Bu protokol, indocyanine green (ICG) yakın kızılötesi görüntüleme ile ultrason birleştirerek fırlanan sonrası lenfatik drenajı, farelerde plantar ICG clearansı ve popliteal lenf düğümü büyümesini nicelikle ölçer.
Bu içeriği görüntülemek için JoVE aboneliğiniz gereklidir. Giriş yapın veya ücretsiz denemenizi bugün başlatın.
Yöntem makalesi
ICG yakın kızılötesi görüntüleme ve kırma sonrası ultrason kullanılarak lenfatik drenajın değerlendirilmesi
* These authors contributed equally
Bu makalede
Özet
Özet
Travmatik kırıklar genellikle lenfatik drenaj fonksiyonunun bozulmasıyla birlikte gelir. Kırılma sonrası lenfatik drenajın azalması ve lenf düğümü büyümesi, akut inflamatuar yanıt ve bağışıklık hücresi alımının devam eden, dinamik süreçlerini gösterir. Bu makale, sahte veya tibial kırığı ameliyatı yapılan farelerin plantar bölgesine 6 μL 0,2 mg/mL indocyanine green'in intradermal enjekte edilmesini anlatmaktadır. Yakın kızılötesi floresan görüntüleme, 0 saat ve 24 saat plantar ICG sinyalini nicelikle ölçerek 24 saat boşluk oranını fare lenfatik drenajının bir okuması olarak hesapladı. Ultrason aynı anda popliteal lenf düğümlerini (PLN) 3D rekonstrüksiyon etmek, hacimlerini karşılaştırmak ve kırık kaynaklı büyümeyi değerlendirmek için kullanıldı. Sonuçlar, kırık sonrası lenfatik boşalma oranının önemli ölçüde azaldığını, plantar bölgedeki ICG'nin floresans yoğunluğunun belirgin şekilde daha yüksek olduğunu ve PLN'lerin hacminin anlamlı şekilde arttığını gösterdi. Histopatolojik kesitler veya lenfosintigrafi gibi önceki lenfatik sistem ölçüm yöntemleriyle karşılaştırıldığında, bu yöntem genellikle in vivo, dinamik ve sürekli gözlem sağlamayan yöntemlerle, yüksek kararlılık ve tekrarlanabilirlik gösterir. Özellikle, lenfatik drenaj fonksiyonunun dinamik in vivo izlenmesini mümkün kılarak kırık modellerinde lenfatik reflüdeki değişikliklerin araştırılması için sağlam teknik destek sağlar.
Giriş
Travmatik kırıklar genellikle ciddi doku hasarı ve şişliğe yol açar, enfeksiyon, nekroz ve kemik birleşmemesi gibi komplikasyon riskiniartırır 1,2. Grzegorz Szczesny ve ark. doku ödemine yol açan lenfatik drenaj disfonksiyonunun gecikmeli iyileşme ile bağlantılıolduğunu göstermiştir 3. Çalışmalar, kırık iyileşme sürecinde, kemik dokusunun onarımının yanı sıra, kırığın bulunduğu bölgedeki lenfatik sistemin de önemli bir rol oynadığını göstermektedir. Lenfatik damarlar sadece interstisiyel sıvıyı boşaltmak ve şişliği önlemekle kalmaz, aynı zamanda bağışıklık hücresi göçünü düzenlemek ve metabolik atıkları temizlemekten de sorumludur. Ancak, kırığın erken evrelerinde, TNF-α, IL-1, IL-6 ve Makrofaj Koloni Uyarıcı Faktör (MCSF) gibi pro-inflamatuar faktörler lenfatik endotelyalhücrelere zarar verebilir ve bu da dejenerasyon, ödem ve fibroz gibi patolojikdeğişikliklere yol açabilir 6. İlgili çalışmalar, kemik ve periosteumda, ayrıca çevresindeki yağ ve kas dokularında lenfatik endotel hücrelerinin varlığını göstermiştir. Ayrıca, lenfatik drenaj, kırık sonrası hematomun mikro ortamının düzenlenmesine de katkıda bulunur; etkili lenfatik drenaj, osteoblastların