Derslerin kaydı
Ocak 2023'ten Mayıs 2025'e kadar hastanede tedavi edilen akut omurilik travması (n = 300) olan hastalar, Amerikan Omurilik Yaralanma Ölçeği'ne (AIS sınıflandırması) göre tam omurilik yaralanması (CSCI) grubu (A derecesi, n = 98), eksik omurilik yaralanması (ISCI) grubu (B, C ve D; n = 95) ve normal nörolojik fonksiyon (NNF) grubu (E, n = 107) grubuna (derece E, n = 107) olarak seçildi ve sınıflandırıldı. NNF grubundaki hastalarda, şişme, kontüzyon veya kompresyon gibi SCI'nin radyolojik kanıtları manyetik rezonans görüntüleme (MR) ile doğrulandı, ancak duyusal veya motor eksiklikler gösterilmedi. Aynı dönemde alınan 90 sağlıklı katılımcı daha kontrol grubu olarak seçildi. Dahil etme kriterleri şunlardı: (1) SCI tanısı görüntüleme (MRI veya BT) ile doğrulanmış, yerleşik klinik yönetimkılavuzlarına uygun olarak 16; (2) hastaneye yatıştan 24 saat önce yaşanan travma; ve (3) tam klinik verilere sahip yetişkin katılımcılar. Eleme kriterleri şunlardı: (1) kırık veya SCI ile ilgili önceki ameliyat geçmişi; (2) ağır koroner arter hastalığı veya belirgin kardiyopulmoner hastalık; (3) akut şiddetli kranioserebral yaralanma; ve (4) kötü hutlu tümörler, kardiyovasküler/serebrovasküler hastalıklar veya bağışıklık hastalıkları. Bu çalışma için onay, Shenzhen Dördüncü Halk Hastanesi Etik Komitesi'nden alındı ve katılımcılardan bilgilendirilmiş onayı alındı. Bu çalışmada kullanılan prosedürler Helsinki Bildirgesi'nin ilkelerine uydu.
Örnek koleksiyonu
Katılımcılardan 5 mL, yaralanmadan sonraki 24 saat içinde serum ayırıcı tüplerle kabul sırasında venöz kan örnekleri alındı. Kan, oda sıcaklığında 30 dakika boyunca pıhtılaşmasına bırakıldı ve ardından 3.000 × g ile 4 °C'de 10 dakika boyunca santrifüj edildi. Süpernatan serum dikkatlice ayrıldı, RNazsız mikrotüplere alkotasyon yapıldı ve daha fazla analiz yapılana kadar -80 °C'de saklandı.
Hücre kültürü ve LPS indüksiyonu
Fare feokromositom hücreleri (PC-12) ve fare mikroglial hücreleri (BV-2), Dulbecco'nun modifiye Eagle ortamında %10 fetal sığır serumu ile 37 °C'de takviye edilmiş şekilde kültürlendi. In vitro inflamatuar yaralanma modelleri oluşturmak için, PC-12 ve BV-2 hücreleri 0, 1, 5 ve 10 μg/mL konsantrasyonlarda 12saat 17 boyunca lipopolisakkarite (LPS) maruz kaldı. Her konsantrasyon üç bağımsız biyolojik kopyada test edildi.
