Yöntem makalesi

Farelerde Renal Iskemi-Reperfüzyon Yaralanması sırasında Lazer Lek Kontrast Görüntüleme ile Mikrovasküler Perfüzyon İzlenen

DOI:

10.3791/70762

⸱

27 Şubat 2026

 ,  ,  ,  ,  , 
1Department of Cardiology, First Affiliated Hospital & Cardiovascular Research Center, Shantou University Medical College

* These authors contributed equally

Bu makalede

Özet

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Farelerde sağ böbreğin rezeksiyonundan sonra tek taraflı böbrek iskemi-reperfüzyon sırasında böbrek mikrovasküler kan akışındaki değişiklikleri izlemek için lazer lek kontrast görüntüleme sistemi kullanıldı.

Özet

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Lazer benek kontrast görüntüleme (LSCI), geniş alanlarda yüzeysel kan perfüzyonu ölçmek için kullanılan invaziv olmayan bir tekniktir. Yüksek mekansal zamansal çözünürlüğüyle LSCI, görüntülenen alandaki farklı bölgelerde heterojen kan akışı değişikliklerini yarı nicelikle ifade eder. Burada, farelerde tek taraflı böbrek iskemi-reperfüzyon yaralanması (IRI) sırasında kan akışını kaydetmek için LSCI tekniğini gösteriyoruz. Sağ nefrektomi sonrasında, farenin konumu ve LSCI sisteminin hedefinin odak noktası sol böbreğin görüş alanında olmasını sağlamak için ayarlandı. LSCI taramaları, böbrek iskemisi öncesi, sırasında ve sonrasında yapıldı. Ayrıca, ilgi çekici bölgeler (ROI) seçilerek, bölgelerdeki kan akışı aynı anda izlendi. LSCI yöntemi, böbreğin mikrovasküler perfüzyonunu görselleştirir ve kan akışının gerçek zamanlı haritalanmasına olanak tanır. Mikrovasküler kan akışını izlemek ve fare, böbrek IRI veya benzeri hayvan modelleri sırasında bir müdahalenin reperfüzyon kinetiği ve mekansal homojenlik üzerindeki etkisini değerlendirmek için kullanılabilir.

Giriş

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Iskemi-reperfüzyon yaralanması (IRI), akut böbrek yaralanmasının (AKI) başlıca nedenlerinden biridir ve hastalarda yüksek morbidite ve yüksek ölüm oranıylailişkilidir 1,2. Böbrek hemodinamiğindeki değişim, IR kaynaklı AKI1'in kritik faktörlerinden biridir. IR ile uyarılan mikrosirkülasyon disfonksiyonu, yaralanmanın gelişiminin başlıca nedenlerinden biridir ve hücrelerde oksijen eksikliğine ve mitokondriyal işlevbozukluklarına yol açar 3,4. Bu nedenle, kan akışı değişikliklerini gerçek zamanlı izlemek, böbreğin başarılı iskemi veya reperfuzyonunu sağlamak ve hayvan modellerinde IRI derecesini değerlendirmek için etkili bir yöntemdir.

