Tüm prosedürler Guangzhou Miles Biotechnology Co., Ltd. Hayvan Etik Komitesi tarafından IACUC-MIS2023076 onay numarasıyla onaylanmıştır. Bahsedilen şirket bir hayvan deney merkezidir; Hayvan deneylerimiz burada yapılmakta olup, bu nedenle merkezin etik komitesi tarafından incelenmektedir.
Hayvanlar ve deneysel tasarım
Otuz BALB/c faresi (erkek, 8 haftalık, 22 ± 2 g ağırlığında) ticari olarak satın alındı. Model indüksiyon ve doğrulama kriterleri: İmpün kontrol noktası inhibitörü (ICI) ile indüklenen miyokardit modeli, ipilimumab (5 mg/kg) ve nivolumab (10 mg/kg) damar içi enjeksiyonla 2 hafta ardışık olarak oluşturuldu. Dozaj her 3 günde bir gerçekleşti ve toplam modelleme süresi 2 hafta sürdü. Bu protokolün daha önce önemli bağışıklık aracılı kalp hasarı indükteolduğu gösterilmiştir 10. Son enjeksiyondan 24 saat sonra, kan örnekleri retro-orbital pleksus üzerinden alındı ve serum izole edilmek için 4 °C'de 15 dakika boyunca 300 x g hassasiyetinde santrifüj edildi; daha sonra, serum cTnT seviyeleri belirli bir ELISA kiti kullanılarak nicelendirildi; örnek yükleme, HRP ile konjuge antikor inkübesi, otomatik yıkama ve TMB kromojen reaksiyonu gibi ardışık adımlar kullanıldı; optik yoğunluk 450 nm olarak ölçülerek dört parametreli lojistik eğriye dayalı konsantrasyonlar hesaplandı ve cTnT konsantrasyonu ≥10 ng/mL başarılı bir model olarak kabul edildi.
En yakın vücut ağırlığına ve cTnT konsantrasyonuna sahip altı model fare rastgele olarak iki gruba ayrıldı: bir kontrol grubu ve bir tedavi grubu (her ikisi için n=3, biyolojik çoğaltma). Kontrol grubu, 5 mL/kg dozda günlük normal salin enjeksiyonları aldı. Tedavi grubu, kuyruk damarı üzerinden 5 mL/kg dozda 6 gün boyunca %5 zeytinyağı bazlı lipid emülsiyonu (OOLE) günlük intravenöz enjeksiyonlar aldı (bu, kurumumuzda klinik tedavi için kullandığımız dozu temsil ediyor; vücut yüzey alanı oranlarına göre farelerde kullanım için ekstrapolasyon yapıldı). 6 günlük gözlem penceresinde aşağıdaki testler yapıldı: Kardiyak fonksiyon, başlangıç (0. gün) ve tedavi sonrası (6. gün) ultrason fotoakustik görüntüleme sistemi kullanılarak değerlendirildi. 6. gün retroorbital ven üzerinden kan alındı ve serum sitokinleri ELISA ile ölçüldü. Hayvanlar aşırı dozda anestezi ile ötenazi yapıldıktan sonra, kalp dokusu protein analizi için flaş donduruldu.
T hücresi izolasyonu
Kontrol grubundaki fareler aşırı doz anestezi ile ötenazi edildi. Dalaklar, %75 etanol ile 5 dakikalık yüzey sterilizasyonundan sonra aseptik olarak çıkarıldı ve tüm bağ dokuları çıkarıldı. Dalaklar, 70 μm'lik hücre süzgeci ve PBS ile %2 FBS takviyesi kullanılarak mekanik olarak ayrılarak tek hücreli süspansiyon oluşturuldu. Bu süspansiyon daha sonra 300 x g., 4 °C'de 5 dakika boyunca santrifüjlendi ve eritrositler oda sıcaklığında 2 dakika boyunca 1 mL ACK Lysing Buffer ile lizlendi. Liz süreci PBS ile yıkanarak sonlandırıldı. T hücreleri, fare T hücresi izolasyon kiti kullanılarak aktivasyonu önlemek için negatif zenginleştirildi. Her 10 milyon hücre için 50 μL seçim kokteyli eklenip oda sıcaklığında 10 dakika kuluçka ediliyordu. Bunu, 10 milyon hücre başına 75 μL streptavidin manyetik boncuk eklendi ve 5 dakikalık kuluçka yapıldı. Boncukla bağlı hücreler bir mıknatıs kullanılarak 3 dakika boyunca tutuldu ve süpernatanttan zenginleştirilmiş T hücreleri (%94'ten fazla saflıkta) toplandı. CD4⁺ ve CD8⁺ alt kümelerini ayırmak için, zenginleştirilmiş hücreler karanlıkta 15 dakika boyunca anti-CD3ε-PE, anti-CD4-APC ve anti-CD8-FITC antikorlarıyla boyanmış, ardından 3 kez önceden soğutulmuş PBS ile yıkanmıştır. Sıralama, akış sitometresinde aşağıdaki kapı stratejisiyle gerçekleştirildi: lenfositler (FSC/SSC), ardından CD3⁺, ardından CD4⁺ veya CD8⁺ alt kümeleri. Hücreler, Saflık Modunda 200 μL PBS ile önceden doldurulmuş toplama tüplerine ayrıldı ve %98'den fazla saflıkta hedef alt setler elde edildi.
Miyokardit hücresi modelinin inşası ve tedavisi
HL-1 hücreleri, standart koşullarda (37 °C, %5 CO₂) %10 fetal sığır serumu (FBS) ve %1 penisillin-streptomisin (PS) ile takviye edilmiş DMEM/F12 ortamında kültürlendi. Hücreler üç gruba ayrıldı: Kontrol grubu (tedavi edilmemiş), model grup (24 saat boyunca CD4+/CD8+ T hücreleriyle tedavi edilen HL-1 hücreleri) ve OOLE grubu (Model grubu, 24 saat boyunca %10 OOLE ile birlikte muamele edilmiş).