hayatta kalmasını ve kemik iliği mezenkimal kök hücrelerinin (BMSC) çoğalmasını kolaylaştırır.7. Kırık sırasında, hasar gören bölgede bağışıklık hücreleri tarafından üretilen pro-inflamatuar faktörler (TNF-α, IL-1 ve IL-6) ve büyüme faktörleri (TGFβ1 ve PDGF) osteoblast apoptozu ve BMSC proliferasyonu için önemli düzenleyicifaktörlerdir 8. Hüseyin Arslan ve diğer araştırmacılar, lenfatik ödemin osteoblastlar üzerindeki olumsuz etkisini doğrulamıştır. Bu araştırma bulguları, lenfatik drenajın kırık iyileşmesinde önemli rolünü vurgulamaktadır. ICG yakın kızılötesi (NIR) floresan görüntülemedeki son gelişmeler, hem hayvan modellerinde hem de insanlarda lenfatik akış dinamiklerinin invaziv olmayan, gerçek zamanlı gözleminikolaylaştırmıştır 9,10,11. Bu teknik, lenfatik damar kasılması, drenaj hızı ve yol bütünlüğünün nicel olarak değerlendirilmesineolanak tanır 10,11. Artrit ve iltihaplanma fare modelleriyle yapılan bir çalışma, ICG-NIR görüntülemenin akut ve kronik lenfatik yanıtları ayırt edebildiğini göstererek doku yaralanması ve iyileşme sırasında belirgin drenaj desenlerini ortaya koyduğunu göstermiştir. Ayrıca, NIR lenfatik görüntülemenin manuel lenfatik drenaj sonrası fonksiyonel iyileşmeyi izlemek ve lenfatik hedefli tedavilerin etkinliğini değerlendirmek için etkili olduğu gösterilmiştir. Ultrasonografi, drenaj lenf düğümlerinin morfolojisi ve hacmi ile birlikte bozulmuş lenfatik drenajla ilişkili doku ödemini değerlendirmek için tamamlayıcı bir nicel yöntem sağlar. NIR floresan görüntülemenin ultrasonla entegrasyonu, lenfatik fonksiyon ve anatomik değişikliklerin eşzamanlı değerlendirilmesini mümkün kılarak lenfatik dinamiklerin in vivo üzerinde çok modlu bir yaklaşım sunmaktadır. Lenfatik disfonksiyonun travma sonrası iyileşmedeki kritik rolünün giderek artan kabulüne rağmen, kırıqlardan sonra lenfatik drenajın değerlendirilmesi için standartlaştırılmış ve tekrarlanabilir yöntemler hâlâ eksik kalıyor. Mevcut görüntüleme yöntemlerinin çoğu invazivdir, yeterli mekansal çözünürlükten yoksun veya lenf akışını dinamik olarak izleyemez. Bu nedenle, ICG-NIR ve ultrason görüntülemesini birleştiren bir protokol geliştirilmesinin bu metodolojik eksikliği gidermesi ve lenfatik iyileşme ile kemik onarımına katkısını değerlendirmek için etkili bir araç sağlaması beklenmektedir.
Bu çalışma, farelerde tibial kırıklar sonrası lenfatik drenajı değerlendirmek için ICG-NIR floresan görüntüleme ile yüksek çözünürlüklü ultrasonu birleştiren yenilikçi bir çerçeve sunmaktadır. Bu yaklaşım, drenaj verimliliğinin yarı nicel analizini sağlar ve kırığın iyileşme sürecinde lenf düğümlerinin hacmini ölçür. Ayrıca bazı sınırlamaları da var. İlk olarak, ICG-NIR öncelikle yüzeysel lenfatik damarları değerlendirmek için kullanılır ve derin yapılar için görüntüleme kapasitesi sınırlıdır. İkinci olarak, lenf düğüm hacmindeki değişiklikler bazı bilgiler sağlasa da, özgüllükten yoksun ve doğrudan fonksiyonel ölçümlerin yerini tamamen alamaz. Bu metodoloji, kemik yenilenmesinde lenfatik fonksiyonu anlamamızı geliştiren önemli translasyonel potansiyele sahiptir.
Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.
Protokol
Hayvan deneyleri, Şanghay Model Organizmalar Merkezi Kurumsal Hayvan Bakım ve Kullanım Komitesi tarafından onaylandı (Onay No. NMB-SMP-IACUC-01-0002-R02-03). Bu çalışmada kırılma modeli olan C57 erkek fareler (6–8 haftalık) kullanıldı. Reaktifler ve kullanılan ekipmanlar Malzeme Tablosu'nda listelenmiştir.
1. Ameliyat öncesi bakım
- Fareleri en az 1 hafta boyunca besin ve suya erişim ile adapte edin. Hayvanları bilgisayar tarafından oluşturulmuş rastgele bir listeyle kırık veya sahte gruba rastgele atanır.
- Fareleri hayvan ısıtma pedine yerleştirin ve sabit sıcaklık 37 °C tutun.
- Gaz anestezi makinesini açın ve fareyi %2–3 izofluran oranında 5 dakika boyunca indüksiyon odasına yerleştirin.
- İndüksiyondan sonra %1–%2 isoflurane alın ve ameliyatın sonuna kadar burun konisi ile anestezi uygulanır.
2. Deneysel prosedür
NOT: Anestezi ayarlarını, ICG dozu ve hacmi, enjeksiyon bölgesi ve derinliğini, maruz kalma süresini, ROI tanımını ve ultrason tarama parametrelerini tüm seanslarda standartlaştırarak hayvanlar arası değişkenliği en aza indirin.
- NIR-ICG görüntüleme
NOT: ICG yakın kızılötesi görüntüleme için adım adım prosedür Şekil 1'de gösterilmiştir.- 0,2 mg indocyanine green (ICG) tartın, 1,5 mL mikrosantrifüj tüpüne aktarın ve 1 mL PBS içinde çözerek 0,2 mg/mL ICG çözeltisi hazırlanın. Tüpü ışığa karşı korumak için alüminyum folyo ile sarın.
- Görüntüleme sistemini açın ve FluoBeam v1.46'yı açın. Kamera yüksekliğini gerektiği gibi ayarlayın.
- Pamuk çubuğunu %75 etanol ile nemlendirin ve modellenmiş arka patinin plantar yüzeyini dezenfekte edin.
- 10 μL mikro şırınga kullanarak, ICG çözeltisinden 6 μL aspirasyon yapın. İğneyi yaklaşık 1 mm plantar yüzeye sokutun ve çözeltiyi sabit bir hızda enjekte ederek tam hacim elde edilene kadar.
- Yazılımda hem "kamera" hem de "lazer" fonksiyonlarını etkinleştirin. "Modify" seçeneğine tıklayarak yeni bir klasör oluştur ve bunu kayıt dizini olarak ayarlayın. Görüntü alımı için pozlama süresini 0 saat ve 24 saat arasında aynı tutun.
- Fareyi kameranın altına yatağa pozisyonda yerleştirin, modellenmiş arka uzuv görüş alanında ortalanmış. Modellenmiş arka uzuvun görüş alanında ortalanmış olduğundan emin olun.
- Pozlama süresini 30 ms olarak ayarlayın ve hem 0 saat hem de 24 saat görüntüler için aynı kalın. Enjeksiyondan sonraki 0 saat ve 24 saat içinde aynı plantar enjeksiyon ROI'sinin görüntülerini alın ve ICG sinyal yoğunluğunu ölçmek. Pozlama süresini 0 saat ve 24 saat arasında aynı tutun.
