$$\rightleftharpoonup{xx}$$
$$\longleftharp{xx}$$,
$$\longrightharp{xx}$$,
1. RSM: tanımlar ve ihtiyaç
RSM'ler hiyerarşik olarak düzenlenmiştir ve iki ana türden oluşur: birincil ve ikincil RSM'ler. ISO Rehberi 30'a göre, birincil standart "en yüksek metrolojik kaliteye sahip olarak tanımlanmış veya yaygın olarak kabul edilen ve değeri aynı miktardaki diğer standartlara referans almadan, belirli bir bağlam içinde kabul edilen bir standart" olarak tanımlanır. Örneğin, Amerika Birleşik Devletleri Farmakopesi (USP), Avrupa Farmakopesi (Ph. Eur.), İngiliz Farmakopesi (BP) vb. RSM'ler, çok laboratuvarlı çalışmalarla kapsamlı şekilde karakterize edilmiş RSM'ler birincil RSM olarak nitelendirilir. Bireysel üreticiler daha sonra bu birincil RSM'leri kendi özel çalışma referans materyallerini kalibre etmek ve nitelendirmek için kullanır; bu materyaller rutin kalite kontrol testleri için ikincil RSM olarak hizmet verir. Bu nedenle, ISO ikincil RSM'yi "aynı miktardaki birincil standartla karşılaştırıldığında değeri atanan bir standart" olarak tanımlar. Bu hiyerarşik yaklaşım izlenebilirliği sağlar: kurum içi ölçümler, birincil standartlara kadar uzanır ve bu standartlar da en son teknoloji analitik yöntemlerlekarakterize edilir 16. RSM'lerin kullanılması, üreticilerin analitik yöntemlerini aynı referans noktasına kalibre edip doğrulamalarını sağlayan ortak kıyaslamalar sağlar; böylece daha doğru ölçümler elde edilir. Bu nedenle düzenleyici otoriteler, birincil RSM'lerin kullanılmasını teşvik ederek kendi içi RSM'leri kalibre etmek ve test yöntemlerini doğrulamak için AAV üretiminde tutarlılığıartırır 17,18. Bu, farklı analitik teknikler arasında standartlaştırmaya olanak tanır ve laboratuvarlar ile farklı ürünler arasında rAAV karakterizasyon sonuçlarının daha iyi karşılaştırılmasınayol açar 17,19. İyilenmiş karşılaştırılabilirlik, yüksek dozlar veya ürünle ilgili safsızlıklar, örneğin boş ve kısmen doldurulmuş kapsidlerle ilişkili olabilecek güvenlik risklerinin anlaşılmasını artırır. Sonuç olarak, bu içgörüler, somatik hücresel tedaviler ≥için %70 canlı hücre kriterine benzer şekilde tam kapsidlerin minimum eşiği gibi bilim temelli düzenleyici politika formülasyonunu yönlendirebilir ve böylece daha güvenli ve daha güvenilir gen terapisiürünlerine katkıda bulunabilir 13,20,21.
rAAV için, birkaç CQA standartlaştırma ihtiyacını açıkça gösteriyor. Vektör genom titresi doğrudan hasta dozunu belirler; Yanlış titrler düşük veya aşırı doz riski taşır. Titri ölçmek için nicel PCR (qPCR) ve dijital PCR (dPCR) yaygın olarak kullanılır, ancak aynı örneklemde farklı standart eğri kalibrasyonları veya protokolleri kullanılırsa sonuçlar farklı olabilir11. Kapsid içeriği (dolu, kısmen doldurulmuş ve boş kapsidlerin oranı) başka kritik bir CQA'dır; çünkü boş ve kısmen dolu kapsidler immünojenliğe katkıda bulunabilir veya etkinliğiazaltabilir 6. Kapsid içeriğini ölçmek için ondan fazla farklı teknik kullanılır; bunlar arasında analitik ultrasantrifüjasyon (AUC), Boyut Dışlama Kromatografisi ve çoklu açılı ışık saçılması (SEC-MALS), kütle fotometrisi (MP), yük tespit kütle spektrometrisi (CDMS), elektron mikroskopisi (EM), anyon-değişim (AEX) kromatografisi, kahiller izoelektrik odaklama (cIEF), ultraviyole görünür spektroskopisi (UV/Vis) gibi yöntemler bulunur. Buna ek olarak, kapsid içeriği genellikle dolaylı olarak, sırasıyla qPCR veya dPCR ve ELISA ile belirlenen vektör genom titresi ile viral parçacık titresi oranı kullanılarak tahmin edilir (PCR/ELISA)22. Her teknik farklı fiziksel özellikleri ölçer ve aynı örnekler için farklı kapsid içeriği değerlerini raporlayabilir. UV/Vis, AUC, SEC-MALS ve PCR/ELISA'yı karşılaştıran yakın tarihli bir NIST laboratuvarlar arası çalışması, yöntem ve laboratuvarlar arası önemli değişkenlik gösterdi; PCR/ELISA özellikle zayıf tekrarlanabilirlik gösterdi ve AUC yaygın olarak referans yöntem olarak kabul edilmesine rağmen laboratuvarlar arası önemlifarklılık gösterdi 8. Bu bulgular, AAV analizinde değişkenliği azaltmak için hem paylaşılan RSM'ler hem de uyumlu analitik iş akışları gerektirdiğini göstermektedir; bu da Bölüm 5'te tartışıldığı gibi.
