Etik ifade
Tüm hayvan prosedürleri Fujian Ambry Biyoteknoloji Laboratuvarı Hayvan Etik Komitesi onay numarası: IACUC FJABR2024031202) tarafından incelenip onaylanmıştır. Tüm hayvan deneylerini onaylı kurumsal hayvan bakım ve kullanım protokolüne uygun olarak gerçekleştirmek.
SDD ve ibuprofen hazırlığı
SDD, Shixiao San (9 g), Xiangfu (9 g), Moyao (6 g), Guizhi (9 g), Weilingxian (12 g), Shijianchuan (20 g), Yanhusuo (12 g), Danggui (9 g), Liujinu (15 g) ve Xiaohuixiang (5 g)dan oluşmaktadır. Shixiao San, Puhuang (4,5 g) ve Wulingzhi (4,5 g) karakterlerinden oluşur. Tüm bitkisel bileşenler konsantre granül olarak kullanıldı ve Malzeme Tablosu'nda listelenmiştir. SDD, 106 g konsantre granülleri 200 mL kaynar suda çözerek nihai konsantrasyon olarak 0,53 g/mL ham ilaç eşdeğeri elde ederek hazırlanır. Granüller tamamen çözünene kadar iyice karıştırın, çözeltiyi oda sıcaklığında soğutun ve her uygulamada 2,5 mL/kg gastrik garajla uygulanır. Ibuprofen süspansiyonunu intragastrik garaj için gerekli konsantrasyona göre hazırlayın. Pozitif kontrol tedavisi olarak 0.02 g/kg ibuprofen uygulanır.
Hayvanlar ve gruplaşma
Belirli patojensiz sınıfta, 2–3 aylık ve 200 ± 20 g ağırlığında, hamilelik veya çiftleşme öyküsü olmayan 36 sağlıklı yetişkin Sprague-Dawley faresi kullanın. Fareleri 22 ± 2 °C ve %50–70 göreli nemde 12 saat/12 saat ışık/karanlık döngüsünde tutun, standart yemek ve içme suyuna ücretsiz erişim. 1 haftalık aklimatizasyondan sonra, fareleri rastgele altı gruba (her grup başına n = 6) ayrıldırın: blank, model, SDD, TEAP, SDD + TEAP ve ibuprofen grupları.
QSBSPD model hazırlama ve yönetimi
Bu deneyde, yaygın olarak kabul gören OT kaynaklı dismenore modeli kullanıldı. Kısaca, sıçan estrous döngüleri vajinal smear ile değerlendirildi. Fareler, estros döngü süreleri 4–5 gün olarak belirlenirse çalışmaya dahil edilmeye uygun görüldü.
Boş grup hariç, deneysel gruplardaki farelere 10 gün boyunca günde bir gün boyunca deri altı estradiol benzoat ve epinefrin hidroklorür enjeksiyonu verildi. Günlük 0,9 mg/kg dozda epinefrin hidroklorür enjekte edildikten sonra, fareler çeşitli kombine uyarlamalara maruz kaldılar (A: Akustik uyarım: sıçanlar, günde 3–4 kez, 5 dakika boyunca akustik uyarıcılara (90 dB, 1 kHz) maruz kaldılar ve her seferinde 2 saat aralık bırakıldı. B: Işık uyarımı: Fareler günde 3–4 kez, 5 dakika boyunca yanıp sönen ışık uyarıcılarına maruz kaldılar, her sefer arasında 2 saat aralık verildi. C: Elektriksel uyarım: sıçanlara 30–35 V'da elektriksel uyarıma (iki fazlı kare dalga darbeleri) maruz bırakıldı, her 2 saniyede 0,3 saniye boyunca alternatif akım uygulandı. Bu uyarım her 2 saatte 5 dakika boyunca, günde 2–4 kez uygulandı. D: Kısıtlama: Fareler, yaklaşık 25 cm uzunluğunda ve 5 cm çapında dikenli telden yapılmış bir kısıtlama kafesine yerleştirildi. Kafese girdikten sonra, uçları sıkıldı, böylece fareler hareketsiz kaldıldı ve günde bir kez 2 saat boyunca hareketlerini kısıtladı). Ayrıca, 1. ve 10. günlerde sıçanlara deri altı yoluyla 5.0 mg/kg/gün estradiol benzoat enjekte edildi ve 2–9. günlerde 2.5 mg/kg (kg/gün) verildi.
