Bu içeriği görüntülemek için JoVE aboneliğiniz gereklidir. Giriş yapın veya ücretsiz denemenizi bugün başlatın.

Yöntem makalesi

Farelerde siyatik sinirde monopolar radyofrekansla yapılan termal yaralanma modeli

201 görüntüleme

⸱

DOI:

10.3791/69998

⸱

3 Nisan 2026

 ,  ,  ,  ,  ,  ,  , 
1Department of Pain Management, Xuanwu Hospital, Capital Medical University, 2National Medical Center for Neurological Diseases, 3National Clinical Research Center for Geriatric Diseases

* These authors contributed equally

Bu makalede

Özet

Bu çalışma, farelerin siyatik sinirlerine radyofrekans sistemleri uyguladı ve termal sinir yaralanmasının radyofrekans ablasyon modelini oluşturdu. Bu yaklaşım, farelerin periferik sinir termal yaralanma modellerinde kontrol edilebilirlik sorunlarını çözerek sinir hasarı onarımı ve nöropatik ağrı üzerine araştırmalar için pratik bir modelleme yöntemi sunar.

Özet

Çevresel sinir hasarı genellikle nöropatik ağrıya yol açar ve sinir onarım süreçlerini tetikler. Kontrol edilebilir fiziksel yaralanma modelleri artık iyi kurulmuş olsa da, mevcut termal yaralanma modelleri keşif amaçlı olmaya devam etmekte ve kontrol edilebilirliği zayıftır. Klinik uygulamada, radyofrekans ablasyon (RFA) sistemleri dokular ve sinirlerde termal hasar indüklemek için sıkça kullanılır. RFA, sinirlerde termal hasar oluşturarak ağrı iletimi etkili şekilde engellediği kanıtlanmış bir terapötik yöntemdir. Ablasyonun kapsamı, belirli parametrelerin ayarlanmasıyla ve etkilenen sinir dağılım bölgesindeki uyuşma ve motor disfonksiyon derecesi değiştirilebilir. Bu çalışma, farelerin siyatik sinirinde 30 saniye boyunca 75°C uygulanarak stabil ve kontrol edilebilir bir sinir hasarı modeli oluşturmak için monopolar bir radyofrekans sistemi kullandı. Ameliyat sonrası 7–14. günler arasında mekanik yoksunluk eşiğinde (MWT) anlamlı bir artış gözlemlenmiş, iyileşme ise 28. güne kadar gerçekleşmiştir. Bu araştırma, RFA sinir hasarı modellerindeki mevcut boşluğu ele almakta, RFA işlemlerinden sonra klinik olarak gözlemlenen sinir hasarını tekrarlar ve RFA kaynaklı sinir yaralanması üzerine sonraki çalışmalar için metodolojik bir çerçeve sunmaktadır.

Giriş

Nöropatik ağrı, klinik yönetimde sürekli zorluklar yaratır; çünkü ağrı mekanizmaları araştırmaya devam etmektedir. Nöropatik ağrının moleküler ve hücresel mekanizmalarını incelemek için, spinal sinir ligasyonu (SNL)1, kronik daralma yaralanması (CCI)2, kısmi siyatik sinir ligasyonu (pSNL)3 ve siyatik sinir geçişi (SNT)4 ile korunan sinir hasarı (SNI)5 , kemirgenlerde periferik fiziksel sinir yaralanmasını simüle etmek için başarıyla kullanılmıştır. Modelin kontrol edilebilirliğini ve kararlılığını artırmak için, önceki çalışmalar uygulanan basınç göstergeleri ve seçici hasar gibi iyileştirmeler önermiştir.

Radyofrekans teknolojisi olumlu klinik sonuçlar vermiş olsa da, çeşitli yan etkilerle de ilişkilidir. Örneğin, ameliyat6 sırasında hemostaz için kullanılan radyofrekans ablasyonu (RFA), çevredeki dokulara termal hasar verebilir ve cihazınucunun yüksek sıcaklığı nedeniyle periferik sinirlerde termal hasar riski oluşturabilir 7. Ayrıca, trigeminalnevralji 8, postherpetiknevralji 9 ve diğer nöropatik ağrı durumlarının tedavisi için kullanılan RFA, ameliyat sonrası birincil ağrıyı azaltır ancak innervasyon bölgesinde uzun süreli ameliyat sonrası uyuşma, yüzeysel hiperaljezi ve diğer rahatsızlıklarla birlikteolur 10,11. Sonuç olarak, periferik sinirlerde termal yaralanma üzerine yapılan araştırmalar yavaş yavaş dikkat çekmiştir. Ancak mevcut hayvan modelleri, termal yaralanmanın sıcaklığını, süresini ve konumunu hassas şekilde kontrol etme yeteneğinden yoksundur; bu da yaralanma şiddetindeki uniformiyi sınırlamaktadır.