2. rAAV RSM peyzajı
AAV için RSM'ler oluşturma çabaları, birincil AAV RSM'leri sağlayan iki kaynağa yol açmıştır. Farmakopeial kaynaklar arasında, USP şu anda birincil AAV RSM'nin tek sağlayıcısıdır. USP'nin ötesinde, birincil AAV RSM'ler Amerikan Tip Kültürü Koleksiyonu'ndan (ATCC) da temin edilebilir. Çoklu serotip için artan ticari ikincil RSM yelpazesi de mevcuttur; bu, AAV karakterizasyonunun standartlaştırma eksikliğini ele almak için devam eden topluluk çabalarını yansıtmaktadır. Tablo 1, mevcut AAV RSM materyallerini ve bunların temel özelliklerini özetlemektedir.
- ATCC standartları
rAAV için RSM'ler oluşturma yönündeki ilk uluslararası girişim, 2010 yılında AAV Referans Standart Çalışma Grubu'nun (AAVRSWG) rAAV2 için birincil RSM'ler üretmesiyle başladı; ardından 2014'te rAAV8 geldi. Bu gönüllü organizasyon, beş sanayi kuruluşundan, 13 üniversiteden, Gıda ve İlaç Dairesi'nden (FDA), Ulusal Sağlık Enstitüsü'nden (NIH) ve Williamsburg Biyoproses Vakfı'ndan (WilBio) üyeleri içeriyordu ve dört ülkeyi temsil ediyordu: ABD, Fransa, Almanya ve Japonya. Birincil RSM'ler, klinik olmayan ve klinik çalışmalar arasında dozların laboratuvarlar arası karşılaştırmasını kolaylaştırmak için toplum çapında standartlar olarak hizmet etmeyi amaçlamıştı. Araştırmacılar, verileri sağlık otoritelerine yayımlarken veya gönderirken bu birincil RSM ile ilgili titreleri bildirmeleri teşvik edilir. Üretim, mililitre başına 1 ×10 12 vektör genomu (vg·mL-1) nihai titr elde etmeyi ve her biri 0,5 mL içeren yaklaşık 5.000–10.000 şişe elde etmeyihedefliyordu. Malzemeler, dünya çapında 16 laboratuvarı kapsayan çoklu laboratuvar çalışmasıyla vektör genom titresi (qPCR), partikül titresi (ELISA), transdüksiyon titresi (floresan mikroskopi), enfeksîyon parçacık titresi (TCID50), saflık (sodyum dodesil-sülfat-poliakrilamid jel elektroforezi (SDS-PAGE)) ve vektör kimliği (jel elektroforezi) için karakterize edildi. Ayrıca, mikoplazma, biyoburden, sterillik ve endotoksin ürün güvenliği içindeğerlendirildi 23,24,25. AAV analitik karakterizasyonuna dair derinlemesine bir genel bakış, temel testler ve her testin sağladığı bilgiler dahil olmak üzere, Bölüm 4'te sunulmaktadır.
ATCC RSM'leri AAV alanında öncü malzemeler olmasına rağmen, faydaları on yıldan fazla bir zaman önce, AAV karakterizasyonu için birçok güncel analitik yaklaşımın yaygın olarak benimsenmesinden önce üretilmiş olmaları nedeniyle sınırlıdır. Örneğin, orijinal karakterizasyon boş/tam kapsid profilini içermemiştir; bu da kapsid içeriği analizini standartlaştırmak için doğrudan uygulanabilirliklerini sınırlamaktadır; bu analiz şu anda rAAV için önemli bir CQA olarak kabul edilir. Ayrıca, ortak protokoller ve reaktifler kullanılmasına rağmen vektör genom titresi, kapsid titri ve enfeksîyoner titre için laboratuvarlar arası önemli değişkenlik bildirildi; bu da ortak malzemelerin tek başına uyumlu ölçümleri sağlamadığını ve ayrıntılı SOP'lerle daha olgun testlerin de aynı derecede önemli olduğunu vurguladı. Mevcut tedarikçi bilgilerine göre, bu malzemelerin erişimi de kısıtlıdır ve bu da daha geniş uygulamayı daha dasınırlayabilir 11. Mevcut tedarikçi ürün bilgilerine göre, bu malzemelerin bulunabilirliği AAV2 (ATCC VR-1616) için müşteri başına yılda 3 şişe ile sınırlıdır; tedarik bekleyecek şekilde belirtilmiştir ve AAV8 (ATCC VR-1816) için müşteri başına yılda 12 şişe ile sınırlanmıştır (ATCC VR-1816). Bu kısıtlamalar, bu materyallerin topluluk genelinde RSM olarak daha geniş ve rutin kullanımınızorunlu olarak sınırlar 26,27.
