sarma fotoğrafçılığı
EpinefrinYerel hastane eczanesiÇeşitliNihai konsantrasyon için 1:500.000 olarak tuzlu sileye eklendi
ImageJ yazılımı (Sürüm 1.53 veya daha sonra)Ulusal Sağlık Enstitüleri (ABD)Özgür yazılımlarPlanimetrik yara alanı ölçümü için kullanılır
Liposuction kanülü (2– 3 mm)Standart tıbbi tedarikçiYokDonör bölgeden yağ dokusu toplamak için kullanılır
Luer-kilitli konnektör (dişi-dişi)Becton Dickinson (veya eşdeğeri)ÇeşitliŞırıngadan şırıngaya mekanik emülsifikasyon için kullanılır
Luer-lock şırıngası (1, 5, 10, 20 mL)Hongda Medical Devices (figure-materials-3), ÇinBelirtilmedi (kurumsal tedarik)Aspirasyon, mekanik işleme ve enjeksiyon için kullanılır
Steril pansuma / bandajHastane EczanesiYokAmeliyat sonrası yara örtüsü için
Cerrahi makas (steril)Guangzhou Baitang Tıbbi Cihazlar Şirketi, Ltd.BT00301 (veya benzeri temsilci model)Yağ dokusunun mekanik parçalanması için kullanılır
Vazelin gazlı bez (10 cm ve 10 cm)Huaxi Medical Dressing Co., Ltd. (figure-materials-4), ÇinBelirtilmedi (kurumsal tedarik)Ameliyat sonrası yara bakımı için kullanılan yapışmaz pansuman

References

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
  1. Hidalgo, D. A. Aesthetic improvements in free-flap mandible reconstruction. Plastic and Reconstructive Surgery. 88 (4), 574-585 (1991).
  2. Pu, L. L. Q. Free flaps in lower extremity reconstruction. Clinics in Plastic Surgery. 48 (2), 201-214 (2021).
  3. Wong, C. H., Wei, F. C. Microsurgical free flap in head and neck reconstruction. Head & Neck. 32 (9), 1236-1245 (2010).
  4. Aronowitz, J. A., Lockhart, R. A., Hakakian, C. S. Mechanical versus enzymatic isolation of stromal vascular fraction cells from adipose tissue. SpringerPlus. 4, 713(2015).
  5. Sforza, M., et al. Mechanical isolation of stromal vascular fraction from adipose tissue: methods and cellular outcomes. Stem Cell Research and Therapy. 16 (1), 560(2025).
  6. Condé-Green, A., et al. Shift toward mechanical isolation of adipose-derived stromal vascular fraction: review of upcoming techniques. Plastic and Reconstructive Surgery Global Open. 4 (9), e1017(2016).
  7. Cervelli, V., et al. Application of enhanced stromal vascular fraction and fat grafting mixed with PRP in post-traumatic lower extremity ulcers. Stem Cell Research. 6 (2), 103-111 (2011).
  8. Senesi, L., et al. Mechanical and enzymatic procedures to isolate the stromal vascular fraction from adipose tissue: preliminary results. Frontiers in Cell and Developmental Biology. 7, 88(2019).
  9. Solodeev, I., Meilik, B., Gur, E., Shani, N. A closed-system technology for mechanical isolation of high quantities of stromal vascular fraction from fat for immediate clinical use. Plastic and Reconstructive Surgery Global Open. 11 (6), e5096(2023).
  10. Uguten, M., et al. Comparing mechanical and enzymatic isolation procedures to isolate adipose-derived stromal vascular fraction: a systematic review. Wound Repair and Regeneration. 32 (6), 1008-1021 (2024).
  11. Semina, E. V., et al. Improvement in nanofat preparation technology: simple and easy-to-use adipose tissue harvesting with Liporevive. JPRAS Open. 46, 187-199 (2025).
  12. Prakash, O., et al. Utility of fat grafting in chronic wounds. Indian Journal of Plastic Surgery. 57 (3), 201-207 (2024).
  13. Sbitan, L., Qandah, A., Alzraikat, N., Camargo, C. P. Adipose tissue and fat-derived products in wound, ulcer, and scar management: a systematic review. Frontiers in Surgery. 12, 1666776(2025).
  14. Qi, B. W., et al. Effect of negative pressure wound therapy combined with microfat grafting on diabetic foot wounds. Chinese Journal of Microsurgery. 43 (4), 371-373 (2020).
  15. Liu, D., et al. Clinical outcomes of fat particle grafting for reconstruction of cavity-type soft tissue defects. Chinese Journal of Injury Repair and Wound Healing (Electronic Edition). 15 (5), 351-354 (2020).
  16. Aronowitz, J. A., Ellenhorn, J. D. Adipose stromal vascular fraction isolation: a head-to-head comparison of four commercial cell separation systems. Plastic and Reconstructive Surgery. 132 (6), 932e-939e (2013).
  17. Carvalho, P. P., Gimble, J. M., Dias, I. R., Gomes, M. E., Reis, R. L. Xenofree enzymatic products for the isolation of human adipose-derived stromal/stem cells. Tissue Engineering Part C: Methods. 19 (6), 473-478 (2013).
  18. Bora, P., Majumdar, A. S. Adipose tissue-derived stromal vascular fraction in regenerative medicine: a brief review on biology and translation. Stem Cell Research and Therapy. 8 (1), 145(2017).
  19. Tiryaki, K. T., Cohen, S., Kocak, P., Canikyan Turkay, S., Hewett, S. In vitro comparative examination of the effect of stromal vascular fraction isolated by mechanical and enzymatic methods on wound healing. Aesthetic Surgery Journal. 40 (11), 1232-1240 (2020).
  20. Orgill, D. P., Bayer, L. R. Negative pressure wound therapy: past, present and future. International Wound Journal. 10 (Suppl. 1), 15-19 (2013).
  21. Argenta, L. C., Morykwas, M. J. Vacuum-assisted closure: a new method for wound control and treatment: clinical experience. Annals of Plastic Surgery. 38 (6), 563-576 (1997).

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Reprints and Permissions

Request permission to reuse the text or figures of this JoVE article

Request Permission

Tags

Stromal Vascular FractionMicrofat ProcessingSoft Tissue ReconstructionAdipose Tissue HarvestMechanical FragmentationSyringe EmulsificationFat GraftingWound EpithelializationAutologous TissueTraumatic Tissue Defects

Related Articles