Önceki çalışmalar, sabit sıcaklıklı subanyosu 12 veya sıcak su pompasına bağlı ısı ileten çubuklar kullanarak sinir13 ile doğrudan temas halinde olan kauçuk tüpe sıcak su enjekte etmek, RFA'nın sinir hasarı üzerindeki termal etkilerini simüle etmeyi amaçlamaktadır. Ancak, önceki termal hasar modelleri yalnızca termal hasara yol açmış, böylece radyofrekans akımı ve parametrelerinin sinirler üzerindeki etkisi ortadan kaldırılmıştır. RFA'nın verdiği hasarın yalnızca termal etkilerden mi kaynaklandığı yoksa radyofrekans parametrelerindeki değişiklikler gibi faktörlerin de sinirler üzerinde belirgin etkiler yaratıp yaratmadığı henüz araştırılmaya devam etmektedir. Sinir hasarı için doğrudan radyofrekans termal koagülasyon sistemleri kullanan hayvan modellerinin mevcut eksikliği, RFA ile ilişkili sinir hasarı üzerine araştırmaların ilerlemesini engellemektedir. Bu çalışma, klinik ortamlarda RFA işlemleriyle ilişkili sinir hasarını simüle etmek için doğrudan monopolar bir RFA sistemi kullanarak farelerin siyatik sinirlerine RFA hasarı indüklemiştir. Periferik sinirlere RFA hasarı üzerine temel araştırmalar için metodolojik bir referans sağlar.

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Protokol

Hayvan deneyleri, Capital Medical University Xuanwu Hastanesi'ndeki Deneysel Hayvan Etik Komitesi tarafından onaylanmış ve NIH Laboratuvar Hayvanlarının Bakımı ve KullanımıRehberi 14'e uygun olarak gerçekleştirilmiştir. Yetişkin erkek C57BL/6 fareleri (8–10 haftalık, 20–25 g) kontrollü çevresel koşullarda (22 ± 2 °C, %50–60 nem, 12 saat ışık/karanlık döngü, 07:00'de ışıklar açık 12 saat) grup olarak yerleştirildi ve standart kemirgen yemeği ve suya imkansız erişim sağlandı. Tüm davranışsal değerlendirmeler, 08:00 ile 12:00 arasındaki ışık aşamasında yapıldı. Reaktifler, yazılım ve ekipmanların detayları Malzeme Tablosu'nda listelenmiştir.

1. Anestezi ve fare hazırlığı

  1. Fareleri, vücut ağırlığının her 10 g'ı için 0,2 mL dozda 20 mg/mL tribromoetanol çözeltisi intraperitoneal enjeksiyonla anestezi edin.
  2. Her iki gözü, pamuk aplikatörü kullanarak oftalmik bir merhem ile kapatın.
  3. Fareleri sol yan pozisyona yerleştirin. Vücudun sağ tarafındaki (1 cm × 1 cm alan) tüyleri elektrikli jiletle çıkarın (Şekil 1).
    NOT: Bu adım, devre direncini azaltmak için gövde ile devredeki negatif plaka arasındaki temas alanını artırır.
  4. Fare gövdesinin bir kısmını metal negatif elektrot plakasına sağ lateral konumda temas ettirin. Elektrik iletkenliğini artırmak için gövde ile plaka arasındaki temas alanına birkaç damla iyonik sıvı (%0,9 NaCl veya modifiye Ringer çözeltisi; kompozisyon için Malzeme Tablosu'na bakınız) uygulayın.
    NOT: Göz veya diğer organlara istemeden akım maruziyetini önlemek için baş ve yüzün negatif plakadan uzak durduğundan emin olun.
  5. Sol arka uzuvu yukarı bakacak şekilde diz bükülerek negatif elektrot plakasına yapışkan bant ile sabitleyin. Sol uyluk bölgesindeki tüyleri çıkarın ve cerrahi bölgeyi %75 etanol ile üç kez dezenfekte edin.
  6. Devam etmeden önce, arka uzuv veya kuyruğu uygulanan bir sıkıştırma uyarısına karşı çekilme tepkisi olmadığını doğrulayarak yeterli derinlikte anestezi olduğunu doğrulayın.
    NOT: Perioperatif dönemde lokal anestezik (örneğin lidokain) veya steroid olmayan anti-inflamatuar ilaçlar (örneğin asetaminofen) vermekten kaçının; çünkü bu ajanlar ameliyat sonrası nörodavranışsal değerlendirmeleri etkileyebilir.