- Arka uzuvun lenfatik damarları görüş alanında net göründüğünde, görüntüleri yakalamak için "fotoğraf" tuşuna tıklayın.
- Görüntü alındıktan sonra, verileri dışa aktarın ve görüntü analiz yazılımını kullanarak 0 saat ve 24 saat içinde floresans yoğunluğunu nicelikten ölçer, ardından floresans temizleme oranını hesaplayın.
- Görüntü analiz yazılımını açın.
- Floresans görüntülerini Aç Dosya →tuşuna tıklayarak içe aktarın ve aynı hayvana ve aynı muayene gününe karşılık gelen 0 saatlik plantar görüntüyü açın (ardından eşleşen 24 saatlik görüntüyü açın).
- Oval seçin, ardından Düzenle → Seçimi → Belirt'e tıklayın; Width = 30 ve Height = 30 ayarlayın, Oval seçin ve OK'ye tıklayın.
- Daireyi arka plan alanının üzerine yerleştirin.
- Analyze → Measure seçeneğine tıklayın ve Sonuçlar penceresinde Ortalama değeri 0 saat arka planda floresans yoğunluğu (FI0hbg) olarak kaydedin.
- Daireyi hedef gözlem alanının üzerine yerleştirin, Analyze → Measure'e tıklayın ve Sonuçlar penceresinde Ortalama değeri FI0h olarak kaydedin.
- Düzeltilmiş floresans yoğunluğunu 0 saatte Düzeltilmiş FI0h = FI0h − FI0hbg olarak hesaplayın.
- Eşleştirilmiş 24 saatlik görüntüyü açın ve Düzeltilmiş FI24h elde etmek için 3–7. adımları tekrarlayın.
- Arka plan düzeltilmiş floresans yoğunluğu kullanılarak temizleme oranını şu şekilde hesaplayın: Temizlenme oranı = [(FI0h − FI0hbg) − (FI24h − FI24hbg)] / (FI0h − FI0hbg) ×% 100%.
- B-mod ultrasonografi
NOT: Ultrason görüntüleme ve lenf düğümlerinin belirlenmesi için adım adım prosedür şu şekilde gösterilmiştir Şekil 2.- Ultrason sistemini açın, dönüştürücüyü bağlayın ve fareyi arka uzuvun net görüneceği şekilde konumlandırın. Sürekli anestezi altında, fareyi görüntüleme aşamasında yatağa yerleştirin; başı operatörden uzakta, kuyruğu ise operatöre doğru yönelmiş. Dizinizi popliteal fossa yukarı ve hafifçe yan tarafa bakacak şekilde bükün ve dönüştürücüyü popliteal fossa çukurunun üzerine konumlandırın.
- Modellenmiş arka uzuva ultrason bağlantı jeli uygulayın.
- Transdüseri döndürerek açısı arka uzuvun boyuna eksenine paralel kalsın.
- Tarama mesafesini 4 mm'ye, adım boyutunu ise 0,04 mm olarak ayarlayın. Görüntüdeki popliteal lenf düğümünü anatomik konumuna göre tanımlayın.
- Fareyi kuyruğu ve modellenmiş arka uzuvu iki elinizle tutarak stabilize edin. Transdüser tarama yaparken hayvanı hareket ettirme.
- Görüntüler edin. Popliteal lenf düğümünü, çevresindeki yağdan biraz daha düşük ekogenliğe sahip, orta ve düşük ekogenliğe sahip küçük oval veya hafifçe fasulye şeklinde bir nodul olarak tanımlanır ve bitişiğindeki koyu çizgili kas ile açıkça sınırlandırılmıştır.
- Görüntüleri üç boyutlu görüntü işleme için 3D yeniden yapılandırma yazılımına aktarın.
- Ultrason görüntüleme sistemi konsolunda 3D taramayı tamamladıktan sonra, taramayı 3D veri seti olarak kaydedin ve hayvan kimliğini, grup kodunu ve zaman noktasını (0 saat / 24 saat) kaydedin.