Estradiol benzoat enjeksiyonunun 5. gününden itibaren, farelere 7 gün boyunca farklı in-gastrik ilaçlar verildi; günde iki kez sabah 10:00 ve 16:00'te ibuprofen grubu hariç; grup ise günde bir kez saat 10:00'da aldı. Blank, model ve TEAP gruplarında farelere 2,5 mL/kg normal salin verildi. SDD ve TEAP+SDD gruplarında, sıçanlar 2,5 mL/kg SDD aldı (200 mL suda çözünmüş 106 g ham ilaç olarak hazırlanmış, 0,53 g/mL); Bu doz, vücut yüzey alanı eşdeğerliğine göre yetişkin klinik günlük dozu olan 106 g'den dönüştürülerek fare eşdeğeri bir doz elde edilmiştir. İbuprofen grubunda, fareler 0,02 g/kg ibuprofen süspansiyonu aldı. TEAP ve TEAP+SDD gruplarında, fareler östradiol benzoat enjeksiyonundan sonraki 5. günden itibaren TEAP stimülasyonu aldı. Elektrotları, daha önce rapor edilen fare akupunktur lokalizasyonu standardına göre tanımlanan iki taraflı Jiaogan, Shenmen, Neishengzhiqi ve Neifenmi kulaknoktalarına bağlayın 12. Bu noktalar, vagus siniri tarafından innerve edilmiş iki taraflı kulak konksal boşluğunda yer alır. Elektrotlar, günde bir kez 20 dakika (frekans: 20 Hz; yoğunluk: 1 mA) sürekli dalga ileten elektronik iğne terapi cihazına bağlandı. TEAP+SDD grup fareleri, ilk SDD garajından sonra her gün TEAP tedavisi gördüler. Son TEAP uyarısı, OT'nin intraperitoneal enjeksiyonundan önce yapıldı.
Son estradiol benzoat enjeksiyonundan 24 saat sonra, yani 11. günde, son intragastrik uygulamadan 1 saat sonra, boş ve TEAP grupları hariç, diğer gruplardaki fareler intraperitoneal enjeksiyonla her sıçan başına 2 U OT aldı. TEAP grubundaki fareler, son TEAP uyarısından sonra her sıçan başına 2 U dozda intraperitoneal OT enjeksiyonu geçirdi. Boş gruptaki fareler OT enjeksiyonu almamıştı. Bu protokol, QSBSPD'nin bir fare modelini başarıyla oluşturdu. Genel hayvan seçimi, model hazırlığı, ilaç uygulama programı, TEAP uyarı parametreleri ve kulak noktası konumları Şekil 1'de özetlenmiştir.
Wright-Giemsa boyama
Estros döngüsü, vajinal lekelerin Wright-Giemsa boyamasıyla belirlenmiştir. Steril pamuklu çubuk %0,9 sodyum klorür çözeltisi ile nemlendirildi ve vajinal kanala nazikçe 0,5–1,0 cm derinlikte yerleştirildi. Sürüntü 1–2 kez döndürülerek vajinal eksfoliasyon hücreleri toplandı ve örnek bir yönde temiz bir cam slayt üzerine eşit şekilde sürüldü. Leke oda sıcaklığında hava kurutulmuştu. Lekeyi kapatmak için Wright-Giemsa boyama çözeltisi eklendi ve 5 dakika kuluçka edildi. Daha sonra boyama çözeltisine eşit hacimde fosfatla tamponlanmış tuzlu su eklendi ve boyama işlemi 5 dakika daha devam etti. Kaydırak, ultra saf suyla üç kez nazikçe durulandı, hava kurutuldu ve ışık mikroskobu altında incelendi. Estros döngüsünün aşaması, çekirdekli epitel hücreleri, kornifikasyon epitel hücreleri ve lökositler dahil olmak üzere baskın hücre tiplerine göre tanımlandı.