2. Radyofrekans ablasyon cerrahisi

  1. Referans olarak femur kullanın. Mikro makas kullanarak uyluk kemiğinin uzun ekseni yönünde 1 cm deri kesiği kesin ve kuyruk tarafına 0,5 cm yan bir translasyon yapılabilir (Şekil 2).
  2. Biceps femoris kasını (BFM) deri kesisi boyunca kesin ve mikro forseps kullanarak ana siyatik sinir gövdesini arayın. Siyatik sinir diz eklemine yakın bir yerde ikiye ayrılır (Şekil 3).
  3. Siyatik sinir gövdesini, siyatik sinirin bifurkasyonundan yaklaşık 2 mm yukarıda, yaklaşık 5 mm uzunluğunda çevre dokudan mikro forseps kullanarak kesin. Küt ayrılma sırasında kan damarlarına zarar vermekten kaçının.
    NOT: Kazara damar yaralanması durumunda, kanı emmek ve kanamayı durdurmak için uygun basınç uygulamak için steril pamuk çubuk kullanın. Sonraki kan sızıntısı olmadıktan sonra operasyona devam edin.
  4. RFA pıhtılaşma iğnesini radyofrekans tedavi cihazına bağlayın. İğne ucunu kas dokusuna düz yerleştirerek direnci test edin. Direnç 1 kΩ'dan yüksekse, fare gövdesi ile negatif plaka arasına bir damlacı kullanarak iyonik sıvı ekleyin ve direnç 1 kΩ'nin altına düşsün.
  5. Ayrılmış siyatik siniri cam dakika eliyle nazikçe kaldırın. RFA iğnesini siyatik sinirin altına, açık metal ucu siyatik sinir bifurkasyonundan 3 mm uzakta konumlandıracak şekilde yerleştirin (Şekil 4).
  6. Radyofrekans terapötik cihaz parametrelerini şu şekilde ayarlayın: termal koagulasyon modu, 75 °C, 30 s, 2 Hz frekans ve 1 ms darbe genişliği. RFA enerji teslimatını etkinleştirin.
  7. RFA iğnesini nazikçe çek. Siyatik siniri cımbızla yeniden konumlandırarak kas dokusunu kaldırın. Kası 6-0 emilerli poliglikolik asit (PGA) dikişiyle kapatın. Deri kesisini 4-0 emilebilir PGA dikişiyle kapatın.
  8. Ameliyattan sonra, fareleri tüylerin kurumasını sağlamak ve doğrudan ısı kaynaklı hasarı önlemek için dolaşan sıcak su battaniyesi (38 °C) veya termostat kontrollü ısıtma pedi (37–38 °C) üzerine yerleştirilin.
  9. Fareleri kafese geri götürün ve anesteziden iyileşmeyi bekleyin. Kesi bütünlüğünü rutin olarak kontrol edin, yiyecek alımı, su tüketimi ve genel vücut durumunu takip edin.

3. Deneysel grup

  1. RFA grubu: 2.1–2.9. adımlarda tanımlandığı şekilde tam RFA cerrahi protokolünü gerçekleştirin.
  2. Sahte grup: RFA grubuyla aynı prosedürleri (2.1–2.5 ve 2.7–2.9) gerçekleştirin, ancak 2.6. adımda RFA sistem teslimatını aktive etmeyin. RFA iğnesini siyatik sinirin altında 30 saniye boyunca akım aktivasyonu olmadan yerinde tutun, ardından 2.7. adıma geçin.
    NOT: Sham grubu, termal yaralanmadan bağımsız cerrahi travma, anestezi, sinir manipülasyonu ve iğne yerleştirme işlemlerini kontrol eder.