Dokuların mikrovasküler perfüzyonu ölçmek için lazer Doppler akışmetrisi (LDF)5, nikotinamid adenin dinükleotid dehidrojenaz (NADH) otofloresan görüntüleme 6,7,8, kızılötesi görüntüleme9 ve indosiyanin yeşili (ICG) anjiografi10 dahil olmak üzere birden fazla teknik bulunmaktadır. Bunlar arasında, kızılötesi görüntüleme ve NADH otofloresan görüntüleme dolaylı olarak mikrovasküler perfüzyonu ölçer. LDF, optik prob kullanarak yalnızca bölgesel kanakışını izler 5 ve tarama LDF, doku mikrovasküler perfüzyonundaki gerçek zamanlı değişiklikleri I/Rkoşullarında izlemek için yeterince hızlı değildir 11. ICG anjiyografisi ayrıca böbrek tıkanmışdamarları 10 tespit edebilir ancak bir kontrast maddesi uygulanmasını gerektirir; bu da kullanımını sınırlı sayıda ölçümlesınırlar 12. Lazer benek kontrast görüntüleme (LSCI), gerçek zamanlı olarak böbrek mikroperfüzyonu izlemek için etkili, invaziv olmayan biryöntemdir 13. Kan akışı dinamikleriyle ilgili mekansal olarak çözülen bilgilerin üretilmesi için kullanılmıştır. Koherent bir ışın pürüzlü bir yüzeye yönlendirildiğinde, yansıyan veya saçılmış ışık dalgaları küçük yol farkları nedeniyle birbirleriyle etkileşime girer ve "speckle" olarak bilinen rastgele parlak ve koyu nokta desenleri dağılımını oluşturur. LSCI, yüzeysel dokularda kan akış hızını, lazer ışığı dokuya ışınladığında oluşan "dinamik benek"in bulanıklık derecesinianaliz ederek haritalandırır. 12,14,15. Bu çalışmada, LSCI sistemi 785 nm lazer dalga boyunda, 3 μm uzamsal çözünürlükte, görüş alanı 6,3 mm × 4,7 mm ve 42 mm × 31 mm arasında ayarlanabilen ve saniyede 120 kare görüntü hızına kadar çalışarak kortikal mikrovasküler perfüzyonun yüksek çözünürlüklü, gerçek zamanlı haritalanmasını mümkün kılmıştır. Bu avantajlar ışığında, LSCI kan akışı takibi için çeşitli deneysel ve klinik bağlamlarda uygulanmıştır; bunlar arasında yanıkyaraları 16, retinalperfüzyon 17, beyin kanakışı 18, yemek borusu19 vebağırsak 20 dahildir.

LSCI'nin öncelikle yüzeysel dokudaki perfüzyonu değerlendirdiği, mutlak değil göreceli akış değerleri sağladığı ve doku optik özellikleri ile hareket artefaktları tarafından etkilenebileceği belirtilmelidir. Bu doğal özellikler, görüntüleme verileri yorumlanırken dikkate alınır.

Bu çalışma, kontralateral böbreğin maruziyeti ve görüntülemesini kolaylaştırmak için sağ nefrektomi içeren bir model kullanarak, LSCI kullanılarak tek taraflı böbrek I/R fare modelinde iskemi öncesi, sırasında ve sonrası mikrovasküler perfüzyon değişikliklerini izlemiş ve böbrek yüzeyindeki kan akışının mekansal heterojenliğini göstermiştir.

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Protokol

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Tüm hayvan prosedürleri, NIH Laboratuvar Hayvanlarının Bakımı ve Kullanımı Rehberi ile Laboratuvar Hayvanlarının Bakımı ve Kullanımı Rehberi'ne uygun olup, Shantou Üniversitesi Tıp Fakültesi Kurumsal Hayvan Bakımı ve Kullanımı Komitesi tarafından onaylandı. IRI etkilerindeki cinsiyet ve strain tabanlı farkları ortadan kaldırmak için çalışmada yalnızca erkek C57BL/6N fareleri kullanıldı. Tüm fareler yaş ve ağırlık açısından eşleştirilerek karşılaştırılabilir sonuçlar elde edildi. Örneklem büyüklüğü n = 5 olarak kullanıldı; bu, LSCI teknik doğrulama için kullanılan önceki metodolojik çalışmalarlatutarlı 21. Hayvanlar insancıl bakım gördü ve deneylerden sonra CO2 solumasıyla ötenazi edildi. Reaktifler ve kullanılan ekipmanlar Malzeme Tablosu'nda listelenmiştir.

Cerrahi işleme başlamadan önce, lazer benek kontrast görüntüleme sistemini açın. Bu çalışmada kullanılan sistem 785 nm lazer ile çalışır. Çalışma mesafesini cerrahi alanın yaklaşık 15-20 cm üzerinde ayarlayın. Sistem, mekansal kontrast algoritmasına dayanarak Lazer Lekesi Perfüzyon Birimleri (LSPU) içinde kan akışını hesaplar. Devam etmeden önce cihazın ısındığından ve stabil olduğundan emin olun.