Örnek koleksiyonu
Fareler, %3 ila %5 arasında izofloran konsantrasyonu ayarlanmış anestezi indüksiyon kutusuna yerleştirildi. Fareler bilinçlerini kaybettikten sonra ameliyat masasına nakledildiler ve maske takarak anestezi altında tutuldular. Konsantrasyon %1,5'e %2,5'e indirildi. Farenin karın tüyleri makasla kesildi ve ardından topikal alkol uygulamasıyla dezenfekte edildi. Orta karın hattı boyunca 2–3 cm kesi yapıldı. Rahmin bir tarafı ve bağları dışa çıkarıldı ve rahim yüzeyine yapışan yağ dokusu kesildi. Rahim dokusu daha sonra dikkatlice izole edildi. Eğer fare örnekleme sonrası hâlâ yaşıyorsa, CO₂ asfiksiyle ötenazi yapın.
Hematoksilin ve eozin (HE) boyama
Rahim dokuları sabitlendi, parafine gömüldü ve 5 μm kalınlıkta kesitlendi. Bölümler iki kez ksilende, her biri 10 dakika boyunca mumdan arındırılmıştır. Bölümler ardışık olarak mutlak etanolde iki kez 5 dakika boyunca yeniden sulandırıldı, ardından 5 dakika boyunca %95, %90, %80 ve %70 etanol eklendi. Bölümler ultra saf suyla durulandı. Hematoksilin boyama işlemi 5 dakika boyunca yapıldı ve bölümler fazla boya kalmayana kadar suyla durulandı. Bölümler, mavrulaştırmak için 5 dakika boyunca fosfatla tamponlanmış tuzlu suyla daldırıldı. Bölümler 1 dakika boyunca eosin ile boyandı ve suyla durulandı. Daha sonra, bölümler %95 etanol ile 10 dakika ve mutlak etanol ile 10 dakika kurutuldu, 10 dakika ksilen ile temizlendi ve nötr reçine ile monte edildi. Temsil görüntüler ışık mikroskobu veya dijital slayt tarayıcısı kullanılarak alındı.
Enzimle bağlantılı immünosorbent testi (ELISA)
Taze rahim dokuları, kalan kan almak için önceden soğutulmuş fosfatla tamponlu tuzlu suyla durulandı. Her doku örneği tartıldı, küçük parçalara bölündü ve önceden soğutulmuş fosfatla tamponlanmış tuzlu sönümde doku-tampon oranı 1:9 ile homojenleştirildi. Homojenat, 5000 × g sıcaklıkta 4 °C'de 5–10 dakika boyunca santrifüjlendi ve üst yüzey sonraki analiz için toplandı. IL-1β, IL-6, TNF-α, PGF2α ve PGE2 seviyeleri, üreticinin talimatlarına göre sıçan ELISA kitleri kullanılarak ölçüldü. Tüm reaktifler ve mikroplaka şeritleri kullanımdan önce oda sıcaklığında dengelenmiştir. Belirlenen kuyulara standartlar veya örnekler (50 μL) eklendi. Boş kuyular hariç her kuyuya yaban turpu peroksidaz konjuge algılayıcı antikor (100 μL) eklendi ve plaka mühürlenip 60 dakika boyunca 37 °C'de kuluçka edildi. Sıvı atıldı ve her kuyu seyreltilmiş yıkama tamponu ile beş kez yıkandı. Daha sonra, her kuyuya 50 μL substrat A ve 50 μL substrat B eklendi, ardından 37 °C'de karanlıkta 15 dakika kuluçka yapıldı. Her kuyuya stop çözeltisi (50 μL) eklendi ve optik yoğunluk 15 dakika içinde 450 nm olarak ölçüldü. Örnek konsantrasyonları standart eğrilerden hesaplandı.