4. MWT için Von Frey değerlendirmesi

  1. Her testten önce, fareleri rastgele von Frey test platformuna yerleştirin. Keşf davranışı sona erene kadar 15 dakika boyunca alışma izni ver.
    NOT: Platform, alt kısmı 0,6 cm × 0,6 cm delikli metal bir ağ ve fareler için birkaç kırmızı şeffaf kaptan oluşur; bunlar birbirine müdahale etmeden farklı kaplara yerleştirilir.
  2. Von Frey değerlendirmesini yukarı-aşağıyöntemi 15 ile yapın. Von Frey fiber telini sol arka pati tabanının ortasını hafif bükülme için yeterince kuvvetle uyarmak için uygulayın. 3 saniye veya çekilme tepkisiolana kadar bekleyin 16.
    NOT: 0.4 g filamentle teste başlayın. Negatif tepki sonrası bir sonraki üst filamenti, pozitif yanıt sonrası ise daha alt filamenti uygulayın. İlk yön değişikliğinden sonra dört ek uygulama için devam edin. Pratikte, bu çalışmada 2 g filament üst sınır olarak belirlenmiştir çünkü bu kuvvetle von Frey lifi ön patiyi yerden kaldırır ve kaçış veya çekilme tepkileri göstermez.
  3. Yanıtları kaydedin ve %50 MWT'yi yukarı-aşağı yöntemi hesaplayıcısı ile hesaplayın (von Frey deneyleri için yukarı-aşağı yöntemi, https://bioapps.shinyapps.io/von_frey_app/).
  4. Von Frey testlerini başlangıç seviyesinde (ameliyat öncesi) ve ameliyat sonrası 7, 14, 21, 28 ve 35. günlerde yapın.

5. DRG doku toplama ve immünofluoresans boyama

  1. Ameliyat sonrası 7. günde, RFA ve Sham gruplarından L4–L6 DRG alın.
  2. Dokuları %10 sakaroz-paraformaldehit ile 4 °C'de 6–12 saat boyunca sabitleyin.
  3. Gece boyunca %30 sakaroz-PBS oranında dokuları kriyokoruma ile 4 °C sıcaklıkta geçirin.
  4. Dokuları optimal kesme sıcaklığı bileşiği17'ye gömül.
  5. 13 μm kriyoseksiyon kesin ve bölümleri iyon olmayan bir yüzeyaktif madde ile geçirimlileştirin.
  6. Bloklayıcı reaktif kullanarak blokleyin ve poliklonal antikorla gece boyunca 4 °C'de inkübe yapın.
  7. Yıkamadan sonra, oda sıcaklığında ikincil antikorla 2 saat kuluçka yapın.
  8. Antiifade medium ile bin.

6. İstatistiksel analiz

  1. Normal dağılımlı sürekli verileri ortalama ± ortalama standart hatası (SEM) olarak sunun.
  2. Bağımsız örnekler t-testiyle gruplar arası karşılaştırmalar yapın.
  3. Farklı zaman noktalarında grup içi karşılaştırmaları tekrarlanan ölçüm varyans analizi (ANOVA) kullanarak analiz edin.
  4. Sonradan çift karşılaştırmalar için Bonferroni düzeltmesini uygulayın.
  5. Tüm verileri istatistiksel yazılım kullanarak işleyin ve istatistiksel anlamlılığı P < 0.05'e ayarlayın.

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Sonuçlar

Başarılı model kurulumu hem ameliyat içi hem de ameliyat sonrası göstergelerle doğrulandı. RFA (75 °C, 30 s) tamamlandığında, çekilme sırasında RFA iğne ucu ile siyatik sinir arasında hafif bir yapışma gözlemlenmiştir. Bu yapışma, temas bölgesinde lokal protein denatürasyonu ve koagulasyonu sonucu oluşur ve uygun termal enerji iletimi ile doğrudan sinir temasını önerir. Yapışma eksikliği, işlem sırasında iğne yer değiştirmesini gösterebilir ve bu da tutarsız veya optimal olmayan sinir ya...