- Ham verileri alım konsolundan analiz bilgisayarına aktarın, orijinal klasör yapısını değiştirmeden kalın; Her zaman her hayvan için bir klasör kullanın, mümkün olduğunca her zaman zamanında.
- 3D yeniden yapılandırma yazılımını açın.
- Modüle girmek için "Çalışma"ya tıklayın ve "İçe Aktar" seçeneğini seçin.
- Veri klasörüne tıklayın, aktarılacak verileri kontrol edin ve açmak için çift tıklayın.
- Görüntü modunda, "Görüntü İşleme" → "3D'ye Yükle" → "Transverse View" → "Volume Measurement" → "Start" seçeneğini seçin.
- Dilim yönü ve adım parametrelerinin ("voxel/aralık") alım ayarlarıyla uyumlu olduğunu doğrulayın.
- Fare çarkını veya dilim kaydırıcısını kullanarak proksimal uçtan distal uca doğru kaydırın ve PLN'nin ilk göründüğü dilimi belirleyin (genellikle çevresindeki yağa göre biraz hipoekoik ve nispeten net bir sınır olan oval veya fasulye şeklinde bir yapı olarak görünür).
- PLN'nin göründüğü ilk dilimde konturu başlatmak için sol tıklayarak izlemeye başlayın.
- Lenf düğümünün kenarı boyunca nokta nokta kapır çizerek konturu dış kapsüle mümkün olduğunca yakın tutun ve çevredeki yağ veya damar lümeninin dahil edilmesini önlemek için çizgi nokta çizin.
- Fare tekerleğini kullanarak PLN'nin maksimum kesit alanını gösteren kesime geçin ve ikinci konturu tamamlamak için 10. adımı tekrarlayın.
- Fare tekerleğini kullanarak PLN kaybolmadan hemen önce dilime geçin ve üçüncü konturu tamamlamak için 10. adımı tekrarlayın.
- "Son" tuşuna tıklayarak 3D segmentli hacmi oluşturup hacim ölçümü çıktı.
- PLN hacmini (mm3) sonuçlar paneline kaydedin.
- Ölçüm sonuçları panelinde "Dışa Aktar" seçeneğini seçin ve sonuçları .csv veya .xls dosyası olarak dışa aktarın.
- Dosya tipini seçin ve görüntüyü TIFF Görüntü Alanı (.tif) olarak dışa aktarın.
- Analiz sırasında sadece hayvan kodu ve zaman noktasını göstererek, grup atamasını (kırık/sahte) göstermeden, tüm hacim çıkarımı tamamlanana ve gruplar istatistiksel analiz için çözülene kadar kör etmeye devam edin.
- İstatistiksel analiz yazılımı kullanılarak istatistiksel analiz
- Yeni Tablo ve Grafik seçin, Gruplandı'yı seçin.
- Veri girişi formatını alt sütunlara yığılmış şekilde kopyalama değerlerini girecek şekilde ayarlayın.
- 1 / 7 / 14 ve Sham / Fracture için ham değerleri girin. - Grafiği açın.
- Grafik türünü Scatter (bireysel değerler) + ortalama + hata çubukları olarak değiştirin.
- Eksenleri formatlayın: Y eksenini ayarlayın ve eksen başlığını değiştirin.
- Analyze tuşuna tıklayın ve iki yönlü ANOVA yapın.
- Her zaman noktasında Sham ile Fracture'ı karşılaştırın.
- Anlamlılık sonuçlarını grafiğe ekleyin.
3. Ameliyat sonrası bakım
- Deneyin sonunda, fareyi bir ısıtma pedinin üzerine koyun ve anesteziden iyileşmesine izin verin.
- Durumunu yakından izleyin ve herhangi bir anormallik gözlemlenmezse, onu tekrar kafese yerleştirin ve kalıcı barındır.
