Tüm deneysel prosedürler ve hayvan refahı uygulamaları, Jiangxi Çin Tıp Üniversitesi Etik Hayvan Komitesi'nin Laboratuvar Hayvanlarının Bakımı ve Kullanımı Etik Yönetmelikleri'ne sıkı sıkıya uygun şekilde yürütüldü (No. JZLLSC2023-0702), Çin'de bulundu.
Moleküler kenetlenme simülasyonları
TanIIA ile IL-33, ST2L, MyD88 ve NF-κB p65 arasındaki doğrudan etkileşimleri incelemek için in silico moleküler kenetlenme yaklaşımı uygulandı. TanIIA'nın 3D koordinatları PubChem veritabanından alındı ve ilk SDF dosyası daha sonra PDB formatına dönüştürüldü. IL-33 (PDB ID: 4KC3), ST2L (PDB ID: 4KC3), MyD88 (PDB ID: 7L6W) ve NF-κB p65 (PDB ID: 1NFI) kristal yapısı protein veri bankasından alınmıştır. Reseptörün ilk işlemesi PyMOL'da (v2.3.4) gerçekleştirildi; burada su molekülleri ve orijinal ligandlar çıkarıldı, ardından AutoDockTools'ta hidrojen ekleme ve yük ataması için ek hazırlık yapıldı. Her iki molekül de sonunda PDBQT formatına dönüştürüldü. AutoDock Vina (v1.1.2), aktif siteye merkezlenmiş tanımlanmış bir ızgara kutusunda kenetlenme simülasyonunu gerçekleştirmek için kullanıldı. Optimal bağlanma pozisyonu en düşük bağlanma enerjisine göre seçildi ve ayrıntılı etkileşimler PLIP web aracı kullanılarak belirlendi. Son kenetlenmiş konformasyon PyMOL (v2.3.4) kullanılarak görselleştirildi.
Hayvanlar
Erkek Sprague-Dawley (SD) fareleri, SPF sınıfı, 6 haftalık ve 200 ± 20g ağırlığında (sertifika numarası SCXK(Su)2023-0009). Fareler, 12 saatlik ışık/karanlık döngü ve 22 °C ile 2 °C arasında sıcaklık ± standart koşullar altında tutuldu. Deney sırasında hayvanlara hem yiyecek hem de suya sınırsız erişim izni verildi.
Deneysel protokol
Sol ön iniş (LAD) koroner arterinin bağlanmasıyla miyokard enfarktüsü için bir fare modeli oluşturuldu. Sahte ameliyat edilen fareler aynı cerrahi işlemleri LAD ligasyonu olmadan geçirdi. Kısa süreliğine, sıçanlar %1 sodyum pentobarbital (50 mg/kg) intraperitoneal enjeksiyonla anestezi edildi, ardından endotrakeal entübasyon ve ventilasyon yapıldı. Kalbi açığa çıkarmak için sol torakotomi yapıldı. LAD daha sonra 4-0 emilemez bir dikiş ile bağlandı. Başarılı MI indüksiyonu, sürekli elektrokardiyogramda ST-segment yükseltilmesi ve sol ventriküler ön duvarın görünür şekilde beyazlanması ile doğrulandı. Ameliyattan sonra, sıçanlara üç gün boyunca sefoxitin sodyum (200 mg/kg/gün, i.p.) verildi. Ameliyattan yirmi dört saat sonra, hayatta kalan fareler rastgele altı gruba (n = 10 grup başına yerleştirildi):
Sahte grup: intraperitoneal salin enjeksiyonları aldı (1 mL·kg-1·gün-1).
MI grubu: intraperitoneal salin enjeksiyonları aldı (1 mL·kg-1·gün-1).
TanIIA-L grubu (düşük doz): intraperitoneal TanIIA enjeksiyonları aldı (7.5 mg·kg-1·gün-1).
TanIIA-M grubu (orta doz): intraperitoneal TanIIA enjeksiyonları aldı (15 mg·kg-1·gün-1).
TanIIA-H grubu (yüksek doz): intraperitoneal TanIIA enjeksiyonları aldı (30 mg·kg-1·gün-1).
XST grubu (pozitif kontrol): oral dozda valsartan (30 mg·kg-1·gün-1) alındı.
Tüm tedaviler 28 gün ardışık olarak günlük olarak uygulandı. TanIIA ve XST dozları, önceki çalışmalar ve ön yayımlanmamış verilerimiz44,45 temelinde seçildi.
Elektrokardiyogram (EKG) ve ekokardiyografi
28 günlük tedaviden sonra, kalp fonksiyonu transtorasik ekokardiyografi ile değerlendirildi. %2 izofloran anestezisi altında (hareket modu), sol ventriküler son diyastolik/sistolik çapları (LVIDd/s) belirlemek için M-mod görüntüleri alındı. Sol ventriküler ejeksiyon fraksiyonu (LVEF) ve fraksiyonel kısaltma (LVFS) daha sonra ortalama üç ardışık kardiyak döngüsünden hesaplandı. Ayrıca, ameliyat öncesi, ligasyon sonrası 15 dakika ve deneysel son noktada kardiyak elektriksel aktivite izlemek için elektrokardiyogramlar kaydedildi.