1. Hayvan hazırlığı ve laparotomi

  1. Her işlemden önce ameliyat masası sterilize edilsin. Ameliyat masasına tüm gerekli malzemeleri (sterilize edilmiş aletler ve pamuk çubukları, gazlı bez, önceden seyreltilmiş anestezikler, ısıtma pedi, damar kelepçesi, tuzlu çözelti çözeltisi, depilatör krem, pamuk topları, dikişler, cilt antiseptikleri ve dikiş) ameliyat masasına yerleştirin.
  2. Ağrıyı hafifletmek için fareye 30 dakika önceden meloksikam (0,2 mg/kg vücut ağırlığı; deri altı enjeksiyon) uygulanır.
  3. Belirli miktarda sterilize edilmiş salineti temiz bir kaba dök. Sonra bir parça gazlı bez alın ve ortasından uygun bir açıklık açın.
  4. Bir fareyi %2,5 Tribromoethanol (400 mg/kg vücut ağırlığı; daha önce steril salinle seyreltilmiş) intraperitoneal enjeksiyonla anestezi edin.
    NOT: Sağ nefrektomi sürecinde anestezi olarak tribromoetanol kullanılmıştır. Ve kan akışını izlemek için uzun süreli işlemlerde anestezi için %1 izofluran kullanıldı.
  5. Fareyi bantla ısıtma pedine yerleştirin ve karın bölgesindeki tüyleri temizlemek için depilatör krem kullanın. Ameliyat boyunca, ısı pediyle rektal sıcaklık 37 °C ± 0,5 °C arasında tutulur.
  6. Cerrahi alandaki cildi önce %75 alkolle dezenfekte edin, ardından pamuk çubukla iodofor ile dezenfekte edin.
  7. Farenin parmağını sıkmak için forseps kullanın. Fare ağrı tepkisi göstermediğinde, makasla karın orta hattında dikey bir kesi yapın. Deriyi peritoneumdan nazikçe ayırın, ardından peritoneumu kesip karın boşluğuna girin.
  8. Fare'ye bir retraktor uygulayarak görüşü optimize edin ve ameliyat alanını gazlı bezle örtün, gazlı bez üzerindeki boşluğu karın boşluğuyla hizaladıktan sonra tuzlu su ile nemlendirin.

2. Sağ nefrektomi

  1. Pamuklu bir çubuk kullanarak bağırsağı gazlı bezin bir tarafına nazikçe iterek sağ böbreği ve çevresindeki dokuları açığa çıkarın. Gazlı bezi katlayarak bağırsağı kaplayın ve bağırsağın kurumasını önlemek için normal tuzlu suyla nemlendirin.
  2. Sağ üreteri kaldırmak için açılı forseps kullanın. İki adet 6-0 dikiş ipliğini üreter üzerinden geçirin ve iki pozisyonda ligasyon yapın.
  3. Mikromakas kullanarak iki bağ arasında üreteri kesin.
  4. Pamuk toplarını normal salinle nemlendirdikten sonra, ince forseps kullanarak pamuk topularını alın, karaciğeri nazikçe yukarı doğru itin ve pamuk toplarıyla sabitleyin; böylece sağ taraftaki böbrekler ve kan damarları ortaya çıkar.
  5. Sağ böbreğin yan tarafındaki perinefrik yağ pedlerini böbrek atarderi ve ven tamamen açıdan açılı olarak ayırmak için açılı forseps kullanın.
    NOT: Aynı anda böbreğin üzerindeki adrenal doku kütlesini ayırın.
  6. Açılı forsepsleri dikkatlice böbrek arteri ve venin altına kaydırarak bir kanal oluşturun. Sonra, damarların etrafına 6-0 ipek örgülü bir dikiş geçirerek onları birbirine bağlayın.
  7. Böbreğe yakın bulunan tıkanmış böbrek arteri ve ven kesildi. Böbreği ve kalan yapışkan dokuyu çıkarın.
  8. Karaciğeri tutmak için kullanılan pamuk topunu çıkarın.