- USP standartları
Farmakopeial girişimler açısından, USP şu anda AAV için birincil RSM'ler üreten tek kuruluştur. Aşağıdaki karakterizasyon verileri, USP başvurunotları 28,29,30'a dayanmaktadır. 2025 yılında USP, kapsid içerik analitiğinde standartlaştırmak amacıyla tam ve boş kapsidler için AAV8 RSM yayımladı. Bunu başarmak için USP, yüksek konsantrasyonlara (mililitre başına 3.0E+12 viral parçacık >titri (vp·mL-1)) ve önemli hacimlere (300 μL) sahip RSM'ler oluşturarak çeşitli kapsid içeriği analitik yaklaşımlarında uygulanmasını mümkün kılmıştır. USP AAV RSM'nin tam olarak değerlendirilmesi ve ölçüm doğruluğu ile hassasiyetinin sağlanması için kapsamlı çok laboratuvarlı bir iş birliği çalışması gerçekleştirildi. Bu çalışma, beş bağımsız laboratuvarı kapsis etti ve AUC, SEC-MALS, CD-MS, MP ve UV/Vis gibi birkaç kapsid içeriği analitik tekniği kullandı. AAV örneklerine ek biyofiziksel karakterizasyon yöntemleri uygulandı; bunlar arasında peptit haritalama, yeni nesil dizileme (NGS), dPCR ve kapiller jel elektroforezi (CGE) dahil olmak üzere, ek parçacık karakterizasyon verilerisağlandı 28.
Ayrıca, USP, standart eğri kalibrasyonu veya genom titre ölçümlerinde test kontrolü olarak kullanılmak üzere tasarlanmış bir sitomegalovirus (CMV) artırıcı, tavuk β-aktin (CBA) promotoru, yeşil floresan protein (GFP), simian virüsü 40 (SV40) poliadenilasyon sinyali içeren AAV5 tabanlı nicel bir PCR kontrol geliştirdi. Kapsid içeriği SEC-MALS ile belirlenirken, viral genom titremi birden fazla diziyi hedefleyen dPCR ile nicelendirildi. 4 laboratuvarı kapsayan çok laboratuvarlı bir dPCR çalışması, SV40'ı hedeflemenin, ITR hedeflemesine (CV %36,1) kıyasla daha düşük laboratuvarlar arası değişkenlik (CV %11,2) sağladığını ve muhtemelen ITR ikincil yapı parazitinden kaynaklandığını ortaya koydu. Sonuç olarak, atanan referans değeri SV40 hedefli titre dayanır ve 7 x 1010 vg ·mL-1,32'ye eşittir. Kapsid titri testleri için referans materyallerle ilgili olarak, USP AAV1, AAV5, AAV8 ve AAV9 için kapsid titer referans materyalleri sağlar. Bu malzemeler, mutlak kapsid parçacık niceliği için SEC-MALS ile karakterize edilmiş ve 1x1011'den 1x10 12 vg·mL-1'e kadar değişen bu malzemeler, kapsid titertestlerinde standart eğri kalibrantları veya pozitif kontrol olarak kullanılabilir 30.
- Ticari standartlar
Birçok ticari şirket, PROGEN, AAVnergene ve Revvity gibi birden fazla serotip için AAV tam ve boş RSM'ler sunmaktadır; Aşağıdaki karakterizasyon verileri ve ürün spesifikasyonları, tedarikçi tarafından sağlanan bilgilere dayanır; ürün formları ve uygulamanotları 31,32,33,34,35 dahildir. İkincil RSM'ler olarak, bu malzemeler sıkça ATCC RSM'leriyle karşılaştırılır. Farmakopi RSM'lere kıyasla, bu RSM'ler daha geniş bir serotip yelpazesini kapsar; bazı tedarikçiler AAV1–13 ve mühendislik varyantları sağlamaktadır. Ticari RSM'ler genellikle kapsid titresi (ELISA veya SEC-MALS ile), vektör genom titresi (qPCR veya dPCR ile) ve kapsid içeriği (genellikle tek bir analitik yöntemle) gibi temel kalite özellikleri için karakterize edilir.
Ancak, bu ticari materyallerin bazıları yalnızca küçük miktarlarda bulunabilir ve bu da farklı testlerin veya çoklu bölgeli çalışmaların kapsamlı yöntem geliştirmesi için kullanımlarını sınırlandırır. Ayrıca, stabilite değerlendirmesi dahil olmak üzere birden fazla ortogonal tekniği içeren çok laboratuvarlı işbirlikçi çalışmayla kapsamlı bir karakterizasyon eksiktir; bu da atanan değerlere ve laboratuvarlar arası uygulanabilirliğe olan güveni sınırlar. Bu sınırlamalara rağmen, ticari RSM'ler analiz geliştirme, doğrulama ve süreç optimizasyonunda önemli bir rol oynar ve birincil RSM'ler belirli serotipler için mevcut olmadığında geçici RSM'ler olarak hizmet verebilir.
Bazı tedarikçiler, RSM hizmetlerinin kullanımını artırmak için daha sıkı karakterizasyon protokolleri ve artan şeffaflık üzerinde çalışıyor36,37.