Nicel gerçek zamanlı PCR (qRT-PCR)
Toplam RNA, üreticinin talimatlarına göre rahim dokularından toplam RNA ekstraksiyon reaktifi kullanılarak çıkarıldı. Kısa süreliğine, doku sıvı azotla öğütüldü ve 1 mL RNA ekstraksiyon reaktifi eklendi. Lizat, oda sıcaklığında 5 dakika kuluçka edildi. Ardından kloroform (200 μL) eklendi ve karışım 15 saniye sertçe çalkalandı, oda sıcaklığında 5 dakika kuluçka edildi ve 12.000 × g sıcaklığında 4 °C'de 12 dakika santrifüjlendi. Sulu faz, yeni bir tüpe aktarıldı, eşit hacimde izopropanol ile nazikçe karıştırıldı ve −20 °C'de 15 dakika kuluçka edildi. Örnekler 12.000 × g sıcaklıkta 4 °C'de 10 dakika boyunca santrifüjlendi, süpernatant atıldı ve RNA pelleti %75 etanol ile yıkandı. Pellet hava ile kurutulup RNase içermeyen suda çözünürdü. RNA konsantrasyonu ve saflığı mikrohacimli spektrofotometre kullanılarak belirlendi. Genomik DNA çıkarıldı ve cDNA, ters transkripsiyon reaktif talimatlarına göre sentezlendi. Genomik DNA çıkarımı için, toplam RNA genomik DNA çıkarma reaktifiyle 42 °C'de 5 dakika boyunca kuluçka yapıldı ve ardından buz üzerine konuldu. Ters transkripsiyon 50 °C'de 15 dakika uygulandı, ardından 5 dakika boyunca 75 °C ile reaksiyonu sonlandırdı.
Gerçek zamanlı PCR, SYBR Yeşil bazlı qPCR karışımı kullanılarak gerçekleştirildi. Her 20 μL reaksiyonda 2 μL cDNA, 0,4 μL ön primer, 0,4 μL ters primer, 10 μL 2× SYBR qPCR karışımı ve 7,2 μL nükleaz içermeyen su içeriyordu. QPCR şu döngü programıyla yapıldı: 95 °C 1 dakika; 40 döngü: 20 saniye için 95 °C, 20 saniye için 56 °C ve 38 saniye için 72 °C; ardından erime eğrisi analizi yapılır. GAPDH iç kontrol olarak kullanıldı ve göreli mRNA ekspresyonu 2−ΔΔCt yöntemiyle hesaplandı. Her biyolojik örnek teknik üçlü olarak ölçüldü. Teknik üçlüklerin ortalama Ct değeri, her biyolojik replikasyon için ΔCt ve göreli mRNA ifadesi hesaplamak için kullanıldı. Primer dizileri şöyledir: PPAR-γ2, ileriye 5′-CGGAAGCCCTTGGTGACTT-3′ ve ters 5′-CTCGATGGGCTTCACGTTCA-3′; COX-2, ileriye 5′-AACCAGGTGAACTTCGTCTATTAG-3′ ve geri 5′-GGTCGGTTGATGTCACTGTA-3′; GAPDH, ileriye 5′-GGTTGTCTCCTGCGACTTCA-3′ ve ters 5′-GGTGGTCCAGGGTTCTTACTC-3′.
İstatistiksel analiz
Veriler istatistiksel yazılım kullanılarak analiz edildi. Tüm nicel veriler ortalama ± standart sapma olarak sunuldu. qRT-PCR analizi için, her biyolojik replikasyon için önce teknik üçlü ortalamalar yapıldı ve biyolojik kopyalama değerleri kullanılarak istatistiksel analiz yapıldı. Birden fazla grup arasında karşılaştırmalar, varyansın tek yönlü analizi ve verilerin normallik ve varyans homojenliği varsayımlarını karşıladığında Bonferroni sonrası testleri kullanılarak gerçekleştirildi. İstatistiksel anlamlılık P < 0.05 olarak tanımlandı.