4. Değerlendirme
NOT: Bir araştırmacının grup dağılımı için kör olmasını sağlayın, görüntü alımı ve nicel analizler yapın ve istatistiksel analizler tamamlanana kadar tüm veri setlerini kodlayın.
- NIR-ICG görüntüleme
- Fare ayak tabancalarından toplanan ICG görüntülerinde floresans yoğunluğunun göreceli nicel analizini yapmak için görüntü analiz yazılımını kullanın.
NOT: Fare ayak pedlerinde ICG'nin boşalma oranı için hesaplama formülü şöyledir:
Temizlik oranı (%) = [(FI0h – FI24 saat) / (FI0h)] × %100 - Her ölçüm için temizlenme oranını kaydetmek için aynı yöntemi kullanın ve istatistiksel analiz yazılımı kullanarak lenfatik boşalma oranı ile zaman arasındaki ilişkiyi analiz edin.
- Fare ayak tabancalarından toplanan ICG görüntülerinde floresans yoğunluğunun göreceli nicel analizini yapmak için görüntü analiz yazılımını kullanın.
- B-mod ultrasonografi
- PLN hacmini belirlemek için 3D yeniden yapılandırma yazılımı kullanarak B-mod ve üç boyutlu görüntüleri analiz edin.
- Lenfatik drenaj ve lenf düğümü hacmindeki değişiklikleri zamanla değerlendirin; istatistiksel analiz yazılımıyla saçılım grafikleri oluşturulur.
- İstatistiksel analiz
- 1., 7. ve 14. günlerde elde edilen tekrarlanan ölçümleri iki yönlü tekrarlanan ANOVA ile analiz edin.
Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.
Sonuçlar
Kırık modelinin kurulmasından sonraki 1., 7. ve 14. günlerde, kırık grubundaki 24 saatlik plantar ICG floresans yoğunluğu (FI24h) sahte cerrahi grubundan tutarlı olarak daha yüksekti (Şekil 3). Toplanan plantar görüntülerden ICG floresans yoğunluğunun göreli nicel analizi, kırık grubundaki lenfatik ICG boşalma oranının sahte cerrahi grubuna göre anlamlı şekilde daha düşük olduğunu gösterdi (p < 0.05) (Şekil 4...
Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.
Tartışma
Protokol, kolayca gözden kaçan birkaç detay içeriyor. Örneğin, pozlama süresi sabit değildir ve belirli floresans yoğunluğuna göre belirlenmelidir. Ancak, aynı fare grubunun 0 saat ve 24 saat içinde maruz kalma süresi tutarlı kalmalıdır; aksi takdirde, sonuçlar güvenilir olmayabilir. Ultrason gözlem için kullanılırken, farenin alt uzuvlarını tamamen bağlantı maddesiyle kaplamak şarttır; çünkü açıkta kalan alanlar prob bu bölgeleri taradığında ortaya çıkan görüntülerde bozulmaya yol açar....
Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.
Açıklamalar
Yazarların beyan edecek çıkar çatışmaları yoktur.
Teşekkürler
Bu çalışma, Ulusal Doğa Bilimleri Vakfı (YJZ'ye 82174407), Şanghay Pudong Yeni Bölge Sağlık Komisyonu Disiplin Lideri Eğitim Programı (PWRd2020-05), Pudong Yeni Bölge Sağlık Komitesi Disiplin Lideri Projesi (PWRq2020-56) ve Shenzhen'in Sanming Tıp Projesi (No. SZZYSM202311006).
Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.