- Şirket içi standartlar
Bireysel laboratuvarlar ayrıca kapsid mühendisliğinde serotipler veya spesifik viral genom yapıları gibi benzersiz AAV ürünleri için sıkça kullanılan kendi içi RSM'ler geliştirebilir. Maliyetleri azaltmak için kendi içi RSM'ler de tercih edilebilir, çünkü birincil ve ticari ikincil referans materyaller pahalı olabilir. Mümkün olduğunda, bu iç içteki RSM'ler birincil RSM'lerle karşılaştırılıp daha sonra analiz geliştirme, doğrulama, üretim sırasında rutin testler veya kalite kontrolü için kullanılmalıdır. Kendi içi RSM'ler kullanılırken birkaç önemli hususa sahiptir: bu malzemeler iyice karakterize edilmeli, yeterli miktar rezerve edilmeli ve zaman içinde stabiliteyi izlemek için protokoller oluşturulmalıdır. Ayrıca, yeni RSM partilerinin üretimi için planlama kritik öneme sahiptir; önceki partiden yeterli malzemenin korunması, ölçümleri aşmak ve ürün geliştirme boyunca sürekliliği sağlamakda dahil 20. 3. bölümde, üst ve aşağı akış süreçlerini ve analitik karakterizasyonu kapsayan dahili RSM üretimi için stratejilerin ayrıntılı bir özeti sunulmaktadır. Bu yaklaşımlar birlikte, dahili RSM'ler oluşturmak için pratik bir çerçeve sunar.
3. RSM üretim stratejileri:
Yüksek saflıkta AAV RSM'ler üretmek doğasında zorluklar yaratır. %100 boş kapsid preparatlarına ulaşmak, "boş" kapsidlerin kalıntı genetik materyal içerebileceği gerçeğiyle karmaşıktır. Benzer şekilde, saf tam kapsid preparatları elde etmek zordur çünkü boş ve kısmen doldurulmuş kapsidler benzer fiziksel özelliklere sahiptir ve ayırma süreçlerinde tam kapsidlerle birlikte saflaştırılır10. Bu zorluklara rağmen, üretim teknolojisindeki önemli ilerlemeler artık ağırlıklı olarak dolu veya çoğunlukla boş kapsid popülasyonlarının zenginleşmesini mümkün kılmaktadır. Aşağıdaki bölüm, mevcut üretim ve ayırma teknolojileri ile AAV RSM'lerin üretimi, karakterizasyonu ve depolanması için kullanılabilecek karakterizasyon yöntemleri ve formülasyon koşulları hakkında kapsamlı bir genel bakış sunmaktadır.
- Yukarı akış işleme
rAAV, diğer biyoterapevtikler gibi, yaşayan hücrelerde, en yaygın olarak geçici transfeksiyon veya viral enfeksiyon tabanlı platformlar kullanılarak üretilmelidir. Klinik seviyede materyal için baskın yaklaşım, HEK293 süspansiyon hücrelerinde üçlü plazmid geçici transfeksiyondur; ITR ile yanlı transgen, rep/cap genleri ve yardımcı işlevler için üç ayrı plazmid kullanılır; Bu esnek, yardımcı virüssüz sistem, hızlı serotip ve transgen değişimini destekler ve çoğu klinik program ile onaylı ürünlerdekullanılır 38. Ancak, üretim arttıkça plazmid DNA maliyetleri önemli ölçüde artar ve bu da önemli bir dezavantaj oluşturur. Hammadde maliyetlerini azaltmak için, üretim sistemleri üç plazmidden iki plazmidden iki (bir plazmidde rep/cap/yardımcı genler, diğerinde transgen) veya bir plazmidde tüm genler olan bir plazmidle sadeleştirilmiştir39,40. HEK293 hücreleri, benzer verimlilikle yapışkan veya askı formatlarda kültürlenebilir, ancak süspansiyon kültürüölçeklenebilirliği nedeniyle tercih edilir 41.
Alternatif üretim platformları arasında Sf9 veya diğer böcek hücrelerinde Baculovirus İfade Vektör Sistemi (BEVS), kararlı üretici hücre hatları, herpes simpleks virüs tabanlı sistemler ve indüklenebilir ifade sistemleri yer alır. Özellikle, farklı üretim platformları aynı serotip için bile önemli ölçüde farklı boş/dolu oranlar verebilir; bildirilen %doluluk oranı, platforma ve kullanılan özel AAV serotipine bağlı olarak %8'den %39'un üzerine değişir. 42.
Uygun üretim platformunun seçilmesi ve RSM üretimi için yukarı akış koşullarının optimize edilmesi, hedef kapsid popülasyonunun dikkatlice değerlendirilmesini gerektirir. Klinik materyal ve mevcut RSM'ler için en yaygın kullanılan üretim sistemi olan HEK293 geçici transfeksiyonu ile ilgili olarak (Tablo 1), çeşitli süreç parametreleri hem verimi hem de boş/tam kapsid oranını artırmak için optimize edilebilir. Tam kapsid RSM'ler için, yukarı akış süreç optimizasyonu, kısmi veya boş kapsid oluşumunu en aza indirmek için verim ve genom paketleme verimliliğini maksimize etmeyi amaçlar; çünkü ham lizattaki ilk boş/tam oranı doğrudan aşağı akış boş/tam oranını etkiler. Anahtar parametreler arasında transfeksiyon sırasında hücre yoğunluğu, plazmid azı dişleri oranları, transfeksiyon reaktifinin DNA'ya oranı, hasat zamanı, küçük molekül katkı maddeleri (örneğin, hücre döngüsü durdurma ajanları) ve transgen kasettasarımı 40,43,44,45,46 yer alır.