Örnekleme ve 2,3,5-triphenyltetrazolium klorür (TTC) boyama
Karın aortundan gelen kan, 1370 × g ile 15 dakika boyunca santrifüjlenerek serum izole edildi ve serum -80 °C'de depolandı. Kalp ve epikardiyal yağ dokusu hızla çıkarılıp tartıldı. Moleküler analizler için, EAT ve enfarkt sınır bölgesi dokuları sıvı azotta snap-dondurularak -80 °C'de depolandı. Diğer doku örnekleri histolojik inceleme için %4 paraformaldehit ile sabitlendi. Ayrıca, seçilen kalpler -20 °C'de donduruldu, kesitlendi ve enfarkt boyutunu değerlendirmek için TTC ile boyandı. Malzemeler ve hayvan dokuları laboratuvar güvenlik düzenlemelerine uygun olarak kullanılır ve işlenir.
Histolojik muayene
Histopatolojik değerlendirme için, parafin kesitlerine miyokard morfolojisi gözlemlenmek amacıyla hematoksilin ve eosin (H&E) boyama uygulandı. Masson'ın trikrom boyaması, miyokard fibrozisinin kapsamını ve epikardiyal adipositlerin boyutunu değerlendirmek için kullanıldı; kollajen hacim fraksiyonu (CVF) nicelendirildi. Ayrıca, infarktsız bölgede tip I ile tip III kollajen oranı picrosirius kırmızı (PSR) boyama ile belirlendi. Tüm bölümler nicel analiz için dijital olarak tarandı.
İmmünohistokimya
Parafinle gömülü miyokard kesitleri deparafinize edilip yeniden nemlendirilmiştir. Antijen alımı, sitrat tamponu (pH 6.0) kullanılarak gerçekleştirildi. Kesitler %3 BSA ile bloklandı, ardından 4 °C'de gece boyunca kolajen I, kolajen III, IL-33, ST2, MyD88, NF-κB p65 ve TGF-β1 ile primer antikorlarla inkübe edildi. Daha sonra, bölümler HRP etiketli ikincil bir antikor ile oda sıcaklığında 1 saat kuluçka edildi. Boyama DAB ile görselleştirildi ve çekirdekler hematoksilin ile karşı boyandı. Görüntüler dijital tarayıcı kullanılarak yakalandı ve pozitif boyamanın entegre optik yoğunluğunu (IOD) nicelendirmek için görüntü analiz yazılımıyla analiz edildi.
Enzimle bağlantılı immünosorbent testi
hs-cTnI, NT-proBNP, IL-33 ve ST2 konsantrasyonları serum örneklerinde nicelendirildi. Ayrıca, serum, miyokard homojenatları ve epikardiyal yağ dokusu lizatlarında IL-10 ve TNF-α seviyeleri ölçüldü. Tüm testler, üreticinin protokollerine göre ticari olarak mevcut enzim bağlantılı immünosorbent test (ELISA) kitleri kullanılarak gerçekleştirildi.
Western blotting
Toplam protein doku homojenatlarından çıkarıldı ve konsantrasyonlar bicinchoninic acid (BCA) testiyle belirlendi. Eşit miktarda protein, sodyum dodesil sülfat–poliakrilamid jel elektroforezi (SDS-PAGE) ile ayrılarak poliviniliden florür (PVDF) membranlarına aktarıldı. %5 yağsız sütle bloke edildikten sonra, membranlar gece boyunca 4 °C'de IL-10, tümör nekroz faktörü-α (TNF-α), IL-33, ST2, NF-κB p65, TGF-β1 ve GAPDH (1:1000) antikorlarıyla inkübe edildi. Daha sonra, zarlar HRP ile konjuge edilmiş ikincil antikor (1:5000) ile kuluçka yapıldı ve ECL reaktifi kullanılarak görselleştirildi. Bant yoğunlukları yazılımla nicel olarak ölçüldü ve protein seviyeleri dahili kontrol olarak GAPDH'ye normalize edildi.
İstatistiksel analiz
Tüm istatistiksel analizler tıbbi istatistik yazılımı kullanılarak gerçekleştirilmiştir. Veri, ortalamanın ortalama ± standart hatası olarak sunulur. İki bağımsız grup arasındaki karşılaştırmalar için bir t-testi kullanıldı. Birden fazla grup durumunda, ya tek veya iki taraflı ANOVA ve ardından Tukey sonrası testi uygulanıyordu. Tüm analizler için P < 0.05 istatistiksel olarak anlamlı olarak kabul edildi.