$$\rightleftharpoonup{xx}$$
$$\longleftharp{xx}$$,
$$\longrightharp{xx}$$,
Tüm prosedürler Guangzhou Miles Biotechnology Co., Ltd. Hayvan Etik Komitesi tarafından onaylandı, onay numarası IACUC-MIS2023045'dir.
SUI Fare Modelinin Kuruluşu
6–8 haftalık toplam 20 dişi Sprague-Dawley (SD) sıçan, doğum simüle eden pelvik taban yaralanması modeli oluşturmak için kullanıldı. Vajinal balon genişletmesini (VBD) indüklemek için fareler, intraperitoneal ketamin (75 mg/kg) ve ksilazin (10 mg/kg) enjeksiyonuyla anestezi edildi. Söndürülmüş 10 Fr Foley kateteri dikkatlice vajinal kanala yerleştirildi ve ardından balon 3 mL steril salin ile şişirildi. Balon, pelvik taban kaslarının uzun mekanik gerilmesini ve doğumla ilişkili pudendal sinirin sıkışmasını taklit etmek için 4 saat boyunca yerinde tutuldu. Modelleme süresi 7 gündü. 8. günde, urodinamik test için rastgele 6 hayvan seçildi.
Modelin başarılı şekilde kurulması, kas yaralanmasının göstergesi olarak hizmet veren serum laktat dehidrojenaz (LDH) seviyelerinin ölçümüyle doğrulandı. Başarılı modelleme doğrulandıktan sonra, SUI sıçanları rastgele olarak sahte bir grup ve tedavi grubuna ayrıldı; her grupta beş fare bulundu. Aynı zamanda, beş normal SD sıçan kontrol grubu olarak sağlandı. Sahte grupta, akupunktur iğneleri akupunktur iğneleri BL23 (L2 okanlı sürecin 6 mm yan tarafında yer alır) ve GB30 (kalça ekleminin arka tarafında) akupunktur noktalarına herhangi bir elektriksel uyarım olmadan yerleştirilmiştir. Elektroakupunktur grubunda, aynı akupunktur noktaları standart klinik tedavi yöntemi izlenerek elektroakupunktur cihazı kullanılarak uyarıldı. Elektroakupunktur cihazı, 2 V'da 1 Hz seyrek-yoğun bir dalga formuna ayarlanmıştı. Her müdahale 10 gün ardışık günde 30 dakika sürdü. Tüm hayvanlar günlük olarak izlendi ve standart laboratuvar koşullarında barındırıldı. Deneyin sonunda, her gruptaki hayvanlar üzerinde ürodinamik testler yapıldı. Daha sonra, her fare grubu %3 izofluran ve 1,0 L/dakika oksijen karışımıyla anestezi edildi. Fareler bilinçlerini kaybettikten sonra, izofluran konsantrasyonu %5'e ayarlandı ve fareler solunum yetmezliğinden öldükten sonra örnekler alındı.
Ürodinamik testler
İzofloran kaynaklı anestezi sonrası, hayvanlar sırtüstü pozisyona getirildi ve güvence altına alındı. Orta hattın alt karın kesisimesaneyi ortaya çıkardı 18. Epidural kateter, mesane kubbesindeki 2 mm çapında bir fistülden implant edildi, lümenin içine 0,5–1,0 cm ilerletildi ve çanta-ip tekniğiyle 11-0 dikiş ile sabitlendi. Kateter bir basınç izleme sistemine bağlandı ve mikroşırınge pompası ile 10 mL/s hızda 37 °C metilen mavisi boyalı tuzlu suyla perfüze edildi; aynı anda damar içi basınç izlenmesi yapıldı. Maksimum mesane kapasitesi, infüzyon süresinin (infüzyon başlatma ile ilk üretral sıvı damlacı arasındaki aralık) ve akış hızının çarpımı olarak hesaplandı. Sızıntı noktası basıncı (LPP), manuel uygulanan karın kompresyonunun ani serbest bırakılmasından hemen sonra zirve intravezial basıncın kaydedilmesiyle belirlendi. Tüm parametreler ürodinamik analiz sistemi kullanılarak alındı ve her metrik için üçlü ölçümler yapıldı. Tüm örnekler rastgele kodlanıp üç bağımsız operatör tarafından tek kör bir şekilde analiz edildi; her biri tek bir ölçüm gerçekleştirdi. Üç bağımsız ölçümün sonuçları istatistiksel analiz için kullanıldı.
Serum laktat dehidrojenaz (LDH) seviyesini ölçmek
Ameliyat sonrası 7. günde, her sıçanının kuyruk damarından yaklaşık 1 mL tam kan alındı. Toplanan örnekler, pıhtı oluşumu için 1 saat oda sıcaklığında bırakıldı, ardından 2.000 × g ile 15 dakika boyunca santrifüjlendi. Yaklaşık 0,5 mL süpernatant serum olarak dikkatlice toplandı. Serum laktat dehidrojenaz (LDH) seviyeleri, üreticinin protokollerine göre D-laktat dehidrojenaz test kiti kullanılarak nicel olarak belirlendi.