Boş kapsid RSM'leri genellikle transfeksiyon sırasında transgen plazmidinin atlanması ile üretilir ve kapsid montajından sonra DNA paketlenmesi engellenir. Ancak pratikte, bu "boş" preparatlar genellikle hâlâ kirletici DNA içerir, bu da onları bileşim açısından heterojen kılar ve kapsamlı analitik karakterizasyonun gerekliliğinivurgular. 47,48.
- Aşağı akış işleme
Aşağı akış süreci (DSP), vektörün hasamı, açıklanması ve saflaştırılmasını içerir; böylece yüksek vektör verimi ve optimal boş/tam oranı sağlanır. Transfeksiyondan 72 saat sonra hücre lizisi ile hücre içi rAAV'ların geri alınması için aşağı akış işleme başlar49. Viral çıkış serotipe göre değişse de, hücre lizisi tam hücre içi iyileşmeyi sağlar50. Lizis, mekanik olarak donma-eritme döngüleriyle veya kimyasal olarak deterjan bazlı tamponlar (örneğin Triton X-100, Tween-20/80, CHAPS) kullanılarak sağlanır ve daha iyi ölçeklenebilirlik için kimyasal yöntemler tercih edilir49,51. Lizin sırasında nukleaz tedavisi (örneğin Benzonase) kapsidlenmemiş vektör genomlarını ve plazmid DNA'yı kirleten şekilde bozarak genom titrasyonunda yanlılığı önler ve DSP adımları için DNA viskozitesini azaltır. HEK293 kaynaklı rAAV için yaygın bir lizin tamponu 50 mM Tris-HCl (pH 8,0), 150 mM NaCl, %0,1 Triton X-100, Benzonaz 25–50 U.mL-1,51. Lizat, daha sonra derinlik filtrasyonu veya santrifüj ile hücresel kalıntıları uzaklaştırmak için arındırılır. Teğet akış filtreleme (TFF) daha sonra hasadı yoğunlaştırır ve tamponu aşağı akış arıtma ile değiştirir; ancak aşağı akış arıtma adımı büyük hacimleri kaldırabiliyorsa bu adım atlanabilir. Daha fazla arıtma, ultrasantrifüj (UC) veya kromatografi tabanlı yöntemlerle devam eder52.
Gradient yoğunluğu UC, en yaygın olarak sezyum klorür (CsCl) gradyanı veya iyodiksanol yoluyla kullanılmıştır ve geleneksel olarak rAAV saflatmasında kullanılmıştır; yüksek verim ve tam kapsidlerin süreç ve ürünle ilgili safsızlıklardan etkili ayrılmasını sağlar53. UC serotipten bağımsızlık ve yüksek saflık sunsa da, manuel taşıma, büyük hacimler için sınırlı ölçeklenebilirlik ve emek yoğun işlem gibi önemli eksiklikleri vardır. Sütun kromatografisi, ölçeklenebilirlik, daha hızlı işlem süreleri ve otomasyon yeteneği sunarak tercih edilen bir alternatif olarak ortaya çıkmış ve klinik düzeyde rAAV ile rAAV RSM üretiminde başarıyla uygulanmıştır. rAAV için kolon kromatografisi genellikle iki ardışık adımda yapılır: yakalama ve cilalama52,54.