RT-qPCR
Örneklerden toplam RNA, fenol-kloroform ekstraksiyon protokolü kullanılarak izole edildi ve ardından izopropanol ile çökeltildi. RNA saflığı spektrofotometri ile değerlendirildi ve 1.8–2.1 aralığında A 260/280 nm oranına sahip örnekler aşağı akış analizi için kullanıldı. RNA, ters transkripsiyon kiti protokolüne göre cDNA'ya ters transkribe edildi ve ortaya çıkan cDNA, bir PCR cihazında SYBR Green premix ile RT-qPCR reaksiyonları için şablon olarak kullanıldı. Gliseraldehit 3-fosfat dehidrojenaz (GAPDH), CASC11 ve SPP1 mRNA için referans gen olarak kullanılmış, küçük nükleer RNA (U6) ise miR-130b-5p için referans gen olarak kullanılmıştır. Serum örnekleri için, RNA çıkarımından önce sentetik cel-miR-39 seruma eklenerek RNA geri alımındaki varyasyonları kontrol altına alındı. Başlangıçlar şöyleydi: CASC11 ileri 5'-ACCCTATGGAGAACCGAC-3' ve ters 5'-GAGGACCAACTCAGTAGGAAAT-3'; miR-130b-5p ileri 5'-ATCCATGGTTGAGCTTCCCG-3' ve geri 5'-TAGTGCAACCTCGTCAGAGC-3'; ve SPP1 mRNA öne 5'-GTTAAACAGGCTGATTCTGG-3' ve ters 5'-CATGGTCATCATCATCTCTTCA-3'. İfade 2-ΔΔCt yöntemiyle hesaplandı. Her RT-qPCR reaksiyonu, üç biyolojik replikasyonla üçlü teknik kopyalar halinde gerçekleştirildi.
Transfeksiyon
Susturma CASC11 (si-CASC11), miR-130b-5p mimik/inhibitörü, SPP1 aşırı ekspresyon plazmidi (ov-SPP1) ve ilgili negatif kontroller (NC), transfeksiyon reaktifi kullanılarak PC-12 ve BV-2 hücrelerine sentezlenip transfeksiyon yapıldı. Transfeksiyon verimliliği, transfeksiyondan 48 saat sonra üçlü biyolojik kopyalarda değerlendirildi.
Proliferasyon ve apoptoz testi
Hücre canlılık testi için, hücreler kuyunun başına 5 ×10-3 hücre olan 96 delikli plakalara tohumlanarak tutunmaya izin vermek üzere 24 saat kültürlendi. Bu kuluçkadan sonra, her kuyuya 10 μL CCK-8 reaktifi dağıtıldı ve ardından 37 °C'de 2 saat kuluçka yapıldı. Optik yoğunluk daha sonra mikroplaka okuyucu ile 450 nm olarak kaydedildi. Apoptoz tespiti için hücreler tripsin ile ayrılmış, fosfatlı tuzlu (PBS) ile iki kez durulanmış ve bağlanma tamponunda 1 ×10 6 hücre konsantrasyonuna askıya alınmıştır. Sonrasında, 100 μL süspansiyon 5 mL'lik akış sitometri tüpüne yerleştirildi, ardından 5 μL Annexin V-FITC ve 5 μL propidium iyodid (PI) boyama çözeltisi eklendi. Örnekler nazikçe karıştırıldı ve ışıktan korunan oda sıcaklığında 15 dakika saklandı. Bağlanma tamponu daha sonra tüp başına 400 μL nihai ek hacme eklendi ve apoptotik hücreler akış sitometrisiyle nicelendirildi. Tüm koşullar, üç bağımsız biyolojik deneyde üç teknik kopya kullanılarak analiz edildi.
Dual-lusiferaz aktivite testi
CASC11 ve miR-130b-5p'nin sonraki hedefleri, biyoinformatik web siteleri (lncRNASNP2 ve TargetScan) aracılığıyla tahmin edildi. Vahşi tip (wt) veya mutant (mut) tamamlayıcı dizileri içeren parçalar, sentezlenip çift lusiferaz raporlayıcı vektör olarak klonlanarak wt ve mut raporlayıcı plazmidler oluşturuldu. PC-12 hücreleri, miR-130b-5p mimik/inhibitörü ve oluşturulan wt/mut plazmidleriyle birlikte lipid bazlı transfeksiyon reaktifiyle tohumlanıp birlikte transfekte edildi. 48 saat sonra, lusiferaz aktivitesi nicelleştirilerek etkileşimi değerlendirildi. Her grup üç teknik replikasyon ve üç biyolojik kopyadan oluşuyordu.
