Tüm hayvan prosedürleri Nanchang Tıp Fakültesi Hayvan Refahı ve Etik Komitesi tarafından incelenip onaylandı (onay no. NY2SC 20250407). Tüm deneyler, laboratuvar hayvanlarının bakımı ve kullanımı için kurumsal yönergelere uygun olarak gerçekleştirilmiştir. Kimyasallar, reaktifler ve ekipmanlar Malzeme Tablosu'nda listelenmiştir.
1. Hayvanlar ve tedavi
Bu çalışmada erkek C57BL/6J fareleri (vahşi tipli, 8 haftalık) kullanıldı. Hayvanlar, kontrol edilen sıcaklık ve nem koşullarında standart laboratuvar koşullarında barındırıldı ve ücretsiz yiyecek ve suya erişim sağlandı. Aklimatizasyonun ardından, içme suyuna üç döngü boyunca %2,5 dekstran sülfat sodyum (DSS) verilerek kronik kolit indüklenmiştir. Her döngü 1 hafta sürdü ve düzenli içme suyu ile 2 haftalık bir iyileşme dönemi ile ayrıldı. Deneysel protokolün son haftasında, model ve tedavi gruplarındaki farelere tümör nekroz faktörü alfa (TNF-α; günde iki kez 10 μg/100 g vücut ağırlığı) verildi ve bu da kolonik hasarı daha da kötüleştirdi. Normal kontrol fareleri sadece araç aldı ve DSS veya TNF-α'ye maruz kalmadı.
Beş aromalı Sophora flavescens enterik kapsulları (FSEC), ticari olarak mevcut ve onaylı Çin patentli ilaç olarak kullanıldı. Formülasyon Sophora flavescens Aiton, Sanguisorba officinalis L., Indigo naturalis, Bletilla striata (Thunb.) içeriyordu. Rchb.f. ve Glycyrrhiza uralensis Fisch. ex DC. Aynı üretim partisinden kapsül içerikleri tartıldı ve steril damıtılmış suda askıya alınarak taze dozlama süspansiyonları hazırlandı. Her gavajdan önce süspansiyonlar iyice karıştırıldı ve böylece eşit dağılım sağlandı. Ürün kaynağı, onay numarası, ilaç spesifikasyonları ve kalite kontrol bilgileri Malzeme Tablosu'nda yer almaktadır. Ürün kalitesi, kapsül spesifikasyonları, görünüm, enterik salınım ve ayrışma gereksinimleri, mikrobiyal sınır gereksinimleri ve kalite kontrol standartları dahil olmak üzere üretici tarafından sağlanan bilgilere uygun olarak tanımlanmıştır.
FSEC ile tedavi edilen fareler, modellemenin son haftasında günde iki kez intragastrik gaaj ile düşük doz FSEC (108 mg/kg vücut ağırlığı), orta doz FSEC (216 mg/kg vücut ağırlığı) veya yüksek doz FSEC (432 mg/kg vücut ağırlığı) aldı. Doz seviyeleri, onaylanmış klinik doz, vücut-yüzey alanı dönüşümü ve ön doz aralığı değerlendirmelerine göre seçildi. Araçla tedavi edilen fareler de aynı miktarda steril damıtılmış su intragastrik garajla almıştır.
Pozitif kontrol grubu, modellemenin son haftasında kuyruk damarı enjeksiyonu yoluyla TLR4 antagonisti CRX-526'yı 1 mg/kg ile aldı. CRX-526, referans anti-inflamatuar müdahale olarak kullanıldı. Çalışmada altı grup (n = 6 grup başına 6) yer aldı: normal kontrol, model, düşük dozlu FSEC, orta dozlu FSEC, yüksek dozlu FSEC ve CRX-526 pozitif kontrol grupları. Fareler, son çalışma tedavisinden 24 saat sonra kurban edildi. Ötenazi, laboratuvar hayvanlarının bakımı ve kullanımı için kurumsal yönergelere uygun olarak, izofluran anestezi altında servikal dislokasyon ile gerçekleştirilmiştir.
2. Hematoksilin ve eozin boyama ile histolojik değerlendirme
Kolon dokuları, anüs ile ileosekal bölge arasındaki makroskopik olarak en çok etkilenen bölgeden toplandı. Her fare için, bu bölgeden bir temsilci kolon segmenti %10 nötr tamponlu formalin ile sabitlenmiş, parafine gömülü, kesitlenmiş ve hematoksilin ile eosin ile boyanmıştır. Histolojik değerlendirme için her hayvandan en az üç bölüm hazırlanmış ve her bölüm için örtüşmeyen beş yüksek güçlü alan incelenmiştir. Alanlar, yırtık, katlanmış veya kötü lekelenmiş alanlardan kaçınarak kesit bir kenardan diğerine taranarak rastgele seçildi. Histopatolojik değişiklikler, mukozal ülserasyon, bez yok oluşu, tıkanıklık ve iltihaplayıcı hücre infiltrasyonu gibi histopatolojik değişiklikler ışık mikroskopisi altında değerlendirildi.