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Tartışma

Minimal invaziv cerrahinin hızlı gelişimiyle birlikte, radyofrekans teknolojisi giderek yaygınlaşmıştır 6,7,18. Radyofrekans teknolojisi klinik uygulamada genişleştikçe, ilgili araştırmalar daha geniş yayılmasını kolaylaştırmıştır. Ancak, radyofrekans akımının doku üzerindeki etkileri, özellikle radyofrekans teknolojisi nöropatik ağrının tedavisinde uygulandıktan sonra daha fazla inceleme gerekt...

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Açıklamalar

Yazarlar rekabet eden çıkarlar belirtmemektedir.

Teşekkürler

Bu çalışma, Xuanwu Hastanesi Yetenek Yakınlaşma Programı (HZ2025PYDTR009) ve Capital's Sağlık İyileştirme ve Araştırma Fonları (CFH2024-2-20111) tarafından desteklenmektedir.

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Malzemeler

Bu makalede kullanılan malzemelerin listesi
AdŞirketKatalog numarasıYorumlar
4-0 dikişJinhuan TıpC412Deriyi kapat
6-0 dikişJinhuan TıpKCR631Kas tabakasını kapatın
Alexa Fluor 488 ikincil antikorInvitrogenA-11008İkincil antikor
ATF3 tavşan poliklonal antikoruNovus BiologicalsNBP1-85816Poliklonal antikor
Kavisli ince forsepsBeyotime BiyoteknolojisiFS031Kesik kas ve fasya
DAPI antifade montaj ortamıBeyotime BiyoteknolojisiP0131Antifade ortamı
Cam dakika akreniYuyan EnstrümanlarıBLFZ10Cesareti kaldır
GraphPad PrizmasıGraphpad Yazılımı, LLCsürüm 9.0Çıktı veri görüntüleri
Mikro MakasBeyotime BiyoteknolojisiFS217Kesik deri kesisi
Modifiye Ringer' çözümüKendi kendine hazırlanmışYokSodyum laktat 3,10 g/L; NaCl 6,00 g/L; KCl 0,30 g/L; CaCl2· 2H2O 0,20 g/L
İğne TutucuYuyan EnstrümanlarıY32010İğneleri tutun
QuickBlock engelleme çözümüBeyotime BiyoteknolojisiP0260İmmünofluoresans için bloke edici reaktif
Radyofrekans terapötik cihazıCosman MedicalRFG-1ARadyo frekans sistemi
Radyofrekans termo-koagülasyon elektrotu trocarCosman MedicalTCD-10Yalıtımlı RF iğne
Sodyum Laktat Ringer İğnesiSichuan  Kelun  İlaç  Co.,  Ltd86902180001566İyonik sıvı reziansı azaltmak için
SPSS İstatistikleriIBM Corpsürüm 27.0İstatistiksel analiz yazılımı
Düz ince forsepsBeyotime BiyoteknolojisiFS027Kesik kas ve fasya
Von Frey fiber teliDanmic GlobalAesthesio Semmes-WeinsteinDavranış testi