Proteomik Profilleme ve Biyoinformatik Analiz
Model ve tedavi gruplarından izole edilmiş üretral düz kas dokularında nicel proteomik analiz yapıldı. Proteinler, Proteome Discoverer 2.4 kullanılarak %1 sahte keşif oranı eşiği ile kütle spektrometrisi ham verilerinden tanımlanmıştır. Farklı olarak ifade edilen proteinlerin (DEP'ler) biyoinformatik analizi, R tabanlı paketler kullanılarak gerçekleştirildi: limma paketi (|log2FC| > 1, ayarlanmış p <0.05 ile diferansiyel ifade analizi, gen ontolojisi (GO) zenginleştirme analizi ve Kyoto Genler ve Genomlar Ansiklopedisi (KEGG) yol analizi clusterProfiler paketi kullanılarak gerçekleştirildi; zenginleştirilmiş terimler/yollar ayarlanmış p < 0.05 ve q-değeri 0.2 < anlamlı olarak değerlendirildi; Hiyerarşik kümeleme Pheatmap paketi kullanılarak görselleştirildi. STRING veritabanı kullanılarak (v11.5, güven puanı 0.7> kullanılarak bir protein-protein etkileşimi (PPI) ağı oluşturuldu.
Hematoksilin-eozin boyama
Fare düz kas dokuları %4 paraformaldehit ile sabitlendi ve parafine gömüldü. Seri kesitler (5 μm kalınlığında) mikrotom kullanılarak hazırlanmış ve standart H&E boyama kiti kullanılarak boyanmıştır. Morfolojik değerlendirme, kas dokusunun yapısal bütünlüğü, inflamatuar hücre sızması ve matriks yeniden modellenmesine odaklanarak 40×–400× büyütme ile parlak alan mikroskopisi kullanılarak gerçekleştirildi.
Masson'ın Trikrom boyama
Etik komitesi tarafından onaylanan deneysel protokole göre, tedavinin onuncu gününde hayvanlardan örnekler topladık. Fare kas dokuları %4 paraformaldehit ve parafinle gömülü olarak sabitlenmiştir. Seri kesitler (5 μm kalınlığında) döner mikrotom kullanılarak kesildi. Deparafinize edilmiş bölümler Masson'ın trikromuyla boyanmıştır. Boyalı bölümler parlak alan mikroskopu altında 100 × büyütme ile görüntülendi.
Western blotting
Toplam proteinler, düşük sıcaklıkta tutulan ve proteaz inhibitörleriyle desteklenen RIPA lizin tamponunda mekanik bozulmayla fare düz kas dokusundan alındı. Lizatlar, 10.000 × g sıcaklıkta 4 °C'de 15 dakika boyunca santrifüjle temizlendi ve protein içeren süpernatant analiz için toplandı. Protein konsantrasyonu, kalibrasyon standardı olarak sığır serum albümini kullanılarak bicinchoninic asit (BCA) testiyle belirlendi. Eşit miktarda protein (30 μg) %10 veya %12 SDS–poliakrilamid jellerine yüklendi ve indirgeme koşulları altında ayrıldı. Elektroforezden sonra, proteinler 0,22 μm gözenek boyutuna sahip PVDF membranlarına aktarıldı. Zarlar, oda sıcaklığında %3 BSA içinde 1 saat boyunca inkubasyon yapılarak spesifik olmayan bağlanma bölgelerini blokladı, ardından 4 °C'de GAPDH, MYL1, TNNI2, TNNT1, TNNT1, TNNT3 ve MYLPF tanımaları sağlayan birincil antikorlarla gece boyunca kuluçka yapıldı. TBST ile üç kez yıkandıktan sonra, HRP etiketli ikincil antikorlar oda sıcaklığında 2 saat uygulandı. Sinyal tespiti kemilyünesan bir alt taban kullanılarak gerçekleştirildi ve görüntüler lüminesans görüntüleme sistemiyle çekildi. Protein ifadesinin nicelendirilmesi, GAPDH dahili referans olarak hizmet vererek densitometrik analiz ile gerçekleştirilmiştir.
Nicel gerçek zamanlı PCR (qPCR)
Doku örnekleri total RNA ekstraksiyon reaktifi kullanılarak lizize edildi ve RNA, üreticinin RNA çıkarma kiti ile birlikte verilen talimatlarına uygun olarak izole edildi. Gene özgü primerler, özel yazılım kullanılarak tasarlandı (Tablo 1) ve özgüllükleri BLAST analiziyle doğrulandı (≥18 bp homoloji, Tm = 58–62 °C). RNA, ters transkripsiyon kiti kullanılarak ters transkribe edildi ve hedef genin ifadesi SYBR Green qPCR tespit kiti kullanılarak tespit edildi.
İstatistiksel analiz
İki grup arasındaki istatistiksel karşılaştırmalar bağımsız örneklemli t-testi kullanılarak yapıldı; çoklu gruplar arasındaki farklar tek yönlü ANOVA ve ardından Bonferroni sonradan analiz ile değerlendirildi. Veriler, ortalama ± standart sapma (SD) veya ortalama ± ortalama standart hatası (SEM) olarak ifade edilir. p < 0.05 değeri istatistiksel anlamlılığı göstermektedir.