Afinite kromatografisi, birincil yakalama adımı olarak hizmet eder; reçineler üzerinde immobilize edilmiş ligandlar kullanılarak AAV kapsidleri bağlanır ve çoğu süreçle ilgili safsızlık çıkarılır. Tek alanlı antikor fragmentleri (VHH) son zamanlarda serotipler arasında çok yönlülük ve yüksek spesifiklik nedeniyle ligandın tercih edilen tercihi haline gelmiştir. Yaygın kullanılan antikor bazlı kolonlar arasında POROS CaptureSelect AAVX, AVB Sepharose High Performance ve Capto AVB bulunur51. POROS CaptureSelect AAVX, en geniş özgüllüğü sunar; AAV1–9, rAAV-10 ve mühendislik varyantlarını bağlayarak serotipten bağımsız arındırma için uygundur55. Çoğu ticari rAAV RSM arıtımı için yaygın olarak kullanılır (Tablo 1). Afinite sütunları tam ve boş kapsidleri ayırt edemediğinden, epitoplar her iki varyantta da bulunduğundan, ek bir parlatma adımı uygulanır. Parlatma aşaması genellikle tam ve boş kapsidleri ayırmak için anion değişim kromatografisi (AEX) kullanır. Bu yöntem, tam (~5.9) ve boş (~6.3) kapsid popülasyonları arasındaki hafif izoelektrik nokta (pI) farkını kullanır52. Ticari olarak üç sabit faz formatı mevcuttur: paketlenmiş reçineler, monolitler ve membran kolonlar53. AAV için üç formatta karşılaştırmalı performans verileri sınırlıdır. Ancak, monolitler ve membran kolonları daha yüksek konvektif tabanlı akış hızlarını destekler, bu da onları daha büyük ölçeklerde tercih eder; çünkü işlem süresinin kısaltılması kritik öneme sahiptir. Paketlenmiş reçineler, difüzyon sınırlı kütle transferi ve daha yüksek geri basınca dayanır, bu da akış oranlarını sınırlar56,57. Ticari olarak mevcut AEX sütunlarının listesi, Jungbauer ve ark. tarafından verilen bir incelemede bulunabilir51. Elution için, adımlı tuz gradyanları sığ sürekli tuz gradyanlarına göre giderek daha fazla tercih edilir; çünkü sabit tuz basamakları enstrümantal değişimlere (pompa karıştırma, akış hızı) sürekli değişen gradyanlara göre daha az duyarlıdır; bu da tekrarlanabilirliği artırırken tampon tüketimini azaltır52. Optimize edilmiş AEX protokolleri, birden fazla serotipte %>90 tam kapsid saflığına ulaşabilir58. Ancak, UC'nin aksine, AEX henüz kısmen dolu kapsidlerin güvenilir şekilde ayrıldığını göstermemiştir ve her serotip, yük profili serotipe göre değiştiği için optimizasyon gerektirir51. Özellikle, çoğu ticari RSM arıtma süreci, affinite yakalama kromatografisini UC (iyodiksanol veya CsCl) ile birleştirerek parlatma adımı olarak kullanır ve ilk affinite tabanlı safsızlık çıkarımı sonrası UC'nin yüksek saflık avantajlarından yararlanır (Tablo 1).
- Formülasyon
AAV formülasyon optimizasyonu, RSM'nin kararlılığını ve raf ömrünü sağlamak için önemlidir. Formülasyon tasarımı, yardımcı madde seçimi, osmolarite düzenlemesi, tampon, yüzeyaktif madde seçimi ve iyonik güç kontrolünü kapsayarak agregasyonu en aza indirir. En yaygın tampon sistemleri fosfat bazlı, tris, asetat, sitrat ve laktat içerir ve genellikle farklı serotiplerde pH aralığında 7.4 ± 0.3 aralığında çalışır. Yardımcı maddeler, AAV formülasyonlarında yaygın olarak bulunan stabilizasyon ajanlarıdır; bunlar arasında NaCl, KCl, poloksamer 188 (Px188), MgCl₂, CaCl₂, sukroz, PS20, sorbitol, mannitol, gliserol ve insan serum albümini bulunur. Px188 %0.001 oranında, arayüz ve mekanik stresi azaltmak için yaygın olarak kullanılır; böylece kapsid yırtılması ve titer kaybı ile işlem sırasında ve donma-erime59 sınırlanır. Osmolarizate, insan içi uygulama için önemli bir faktördür, ancak araştırma düzeyindekiRSM 60 için daha az önemlidir. Çoğu ticari RSM, bazen ek tuzlarla desteklenen PBS tabanlı tamponlar kullanır. Tedarikçiler, -80 °C'de saklanmasını ve birden fazla donma-erime döngüsünden kaçınmayı önerir; çünkü bu, buz-su arayüzlerinde kapsid yırtılmasını teşvik edebilir ve bu da 34,61 titrinde kayba yol açabilir.
4. Analitik karakterizasyon: Standardın tanımlanması
RSM üretildiğinde, saflaştırıldıktan ve formüle edildikten sonra kapsamlı bir analitik karakterizasyon yapılır. Bu adım, RSM'nin kalitesini ve farklı analitik yöntemler arasında referans olarak uygulanabilirliğini sağlar. Aynı kalite özelliklerini değerlendirmek için ortogonal analitik tekniklerin kullanılması, sağlamlığı sağlamak için özellikle önemlidir ve bu nedenle şiddetle tavsiye edilir. AAV RSM için özel olarak temel kalite özellikleri, Tablo 2'de listelendiği gibi titre, kimlik ve saflık olmak üzere üç kategoriye ayrılabilir.
- Titre
RSM karakterizasyonu, vektör genom titresi ve kapsid parçacık titresi olarak nicel olarak ölçülmesini kapsar ve mevcut vektör genomları ve kapsidlerin sayısı hakkında bilgi sağlar. Genom titeri genellikle transgen, ITR'ler veya diğer transgen kaset öğelerini hedefleyen qPCR veya dPCR ile ölçülür; test tasarımı ve primer/prob yerleştirme sonuçları önemli ölçüde etkiler. ITR tabanlı testler serotipten bağımsızdır ve geniş çapta uygulanabilirdir, ancak ITR'lerin saç tokası yapısı primer bağlanmasını engelleyebilir ve bu tür testler, kısmen doldurulmuş kapsidler ve ITR dizilerini tutan varsa titreleri fazla tahmin edebilir; ITR-hedefli qPCR'nin, AAV2 ve AAV8 RSM'ler için genom titrelerini ifade kaseti hedefleme testlerine göre fazla tahmin ettiğigösterilmiştir 11. qPCR'de bir diğer önyargı kaynağı, çift zincirli plazmid DNA kalibrasyonlarının kullanılmasıdır; bu kalibreler, tek zincirli rAAV genomlarından farklı amplifikasyonkinetikleri gösterir 29.
