$$\rightleftharpoonup{xx}$$
$$\longleftharp{xx}$$,
$$\longrightharp{xx}$$,
Protokol, Salvador Zubiran Ulusal Bilim Mühendisliği ve Nutrición Enstitüsü'nün (INCMNSZ) İnsan Biyomedikal Araştırmaları Kurumsal Komitesi (CIIBH) tarafından onaylandı (REFERANS 1734). Tüm katılımcılar bu çalışmaya dahil edilmeden önce bilgilendirilmiş rıza sundular.
Çalışma tasarımı ve nüfus
Bu, 5 haftalık takip süresiyle randomize, plasebo kontrollü, çift kör bir klinik çalışmaydı. INCMNSZ çalışanları çalışmaya davet edildi ve 2011-2012 yılları arasında antimikrobiyal tedavi görmeyen 20–50 yaş arası sağlıklı gönüllüler de bilgilendirilmiş onay formunu kabul edip imzaladı. Çalışma denekleri, 10,32 g agave inulin prebiyotik olarak ve 4 × 10 9 CFU/g Lactobacillus acidophilus NCFM ile 4 × 10 9 CFU/g Bifidobacterium lactis Bi07 ile 109 CFU/g ile 5 hafta boyunca 4 pakette ve ilk hafta boyunca günde iki kez 200 mg rifaximin ile randomize edildi. Plasebo Jel grubu, 5 hafta boyunca Sinbiyotik Jel ile aynı sunum ve duyusal özelliklere sahip 15 g plasebo jel paketi ve ilk hafta boyunca günde iki kez 200 mg rifaksimin aldı (Şekil 1).
Klinik değerlendirme
Her iki çalışma grubunda da semptomlar ve dışkı görünümü Bristol Ölçeği kullanılarak değerlendirildi. Kilo, boy ve vücut kitle indeksi (BMI) de ölçüldü. Bir günlük kullanılarak sinbiyotik jel, plasebo jel ve rifaksimin tüketimi değerlendirildi ve jel alımıyla ilgili yan etkilerin varlığı veya yokluğu kaydedildi.
Fiber tüketimi
Her iki grupta da lif alımı, her iki grupta da gıda günlüğü ve haftalık 24 saatlik geri çağırma ile değerlendirildi.
Tedavi Uyumu
Rifaximin ve jel tüketimine bağlılık, katılımcı başına tüketilen rifaximin doz sayısı ve tüketilen sinbiyotik ve plasebo jel poşe sayısı sayılırken değerlendirildi. Lactobacillus acidophilus ve Bifidobacterium lactis'in varlığı, Polimeraz Zincir Reaksiyonu (PCR) kullanılarak tespit edilmiştir.
Dışkı Mikrobiyolojik Değerlendirmesi
0. ziyarette ve haftada 5 ziyaret (6 ziyaret) her grupta, 120 dışkı örneğinde Laktobasil, Bifidobakteri ve Enterobakteri sayıları plaka sayım yöntemiyle değerlendirildi. Bu yöntem, seyreltilmiş örnekleri özel katıortam 10 üzerine yerleştirerek koloni oluşum birimlerini (CFU) ölçür. Her ziyaretin başında dışkı örnekleri alındı.
Mikroorganizmaları tespit etmek için dışkı örnekleri toplanıp BBL tüplerinde saklandı. PBG şişesi anaerobik bakteriler için kullanıldı ve dışkı örnekleri, laboratuvarda işlemeden önce düşük sıcaklıkta tutulması için dondurulmuş jel paketleri içeren strafor soğutucuda taşındı. Koprokültür için PBG şişesinin kapağı çıkarıldı ve dışkı örneği bir tambukla alınarak sürüntü numuneyle emdirildi. Uygulayıcı, daha sonra katı bir kültür ortamı içeren bir tüpün içine yerleştirildi.