Miyokard hasarına bağlı proteinlerin serum tespiti için ELISA
50 μL serum örneğini setin önceden kaplanmış antikor açısından zengin mikroplaka kuyalarında 30 dakika boyunca inkübe edin, ardından ayrılmış bileşenleri çıkarmak için PBST ile üç kez yıkayın. İkinci bir kuluçka için hazırlanmış yaban turpu peroksidaz (HRP) etiketli avidin çözeltisini ekleyin. PBST ile üç kez daha yıka, kolorimetrik reaksiyonu başlatmak için 100 μL 3,3',5,5'-tetrametilbenzidin (TMB) substratı eklenir ve reaksiyonu başlatmadan sonra 30–45 dakika içinde 100 μL stop çözeltisi ile sonlandırır. 450 nm'de mikroplaka okuyucu kullanarak absorbansı (OD) ölçün ve hedef analitin konsantrasyonunu bilinen referans standartlarıyla çizilmiş standart bir eğri kullanarak niceleştirin.
Western Blot
Kalp dokuları, sıvı azotla doku homojenizatörü kullanılarak ezildi. Daha sonra, hem doku hem de hücresel örnekler 200 μL RIPA tamponunda buzda 30 dakika boyunca lizize edildi. Lizatlar, protein süpernatantları toplamak için 15 dakika boyunca 4 °C'de 12.000 x g sıcaklıkta santrifüjlendi. Protein konsantrasyonları BCA protein test kiti kullanılarak belirlendi. Protein konsantrasyonu 5 μg/μL'ye ayarlandıktan sonra, örnekler 5× yükleme tamponu ile karıştırıldı ve 95 °C'de 10 dakika ısıtarak denatüre edildi. Proteinler %10 SDS-PAGE jellerinde (100 V'da 90 dakika çalıştırıldı) ayrıldı ve ardından 15 V'da yarı kuru elektroblotlama ile PVDF membranlarına 30 dakika boyunca aktarıldı. Zarlar %5 yağsız sütle tıkanmış ve ardından 4 °C'de birincil antikorlarla (IL-1β, NLRP3, MyD88, NF-κB p65 ve Tubulin; 1:1.000 seyreltme dahil) gece boyunca incelenmiştir. Zarlar her biri 10 dakika boyunca üç kez Tris tamponlu tuzlu sıvı ile %0,1 Tween 20 (TBST) içerdiğinde, oda sıcaklığında 1 saat boyunca yaban turpu peroksidaz (HRP) ile konjuge edilmiş ikincil antikorlarla (1:10.000 seyreltme) inkübe edildi. Protein bantları, geliştirilmiş kemimilüminesans (ECL) alt planı uygulanarak görselleştirildi ve sinyaller kemilyünüsans görüntüleme sistemi kullanılarak yakalandı. Son olarak, göreli ifade seviyeleri, hedef protein bantlarının densitometrik değerleri ImageJ yazılımı kullanılarak Tubulin iç kontrolüne normalleştirilerek nicel olarak analiz edildi.
Akış sitometrisiyle hücre apoptozu testi
HL-1 hücreleri fosfatla tamponlanmış tuzlu (PBS) ile 2 kez yıkandı. Hücre ayrışması için 1 mL tripsin eklenip 1 dakika kuluçka altına alındı, ardından hemen 2 mL tam kültür ortamı ile nötralize edildi. Hücre süspansiyonu daha sonra 250 x g. ile 5 dakika boyunca 4 °C'de santrifüj edildi ve süpernatant atıldı. Toplanan hücre pelleti, buz gibi PBS ile 2 kez yıkanmış ve 1x bağlanma tamponunda yeniden süspansiyona getirilerek 1 x 106 hücre/mL hücre yoğunluğu elde edilmiştir. Bu hücre süspansiyonunun 100 μL aliquotu akış sitometri tüpüne aktarıldı, ardından 5 μL FITC-Annexin V ve 5 μL propidium iyodid (PI) eklendi. Nazik vortekslemeden sonra, karışım oda sıcaklığında (25 °C) karanlıkta 15 dakika kuluçka altına alındı. Son olarak, her tüpe 400 μL 1 x bağlama tamponu eklendi ve hücre apoptozu daha sonra bir akış sitometresi kullanılarak analiz edildi. Kapı stratejisi için, olaylar önce ileri saçılma (FSC) ve yan saçılma (SSC) üzerinden kapalı olarak belirlendi; böylece alt hücre döküntüleri dışlandı ve sağlam HL-1 hücre popülasyonu izole edildi. Bu birincil kapı içinde, apoptotik hücreler dörtgen analizle nicel olarak ölçüldü; erken apoptotik hücreler FITC-Annexin V⁺/PI⁻ olarak, geç apoptotik hücreler ise FITC-Annexin V⁺/PI⁺ olarak tanımlandı.
İstatistiksel analiz
Her deney üçlü olarak yapıldı ve istatistiksel analiz istatistiksel yazılım kullanılarak gerçekleştirildi. İki grup arasındaki farklar, bağımsız örnekler t-testi kullanılarak analiz edildi; üç veya daha fazla grup arasındaki farklar tek yönlü ANOVA kullanılarak analiz edildi ve ardından Bonferroni post-hoc testi yapıldı. Veriler ortalama ± standart hata (SEM) olarak ifade edilir. P < 0.05 istatistiksel olarak anlamlı olarak kabul edildi.