dPCR, Poisson istatistiği ile mutlak niceliklendirme yoluyla her iki sınırlamayı da ele alır, standart eğri bağımlılığını ortadan kaldırır ve ITR ikincil yapı girişimine karşı daha az hassas olduğugösterilmiştir 62. Özellikle, qPCR plazmid tabanlı değil rAAV tabanlı bir kalibre karşı kalibre edildiğinde eşdeğer doğruluk sağlayabilir ve daha maliyet etkin biralternatif 63 sunar. Uygun örnek ön işlem de aynı derecede önemlidir. DNaz tedavisi, yalnızca kapsidlenmiş genomların nicelendirilmesini sağlamak için dış DNA'yı çıkarır ve kapsid bozulmasından önce proteinaz K veya ısı tedavisi 64,65,66 kullanılarak inaktivasyon yapılmalıdır. Araştırmagrubumuz 67 tarafından arındırılmış vektör örneklerinde ddPCR tabanlı genom niceliklendirmesi için optimize edilmiş ve doğrulanmış bir protokol yayımlanmıştır.
Kapsid parçacık titresi genellikle ELISA veya SEC-MALS kullanılarak belirlenir. ELISA, matris etkilerine yüksek özgüllük ve dayanıklılık sunar, ancak serotipe özgül, standart eğriye bağımlı ve emek yoğundur. SEC-MALS serotipten bağımsız ve daha hızlıdır ancak özel bir enstrümantasyongerektirir 22.
- Kimlik
Kimlik değerlendirmesi, üretilen AAV'nin amaçlanan serotip ve genomik diziyle uyumlu olduğunu, protein ve DNA seviyelerinde istenmeyen değişiklikleri hariç tutmayı amaçlamaktadır. Kapsid protein kimliği serotip tanımlamasına atıfta bulunur. Yaygın yöntemler arasında serotipe özgü antikorlar kullanılarak ELISA ve western blot (WB) bulunur. Daha yakın zamanda, yüksek performanslı sıvı kromatografi (LC-MS) ile birleşen kütle spektrometrisi, yüksek tekrarlanabilirlik, doğruluk ve dayanıklılık nedeniyle serotip tanımlama ve kapsid bileşimi analizi için daha yüksek dereceli, tamamlayıcı bir yaklaşım olarak ortaya çıkmıştır; ancak genellikle rutin iç RSM karakterizasyonuiçin kullanılmaz. 6,22. Vektör genom kimliği, nanopore dizileme gibi dizileme yöntemleriyle değerlendirilebilir. Bu yaklaşım, tam AAV genomlarının uzun okuma kapsamını sağlar ve ardışıkkimlik 22'nin doğru belirlenmesini sağlar.
- Saflık
AAV RSM'ler için üçüncü önemli kalite parametresi saflıktır; bu da protein saflığı, kapsid ve genom bütünlüğü, kapsid içeriği ve agregasyonu kapsar. Kapsid bütünlüğü, VP stoichiometry doğrulanarak (VP1:VP2:VP3 ≈ 1:1:10) Sodyum Dodekil Sülfat-Poliakrilamid Jel Elektroforezi (SDS-PAGE), Kapiller Elektroforez Sodyum Dodesil Sülfat (CE-SDS) veya WB ile değerlendirilir; WB ayrıca kapsid proteini kimliğidoğrulaması sağlar 22.
Genom bütünlüğü, transgenin tam boy veya kesilmiş olup olmadığı, Agarose Jel Elektroforezi (AGE), çoklu ddPCR veya nanopore dizileme gibi dizileme tabanlı yaklaşımlarla değerlendirilebilir. AGE basit olsa da, sınırlı çözünürlük ve özgüllük sunuyor. Multiplex ddPCR, jel tabanlı yöntemlerin yapamadığı nicel, bölgeye özgü veriler sağlar; ancak bu veriler daha kapsamlı test geliştirme pahasınagerçekleşir. 22,68.