Anaerobik bakteriler için şişeler tartıldı ve bir kaşık kullanılarak 5–10 g dışkı toplandı. Takı, şişenin içeriğiyle karıştırıldı ve sıkıca kapatıldı. Numune işleme için, örnekleri içeren şişeler ve steril Stomacher poşetleri tartıldı. Örnek bir torbaya boşaldıldı, 60 saniye santrifüj edildi ve ardından 4,5 ml %0,1 pepton suyu eklendi. Daha sonra, 500 μL örnek bir şişeye aktarıldı ve karışımı homojenleştirmek için vorteks edildi. Örnekten 100 μL sonra, belirli seçici ortamın her plakasında çift olarak aşılandıktan sonra, laktobasillər için Man Rogosa Sharpe (MRS) ortamı ve bifidobakteriler için istenmeyen florayı ortadan kaldırmak için sistein + sikloheksimid ile DP Beerens ortamı, 8 seyreltme faktörüne (0,1 mL seyreltme faktörü) kadar inokule edildi. Enterobakteriler için, bakteriyel kolonileri ayrılıp11 numaralandırıldığı 5–8 seyreltme faktörü (0.1 mL) seyreltilerinde MacConkey ortamı kullanılmıştır. Her ortam tozu saflaştırılmış damıtılmış suda çözünür, çözelti kaynatılır ve tam çözünürlüğü sağlanır, ayrıca 121 °C'de otoklavda 15 dakika sterilize edilirdi. Karışım, dökme plakası tekniği için 46,5 °C'ye soğutuldu; her tabak başına 1 mL çift olarak 15–20 mL kültür ortamı içeren steril Petri kablarına döküldü ve plakalar katılaştı. Aşılanan örnekler, anaerobik GasPak sistemlerindeCO2 ile zenginleştirilmiş atmosferde 37 °C sıcaklıkta, 24–48 saat boyunca anaerobik koşulların korunması için kuluçka yapıldı. Koloni kuran birimler (CFU) bir kalemle işaretlendi ve12 kişi sayıldı. Aşağıdaki formül uygulandı:
CFU/mL = (koloni sayısı × toplam seyrelme faktörü)/kaplama kültür hacmi (mL)
Laktobasil ve bifidobakterilerin morfolojik özelliklerinin tanımlanması
Gram Boyama örneği örneğin morfolojik özelliklerini belirlemek için kullanıldı. Her suştan bakteri kolonilerinden oluşan bir örnek mikroskop slaytına yerleştirildi, 1 dakika boyunca kristal menekşe ile boyandı ve ardından damıtılmış suyla durulandı. İyot çözeltisi 1 dakika uygulandı ve ardından damıtılmış suyla durulandı. Alkol-aseton çözeltisi 10 saniye boyunca renk giderici olarak kullanıldı ve damıtılmış suyla durulandı. Son olarak, safranin karşı leke olarak 1 dakika sürüldü ve damıtılmış suyla durulandı. Mikroskop slaytları, 100x amaçlı daldırma yağı kullanılarak optik mikroskop altında gözlemlendi.
Toplam nicel hesaplama, her grup başına beş denek rastgele seçilmiş dışkı örneklerinde geleneksel polimeraz zincir reaksiyonu (PCR) kullanılarak gerçekleştirildi ve 5 hafta içinde toplam 60 örnek alındı. Kültür ortamından alınan izolatlar, genetik materyal çıkarımı için işlendi. PCR, 16S rRNA geni13'ün bir parçasını amplifikasyon etmek için evrensel bakteriyel primerler kullanılarak gerçekleştirildi. PCR ürünleri arındırıldı ve sıralandı. Diziler doğrulandı ve dışkı örneklerinden izole edilen laktobasillus ve bifidobakteriyel suşların varlığını doğrulamak için GenBank veritabanına gönderildi.
İstatistiksel analiz
Veriler mutlak ve göreli frekanslar veya medyan (p25-P75) olarak sunulur. Semptomların kümülatif şiddeti, her takipte Likert skoru (hafif 1; orta 2; şiddetli, 3) kullanılarak belirlendi. Gruplar arası karşılaştırmalar Wilcoxon sıra-toplamı testi ve ki-kare veya Fisher'ın tam testi kullanılarak yapıldı. 0. ve 5. haftalar arasında grup içi karşılaştırmalar Friedman testi ve Durbin-Conover ile çoklu karşılaştırmalar kullanılarak yapıldı. İstatistiksel anlamlılık P < 0.05 olarak belirlendi.