Malzemeler
| Ad | Şirket | Katalog numarası | Yorumlar |
|---|---|---|---|
| 10 Mikrolitre Mikroşırınga | Hamilton Company | 80330/00 | Hamilton 80330/00 mikroşırınga, 10 L kapasiteli, 26s ebat iğne, 51mm uzunluk ve stil 2 nokta özellikli hassas bir enstrümandır. Kromatografi, numune enjeksiyonu ve analitik kimya uygulamalarında küçük hacimlerin doğru bir şekilde verilmesi için tasarlanmıştır. |
| 3D Ultrason Vevo 3100 Görüntüleme Sistemi | Vevo 2100 | Vevo 2100, küçük hayvanların gerçek zamanlı 3D görselleştirmesini sağlayan preklinik araştırmalar için yüksek frekanslı bir ultrason görüntüleme sistemidir. Kardiyovasküler, onkoloji ve gelişimsel biyoloji çalışmaları için üstün çözünürlük sunar ve Vevo LAB yazılımı ile veri analizi için entegre edilmiştir. | |
| %75 Etanol | Shanghai Titan Scientific Co., Ltd. | G73537O | %75 etanol, laboratuvarlarda yüzey sterilizasyonu, ekipman temizliği ve antiseptik için yaygın olarak kullanılan bir dezenfektan solüsyondur. Protein denatüre ederek bakteri, virüs ve mantarları etkili bir şekilde öldürür ve biyolojik ve klinik ortamlarda yaygın olarak uygulanır. |
| Pamuk Tüyü | Hebei Kangji Medical Equipment Co., Ltd. | 20250303 | Pamuk tüyleri, medikal, tanı ve laboratuvar prosedürlerinde kesin numune toplama, çözelti uygulama veya temizleme için kullanılan steril, emici aplikatörlerdir. Hijyenik kullanım için ahşap veya plastik saplara sahip pamuk uçlu özelliklere sahiptir. |
| Bağlama Maddesi | Tianjin Jinya Technology Development Co., Ltd. | 20241029 | Bağlama maddesi, yaygın olarak ultrason jeli olarak bilinen, ultrason dönüştürücü ile cilt arasındaki akustik iletimi artırmak için kullanılan su bazlı bir ortamdır. Temiz görüntüleme için hava cebini ortadan kaldırır, tahriş edici değildir ve tıbbi ve teşhis kullanımı için 250mL'lik bir kapta tedarik edilir. |
| Graphpad Prism | GraphPad Software | Prism 10 | Veri analizi, görselleştirme ve sunumu için kullanılan bilimsel grafik ve istatistiksel analiz yazılımı. |
| Image J | National Institutes of Health | ImageJ 1.54d | Biyolojik ve tıbbi görüntü analizi için yaygın olarak kullanılan, kamuya açık, Java tabanlı bir görüntü işleme ve analiz programı. |
| indosiyanin yeşili | Dandong Yichuang Pharmaceutical Co., Ltd. | 8305128 | İndosiyanin yeşili, kardiyak çıkış, hepatik fonksiyon, karaciğer kan akımı ve oftalmik anjiyografiyi belirlemek için tıbbi teşhislerde kullanılan suda çözünür anyonik bir boyadır. İntravenöz uygulama için 25mg'lık flakonlarda tedarik edilir ve görüntüleme amaçları için yakın kızılötesi spektrumda floresan gösterir. |
| izofluran | RWD | R650-IE | İzofluran, solunan genel bir anesteziktir. Küçük bir kan/gaz bölünmesi katsayısına sahiptir. Hayvan anestezisinde kullanıldığında, anesteziyi yumuşak, hızlı ve rahat bir şekilde indüke edebilir, hızlı bir iyileşme sağlar, iyi kas gevşemesi ve sempatik sinir sistemi üzerinde heyecan verici etkisi yoktur. İzofluranın karaciğerdeki metabolik hızı düşüktür, bu nedenle karaciğer toksisitesi düşüktür ve tekrarlanan kullanımda bile belirgin yan etkiler yoktur. Anestetik atık gazının çevreye ve laboratuvar personeli üzerindeki olumsuz etkilerini önlemek için bir gaz geri kazanım sistemi ile birlikte kullanılması tavsiye edilir. |
| Mikrodenge | Shanghai Precision Scientific Instrument Co., Ltd. | FA1004B | FA1004B mikrodenge, küçük numunelerin doğru şekilde tartılması için tasarlanmış yüksek hassasiyetli bir analitik enstrümandır, 0.0001g'ye kadar okunabilirlik sunar ve araştırma ve kalite kontrolünde kesin ölçümler gerektiren laboratuvar uygulamaları için uygundur. |
| Yakın Kızılötesi Görüntüleme Sistemi | Olympus | MVX10 | Olympus MVX10, yakın kızılötesi görüntüleme için optimize edilmiş bir makro zoom floresan mikroskobu sistemidir. Geniş yakınlaştırma aralığı ile büyük numunelerin yüksek çözünürlüklü görselleştirmesini, derin doku penetrasyonu için gelişmiş optikleri ve biyolojik ve malzeme araştırmalarında floresan teknikleriyle uyumluluğu sunar. |
| Vevo lab | \ | Vevo LAB | Vevo görüntüleme verilerini analiz etmek için kullanılan bir görüntüleme analiz yazılım paketi, ölçüm, hesaplama ve rapor oluşturma içerir. |
Kaynaklar
- Zhang, S., Sheng, H., Xu, B., Lao, Y. Acute external iliac artery thrombosis following pelvic fractures: Two case reports. Medicine (Baltimore). 100 (6), e24710(2021).