Kaynaklar

  1. Schäfers, M., Cain, D. Single-Fiber Recording: in vivo and in vitro preparations. Methods in molecular medicine. Luo, Z. D. , Humana Press. Totowa, NJ. 155-166 (2004).
  2. Vissers, K., Adriaensen, H., De Coster, R., De Deyne, C., Meert, T. F. A chronic-constriction injury of the sciatic nerve reduces bilaterally the responsiveness to formalin in rats: A behavioral and hormonal evaluation. Anesth Analg. 97 (3), 520-525 (2003).
  3. Malmberg, A. B., Basbaum, A. I. Partial sciatic nerve injury in the mouse as a model of neuropathic pain: Behavioral and neuroanatomical correlates. Pain. 76 (1-2), 215-222 (1998).
  4. Moore, K. A., et al. Partial peripheral nerve injury promotes a selective loss of GABAergic inhibition in the superficial dorsal horn of the spinal cord. J Neurosci. 22 (15), 6724-6731 (2002).
  5. Cichon, J., Sun, L., Yang, G. Spared nerve injury model of neuropathic pain in mice. Bio Protoc. 8 (6), e2777(2018).
  6. Smith, T. L., Smith, J. M. Electrosurgery in otolaryngology–head and neck surgery: Principles, advances, and complications. Laryngoscope. 111 (4 Pt 1), 769-780 (2001).
  7. Advincula, A. P., Wang, K. The evolutionary state of electrosurgery: Where are we now. Curr Opin Obstet Gynecol. 20 (4), 353-358 (2008).
  8. Habib, H. E. A. A., Ellakany, M. H., Elnoamany, H., Elnaggar, A. G. Microvascular decompression versus radiofrequency ablation in trigeminal neuralgia of the maxillary and mandibular divisions. Asian J Neurosurg. 19 (2), 221-227 (2024).
  9. Zhang, H., Ni, H., Liu, S., Xie, K. Supraorbital nerve radiofrequency for severe neuralgia caused by herpes zoster ophthalmicus. Pain Res Manag. 2020, 3191782(2020).
  10. Wu, C., Lv, Y., Wang, C., Zhong, C. Efficacy of semilunar ganglion radiofrequency thermal coagulation in moderate and severe trigeminal postherpetic neuralgia and its impact on serum IL-1β and IL-6 levels. Eur J Med Res. 30 (1), 1005(2025).
  11. Gazelka, H. M., et al. Incidence of neuropathic pain after radiofrequency denervation of the third occipital nerve. J Pain Res. 7, 195-198 (2014).
  12. Dong, Y., et al. Neuropathologic damage induced by radiofrequency ablation at different temperatures. Clinics. 77, 100005(2022).
  13. Konno, S., et al. Acute thermal nerve root injury. Eur Spine J. 3 (5), 299-302 (1994).
  14. National Research Council. Guide for the Care and Use of Laboratory Animals. , 8th ed, Natl. Acad. Press. Washington, DC. (2011).
  15. Chaplan, S. R., Bach, F. W., Pogrel, J. W., Chung, J. M., Yaksh, T. L. Quantitative assessment of tactile allodynia in the rat paw. J Neurosci Methods. 53 (1), 55-63 (1994).
  16. Christensen, S. L., et al. Von Frey testing revisited: Provision of an online algorithm for improved accuracy of 50% thresholds. Eur J Pain. 24 (4), 783-790 (2020).
  17. He, L., et al. A procedure for mouse dorsal root ganglion cryosectioning. J Vis Exp. (195), e65232(2023).
  18. Odell, R. C. Electrosurgery: Principles and safety issues. Clin Obstet Gynecol. 38 (4), 610-621 (1995).
  19. Zinder, D. J. Common myths about electrosurgery. Otolaryngol Head Neck Surg. 123 (4), 450-455 (2000).
  20. Al-Zain, F., Lemcke, J., Killeen, T., Meier, U., Eisenschenk, A. Minimally invasive spinal surgery using nucleoplasty: A 1-year follow-up study. Acta Neurochir (Wien). 150 (12), 1257-1262 (2008).
  21. Yu, X., et al. Changes of functional, morphological, and inflammatory reactions in spontaneous peripheral nerve reinnervation after thermal injury. Oxid Med Cell Longev. 2022, 9927602(2022).
  22. Boerboom, A., Dion, V., Chariot, A., Franzen, R. Molecular mechanisms involved in Schwann cell plasticity. Front Mol Neurosci. 10, 220(2017).
  23. Zhu, J., Luo, G., He, Q., Yao, M. Evaluation of the efficacy of unipolar and bipolar spinal dorsal root ganglion radiofrequency thermocoagulation in the treatment of postherpetic neuralgia. Korean J Pain. 35 (1), 114-123 (2022).
  24. Chang, M. C., Cho, Y. W., Ahn, S. H. Comparison between bipolar pulsed radiofrequency and monopolar pulsed radiofrequency in chronic lumbosacral radicular pain: A randomized controlled trial. Medicine. 96 (14), e6236(2017).
  25. Elemam, E. M., Abdel Dayem, O. T., Mousa, S. A., Mohammed, H. M. Ultrasound-guided monopolar versus bipolar radiofrequency ablation for genicular nerves in chronic knee osteoarthritis pain: A randomized controlled study. Ann Med Surg (Lond). 77, 103680(2022).

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Yeniden basım ve izinler

Etiketler

Siyatik Sinir YaralanmasPeriferik Sinir YaralanmasRadyofrekans AblasyonuN ropatik A rSinir Onar mA r letimiSinir HasarMekanik Geri ekilme E i i
Bize ulaşın
Kütüphaneye tavsiye et

Gizlilik

Kullanım Şartları

İlkeler

Telif hakkı © 2026 MyJoVE Corporation. Tüm hakları saklıdır.