3. Iskemi-reperfüzyon sırasında Lazer Lek Kontrast Görüntüleme (LSCI) ile böbrek kan akışının izlenmesi

  1. LSCI sistemini ve enstrümanın özel yazılımını açın.
  2. Cerrahi alanın ham, işlenmemiş görüntüsünü görmek için Orijinal Görüntü ve Önizleme'ye tıklayın.
  3. Farelerin konumunu değiştirin, burun konusundan 600 mL/dakika ile %1 izofluran ile anestezi sürdürün ve hedef böbreğin net görüşünü sağlamak için orijinal görüntüyü gözlemleyerek kameranın büyütmesini ayarlayın.
  4. Gerçek zamanlı kan akışı görüntüsünü görmek için Eşzamanlı Ekrana tıklayın. Büyütmeyi 2.5× olarak ayarlayın ve görüntüyü optimize etmek için Otomatik Kan Akışı Ayarını seçin. Sonra, kan akışı parametrelerini kilitleyin. Ayrıca, her 5000 ms'de bir fotoğraf karesini kaydedecek şekilde ayarlayın.
    NOT: Islak pamuk topları, böbreğin stabil konumunu sağlamak ve çevresindeki organ ile dokuları ondan korumak için kullanılabilir; böylece böbrek alanı ile arka plan arasındaki ayrımı güçlendirir.
  5. Kare alan parametrelerinin boyutunu 112'ye ayarlayın ve böbrek görünümünde 5 kare alanı sabit bir konumda eşit şekilde düzenleyin. Kan akışı verilerini kaydetmeye başlamak için Gerçek Zamanlı Görüntü Kaydı ve Kaydı üzerine tıklayın.
    NOT: Makine, ROI'larda gerçek zamanlı kan akışı birimlerini temsil eden ve analizler için kullanılabilecek lazer lekesi perfüzyon birimlerini (LSPU) otomatik olarak kaydeder. Tespit süreci sırasında, nefes alma ile ilgili hareket veya çevresel değişiklikler görüş alanının kaymasına neden olabilir. Eğer sistem bunu algılama alanında gösteriyorsa, akım kaydı durdurulmalıdır. Sonra Gerçek Zamanlı Görsel Kaydı ve tekrar kaydet .
  6. 30 dakikalık bir başlangıç kaydedildikten sonra, sol böbrek damarlarını çevreleyen yağ dokusunu ayırın. Hemostatik forseps kullanarak bir mikroclamp tutun ve hilum yakınındaki sol böbrek arteri ile damarın üzerine yerleştirin. Gerçek zamanlı izlemeye 30 dakika daha devam et.
  7. Mikro-kelepçeyi serbest bırakarak reperfüzyonu başlatın. Böbrek mikrovasküler kan akışının gerçek zamanlı iyileşmesini takip edin ve kaydedin.
  8. Kan akışı reperfüzyonu en az 60 dakika takip edildikten sonra, izlemeyi durdurun ve karın kesisini 7-0 ipek örgülü dikişle dikin.

4. Ameliyat sonrası iyileşme ve bakım

  1. Ameliyattan sonra dehidrasyonu önlemek için intraperitoneal 1 mL salin enjeksiyonu ile sıvı verin.
  2. Fareleri ısı pedinde tutun. Fareleri bilinçlerine kavuşana kadar dikkatle izleyin, uyanık göründükleri ve kendilerini düzeltebilecek kadar dikkatli olun.

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Sonuçlar

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Bu makale, IR kaynaklı AKI sırasında böbrek kan akışındaki değişiklikleri tespit etmeyi amaçladı. Bu nedenle, sağ nefrektomi (Şekil 1A) ve ardından kontralateral böbrekte IR prosedürü (Şekil 1B) içeren yaygın bir fare modeli kullandık. IRI sırasında kan akışının gerçek zamanlı izlenmesi gerektiğinden, fareler üzerindeki tüm manipülasyonlar tüm süreç boyunca enstrüman bölgesinde gerçekleştirildi (Şekil 1C

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Tartışma

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Bu çalışma, farelerde IRI sırasında böbrek mikrovasküler kan akışı dinamiklerinin gerçek zamanlı, yüksek çözünürlüklü görselleştirilmesi için bir LSCI sisteminin uygulanmasını açıklamaktadır. Protokol, böbrek mikrosirkülasyonundaki bölgesel heterojenliği yakalayan iki boyutlu bir perfüzyon haritası sunarak geleneksel uç nokta ölçümlerine veya LDF gibi sınırlı uzamsal çözünürlüğe sahip yöntemlere karşı önemli bir avantaj sunar. LSCI'nin intraoperatif gerçek zamanlı izleme için verimliliği...