- Szczesny, G., Olszewski, W. L., Gewartowska, M., Zaleska, M., Gorecki, A. The healing of tibial fracture and response of the local lymphatic system. J Trauma. 63 (4), 849-854 (2007).
- Zheng, Y., et al. A novel therapy for fracture healing by increasing lymphatic drainage. J Orthop Translat. 45, 66-74 (2024).
- Thomas, C., Le, J. T., Benson, E. Managing lymphedema in fracture care: Current concepts and treatment principles. J Am Acad Orthop Surg. 28 (18), 737-741 (2020).
- Jiang, X., Nicolls, M. R., Tian, W., Rockson, S. G. Lymphatic dysfunction, leukotrienes, and lymphedema. Annu Rev Physiol. 80, 49-70 (2018).
- Biswas, L., et al. Lymphatic vessels in bone support regeneration after injury. Cell. 186 (2), 382-397.e24 (2023).
- Dimitriou, R., Tsiridis, E., Giannoudis, P. V. Current concepts of molecular aspects of bone healing. Injury. 36 (12), 1392-1404 (2005).
- Arslan, H., et al. Effect of lymphedema on the recovery of fractures. J Orthop Sci. 12 (6), 578-584 (2007).
- Cheon, H., Kim, S. A., Kim, B., Jeon, J. Y. Investigation of optimizing indocyanine green solution for in vivo lymphatic research using near-infrared fluorescence indocyanine green lymphangiography. Sci Rep. 13 (1), 14966(2023).
- Polomska, A. K., et al. Minimally invasive method for the point-of-care quantification of lymphatic vessel function. JCI Insight. 4 (4), e126515(2019).
- Wang, F., Weng, Y., Geng, J., Zhu, J. A narrative review of indocyanine green near-infrared fluorescence imaging technique: A new application in thoracic surgery. Curr Challenges Thorac Surg. 3, 35-35 (2021).
- Zheng, Y., et al. Lymphatic platelet thrombosis limits bone repair by precluding lymphatic transporting damps. Nat Commun. 16 (1), 829(2025).
- Kim, K. M., Kim, K. Y. Lymphangiogenesis after nonvascularized lymph node transplantation: Lymphangiographic findings in mice and minipigs. PLoS One. 18 (12), e0295836(2023).
- Zhang, P. H., et al. Efficient pulmonary lymphatic drainage is necessary for inflammation resolution in ARDS. JCI Insight. 9 (1), e173440(2024).
- Kenney, H. M., et al. Persistent popliteal lymphatic muscle cell coverage defects despite amelioration of arthritis and recovery of popliteal lymphatic vessel function in TNF-TG mice following anti-TNF therapy. Sci Rep. 12 (1), 12751(2022).
Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.
Yeniden basım ve izinler