3. Oksidatif stresle ilişkili biyokimyasal göstergelerin ölçümü
Kan örnekleri (0,5 mL) antikoagülan içeren tüplere toplandı ve yaklaşık 1160 × g sıcaklığında 4 °C'de 10 dakika boyunca santrifüj edildi. Süpernatant, üreticilerin talimatlarına göre Malzeme Tablosu'nda listelenen ilgili test kitleri kullanılarak serum demiri, süperoksit dismutaz (SOD), glutatyon (GSH), katalaz (CAT) ve miyeloperoksidaz (MPO) seviyelerini ölçmek için kullanıldı.
4. JAK2 ve STAT3'ün immünohistokimyasal analizi
Parafinle gömülü kolon dokusu kesitleri (5 μm) ksilen içinde deparafinize edildi, derecelendirilmiş etanol serisi ile yeniden hidratlandırıldı ve fosfatla tamponlanmış tuzlu suyla durulandı. Antijen toplama, mikrodalga ısıtma kullanılarak sitrat tamponunda (pH 6.0) gerçekleştirildi. Oda sıcaklığına soğuduktan sonra, endojen peroksidaz aktivitesi %3 H₂O₂ ile 10 dakika boyunca engellendi. Bölümler, oda sıcaklığında %5 normal keçi serumu ile 30 dakika boyunca bloklandı ve gece boyunca 4 °C'de JAK2 ve STAT3'e karşı birincil antikorlarla inkübe edildi; sırasıyla 1:50 ve 1:80 seyreltmelerde. Fosfatla tamponlu tuzlu yıkamaların ardından, bölümler üreticinin talimatlarına göre yaban turpu peroksidaz ile konjuge edilmiş ikincil antikor ile kuluçka yapıldı. İmmünoreaktif sinyaller 3,3′-diaminobenzidin kullanılarak görselleştirildi ve çekirdekler hematoksilin ile karşı boyandı. Bölümler susuz bırakıldı, monte edildi ve ışık mikroskobu altında incelendi.
5. Enzimle bağlantılı immünosorbent testi ile sitokin nicelenmesi
Kolon dokuları 2–3mm 3 parçaya kesildi, fosfatla tamponlanmış tuzlu sönümde buz üzerinde homojenleştirildi ve 12.000 × g sıcaklıkta 4 °C'de 15 dakika boyunca santrifüjlendi. Süpernatant toplandı ve TNF-α, IL-1α ve IL-13 konsantrasyonları, üreticilerin talimatlarına uygun olarak ilgili ELISA kitleriyle ölçüldü. Absorbans değerleri mikroplaka okuyucu kullanılarak ölçüldü ve sitokin konsantrasyonları her test için oluşturulan standart eğrilerden hesaplandı.
6. Ferropozla ilişkili proteinlerin Western blot analizi
Kolon dokularından toplam proteinler çıkarıldı ve protein konsantrasyonları bisinkoninik asit testi kullanılarak belirlendi. Her örnekten eşit miktarda protein SDS-PAGE ile ayrılarak membranlara aktarıldı. Oda sıcaklığında %5 yağsız süt veya eşdeğer bir bloklayıcı tampon ile 2 saat bloke edildikten sonra, membranlar Malzemeler Tablosu'nda listelenen GPX4, FTH1, ACSL4 ve yükleme kontrol proteini β-aktine karşı birincil antikorlarla 4 °C'de gece boyunca kuluçka geçirildi. Ertesi gün, zarlar oda sıcaklığında 2 saat boyunca karşılık gelen yaban turpu peroksidaz ile konjuge ikincil antikor ile yıkanıp kuluçka altına alındı. Protein bantları kemilyünesan bir alt alt yüzeyle görselleştirilmiş ve kemilyüminsans görüntüleme sistemi kullanılarak görüntülenmiştir. Bant yoğunlukları densitometri yazılımı kullanılarak nicelendirildi. GPX4, FTH1 ve ACSL4 ekspresyon seviyeleri β-aktine normalleştirildi ve istatistiksel analiz için göreceli protein ekspresyonu hesaplandı.
7. İstatistiksel analiz
Veriler ortalama ± standart sapma (SD) olarak sunulur. Birden fazla grup arasında karşılaştırmalar, varyansın tek yönlü analiziyle yapıldı, ardından normallik ve varyans homojenliği varsayımları sağlandığında Bonferroni'nin sonradan yaptığı test yapıldı. P < 0.05 değeri istatistiksel olarak anlamlı olarak kabul edildi.