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Açıklamalar

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Yazarların açıklamak zorunda kalacak bir çıkar çatışması yoktur.

Teşekkürler

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Bu çalışma, Guangdong Eyaleti Üniversiteleri için Yenilikçi Ekip Araştırma Programı (2022KCXTD009) tarafından finanse edilmiştir.

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Malzemeler

Bu makalede kullanılan malzemelerin listesi
AdŞirketKatalog numarasıYorumlar
Anestezi için absorber kutusuShenzhen Laiyue Biotech Co., Ltd, Çin10-0210
Alkol, tıbbi (%75)HENGLIYA, Sincan, ÇinYokCilt dezenfektanı
Anestezik buharlaştırıcıMidmarkhttps://www.midmark.com/animal-health/products/anesthesia/detail/matrx-vip-3000-veterinary-vaporizer
Pamuk çubuklarıQingdao Hainuo Biyolojik Mühendislik Şirketi, Ltd, Çinhttps://www.hainuocn.com/index/detail/448.html
Yıkıcı kremVEEThttps://www.veet.com.cn/jingchun/whx
Gazlı sargıWinner Medical Co., Ltd, Shenzhen, Çinhttps://www.winnermedical.com/gauze-bandage.html
Isıtma pediRenqiu Dingsheng Isıtma Ekipmanları A., Ltd, ÇinHD-1902Vücut sıcaklığını korumak için
İyodofor çözümüTaixinkang, Jinxian, Çinhttps://www.11467.com/nanchang/co/120661.htmCilt antiseptik
İzofluranRWD Life Science Co., Ltd, ÇinR510-22-10Solun anestezi
Lazer benek kontrast görüntüleme (LSCI) sistemiHubei Xunwei Optoelektronik Teknoloji A., Ltd, ÇinSIM BFI HR PROMoorFLPI-2 eşdeğer sistem
MeloksicamQilu Hayvan Sağlığı Ürünleri A., Ltd, Çinhttps://en.qiludb.com/companion_animal/500.htmlvücut ağırlığının kilogramı başına 0,2 mg; Analjezik
Mikro-kelepçeShanghai Medical Instrument(Group) Co., Ltd, ÇinW40140Damar kelepçesi
Normal salin (%0,9 sodyum klorür)Cisen Pharmaceutical Co., Ltd, Çinhttps://www.cisen-pharma.com/index/shows?catid=42&id=62
İpek örgülü dikiş (6-0)Yangzhou Fuda Tıbbi Cihazlar A., Ltd, Çinhttp://www.fdma.com.cn/products_detail/12.htmlDamar ligasyonu için
İpek örgülü dikiş (7-0)Wego Terumo (Weihai) Tıbbi Ürünler A., Ltd, Çinhttps://www.weigaoholding.com/Yara kapanması için, eğri iğneyle emilmez cerrahi dikişler
Şırınga (1 mL)Shandong Ande Sağlık Hizmetleri Cihazları A., Ltd, Çinhttps://www.andehealthcare.com/html/chanpinzhanshi/Medication-Delivery/syringes/131.html26 G iğneyle
TribromoetanolSigma-AldrichT48402-100G%2,5 çözeltti; Enjeksiyon Anestezi