RNA immünopresipitasyon (RIP) testi
RIP, RNA bağlayan protein immünopresipitasyon kiti kullanılarak gerçekleştirildi. Hücreler lizis tamponu ile lizize edilip anti-Ago2 antikor veya normal IgG antikoru ile inkübe edildi. RNA-protein kompleksleri manyetik boncuklar kullanılarak zenginleştirildi. Yıkamadan sonra bağlı proteinler çıkarıldı ve immünopresipitli RNA izole edildi. CASC11 ve miR-130b-5p'nin zenginleştirme seviyeleri RT-qPCR ile nicelenmiştir. Her grup üç teknik replikasyon ve üç biyolojik kopyadan oluşuyordu.
Western Blot
PC-12 ve BV-2 hücrelerinden hücre lizin tamponu kullanılarak protein lizatları hazırlandı ve toplam protein içeriği bir BCA testi ile ölçüldü. Her örnek için, %12 SDS-PAGE jellerine 30 μg protein yüklendi ve elektroforetik ayrılmadan sonra PVDF membranlarına aktarıldı. Zarlar, TBST'de seyreltilmiş %5 yağsız sütte oda sıcaklığında 2 saat boyunca bloklandı ve ardından Bcl-2, Bax, kesilmiş kaspaz-3 ve GAPDH'ye karşı birincil antikorlarla 4 °C'de 1:1.000 seyreltme oranında inkubasyon edildi. Yıkamadan sonra, zarlar HRP ile konjuge edilmiş ikincil antikorlarla oda sıcaklığında 1 saat boyunca kuluçka edildi. Protein sinyalleri görüntü analiz yazılımı kullanılarak analiz edildi ve bant yoğunlukları apoptozla ilişkili proteinlerin ekspresyonu değerlendirmek için kullanıldı. Western Blot deneyleri, her grup için üç teknik replika içeren üç biyolojik kopyayı içeriyordu.
ELISA
Hasta serumunda bulunan TNF-α, IL-1β ve IL-6 inflamatuar sitokinlerinin konsantrasyonları ve PC-12 ile BV-2 hücre süpernatantları, üreticinin talimatlarına göre ELISA kitleri kullanılarak nicelendirildi. Örnekler önceden kaplanmış kuyularda kuluçka alındı ve daha fazla kuluçka için tespit antikorları eklendi. Enzim konjugatları eklenip kuluçka yapıldı. Yıkamadan sonra, renk gelişimi için substratlar eklendi ve reaksiyonlar sonlandırıldı. Emilim, mikroplaka okuyucu kullanılarak 450 nm'de ölçüldü ve verilen standart eğriye göre iltihap faktör konsantrasyonlarına dönüştürüldü. Her ELISA testi, üç bağımsız biyolojik kopya üzerinden üçlü teknik kopyalar halinde gerçekleştirildi.
İstatistiksel analiz
Sürekli değişkenler ortalama ± standart sapma (SD) olarak, kategorik değişkenler ise sayı ve yüzde olarak (n, %) olarak bildirildi. İki grup arasında karşılaştırmalar Öğrencinin t-testi kullanılarak yapıldı. İkiden fazla grubu içeren karşılaştırmalar için tek yönlü varyans analizi (ANOVA) uygulandı, ardından Tukey'nin post-hoc testi yapıldı. CASC11'in klinik gruplar arasında ayrım yapma yeteneği, alıcı operasyonel karakteristikte (ROC) eğri analiziyle değerlendirildi. İki değişken arasındaki ilişkiler Pearson korelasyon analiziyle incelendi. Hücre tabanlı deneyler için, her grup üç bağımsız biyolojik kopya içeriyordu ve her ölçüm üç teknik kopyada tekrarlandı. İstatistiksel anlamlılık P < 0.05 olarak tanımlandı.