Kapsid içeriği genellikle genom titresinin kapsid titresine bölünmesiyle tahmin edilir; ancak bu, iki bağımsız teste dayanır; bu da ek değişkenlik getirebilir ve bu nedenle RSM'lerin karakterizasyonu için önerilmez. Bu öznitelik için daha düşük değişkenlikle daha uygun teknikler arasında AUC, SEC-MALS, MP, CD-MS ve UV/Vis 8,69,70,71,72,73 bulunur. Son gelişmeler, AUC ve SEC-MALS'in çoklu özellikli yöntemler olarak değerini daha da artırmıştır. Özellikle, çok dalga boylu AUC (MWL-AUC), sadece boş, kısmen dolu ve tam kapsidlerin ayırt edilmesini değil, aynı zamanda genom titresi, kapsid titresi ve toplama 71,74'ün de değerlendirilmesini sağlar. Benzer şekilde, SEC-MALS tek bir testle kapsid titri, genom titresi, saflık, toplanma ve tam-boş kapsidoranları 73,75 hakkında bilgi sağlayabilir. Toplama ayrıca dinamik ışık saçılması (DLS) kullanılarak da izlenebilir. Özellikle, sadece AUC, MP ve CDMS geleneksel olarak kısmen doldurulmuş kapsidleri nicelikten ölçemek için yeterli çözünürlük sunmuştur. Ancak, son zamanlarda SV-AUC ve MP76 ile karşılaştırıldığında kısmen doldurulmuş kapsidleri doğru şekilde niceleyebilen geliştirilmiş bir TEM yöntemi geliştirilmiştir. Kapsid içeriği için tek bir yöntem altın standart olarak ortaya çıkmadığından ve bu teknikler farklı analitik ilkelere dayandığından, genel saflığın kapsamlı bir değerlendirmesini elde etmek için birden fazla tamamlayıcıyaklaşımın kullanılması önerilir 10.
- Stabilite
RSM'ler için uzun vadeli kararlılık kritik öneme sahiptir, çünkü referans değerleri sabit kalmalıdır ve zamanla güvenilir kalibrasyon sağlanır. AAV RSM'ler genellikle kapsid ve genom bütünlüğünü korumak için ≤ -70 °C sıcaklıkta depolanır. AAV8 RSM (ATCC VR-1816) üzerinde yapılan çoklu laboratuvarlı stabilite çalışması, < -70 °C77 sıcaklıkta en az iki yıl boyunca stabil vektör genom titresi, enfeksîyon titre ve kapsid titremesini göstermiştir. Stabilite testi prosedürleri, ICH Q1A yönergelerine uygun olabilir ve temel nitelikleri belirli aralıklarla değerlendirebilir: her 3 ayda bir (1. yıl), her 6 ayda bir (2. yıl) ve ardından her yıl 78. Hızlandırılmış depolama koşullarında (2–8 °C) kısa süreli stabilite genellikle 1, 2 ve 4 haftalardadeğerlendirilir 79. Kritik stabilite gösteren özellikler arasında genom titresi, kapsid titresi, kapsid içeriği, kapsid protein bütünlüğü ve agregasyon bulunur. RSM'ler ayrıca donma-erimehassasiyeti 80 açısından da değerlendirilmelidir.
5. AAV analitik standartlaştırmasının ikinci direği olarak uyumlaştırılmış SOP'lar
İyi karakterize edilmiş RSM'lerin bulunmasının ötesinde, AAV analizinde anlamlı standartlaştırma için uyumlu ve yeterince ayrıntılı SOP'lar da gereklidir. Aynı analitik yöntem uygulandığında bile, örnekler ön işleme, enstrüman ayarları, kalibrasyon stratejisi, veri işleme ve yorumlama kriterlerindeki farklılıklar nedeniyle laboratuvarlar arasında önemli ölçüde farklılık gösterebilir; bu faktörler, analitik platformun kendisinden bağımsız olarak laboratuvarlar arası değişkenliğe katkıda bulunduğugösterilmiştir 8,9.
Bu, NIST, Ulusal Biyofarmacılık İnovasyon Enstitüsü (NIIMBL) ve USP laboratuvarlar arası çalışmasıyla gösterilmiştir; altı laboratuvar aynı AAV5 ve AAV8 örneklerini dört yöntemle kapsid içeriği açısından değerlendirmiştir. SEC-MALS ve UV/Vis gibi optik yöntemler laboratuvarlar arası en güçlü uyumu gösterirken, PCR-ELISA zayıf tekrarlanabilirlik gösterdi ve daha fazla uyumlaştırma olmadan nicel kullanım için uygun görülmedi. Yaygın olarak altın standart bir yöntem olarak kabul edilmesine rağmen, VV-AUC, SEC-MALS'e göre daha fazla laboratuvar arası değişkenlik gösterdi ve standartlaştırılmış SV-AUC prosedürlerinin geliştirilmesi için takip çalışmaları önemli bir sonraki adımolarak tanımlandı 8,81.
Benzer bir sonuç, dPCR ile genom titre belirleme için de ortaya çıkmıştır; burada örnek ön işlem, ekstraksiyon stratejisi, cihaz platformu, seyreltme koşulları, kapsid lizisi zamanlaması ve donma-erime geçmişi bildirilen değerleri etkileyebilir. Önemli olarak, daha sıkı prosedürel kontrolün değişkenliği önemli ölçüde azalttığı gösterildi ve bu da uyumlaştırılmışSOP'ların değerini daha da vurguladı 9.
Bu nedenle RSM'ler ve SOP'lar, AAV analitik standartlaştırmasının tamamlayıcı direkleri olarak görülmelidir. RSM'ler, izlenebilirlik ve kalibrasyon için gereken ölçüm demirini sağlarken, SOP'lar prosedürel değişkenliği azaltır ve atanan değerlerin analistler, cihazlar ve laboratuvarlar arasında tutarlı şekilde yeniden üretilmesini sağlar.