Kaynaklar

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
  1. Weight, S. C., Bell, P. R., Nicholson, M. L. Renal ischaemia-reperfusion injury. Br J Surg. 83 (2), 162-170 (1996).
  2. Schrier, R. W., Wang, W., Poole, B., Mitra, A. Acute renal failure: Definitions, diagnosis, pathogenesis, and therapy. J Clin Invest. 114 (1), 5-14 (2004).
  3. Kosieradzki, M., Rowiński, W. Ischemia/reperfusion injury in kidney transplantation: Mechanisms and prevention. Transplant Proc. 40 (10), 3279-3288 (2008).
  4. Legrand, M., Mik, E. G., Johannes, T., Payen, D., Ince, C. Renal hypoxia and dysoxia after reperfusion of the ischemic kidney. Mol Med. 14 (7-8), 502-516 (2008).
  5. Zhu, X., et al. Ischemic preconditioning prevents in vivo hyperoxygenation in postischemic myocardium with preservation of mitochondrial oxygen consumption. Am J Physiol Heart Circ Physiol. 293 (3), H1442-H1450 (2007).
  6. Coremans, J. M. C. C., et al. Pretransplantation assessment of renal viability with NADH fluorimetry. Kidney Int. 57 (2), 671-683 (2000).
  7. Fitzgerald, J. T., Demos, S., Michalopoulou, A., Pierce, J. L., Troppmann, C. Assessment of renal ischemia by optical spectroscopy. J Surg Res. 122 (1), 21-28 (2004).
  8. Raman, R. N., Pivetti, C. D., Matthews, D. L., Troppmann, C., Demos, S. G. A non-contact method and instrumentation to monitor renal ischemia and reperfusion with optical spectroscopy. Opt Express. 17 (2), 894(2009).
  9. Gorbach, A. M., et al. Assessment of critical renal ischemia with real-time infrared imaging. J Surg Res. 149 (2), 310-318 (2008).
  10. Ietto, G., et al. Indocyanine green angiography for quality assessment of the kidney during transplantation: An outcome predictor prospective study. Transplant Proc. 53 (6), 1892-1896 (2021).
  11. Bezemer, R., et al. Real-time assessment of renal cortical microvascular perfusion heterogeneities using near-infrared laser speckle imaging. Opt Express. 18 (14), 15054(2010).
  12. Dunn, A. K. Laser speckle contrast imaging of cerebral blood flow. Ann Biomed Eng. 40 (2), 367-377 (2012).
  13. Heeman, W., et al. Real-time visualization of renal microperfusion using laser speckle contrast imaging. J Biomed Opt. 26 (05), 056004(2021).
  14. Briers, J. D. Laser speckle contrast analysis (LASCA): A nonscanning, full-field technique for monitoring capillary blood flow. J Biomed Opt. 1 (2), 174(1996).
  15. Boas, D. A., Dunn, A. K. Laser speckle contrast imaging in biomedical optics. J Biomed Opt. 15 (1), 011109(2010).
  16. Stewart, C. J., et al. A comparison of two laser-based methods for determination of burn scar perfusion: Laser Doppler versus laser speckle imaging. Burns. 31 (6), 744-752 (2005).
  17. Tamaki, Y., Araie, M., Kawamoto, E., Eguchi, S., Fujii, H. Noncontact, two-dimensional measurement of retinal microcirculation using laser speckle phenomenon. Invest Ophthalmol Vis Sci. 35 (11), 3825-3834 (1994).
  18. Kazmi, S. S., Richards, L. M., Schrandt, C. J., Davis, M. A., Dunn, A. K. Expanding applications, accuracy, and interpretation of laser speckle contrast imaging of cerebral blood flow. J Cereb Blood Flow Metab. 35 (7), 1076-1084 (2015).
  19. Ambrus, R., et al. Evaluation of gastric microcirculation by laser speckle contrast imaging during esophagectomy. J Am Coll Surg. 225 (3), 395-402 (2017).
  20. Knudsen, K., et al. Laser speckle contrast imaging to evaluate bowel lesions in neonates with NEC. Eur J Pediatr Surg Rep. 5 (1), e43-e46 (2017).
  21. Yin, L., et al. Laser speckle contrast imaging for blood flow monitoring in predicting outcomes after cerebral ischemia-reperfusion injury in mice. BMC Neurosci. 23 (1), 80(2022).
  22. Hren, R., Brezar, S. K., Marhl, U., Sersa, G. Laser speckle contrast imaging of perfusion in oncological clinical applications: A literature review. Radiol Oncol. 58 (3), 326-334 (2024).

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Yeniden basım ve izinler

Bu JoVE makalesinin metnini veya şekillerini yeniden kullanmak için izin iste

İzin iste

Etiketler

Lazer Spekle G r nt lemeKan Ak zlemeFare B bre iGer ek Zamanl G r nt lemeRenal Mikrosirk lasyonHayvan Cerrahisi

İlgili makaleler